Method Article
توضح هذه المقالة طرقا خطوة بخطوة لأتمتة القياس الكمي للنوى المستندة إلى الصور باستخدام برنامج قابل للتنفيذ مفتوح المصدر تم التحقق من صحته عبر مجموعة من كثافات الخلايا. يوفر هذا البرنامج بديلا يعالج الحواجز المتعلقة بالتكلفة ، وإمكانية الوصول للمستخدمين ذوي المهارات التكنولوجية المحدودة ، والتحقق من الصحة الخاصة بالتطبيق التي قد تحد من فائدة التقنيات الحالية.
تتطلب فحوصات الخلايا الحية وتحليلات الخلايا المستندة إلى الصور تطبيع البيانات للتفسير الدقيق. الطريقة الشائعة الاستخدام هي تلطيخ النوى وتحديدها كميا ، متبوعا بتطبيع البيانات لعدد النوى. غالبا ما يتم التعبير عن عدد النوى هذا على أنه عدد خلايا للخلايا أحادية النواة. في حين أن القياس الكمي اليدوي يمكن أن يكون شاقا ويستغرق وقتا طويلا ، فقد لا يفضل جميع المستخدمين الطرق المؤتمتة المتاحة ، أو قد تفتقر إلى التحقق من صحة هذا التطبيق المحدد ، أو قد تكون باهظة التكلفة. هنا ، نقدم إرشادات خطوة بخطوة لالتقاط صور قابلة للقياس الكمي للنوى الملطخة ببقع الحمض النووي الفلورية وبالتالي تحديد النوى باستخدام برنامج آلي لعد الكائنات تم تطويره باستخدام مكتبات رؤية الكمبيوتر Python. نقوم أيضا بالتحقق من صحة هذا البرنامج عبر مجموعة من كثافات الخلايا. على الرغم من أن الوقت المحدد لتنفيذ البرنامج يختلف بناء على عدد الصور وأجهزة الكمبيوتر ، إلا أن هذا البرنامج يدمج ساعات العمل لعد النوى في ثوان لتشغيل البرنامج. بينما تم تطوير هذا البروتوكول باستخدام صور الخلايا الثابتة والملطخة ، يمكن أيضا قياس صور النوى الملطخة في الخلايا الحية وتطبيقات التألق المناعي باستخدام هذا البرنامج. في النهاية ، يوفر هذا البرنامج خيارا لا يتطلب درجة عالية من المهارة التكنولوجية وهو بديل مفتوح المصدر تم التحقق من صحته لمساعدة علماء الأحياء الخلوية والجزيئية في تبسيط سير عملهم ، وأتمتة المهمة الشاقة والمستهلكة للوقت المتمثلة في قياس النوى.
تعد التجارب الوظيفية والقائمة على الصور أمرا بالغ الأهمية لفهم تأثيرات العلاجات التجريبية على الكيمياء الحيوية وعلم وظائف الأعضاء للخلية بأكملها. يعتمد التفسير الصحيح للبيانات من تجارب بيولوجيا الخلية على دقة وقابلية تكرار البروتوكول التجريبي ، بما في ذلك تطبيع البيانات. على سبيل المثال ، تسمح تحليلات استهلاك الأكسجين ومعدلات التحمض خارج الخلية في الخلايا الحية عند خط الأساس وبعد العلاج بأدوية معينة بتقييم الجوانب المختلفة لعملية التمثيل الغذائي للطاقة1،2. يمكن أن يساعد قياس نشاط الإنزيمات مثل نازعة هيدروجين اللاكتات في المادة الطافية لمزارع الخلايا في تحديد سلامة غشاء الخلية3. يسمح تلطيخ الخلايا المستنبتة بالملحق V ويوديد البروبيديوم قبل التثبيت بتقييم الخلايا المبرمجة والميتة4. ومع ذلك ، فإن الاختلافات في كثافة الخلايا عبر الآبار تؤثر على نتائج كل من هذه المقايسات. يمكن أن يؤدي الاعتماد فقط على كثافة البذر إلى نتائج مضللة بسبب الأخطاء في عد الخلايا للبذر ، أو الاختلافات في كثافة الخلايا في الوسائط أثناء الطلاء ، أو معدلات مختلفة لنمو الخلايا بين العينات أو العلاجات خلال التجارب. لذلك ، يلزم تطبيع النتائج التجريبية.
تتضمن طرق التطبيع الحالية لبيانات الخلية الوظيفية والقائمة على الصور تركيز البروتين5 أو عدد النوى أوالخلايا 6. لتطبيع البيانات إلى تركيز البروتين ، يجب استخراج الخلايا بكميات متساوية من المخزن المؤقت للتحلل باستخدام مثبط الإنزيم البروتيني بعد تشغيل الفحص ، ويجب إجراء فحص إضافي (على سبيل المثال ، مقايسة حمض البيسينشونيك ، ومقايسة برادفورد ، وما إلى ذلك) لقياس البروتين. تعتمد دقة هذه الطريقة على استخراج الخلايا بالكامل. ترك أي بروتين وراءه يساهم في حدوث أخطاء في القياس الكمي. يوفر عد النوى أو الخلايا بديلا حيث لا يلزم إزالة الخلايا من السطح الذي تنمو عليه. بدلا من ذلك ، يتم تلطيخ الخلايا الحية أو الثابتة أو تلطيخها باستخدام البقع اللونية أو الفلورية ، ويمكن إجراء العد بناء على صور الخلايا الكاملة أو النوى فقط. يفضل تحديد النوى على الخلايا الكاملة لتطبيقات الفحص المجهري الفلوري ولتطبيع البيانات في الخلايا المنصهرة (مثل الأنابيب العضلية) أو الأنسجة. لتقدير النوى باستخدام نهج التألق ، يتم تطبيق أصباغ الحمض النووي الفلورية (على سبيل المثال ، 4 ، 6-diamidino-2-phenylindole dichloride (DAPI) ، Hoechst 33342 ، Hoechst 33358 ، DRAQ5 ، إلخ) على الخلايا الحية أو الثابتة وتصويرها باستخدام المجهر الفلوري. ترتبط DAPI و Hoechst و DRAQ5 بشكل تفضيلي بالمناطق الغنية بالأدينين الثايمين من الحمض النووي7،8،9 ، مما يوفر وسيلة للكشف عن النوى. يمنع تحسين تركيز الصبغة الارتباط خارج الهدف (أي بالحمض النووي للميتوكوندريا ، مما يتسبب في التألق العصاري الخلوي المنقط)10. يمكن تبسيط عملية التحسين باستخدام وسائط التثبيت المتاحة تجاريا التي تحتوي على DAPI للخلايا الثابتة (على سبيل المثال ، وسيط التركيب المضاد للتلاشي VECTASHIELD مع DAPI) والتركيزات المنشورة من البقع للخلايا الحية (على سبيل المثال ، Hoechst) 6،11،12. بمجرد تلطيخها ، يتم تصور النوى في الخلايا الحية أو الثابتة باستخدام مرشح الإثارة المناسب (على سبيل المثال ، الأشعة فوق البنفسجية [DAPI و Hoechst] أو الأحمر البعيد [DRAQ5]). الحد الأقصى للإثارة ل DAPI و Hoechst و DRAQ5 في أي من طرفي الطيف للفحص المجهري الفلوري. هذه السمة ، بالإضافة إلى خصوصية الحمض النووي لهذه الأصباغ واستخدامها بتركيزات مثالية ، تقلل من التألق خارج الهدف. تظهر الصور الناتجة نوى ساطعة على خلفية سوداء ، ويتم قياس هذه النوى كميا كمقياس لعدد الخلايا للخلايا أحادية النواة. في حين أن هناك طرق أخرى دقيقة قائمة على البقع لقياس النوى باستخدام البقع النسيجية والفحص المجهري الساطع13 ، فإن الأتمتة أكثر صعوبة ، وإن كانت ممكنة ، باستخدام هذه الأساليب.
في حين أنه لا يزال المعيار الذهبي ، فإن القياس الكمي اليدوي للنوى شاق ويستغرق وقتا طويلا وعرضة للخطأ البشري المحتمل مع العد المطول. على الرغم من وجود برامج عد الخلايا الآلي ، إلا أنها لا يفضلها جميع المستخدمين ، وقد تكون باهظة التكلفة ، وقد يكون التحقق من صحة تطبيقات معينة ضئيلا. أصبحت Python موردا قيما ويمكن الوصول إليه لعلماء الأحياء في السنوات الأخيرة. تعد مكتبات رؤية الكمبيوتر Python مفيدة بشكل خاص لتحليل الصور14. هنا ، نقدم إرشادات خطوة بخطوة لاستخدام برنامجنا القابل للتنفيذ الذي تم تطويره باستخدام كود Python لتحديد النوى الملطخة بأصباغ الفلورسنت وتصويرها باستخدام المجهر الفلوري. مهارات الترميز ليست ضرورية لاستخدام البرنامج الموضح هنا. سير العمل هذا خاص بالخلايا أو الأنسجة التي يتم تطبيق أصباغ الحمض النووي الفلورسنت. إنه غير مخصص للاستخدام مع صور المجال الساطع. يصف القسم 1 كيفية التقاط الصور التي تم جمعها وحفظها باستخدام الفحص المجهري الفلوري بطريقة متوافقة مع سير العمل هذا. يوفر القسم 2 تعليمات لتشغيل برنامج القياس الكمي للنوى كإخراج قابل للتنفيذ والجلب. يمكن تشغيل البرنامج القابل للتنفيذ مباشرة من الملف .exe المقدم ولا يتطلب أي تعديلات لتحديد النوى في الصور عالية الجودة. يتطلب هذا الملف القابل للتنفيذ جهاز كمبيوتر يعمل بنظام Windows. يوفر القسم 3 إرشادات لتشغيل البرنامج كبرنامج نصي Python بدلا من ملف قابل للتنفيذ (مطلوب للأنظمة المستندة إلى Mac أو Linux ، اختياري للأنظمة المستندة إلى Windows) ويسمح بضبط الكود إذا رغبت في ذلك. يصف القسم 4 كيفية استخدام النتائج للتطبيع. تتبع هذه البروتوكولات نتائج تمثيلية ، بما في ذلك بيانات التحقق من الصحة من مختبرنا.
ملاحظة: يمكن العثور على الملفات التكميلية على الرابط التالي https://osf.io/a2s4d/?view_only=2d1042eb8f7c4c4a84579fe4e84fb03c
1. التقاط الصور وحفظها باستخدام المجهر الفلوري
الشكل 1: أمثلة على صور النوى الملطخة ب DAPI. تصور هذه الصور النوى عند كثافة الخلايا (A) منخفضة أو (B) متوسطة أو (C) عالية مع الحد الأدنى من الخلفية. لاحظ كثافة الإشارة المتغيرة للنوى عبر الصورة C. هذا لم يتعارض مع القياس الكمي. يشير شريط المقياس (C) إلى 100 ميكرومتر. يجب حذف أشرطة المقياس من الصور المستخدمة لقياس النوى. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
2. تشغيل برنامج القياس الكمي الآلي للنوى كملف قابل للتنفيذ
ملاحظة: هذه الطريقة، التي تقوم بتشغيل البرنامج كملف قابل للتنفيذ، متوافقة مع أجهزة الكمبيوتر التي تعمل بنظام التشغيل Windows وهي الطريقة الموصى بها لمستخدمي نظام التشغيل Windows. يجب على نظام التشغيل Mac OS أو غيرهم من المستخدمين غير التابعين لنظام التشغيل Windows تشغيل البرنامج كبرنامج نصي Python (انظر القسم 3).
الشكل 2: أمثلة على الأجزاء الرئيسية لسير العمل للقسم 2. (أ) استخراج الملفات من مجلد التنزيلات، مع الحرص على النقر فوق المجلد الصحيح كما هو موضح بالسهم لتمكين الاستخراج (B) إلى الوجهة المطلوبة في الخطوة 2.3. (ج) أمثلة على أوامر الخطوتين 2.4 و 2.5 وسطر الأوامر التالي الذي يشير إلى الانتهاء في الخطوة 2.6. لاحظ أن مسار الملف في الخطوة 2.4 (C) يطابق موقع الاستخراج في الخطوة 2.3 (B). الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
3. تشغيل برنامج القياس الكمي للنوى الآلي كبرنامج نصي Python
الشكل 3: أمثلة على الأجزاء الرئيسية لسير العمل للقسم 3 باستخدام نظام التشغيل Windows. للوصول إلى الرمز ، انقر فوق الزر الأخضر المسمى Code و (A) قم بتنزيل ملف Zip (المشار إليه بالأسهم). (ب) قم بالاستخراج بالنقر بزر الماوس الأيمن على ملف Zip (الموضح باللون الأزرق) و (C) وتعيين الوجهة المطلوبة. (د) بعد فتح موجه الأوامر، أمثلة على الأوامر الخاصة بالخطوتين 3-3-4 و3-3-5. لاحظ أن الأمر الخاص بالخطوة 3.3.5 هو كل شيء في سطر واحد. يظهر النص الذي يبدأ "الحصول على ملف" في السطر التالي بعد الضغط على Enter (الخطوة 3.3.6 ؛ أي تشغيل الأمر). (ه) أمثلة على أوامر الخطوتين 3.3.7 و 3.3.8 ، وشريط التقدم بعد تنفيذ الخطوة 3.3.8 ، وسطر الأوامر الذي يوضح الإكمال في الخطوة 3.3.9. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 4: أمثلة على الأجزاء الرئيسية من سير العمل للقسم 3 باستخدام نظام التشغيل Mac OS. بعد تنزيل الكود (انظر الشكل 3 أ) ، (أ) استخرج بالنقر فوق ملف Zip (الموضح باللون الأزرق) وتعيين الوجهة المطلوبة. (ب) بعد فتح المحطة الطرفية ، أمثلة على أوامر الخطوتين 3.4.4 (تغيير الدليل إلى مستودع التعليمات البرمجية) و 3.4.5 (تثبيت النقطة). (ج) أمثلة على أوامر الخطوتين 3.4.7 و 3.4.8 ، وشريط التقدم بعد تنفيذ الخطوة 3.4.8 ، وسطر الأوامر الذي يوضح الإكمال في الخطوة 3.4.9. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
4. استخدام التهم لتطبيع البيانات التجريبية
ينتج كل تشغيل للصور الدفعية: 1) مجموعة من ملفات الصور مع الخطوط المطبقة التي توضح الخطوط العريضة للنوى المحددة (الشكل 5) ، و 2) ملف .csv (جدول بيانات) يربط أسماء ملفات الصور والأعداد المرتبطة بها. سيسمح عرض الخطوط للمستخدم بتقييم جودة العد بصريا. على وجه التحديد ، يجب أن تحتوي الصور التي تم الحصول عليها وفقا للقسم 1 على جميع (أو كل تقريبا) النوى المحاطة بخط أخضر صلب يشير إلى أن النواة قد تم عدها بواسطة البرنامج. تم استخدام هذه الخطوط لضبط البرنامج هنا.
الشكل 5: أمثلة على الصور الأصلية والخطوط المقابلة. (أ-ج) أمثلة على الصور الأصلية قبل التحليل و (D-F) الخطوط المقابلة بعد التحليل أدناه مباشرة. يشير شريط المقياس (C) إلى 100 ميكرومتر. يجب حذف أشرطة المقياس من الصور المستخدمة لقياس النوى. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
التحقق من الصحة باستخدام النتائج الأولية
كانت الأرومات العضلية C2C12 بكثافات الخلايا المختلفة مثبتة بالميثانول ، وتم تلبطيخها باستخدام DAPI في وسائط التركيب ، وتم الحصول على 120 صورة بتكبير 10x بتنسيق ملف .jpg. تم تشغيل البرنامج التلقائي مع تعيين دليل الصور إلى المجلد الذي يحتوي على هذه الصور ، وتم حفظ ملف .csv الناتج. بشكل منفصل ، تم تحديد كل صورة يدويا من قبل باحثين مدربين كانا أعمى عن التعداد الآلي وتعداد بعضهما البعض. تتوفر الصور الأولية والخطوط التي تم إنشاؤها بواسطة البرنامج الآلي وجدول بيانات النتائج بما في ذلك التعداد اليدوي والآلي في مستودع إطار العلوم المفتوحة (OSF) (انظر الرابط في القسم 1). تم حساب معاملات الارتباط داخل الفئة (ICCs ؛ متوسط المقاييس) باستخدام إحصائيات SPSS لتحديد موثوقية المقيم بين 1) العددين اليدويين و 2) متوسط العددين اليدويين والعددين اللذين تم الحصول عليهما باستخدام البرنامج الآلي. تم استخدام مناهج مماثلة للتحقق من صحة البرامج الأخرى المصممة لتحديد الكائنات في الصور التي تم الحصول عليها باستخدام الفحص المجهري الفلوري16،17،18. تم حساب ICCs أيضا بين متوسط العد اليدوي والتعداد الآلي لكل ربع للتأكد من أن تقييم مجموعة البيانات بأكملها لا يخفي أي تغييرات محتملة في الموثوقية بناء على كثافة الخلايا. تم تحديد الأرباع باستخدام نقاط القطع المئوية 25و 50 و 75 بناء على متوسط العد اليدوي ، وتتراوح من الربع 1 (Q1 ؛ أقل كثافة للخلايا) إلى Q4 (أعلى كثافة للخلايا). يتم الإبلاغ عن المؤتمرات الدولية بناء على متوسط المقاييس وتفسيرها بناء على التعاريف التالية: ضعيف (ICC <0.50) ، متوسط (0.50 ≤ICC <0.75) ، جيد (0.75 ≤ICC <0.90) ، أو ممتاز (ICC ≥0.90)19.
تراوحت النوى لكل صورة من 44.5 إلى 1160 بناء على متوسطات العد اليدوي. وكانت موثوقية المقيم ممتازا بين العددين اليدويين (ICC > 0,999, p < 0,0001; الشكل 6 أ) وبين متوسط التعداد اليدوي والآلي (ICC = 0.993 ، ص < 0.0001 ؛ الشكل 6 ب). ظلت الموثوقية ممتازة عبر الأرباع (Q1: ICC = 0.996 ، ص < 0.0001 ؛ س 2: ICC= 0.997 ، ص < 0.0001 ؛ س 3: غرفة التجارة الدولية = 0.998 ، ص < 0.0001 ؛ س 4: غرفة التجارة الدولية = 0.986 ، ص < 0.0001 ؛ الشكل 6C-F). تمثل نقطة البيانات الفردية البعيدة عن أفضل خط ملاءمة في الشكل 6 ب الصورة الموضحة في الشكل 7. تحتوي الصورة على عدة مناطق من نوى متعددة مجمعة معا ، مما يمنع برنامج رؤية الكمبيوتر من التعرف على كل نواة. يمكن إصلاح هذه المشكلة باستخدام وقت تعرض أقصر. يصف الجدول 1 كيفية التعامل مع مثل هذه الصورة.
الشكل 6: الموثوقية بين المقيمين. الموثوقية بين المقيمين عبر مجموعة البيانات الكاملة (A) بين عدد المقيمين اليدوي و (B) بين الجرد الآلي ومتوسط العد اليدوي. (C-F) الموثوقية بين المقيمين بين العد الآلي ومتوسط العد اليدوي حسب الربع. الموثوقية معبرا عنها كمعامل ارتباط داخل الفئة (ICC). الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل 7: مثال على صورة بها حاجزان أمام القياس الكمي الدقيق للنوى. (أ) الصورة الأصلية و (ب) الخطوط المرتبطة بها. يشير السهم 1 إلى منطقة بها نوى متعددة متجمعة معا ، مما يشوه الشكل النووي الدائري بما يكفي لإعاقة اكتشاف البرامج للنوى المتعددة. يحدث هذا في عدة مواقع في جميع أنحاء هذه الصورة. يشير السهم 2 إلى هالة باهتة تظهر خلف نوى متعددة. بدت هذه الهالة ساطعة بما يكفي لتضمينها كنواة ، وبالتالي فقدان عدد النوى المتعددة التي يحيط بها. تمثل هذه الصورة نقطة البيانات الفردية البعيدة عن الخط الأنسب في الشكل 6 ب ، مع التركيز على المشاكل المحتملة مع هذه الحواجز. يشير شريط المقياس (A) إلى 100 ميكرومتر ؛ يجب حذف أشرطة المقياس من الصور المستخدمة لقياس النوى. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
يتمتع برنامج قياس النوى الخاص بنا بالعديد من المزايا مقارنة بالخيارات الحالية: فهو لا يتطلب سوى الحد الأدنى من المهارات التكنولوجية ، ويتم التحقق من صحته للمهمة المحددة المتمثلة في تحديد كمية النوى ، وهو مفتوح المصدر. هذا الأخير يتغلب على الحواجز المتعلقة بالتكلفة. في النهاية ، يوفر هذا البرنامج لعلماء الأحياء الخلوية والجزيئية خيارا إضافيا لتحديد النوى بسرعة ودقة في الصور الملتقطة باستخدام الفحص المجهري الفلوري. لا يفضل جميع المستخدمين برامج عد الخلايا أو النوى الآلية المتاحة حاليا ، وبعضها باهظ التكلفة ، وقد يكون التحقق ضئيلا أو غائبا لتطبيقات محددة. المعدات المتخصصة ، مثل خط BioTek Cytation ، مصحوبة بنشرات فنية تتحقق من صحة عد الخلايا في الموقع باستخدام التلوين النووي20 بالإضافة إلى مجموعة متنوعة من التطبيقات الإضافية. في حين أن بيانات التحقق من الصحة موجودة ويستخدم خط إنتاج Cytation على نطاق واسع ، خاصة عند التفاعل مع Seahorse Extracell Flux Analyzers لتطبيع بيانات الخلايا الحية بسهولة وكفاءة ، يمكن أن يكون هذا المنتج باهظ التكلفة للمختبرات ذات التمويل المحدود للمعدات المتاحة. على سبيل المثال ، تجاوزت قائمة الأسعار للنموذج الأساسي المجهز بأربعة أهداف وأربعة مكعبات ترشيح للفحص المجهري الفلوري 100,000 دولار أمريكي في السنة التقويمية 2024. بالنسبة لأولئك الذين ليس لديهم وسائل لشراء معدات متخصصة ، توفر البرامج مفتوحة المصدر بدائل مجانية لتحليل الصور. تتضمن البرامج مفتوحة المصدر المفيدة للنوى والخلايا ImageJ (المعاهد الوطنية للصحة ، بيثيسدا ، دكتوراه في الطب ، الولايات المتحدة الأمريكية ؛ متوفرة في 21. المكونات الإضافية متاحة الآن لأولئك الذين يرغبون في كتابة نصوص ماكرو لأتمتة معالجة الصور باستخدام منصة ImageJ. تم وصف أتمتة عد الخلايا المستندة إلى ImageJ باستخدام تباين الطور أو الفحص المجهري للحقل الساطع مع صور الخلية الكاملةسابقا 22،23. CellProfiler هو تطبيق منشور على نطاق واسع لتحليل صور الخلايا الملطخة بأصباغ الفلورسنت أو البقع النسيجية القياسية ، وغالبا ما يتم الاستشهاد بمقال مبكر يصف فائدته عبر مجموعة من التطبيقات البيولوجية على أنه التحققمن الصحة 24. ومع ذلك ، فإن هذه المخطوطة لا تتحقق من صحة أي اكتشاف بيولوجي معين ، مما يستلزم مزيدا من التحقق من الصحة والشفافية لخطوط أنابيب الأتمتة المختلفة المستخدمة ، مثل عد النوى25. علاوة على ذلك ، في حين أن CellProfiler عبارة عن حزمة برامج فعالة لتحليل الخلايا ، إلا أن جميع العلماء لا يجدونها سهلة الاستخدام. لذلك ، كنا نهدف إلى تطوير والتحقق من صحة برنامج آلي بديل لتحديد النوى باستخدام برامج مفتوحة المصدر. على وجه التحديد ، استخدمنا مكتبات رؤية الكمبيوتر الحالية في Python لتطوير سير العمل هذا.
تبدأ هذه الطريقة بالخلايا أو الأنسجة التي قام المستخدم النهائي بتلطيخها باستخدام بقع الحمض النووي مثل DAPI26. يتم توفير إرشادات عامة لالتقاط الصور وحفظها بطريقة متوافقة مع برامج الأتمتة. على الرغم من أن التفاصيل قد تختلف باختلاف المجاهر وبرامج التصوير، إلا أن سير العمل العام للقسم 1 هو نفسه للحصول على صور قابلة للقياس الكمي. في حالة استخدام عينات حية ، يجب توخي الحذر لضمان ارتداء معدات الحماية الشخصية المناسبة وبيئة التصوير المناسبة لتلك العينات (على سبيل المثال ، درجة الحرارة ، النسبة المئوية لثاني أكسيد الكربون2 ، إضافة المخزن المؤقت ، إلخ.)27. بينما يصف هذا البروتوكول تصوير أصباغ الحمض النووي فقط ، يمكن للمستخدمين التقاط ألوان أخرى من نفس المنطقة لأغراضالدمج 15 ، ونسخ الصور النووية ببساطة إلى مجلد منفصل لاستخدامها مع برنامج القياس الكمي. يجب إجراء التصوير في غرفة مظلمة مع معدات الوقاية الشخصية المناسبة للعينات الحية ويجب استخدام التطهير المناسب حسب الحاجة (على سبيل المثال ، مع 70٪ إيثانول). يجب حماية العينات الملطخة من الضوء قبل تشغيل الأضواء. يعد التقاط الصور عالي الجودة أمرا بالغ الأهمية لقياس النوى بدقة. حتى في الصور ذات وقت التعرض المناسب والتباين القوي بين النوى الساطعة والخلفية السوداء ، فإن وجود خلايا أو هالات متكتلة بشكل مفرط خلف مجموعات من الخلايا (انظر الشكل 7) قد يقلل من دقة القياس الكمي. في هذه الحالات ، قد تحتاج أوقات التعرض إلى التغيير لتقليل شدة الإشارات ، مما يضمن الحد الأدنى من دمج إشارات النوى وتقليل الهالات مع الحفاظ على إشارة قوية بما يكفي لاكتشاف الأشكال المستديرة للنوى. إذا كانت هذه الخطوات غير كافية، فقد يكون من الضروري تصوير قسم مجاور من العينة. يجب التقاط جميع الصور لتجربة واحدة بنفس التكبير ، ويجب ضبط التكبير المقابل للهدف المستخدم بشكل صحيح في برنامج التصوير. من الأهمية بمكان أن يتطابق الهدف المستخدم للتصوير مع الإعدادات الموجودة على برنامج التصوير عندما يتم استقراء عدد النوى من المنطقة المصورة إلى منطقة البئر (أو الشريحة) بأكملها. يجب أن تتم هذه الخطوة في كل مرة يتم فيها تبديل الهدف ولكن يمكن التغاضي عنها بسهولة عند إعداد المجهر والبرنامج. يختلف الوقت اللازم للقسم 1 بناء على عدد من العوامل (على سبيل المثال ، تجربة المستخدم مع الفحص المجهري الفلوري ، وعدد الصور والعينات ، والمجهر ، وما إلى ذلك). لالتقاط 10-15 صورة للنوى الملطخة لكل بئر في لوحين من 6 آبار ، يجب على المستخدم حجز ما يقرب من 1-2 ساعة من الوقت.
بمجرد التقاط الصور وحفظها في مجلد مخصص ، تكون جاهزة للقياس الكمي. إن أبسط طريقة للقياس الكمي هي تشغيل هذا البرنامج الآلي المعبأ مسبقا دون الحاجة إلى تثبيت Python أو أي مكتبات (القسم 2). وتجدر الإشارة إلى أن البرنامج تم إعداده كملف قابل للتنفيذ وتم تعبئته باستخدام Pyinstaller. عادة ما يتم وضع علامة على البرامج التي تم إنشاؤها باستخدام Pyinstaller بواسطة برنامج مكافحة الفيروسات. إذا قام برنامج مكافحة الفيروسات بحظر فتح الملف، فيجب على المستخدم وضع علامة على الملف على أنه آمن للمتابعة. هذا أمر بالغ الأهمية لتنفيذ القسم 2 بنجاح. بدلا من ذلك ، يمكن لأي مستخدم اختيار تشغيل برنامج القياس الكمي الآلي كبرنامج نصي Python (القسم 3) بدلا من ملف قابل للتنفيذ ، إذا رغبت في ذلك. إذا رغب المستخدم في تشغيل البرنامج باستخدام نظام تشغيل Mac أو Linux ، فيجب تشغيل البرنامج من خلال Python. لا تتطلب هذه الطريقة Pyinstaller ولكنها قد تكون أكثر صعوبة من الناحية الفنية. يهدف البروتوكول خطوة بخطوة إلى جانب الأمثلة ، المفصلة في القسم 3 ، إلى إزالة الحواجز التقنية التي تحول دون تشغيل هذا البرنامج كبرنامج نصي. سواء تم استخدام القسم 2 أو القسم 3 لتشغيل البرنامج ، فمن الأهمية بمكان التأكد من إدخال التعليمات البرمجية بشكل صحيح في موجهات الأوامر. يتم تضمين أمثلة على أسطر التعليمات البرمجية في جميع أنحاء البروتوكول ، ويجب على المستخدم الانتباه جيدا إلى التباعد وعلامات الاقتباس وعلامات الترقيم الأخرى. يجب على المستخدم أيضا التأكد من دقة مسارات الملفات. من المفيد أن تكون مسارات الملفات للصور والمخرجات متوفرة في مستند Word. يمكن أيضا كتابة الأوامر في مستند Word هذا ونسخها / لصقها حسب الحاجة.
كما هو موضح في القسم 4 ، هناك طرق متعددة لتطبيع البيانات التجريبية باستخدام الأعداد التي تم الحصول عليها من برنامج القياس الكمي للنوى الآلي هذا. بالنسبة للتجارب القائمة على الصور حيث تتضمن البيانات التجريبية عددا من الأحداث في كل صورة وتكون النسبة مطلوبة (على سبيل المثال ، نسبة الخلايا الإيجابية على شكل حرف V28 ، ونسبة الخلايا التي تعبر عن مستقبلات ACE229 ، وعدد الخلايا التي تمتص الجسيمات الملطخة30 ، وما إلى ذلك) ، يمكن ببساطة تقسيم البيانات التجريبية لكل صورة على العدد الناتج (مما يؤدي إلى نسبة من 0 إلى 1). بعد ذلك ، يمكن حساب متوسط النسبة عبر نسخ الصور من نفس الشريحة أو الطبق أو البئر. إذا كانت النسبة المئوية مطلوبة ، فما عليك سوى ضرب النسب النهائية في 100. أخيرا ، يمكن استخدام هذه النسب أو النسب المئوية المتوسطة في التحليلات الإحصائية النهائية. عندما تكون البيانات التجريبية المراد تطبيعها من التجارب الوظيفية في الخلايا الحية (على سبيل المثال ، معدلات استهلاك الأكسجين6،11،12) أو من طافي لزراعة الخلايا (على سبيل المثال ، نشاط نازعة هيدروجين اللاكتات في الطاف31 أو تركيز سيتوكين مفرزمعين 32 ، وما إلى ذلك) ، يجب أولا حساب متوسط عدد النوى عبر جميع الصور الملتقطة من نفس البئر. بعد ذلك ، يمكن استقراء عدد النوى إلى مساحة سطح الشريحة (غطاء الغطاء) ، البئر ، أو الطبق ، أو يمكن التعبير عن العدد كنسبة مقابل عينة أو حالة مرجعية. يعد الاستقراء إلى مساحة سطح الشريحة أو البئر أو الطبق مفيدا للتعبير عن البيانات التجريبية مقابل عدد الخلايا (في حالة استخدام خلايا أحادية النواة) التي اشتقت منها البيانات (على سبيل المثال ، الأكسجين المستهلك في الدقيقة لكل 103 خلايا). لاستخدام هذه الطريقة ، يجب معرفة مساحة سطح الشريحة (غطاء الغطاء) أو البئر أو الطبق والمنطقة الملتقطة في كل صورة. إذا كانت العينة لا تغطي مساحة السطح المتاحة بالكامل ، فإن البيانات التجريبية من كمية صغيرة من المادة الطافية (أي معبرا عنها كنشاط أو تركيز لكل وحدة حجم) ، أو الصورة و / أو مساحة السطح غير معروفة ، فإن الخيار الأفضل هو متوسط عدد النوى عبر جميع الصور لعينة واحدة والتعبير عن عدد النوى بالنسبة لعينة مرجعية أو حالة. يتم استخدام القيمة الناتجة لتصحيح البيانات التجريبية لكثافة النوى أو كثافة الخلية (في حالة استخدام خلايا أحادية النواة).
في حين أن هذه الطريقة سهلة التنفيذ ، إلا أن هناك العديد من المشكلات المحتملة التي يجب أن يكون المستخدمون على دراية بها. هذه المشكلات المحتملة ، جنبا إلى جنب مع الأسباب المحتملة وخطوات استكشاف الأخطاء وإصلاحها لحل المشكلات ، مدرجة في الجدول 1. البرنامج الموصوف هنا له مزايا رئيسية مقارنة بالبرامج الحالية. ومع ذلك ، يجب الاعتراف بالعديد من القيود. العيب الرئيسي هو أنه لا يمكن استخدام برنامج القياس الكمي إلا مع الصور الملتقطة باستخدام المجهر الفلوري ، وليس صور المجال الساطع. بينما تم استخدام الصور الملطخة ب DAPI التي تم التقاطها بتكبير 10x لبناء البرنامج ، يمكن استخدام البرنامج مع أصباغ وتكبيرات الحمض النووي الأخرى نظرا لأن البرنامج مصمم للتعرف على مورفولوجيا النوى بدلا من اللون أو الحجم. بينما تحققنا من دقة البرنامج على الصور التي تحتوي على مجموعة متنوعة من كثافات الخلايا ، قد يكون لدى المستخدم النهائي كثافة خلايا تقع خارج النطاق. في هذه الحالة ، ما زلنا نتوقع عمليات دقية بشرط الحصول على صور عالية الجودة ؛ ومع ذلك ، يجب على المستخدم التحقق بعناية من الخطوط والمخرجات لضمان الدقة. بالنسبة لتطبيقات زراعة الخلايا ، فإن القياس الكمي للنوى في الصور هو الأنسب للخلايا في طبقة واحدة. إذا تداخلت الخلايا المستنبتة ، فقد يتم إخفاء النوى ، مما يؤدي إلى التقليل من كمية النوى. تمنع الطبيعة ثنائية الأبعاد لقياس النوى في الصور استخدام هذا البرنامج لتحديد العدد الإجمالي للنوى من الخلايا المعلقة أو كتل الأنسجة السميكة أو غيرها من التطبيقات ثلاثية الأبعاد. ومع ذلك ، لا يزال بإمكان هذا البرنامج تحديد النوى المسماة بأصباغ الحمض النووي الفلورية في صور ثنائية الأبعاد تم التقاطها من نماذج ثلاثية الأبعاد مثل كتل الأنسجة السميكة. يجب أن يحدد المستخدم النهائي فائدة القياس الكمي للنوى في الصور للتطبيق المطلوب.
مشكلة | الأسباب المحتملة | الحلول الممكنة |
خلفية زائدة في الصور | وقت التعرض مرتفع جدا | تقليل وقت التعرض |
يبدو أن النوى تندمج مع بعضها البعض في الصور | تركيز صبغة الحمض النووي الفلوري مرتفع جدا أو الكثير من وسائط تركيب صبغة الحمض النووي | تقليل تركيز الصبغة أثناء التحسين ؛ استخدم أقل قدر ممكن من وسائط التركيب |
تبدو النوى خفيفة جدا أو بعض النوى غير مرئية | وقت التعرض منخفض جدا | زيادة وقت التعرض |
التبييض الضوئي | منع التبييض الضوئي عن طريق ضمان بقاء العينات الملطخة مخزنة في الظلام وتقليل تعرض العينات للإضاءة (على سبيل المثال ، باستخدام الحد الأدنى من وقت التعرض اللازم وإيقاف الإضاءة عندما لا تكون هناك حاجة إليها ، مثل بعد التقاط الصورة أو أثناء تدوين الملاحظات) | |
تأثيرات الهالة أو الأشكال غير الخاصة بالنواة التي تظهر | وقت التعرض مرتفع جدا | تقليل وقت التعرض |
نسالة من مساحات المهام الحساسة أو بعض واقيات الطاولة في الخلايا الحية أو الالتصاق بالخلايا الثابتة | ضمان بيئة خالية من النسالة: تقليل استخدام مساحات المهام الدقيقة عند تعرض العينات (على سبيل المثال ، في خزانة السلامة البيولوجية للخلايا الحية ، أو أثناء تثبيت الخلايا الثابتة وتجفيفها ، أو أثناء عملية التلوين) ؛ تأكد من أن واقيات الطاولة لا تترك الوبر على الشرائح أو الأطباق أثناء التلوين | |
تشوهات أخرى على سطح الخلايا / الأنسجة الثابتة | تعامل مع العينات بعناية فائقة واتبع الاحتياطات المناسبة وأفضل الممارسات أثناء التثبيت والتلطيخ | |
اضطرابات في مسار الضوء | تأكد من أن جميع أجزاء المجهر نظيفة وخالية من الوبر والغبار ؛ نظف الجزء الخارجي من الشرائح / الأطباق / الأطباق باستخدام 70٪ من الإيثانول لإزالة الغبار البيئي والوبر قبل التصوير | |
لن يتم فتح الملف القابل للتنفيذ | حظر برنامج مكافحة الفيروسات الملف | وضع علامة على الملف على أنه آمن |
أخطاء في موجهات الأوامر | مشاكل في التباعد في سطر الأوامر | تحقق مرة أخرى من كتابة بداية الأمر مباشرة بعد الرمز ">" في سطر الأوامر بدون مسافة، وعدم وجود مسافات بعد علامات الاقتباس المفتوحة لمسارات الملفات، وأن التباعد ويتطابق مع التعليمات البرمجية المقدمة والأمثلة. |
الحالات غير الصحيحة المستخدمة في سطر الأوامر | الشفرة حساسة لحالة الأحرف. تأكد من استخدام الأحرف الكبيرة والصغيرة حسب الاقتضاء | |
مشاكل في مسار الملف | تأكد من أن مسار الملف يشير إلى داخل مجلد الملف المقترن (على سبيل المثال ، يكون مجلد الملف مفتوحا عند نسخ مسار الملف). | |
مشاكل البرنامج التي لم يتم حلها باستخدام خطوات استكشاف الأخطاء وإصلاحها أعلاه | مشاكل البرامج أو سطر الأوامر المذكورة أعلاه. | أرسل مشكلة عبر GitHub. انتقل إلى https://github.com/rbudnar/nuclei_counter. في شريط القائمة في الجزء العلوي ، حدد "المشكلات" (الخيار الثاني ، على يمين "الرمز"). انقر فوق الزر الأخضر على الجانب الأيسر الذي يشير إلى "مشكلة جديدة" لإرسالها. ستكون هناك مطالبة بتسجيل الدخول إلى GitHub قبل إرسال المشكلة. سيكون هناك أيضا خيار لإنشاء حساب مجاني إذا لزم الأمر. |
الجدول 1: استكشاف الأخطاء وإصلاحها لالتقاط صور عالية الجودة وتشغيل سير عمل القياس الكمي للنوى التلقائي.
بشكل عام ، توفر الطرق الموضحة هنا تفاصيل خطوة بخطوة لاستخدام برنامج القياس الكمي الآلي للنوى الذي طورناه باستخدام مكتبات رؤية الكمبيوتر والتحقق من صحته مقابل العد اليدوي من مقيمين متعددين. تم تطوير هذا البرنامج لضمان قابلية الاستخدام من قبل العلماء بمستويات مختلفة من المهارات التكنولوجية المتعلقة بالترميز ، وهو متاح مجانا ، وتم التحقق من صحته خصيصا لمهمة القياس الكمي للنوى. بالمقارنة مع العد اليدوي ، سيوفر هذا البرنامج وقتا ثمينا للمستخدم النهائي ويوفر عددا دقيقا وموثوقا به للنوى لتطبيع البيانات.
يعلن أصحاب البلاغ عدم وجود تضارب في المصالح.
تم توفير التمويل لهذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة / المعهد الوطني للشيخوخة (R01AG084597; DEL و HYL) ومن خلال الصناديق الناشئة من جامعة تكساس للتكنولوجيا (DEL). يود المؤلفون أن يشكروا برامج الباحثين الجامعيين بجامعة تكساس للتكنولوجيا وعلماء TrUE على تقديم الدعم المالي للباحثين الجامعيين الذين ساهموا في هذا العمل (REH ، MRD ، CJM ، AKW). كما نشكر الدكتورين لورين إس جواهون ومايكل ب. ماسيت على تقاسم مساحة المختبر والمعدات الخاصة بهما.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Computer with access to results file from method 2 or 3 | - | - | See step 2.6 (for Method 2) or step 3.3.9 or 3.4.9 (for Method 3) |
Computer with internet access, modern browser | - | - | e.g., Google Chrome |
Computer with internet access, modern browser, and Windows OS | Varies | Varies | For Mac, Linux, or other OS, use Method 3 |
Computer with software for image capture | Zeiss | AxioVision | Other software is acceptable; must be compatible with the fluorescence microscope |
File location for output (results spreadsheet and image contours) | - | - | Can be a new, empty folder |
Fluorescence microscope | Zeiss | Axiovert 200M | Other fluorescence microscopes are acceptable; must be equipped with appropriate filter cubes, desired objective, and camera |
Folder containing all images to be quantified | - | - | See step 1.12 |
Python version 3.10 or higher | Python | - | Available for free download and installation at https://www.python.org/downloads/ |
Samples to be imaged | - | - | Fixed or live, stained or counterstained with fluorescent DNA dyes |
Spreadsheet software | Microsoft | Excel | Similar spreadsheet software is also acceptable |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved