肺内免疫細胞と血管内免疫細胞集団の区別:頸静脈内アプローチ

現在の研究の目的は、肺の炎症の研究において血管内免疫細胞と実質内免疫細胞を区別するためのプロトコルを説明することです。肺摘出前に蛍光タグ付き抗体の頸静脈内注射を使用します。さらに、インフレーションベースの肺消化プロセスを使用して、肺からの白血球の収量を改善します。

概日リズムとは、24時間の周期で発生するさまざまな生物学的プロセスの振動を指します。分子レベルでは、このようなリズムは、コアクロック遺伝子の転写-翻訳フィードバックループ(TTFL)の網で構成されています。免疫系を含む個々の組織や臓器系には、独自の時計があります。体循環では、CD45⁺ 集団のさまざまなメンバーが一日中振動します。しかし、これらのリズムの多くは、組織に常在するCD45⁺ 白血球集団では同一ではなく、類似しているわけでもありません。肺の炎症の概日調節の役割を研究する場合、肺内のCD45⁺ を調査する必要があるかもしれません。しかし、最適化された灌流法にもかかわらず、循環から捕捉された白血球は肺に残ります。このプロトコルを設計する際の目標は、血管内白血球と実質内白血球を区別することでした。この目的のために、マウスに蛍光タグ付きCD45抗体を肺採取の直前に頸静脈内に注射します。その後、カスタマイズされた肺消化技術を用いて肺を消化し、単一細胞懸濁液を得る。サンプルは、実質内免疫細胞(別のCD45抗体を含む)の抗体の通常のパネルについて染色されます。フローサイトメトリー解析により、集団の明確な解明が示されています。したがって、肺内免疫細胞と循環免疫細胞の挙動が数値的および機能的に異なる場合、肺内CD45⁺ 細胞を標識および定義する方法が特に重要になります。

ここでは、血管内白血球と肺白血球を区別する効率的で信頼性の高い方法について説明します。最高の灌流技術を使用しても、研究により、循環からの残留CD45⁺ が肺に持続することが明らかになりました。これにより、循環と肺のリズムを区別する能力が損なわれます。この影響は、肺の炎症の場合にさらに増幅されます。これは、炎症の概日調節の研究に特に関連しています。

概日リズムとは、24時間の周期で発生するさまざまな生物学的プロセスにおける日周振動を指します。概日システムは、進化的に保存された予測メカニズムであり、感染の脅威などの環境の変化に直面したときに宿主に保護を与えます。細胞レベルでは、時計はコアクロック遺伝子¹を含む自立した転写翻訳フィードバックループに編成されています。免疫系には、病原体や炎症性侮辱に対する反応に影響を与える独自の時計があります^2,3。常に環境にさらされる器官として、概日リズムは肺において特に重要である⁴。肺のさまざまな免疫プロセスは、時計の制御下にあります^5,6,7。しかし、肺内のさまざまな生物学的プロセスの位相と体循環^{は同じではなく}8、ひいては、肺の白血球の振動と循環が同一ではない可能性があることも示唆しています。したがって、肺白血球と血管内白血球を効率的に区別する方法を持つことは、概日リズムの文脈で重要になります。

本研究の目的は、血管内白血球と実質内白血球を確実に鑑別できる方法を考案することでした。このために、血管内白血球の標識と肺消化法を使用しました。血管内白血球の標識には、大血管を標的とする頸静脈内注射法を使用し、あらゆる系統やサイズのマウスで再現性よく使用することができます。他の多くの方法で尾^{静脈注射9,10}が使用されており、これはBl6マウス¹¹で実施するのが難しいことで有名です。頸静脈内注射は麻酔の使用を必要とし、解剖顕微鏡または拡大ルーペによる直接視覚化の下で行うのが最適です。したがって、頸静脈内注射の容易さと信頼性は、麻酔と特別な機器の必要性と比較検討する必要があります。しかし、これらの機器がほとんどの研究室ですぐに利用できることを考えると、これが制限要因になるとは考えていません。ただし、ケースバイケースで検討することが賢明であるように思われます。

すべての動物実験は、ペンシルバニア大学の施設動物管理および使用委員会によって承認され、実験動物の世話および使用に関するガイドの規定を満たしています。

注:全体的なプロセスは、1)静脈内CD45標識、2)収穫、3)消化、および4)染色およびフローサイトメトリーに分けることができます。これらの手順を 図 1 にまとめました。

1. 溶液/試薬調製

1. 5 mLの2 mM L-グルタミン、20 mLのウシ胎児血清(FBS)、1 mLの2-メルカプトエタノール、および10 mLのPen/Strepを500 mLのDMEMに加えて、解離培地を調製します。
   注:解離培地は、2〜4°Cで保存した場合、最大2ヶ月間安定です。
2. マグネシウムまたはカルシウムを含まないPBS500 mLに、10 mLのFBSと500 mgのアジ化ナトリウムを加えて、蛍光活性化セルソーティング(FACS)バッファーを調製します。
   注:アジ化ナトリウムを添加すると、FACSバッファーは2〜4°Cで数ヶ月間保存できます。
3. サンプル採取当日に、DNase溶液とLiberase 溶液を 1:100 希釈で解離培地に添加します (つまり、解離培地 1 mL ごとに 10 μL の DNase とリベラーゼを添加します)。
   注:各マウスについて、肺全体の消化にはマウスあたり10 mL、肺の半分にはマウスあたり5 mLが必要です。

2. CD45の静脈内標識

1. この実験では、8〜12週齢の成体C57Bl6マウスを使用します。
2. 選択した薬剤でマウスを麻酔します。この目的のためにキシラジンとケタミンの組み合わせが使用されましたが、他の薬剤も許容されます。目的は、約5〜10分続く中等度から深部の麻酔を受けることです。
   注:キシラジンとケタミンの麻酔混合物は腹腔内に投与されます。.キシラジン10〜15 mg / kgとケタミン120〜150 mg / kgを使用してください。.
3. ペダル反射が陰性になったら、動物を仰向けに置き、手足を優しくテープで留めて、頭をできるだけ中央に保ちます。
4. 鉗子で皮膚を持ち上げ、鋭利な手術用ハサミで切り取ることにより、頸静脈と胸筋を露出させます。
5. 200 μL の抗 CD45 抗体 (フローサイトメトリーグレードの抗体、PBS で 1:300 に希釈) を 28 G の針を使用して頸静脈に注入します。抗体が血管系全体に循環できるように、2〜4分待ちます。
   注:浅い角度から胸筋を通って頸静脈に入ると、かなりの出血が発生するのを防ぎます。
6. その後、CO₂ に10分間さらして動物を安楽死させます。肺灌流に進み、肺や他の組織を採取します。
   注:動物の安楽死に関するAVMAガイドラインに準拠した人道的な安楽死の他の方法も受け入れられます。

3. 解剖/採取(図1)

1. 動物を平らな板の上に仰向けに置き、頭を中央に保ちながら前足を固定します。
2. 70%エタノールをボディにスプレーします。鉗子とハサミで胸腔を開き、肺、心臓、気管を露出させます。
3. 心臓の左心室に小さな切開を行い、右心室から10mLの冷たいPBSを注入することにより、肺を灌流します。
4. 気管の開口部を切り取り、静脈カニューレを挿入します。カニューレが挿入されたら、気管の下に長さ約6〜8cmの縫合糸を通し、カニューレに2回結びます。
5. 手術用弦をカニューレに押し込み、 図1Bに示すように、解離媒体(肺の半分に5 mL、肺全体に10 mL)が入ったシリンジを取り付けます。
6. 肺を体の他の部分からそっと切り取り、肺を取り付けたシリンジを50mLの円錐形チューブに入れます。

4. 単一細胞懸濁液への消化

1. 肺を37°Cで30〜40分間インキュベートし、5分ごとに1 mL(肺の半分)または2 mL(肺全体)の解離培地を点眼します。
2. すべての培地が点眼されたら、シリンジとカニューレを取り外し、50 mLのコニカルチューブを180 rpmの振とう水浴に入れ、インキュベーションの残りの期間、収量を向上させます。
   注:または、チューブを5分ごとに手動で振ることもできます。
3. PBS10mLを加え、1分間激しく振とうして反応を止めます。
4. 溶液をセルストレーナー(70 μm)に通し、新しい50 mLコニカルチューブに入れます。5 mLシリンジゴム栓を使用して、組織の塊をストレーナーに通します。.最終容量が30mLになるようにPBSを添加します。
5. サンプルを1,200 x g 、4°Cで10分間遠心分離します。 ペレットを乱さずに上清を捨てます。残りの溶液をピペットで取り出します。
6. 赤血球(RBC)Lysis Buffer 1 mLを添加し、ピペッティングで細胞ペレットと混合します。
7. 室温で60〜90秒間インキュベートします。反応を停止するために、最終容量が30mLになるようにPBSを添加します。
   注:インキュベーション時間は、細胞ペレット中の血液量によって異なります。細胞ペレットが赤くなるほど、インキュベーション時間は長くなります。
8. サンプルを1,200 x g 、4°Cで10分間遠心分離します。 ペレットを乱さずに上清を捨てます。残りの溶液をピペットで取り出します。
9. 1 mLのFACバッファーを細胞ペレットに加え、ピペッティングで混合します。

5. フローサイトメトリーのための細胞染色

1. セルカウンターを使用して、細胞懸濁液中の細胞の総数を決定します。
2. 細胞懸濁液を各標識FACSチューブに移し、サンプルあたり合計3 x 10⁶ 個の細胞が存在するようにします。
3. Fc Block(1:100に希釈)を加え、氷上で15分間インキュベートします。
4. チューブを1,200 x g 、4°Cで5分間遠心分離します。 ペレットを乱さずに上清を捨てます。
5. サンプルを所定の抗体混合物で染色し、光から保護された氷上で20分間インキュベートします(すなわち、アルミホイルで覆います)。インキュベーションの途中でチューブホルダーに対してチューブをラッキングして混合します。
6. 1 mLのFACSバッファーを加えて洗浄し、ピペッティングで混合します。
7. 細胞懸濁液を別のFACSチューブに移し、懸濁液を35μmのストレーナーでゆっくりとピペッティングします。
8. チューブを1,200 x g 、4°Cで5分間遠心分離します。 ペレットを乱さずに上清を捨てます。
9. 150 μLのFACSバッファーを加え、ピペッティングで混合します。
10. サンプルを泳動する直前に、各チューブに10 μLのDAPI(1:100)を加えます。
    注:これで、サンプルをフローサイトメーターで分析する準備が整いました。

この手法を用いて、ナイーブ解離肺(代表データには左葉のみを使用)の総細胞数は、27.3 x 10⁶ 〜71.1 x 10⁶ 細胞/mLであった。サイズでゲーティングし、ダブレットと死細胞をゲーティングアウトした後( 図2のゲーティングスキーム)、白血球数は6.9 x 10⁶ から13.5 x 10⁶ 細胞/mLの範囲でした。灌流後も閉じ込められたまま...

肺の炎症と肺の免疫応答に関する慎重な研究は、多くの疾患状態を理解するために重要です。フローサイトメトリーは、肺白血球の機能的関連性を列挙し、帰属させるために日常的に使用されています。白血球の機能は、少なくとも部分的には白血球がどこにあるかに依存します。完全な灌流プロトコルの後でも、多くの血管内白血球が肺に持続することを裏付ける...

著者は何も開示していません。

この作業は、NHLBI-K08HL132053(SS)の支援を受けました。著者らは、解剖顕微鏡と振とう水槽へのアクセスを提供してくれたG.A.フィッツジェラルド博士に感謝します。