X-ışını fazı kontrast görüntüleme için aktif olarak olgunlaşan sığır eklem kıkırdak eksplantlarının in vitro hazırlanması

Bu protokol, X ışınları ile yüksek çözünürlükte görüntüleme için in vitro sığır eklem kıkırdağının hazırlanmasını açıklar. Bu eksplantlar aktif olarak doğum sonrası olgunlaşmaya uğrar. Burada biyopsiden 3D X-ışını faz kontrast görüntülemenin veri analizine, eksplant kültüründen geçerek, doku fiksasyonu ve senkrotron hazırlığına kadar gerekli adımları anlatıyoruz.

Eklem kıkırdağının doğum sonrası olgunlaşmasını destekleyen mekanizmaları anlamak, yeni nesil doku mühendisliği stratejilerini tasarlamak ve hastalıklı veya hasarlı kıkırdağı potansiyel olarak onarmak için çok önemlidir. Genel olarak, organizmanın büyümesine uyum sağlamak için dokunun kollajen yapısında ve işlevinde toptan bir değişiklik olan eklem kıkırdağının doğum sonrası olgunlaşması, aylar ila yıllar arasında değişen bir zaman ölçeğinde gerçekleşir. Tersine, uzun zaman ölçeklerinde de meydana gelen kıkırdağın yapısal organizasyonunun çözülmesi, doku dejenerasyonunun ayırt edici özelliğidir. Bu biyolojik süreçleri ayrıntılı olarak inceleme yeteneğimiz, büyüme faktörlerinin olgunlaşmamış eklem kıkırdağının erken in vitro olgunlaşmasını indükleyebileceği bulgularıyla geliştirilmiştir. Eklemde meydana gelen gelişimsel ve hastalıkla ilgili değişiklikler kemik ve kıkırdağı içerir ve bu dokuları birlikte görüntüleme yeteneği, iç içe geçmiş rolleri hakkındaki anlayışımızı önemli ölçüde artıracaktır.

Yumuşak doku, kıkırdak ve kemik değişikliklerinin eş zamanlı görüntülenmesi, günümüzde eklem hastalıklarının takibi için kullanılan geleneksel preklinik görüntüleme yöntemleri için üstesinden gelinmesi gereken bir zorluktur. Üç boyutlu X-ışını Faz-Kontrast Görüntüleme yöntemleri (PCI), düşük yoğunluklu nesnelerin görüntülenmesi için yüksek performans ve geleneksel X-ışını görüntülemeye kıyasla ek bilgi sağlama yetenekleri nedeniyle 20 yıldır sürekli olarak geliştirilmektedir.

Bu protokolde, kıkırdak biyopsisi, in vitro olgunlaşmış kıkırdak üretimi, X-ışını faz kontrast görüntüleme kullanılarak toplanan görüntünün veri analizine kadar deneylerimizde kullanılan prosedürü detaylandırıyoruz.

İmmatür eklem kıkırdağı, erişkin ekleme özgü bir fonksiyon elde etmek için morfolojik, yapısal ve biyomoleküler değişiklikleri¹ başlatmak için yeterli bir destektir. Temel değişiklik, kollajen fibrillerinin olgunlaşmamış kıkırdakta yüzeye göre paralel bir yönelim gösteren bir kıkırdaktan, dokuda daha derin fibrillerin olgun kıkırdakta dik olduğu bir yere yeniden düzenlenmesidir. Yetişkin kıkırdağının yalancı tabakalaşması, yerleşik kondrositlerin kollajen fibril oryantasyon yönü boyunca yeniden düzenlenmesi, yüzeydeki hücrelerin disk benzeri ve yüzeye paralel olması ve daha derin bölgelerdeki hücrelerin giderek daha büyük ve sütunlar halinde organize hale gelmesiyle belirgindir. Doğum sonrası olgunlaşmanın birçok ay içinde gerçekleştiği ve esasen ergenliğin sonunda tamamlandığı bilinmektedir, uzun zaman ölçeğinin bu önemli gelişimsel geçişi incelemeyi en iyi ihtimalle zor veya teknik olarak ayrıntılı olarak incelenmesi imkansız hale getirdiği düşünülmektedir². Fibroblast büyüme faktörü-2 ve transforme edici büyüme faktörü-β1'in birlikte eklem kıkırdağı olgunlaşmasını ^2,3 kopyalayan önemli fizyolojik ve morfolojik değişiklikleri indükleyebildiği bulgusu ile bu sorunun çözümüne yönelik bazı ilerlemeler kaydedilmiştir (Şekil 1). Büyüme faktörünün neden olduğu in vitro olgunlaşma üç hafta içinde gerçekleşir ve herhangi bir biyomekanik girdi gerektirmez. Kültürden sonra, kollajen tip II ekspresyonu önemli ölçüde azalır ve olgunlaşan kıkırdakta görüldüğü gibi olgun üç değerlikli kollajen çapraz bağlarının olgunlaşmamış iki değerlikli kollajen çapraz bağlarının oranı artar. Ayrıca, hücre dışı matriks ve kollajen fibrillerinin organizasyonu, olgun kıkırdakta görülene daha yakındır, ancak bu geçiş faseti tam değildir. Biyokimyasal olarak, büyüme faktörü ile tedavi edilen kıkırdağın bileşimi yetişkin bir eklem kıkırdağını taklit eder³.

Makalede kullanılan model bir in vitro Olgunlaşmamış erkek (7 günlük) sığır dümenlerinden metakarpofalangeal eklem medial kondilinin lateral yönünden steril koşullar altında eksize edilen 4 veya 6 mm çapında eksplantların kültürü. Her eksplantın bazal yüzünde ince bir kalsifiye kıkırdak ve subkondral kemik tabakası tutuldu. Eklem kıkırdağı, insülin-transferrin-selenyum (ITS), 10 mM HEPES tampon pH 7.4, askorbik asit ve 50 μg/mL gentamisin ilave edildiği klasik serum içermeyen bir ortam olan Dulbecco'nun modifiye Eagles besiyerinde (yüksek glikoz 4.5 g/L) kültürlendi. Bu kültür ortamı, her üç günde bir ortam değişiklikleri ile yenilenen 100 ng/mL fibroblast büyüme faktörü 2 (FGF-2) ve 10 ng/mL dönüştürücü büyüme faktörü β1 (TGF-β1) ile desteklenir². Yüksek derecede hızlandırılmış kıkırdak olgunlaşması, büyüme faktörlerinin birleştirilmesiyle indüklenir. Bu değişiklikler 21 gün içinde gerçekleşir. Büyüme faktörü stimülasyonu ayrıca bazal yönden apoptoz ve rezorpsiyona ve yüzey kondrositlerinde hücresel proliferasyona neden olur³. Kültür ortamı bileşimi şurada tarif edilmiştir: Tablo 1. Khan ve ark. 2011 tarafından geliştirilen modeli takiben², eklem kıkırdak eksplantları 10 ng/μL konsantrasyonda TGF-β1 ve 100 ng/μL konsantrasyonda FGF2 ile kültürlenir (stok konsantrasyonları 10 μg/mL ve 100 μg/mL fosfat tamponlu salin/%0.1 BSA içinde çözülür). Ortamın 1 mL'si için her bir büyüme faktörünün 1 μL'si kullanılır. L-glutamin ve yüksek glikozlu DMEM-F12, insülin, transferrin ve selenyum (ITS), askorbik asit, gentamisin ve HEPES ile desteklendikten sonra, farklı hücre hatlarına ve eksplant kültürlerine özgü tüm fizyolojik büyüme gereksinimleri ile tam bir ortam takviyesi sağlayan yapay bir ortamdır. DMEM-F12, birkaç farklı inorganik tuzdan (yani NaCl, KCl, CaCl) oluşur.₂, MgCl₂, NaH₂PO₄), glikoz, amino asitler (azot kaynakları), vitaminler, kofaktörler ve su. Bu tuzlar, kültürde hücresel sağkalımı ve normal büyümeyi sürdürmek için yeterli enerjik girdiler sağlar. Mineral iyonları, doğal fizyolojik ortama yakın ozmolaritenin korunmasına katkıda bulunur. Daha yüksek glikoz konsantrasyonu (4.5 g / L), kondrositler esas olarak glikoliz yoluyla solunum yaptığı için kullanılır. F12 ortam takviyesi, çok sayıda sülfat kaynağı, CuSO sunduğu için kullanılır₄, FeSO₄, ZnSO₄ ve MgSO₄ sülfatlanmış glikozaminoglikan sentezi için gereklidir. Renkli göstergeler (burada fenol kırmızısı) ve CO ile kontrol edildiği gibi₂/HCO^-₃ fosfatlarla birleştirilen tampon, pH 7.4'e yakın bir değerde sabit kalır. Kondrositler tarafından kullanılan ana solunum yolu, laktik asidin pH'da bir artışa neden olan son ürün olduğu glikolizdir, bu nedenle, yerel olarak üretilen laktik asidin uzaklaştırılmasına yardımcı olacak biyomekanik kuvvetlerin yokluğunda, HEPES fizyolojik süreçler için tamponlu bir ortam sağlamak için hareket eder. Gentamisin, büyümenin inhibisyonu yoluyla dış bakteriyel kontaminasyonu kontrol eden bir aminoglikozit antibiyotiktir. Askorbik asit, antioksidan etkisi için orta tamamlayıcı olarak kullanılır⁴. Askorbik asit, kollajendeki prolin kalıntılarını hidroksilatlamak ve üçlü sarmal yapısını stabilize etmek için işlev gören enzimler, prolil hidroksilazlar için bir kofaktördür. Transferrin genellikle hücre dışı antioksidan görevi görür (toksisite ve ROS azalmaları)^5,6. Ayrıca, hücre kültüründe hücre dışı demir depolaması ve taşınmasını sağlama ve kolaylaştırma kabiliyeti nedeniyle kültür ortamına eklenir. Transferrin, fizyolojik koşullar altında demiri o kadar sıkı bağlar ki, serbest radikallerin üretimini katalize etmek için neredeyse hiç serbest demir yoktur⁷. Bağlı reseptöründen gelen insülin hormonu sinyali, glikoz, amino asitler gibi çeşitli elementlerin emilimini artırır. Ayrıca hücre içi taşıma, lipogenez, protein ve nükleik asit sentezleri gibi çeşitli süreçlerde yer alır. İnsülinin büyümeyi teşvik edici bir etkisi vardır. Selenyum ayrıca "insülin-transferrin-selenyum" kompozit çözeltisinde sodyum selenit olarak bulunur. Esas olarak, kültürde ek antioksidan ajan olarak gluthatione peroksidaz (GPX) gibi (seleno-) proteinler için bir kofaktör olarak kullanılır. İçinde in vitro eklem kondrositleri, ITS, hücresel farklılaşma ve hipertrofik farklılaşma ile ilgili gen ekspresyonunu inhibe ederek hücresel proliferasyonu ve fenotip korumasını artırıyor gibi görünmektedir⁸. Fibroblast büyüme faktörü-2 ve transforme edici büyüme faktörü-β1 gibi büyüme faktörleri kültür ortamına eklenir. Hücre farklılaşmasını, büyümesini, iyileşmesini ve gelişmesini indüklemek ve düzenlemek için kullanılırlar^2,3. FGF-2 ve TGF-β1 kombinasyon halinde ayrıca kültürlenmiş hücrelerde ve dokularda hücresel proliferasyonu güçlü bir şekilde teşvik eder⁹.

Eklem kıkırdağının bu in vitro olgunlaşma modeli üç ana nedenden dolayı yararlıdır. İlk olarak, bu modeldeki hızlandırılmış gelişimsel faz geçişi, olgunlaşma¹⁰ sırasında lizl oksidaz-L1'in yüksek ekspresyonu gibi in vivo modellerde aylar boyunca meydana gelen algılanamayan değişiklikleri incelememize izin verir. İkinci olarak, eklem kıkırdağının doku mühendisliği, fokal kusurları onarmak için eklemlere nakledildiğinde fonksiyonel olarak eksik olan izotropik bir morfoloji ve yapıya sahip kıkırdağın üretilmesinden muzdariptir. Olgunlaşma değişikliklerinin nasıl indükleneceğini anlamak, tamamen işlevsel implante edilebilir cihazların geliştirilmesini hızlandıracaktır. Üçüncüsü ve bu çalışmayla ilgili olarak, çocukluk döneminde ortaya çıkan ve yetişkinlikte ciddi eklem deformitelerine yol açan Kashin-Beck hastalığı gibi dejeneratif eklem durumları vardır. Bu özel hastalık, selenyum ve iyot açısından endemik eksiklikleri olan ve potansiyel olarak on milyonlarca nüfusu etkileyen coğrafi bölgelerle (Çin) güçlü bir şekilde ilişkilidir 11,12,13. Kashin-Beck hastalığında iskelet kusurlarının incelenmesi, iskelet olgunlaşma süreçlerinin bozulmasını ima eden peri-pubertal olarak ortaya çıktığını göstermektedir. Bu nedenle, selenyumun eklem kıkırdağındaki (AC) rolünü daha iyi anlamak için kıkırdak büyümesi ve gelişimi için sağlam bir model gereklidir. İn vitro büyüme faktörünün neden olduğu bir olgunlaşma modeli, selenyum iyonlarının varlığında veya yokluğunda olgunlaşma sırasında eklem kıkırdağının büyümesi ve metabolizması üzerine çalışmalar için yararlı bir başlangıç noktası sağlar 14,15,16. Selenyum (Se) eksikliğinin karmaşık ve birbiriyle ilişkili biyolojik süreçler üzerindeki etkileri hakkındaki bilgilerimiz çok zayıftır. Asıl sorun, selenyumun kısıtlayıcı etki aralığı (40 ila 400 μg/kg¹⁷ arasında gerekli konsantrasyon) ve ilgili çok düşük konsantrasyon nedeniyle incelenmesi gereken bir element olmaya devam etmesinde yatmaktadır. Olgunlaşmamış sığır kıkırdağı kullanan hızlandırılmış olgunlaşma modeli, gelişimin önemli bir aşamasında meydana gelen biyolojik değişikliklere bakmak için benzeri görülmemiş bir yetenek sunar. Organizmalardaki Se konsantrasyonu sıkı bir şekilde kontrol edilir ve bu model, olgunlaşma sırasında hassas bir şekilde izlenmesini sağlayan görüntüleme tekniklerinin geliştirilmesi için bir başlangıç noktasıdır. Bu teknikler daha sonra AC bozulmasını önleme stratejilerini incelemek ve potansiyel olarak yeni rejeneratif tıp temelli tedavilerin temelini geliştirmek için güçlü bir araç olabilir.

Yumuşak doku, kıkırdak ve kemik değişikliklerinin eş zamanlı görüntülenmesi, konvansiyonel preklinik görüntüleme yöntemlerinde önemli bir zorluktur. Bu gerçekten eklem hastalıklarının takibi için önemli bir yardımcı olacaktır^18,19 . Örnek olarak, konvansiyonel X-ışını mikro Bilgisayarlı Tomografi (μBT), kullanımını kemik defektleri, osteofitler ve kıkırdağın dolaylı olarak görüntülenmesi ile sınırlayan yumuşak doku için düşük performans sunar. Öte yandan Manyetik Rezonans Görüntüleme (MRG), hastalıkların ilk aşamalarında kemikteki değişiklikleri (örneğin mikro kalsifikasyonlar) hassas bir şekilde işleme yeteneğinin zayıf olmasına rağmen, geleneksel olarak yumuşak doku görüntüleme için kullanılır. Kemiklere ve kıkırdaklara duyarlı olma ve kıkırdağın kurucu hücrelerini, kondrositleri ayırt etme yeteneği çok önemlidir. Faz Kontrast Görüntüleme (PCI), malzemelerin X-ışınları kırılma indisinin, hafif elementler için absorpsiyon indeksinden bin kat daha büyük olabilmesi özelliğine dayanır. Bu, tek absorpsiyona dayalı geleneksel yöntemlere kıyasla yumuşak dokular için daha yüksek bir kontrast oluşturur. Bu nedenle, PCI, hem yüksek emici (örneğin kemikler) hem de daha az emici dokuların (örneğin, fibröz kıkırdak, bağlar, tendonlar, menisküs ve ilişkili yumuşak dokuların (sinovyal membranlar ve kas) eşzamanlı temsiline sahip eklemi oluşturan tüm dokuları görüntüleyebilir18,19,20,21.

^Ref.20'de gösterildiği gibi, X-ışını PCI, kıkırdak için diğer klinik öncesi görüntüleme modalitelerinden daha iyi performans gösterir. Bu protokolün amacı, prosedürü detaylandırmak ve bazı temsili sonuçları göstermektir. Büyüme faktörlerinin olgunlaşmamış kıkırdak eksplantı üzerindeki etkisinin şeması Şekil 1'de gösterilmiştir.

Burada açıklanan tüm yöntemler Swansea Üniversitesi Etik Araştırma Komitesi tarafından onaylanmıştır ve biyopsi materyalleri Birleşik Krallık Çevre, Gıda ve Köy İşleri Bakanlığı'ndan (DEFRA) lisans altında alınmıştır. Bu protokol, kurumlarımızın hayvan bakım yönergelerini takip eder.

1. Eksplant Kültürleri

1. Sığır bacakları kafa derisinden eksplantların hazırlanması
   1. Emici koruyucu ve bir neşter, # 10 neşter bıçağı ile standart cerrahi neşter hazırlayın.
   2. Tüm malzemelere %70 etanol çözeltisi püskürtün.
   3. Sığır bacağını (veteriner onayı ile mezbahadan temin edilen 7 günlük erkek sığır danaları) tüm kan ve çamuru temizlemek için su ile ıslatın.
   4. Bacağını sabunla temizleyin ve bir fırça ile ovalayın.
   5. Yeterince temiz olduğunda, bacağa %70 etanol püskürtün.
   6. Emici bir kağıda koyun.
   7. Bir neşter ile ayakların etrafını kesin.
   8. Bacağın uzunluğu boyunca hassas bir çizgi izleyin.
   9. Eklem bölgesinde ekstra özen gösterin.
   10. Bacak derisini uzunlamasına neşter çizgisi boyunca dikkatlice çıkarın.
   11. Atıkları (cilt, kullanılmış mendil, kağıt ve eldivenler) bir klinik atık torbasına koyun.
   12. Bacağı sabunla temizleyin/fırçalayın ve cilt çıkarıldığında tekrar etanol ile sterilize edin.
   13. Eklem boşluğuna yakın bölgeye zarar vermeyin. Kavite kan sızması ile açılır veya hasar görürse artık steril değildir ve bacak kullanılamaz.
   14. Bacağı% 70 etanol püskürtülmüş bir Al-folyoya yerleştirin.
   15. Proksimal uçtan kan çıkışını veya tırnaktan olası kontaminasyonu önlemek için uygun boyuttaki lateks eldivenleri bacağın uçlarına yerleştirin.
   16. Atık malzemeleri kurum kurallarına uygun şekilde bertaraf edin.
2. Eksplant ekstraksiyonu ve kültürü
   NOT: Eksplantlar, eklemin iç kısmından (Şekil 2, iki ilk aşama). Karşılaştırılabilir koşullara sahip olmak için, hemen hemen aynı şekil ve özelliklere sahip numuneler üzerinde dört (veya altı) farklı işlemi uygulamak için aynı bölgeden dört (veya altı) eksplant delinmelidir.
   1. Kullanmadan 25 dakika önce laminer akış başlığını açın, %70 alkol ile temizleyin.
   2. Kültür ortamını bir su banyosunda ısıtmak için koyun.
   3. Her oyukta 1,5 mL bazik ortam, sadece DMEM-F12 (yıkama ortamı) içeren 24 oyuklu bir plaka hazırlayın.
   4. 1.5 mL tam kültür ortamı içeren başka bir kuyu plakası hazırlayın. Kullanana kadar 37 ° C'de kültür inkübatöründe saklayın
   5. Malzemeyi bir rafta hazırlayın:% 70 etanol içeren bir üniversal tüp ve yıkama ortamlı başka bir üniversal tüp.
   6. Bir neşter ve 4 veya 6 mm'lik bir biyopsi zımbası hazırlayın (alkol üniversal tüpüne yerleştirilir).
   7. Tüpleri ve malzemeleri kaputun altına koyun.
   8. Kaputun altına% 70 etanol püskürtülmüş emici bir koruyucu koyun.
   9. % 70 etanol püskürtülmüş bazı dokuları hazırlayın.
   10. Bir diseksiyon plakası alın, Al-folyo ile örtün.
   11. Önceden hazırlanmış ayakları buzdolabından (4 °C) çıkarın ve üzerlerine %70 etanol püskürtün.
   12. Atıkları daha sonra otoklavlamak için tehlikeli ve klinik torbaları davlumbazın yakınına atın.
   13. Ayağına% 70 etanol püskürtün.
   14. Kesinin yapılması gereken eklemin orta hattını bulmak için eklemi hareket ettirin. Bunu kaputun altında yapın.
   15. Steril neşteri alın.
   16. Eklem kenarlarının konturunu takip ederek orta hat boyunca dikkatlice kesin. Metakarpofalangeal eklem medial kondil kıkırdağına dokunmayın.
   17. Eklem açıldığında bağı dikkatlice kesin.
   18. Ayakların alt kısmını otoklav torbasına atın.
   19. Eklemin tüm kıkırdağını ortaya çıkarmak için diğer tüm dokuları çıkarın (Şekil 2).
       NOT: Ayaklarla hiçbir şeye dokunmamaya dikkat edin.
   20. Neşter ve biyopsi zımbasını alkole ve ardından yıkama ortamına yerleştirin.
   21. Bu zımba ile (yüz başına 4-5) kemiklerin iç yüzleri boyunca biraz kuvvetle bazı daireler çizin.
   22. Temizlemek için bittiğinde biyo-zımbayı alkole koyun.
   23. Bir neşter alın ve her daire arasında ve kemiğin merkezi çizgisi boyunca kesin (bir çizgi çizin).
   24. Kıkırdak ekstansiyi çıkarmak için, daire biyopsisinin sınırlarından birinde dikey olarak kesin, daha sonra subkondral kemik üzerinde yatay olarak çok dikkatli bir şekilde kesin.
   25. Subkondral kemik ve kalsifiye kıkırdak boyunca punch çizgisinin altında yatay olarak kesilen kıkırdak eksplantını çıkarmak için eksplantlar dışarı çıkacaktır.
       NOT: Eksplantlar mümkünse düzgün bir kalınlığa sahip olmalıdır.
   26. Eksplantı, 1,5 mL yıkama ortamı ile doldurulmuş kuyu plakasına yerleştirin.
       NOT: Eklemde aynı yerden gelen eksplantların her zaman deneysel kontrolünü ve tedavisini gerçekleştirin.
   27. Eksplantın doğru yönlendirildiğini kontrol edin. Eksplantın yüzeyi yukarı bakacak şekilde olmalı ve eksplantın subkondral kemik kısmı kuyu plakasının dibine bakmalıdır.
   28. Her biyopsi arasında kuyu plakasını kapalı tutun.
   29. Yıkama ortamını çıkarın.
   30. Yıkama ortamı ile tekrar yıkayın. Yıkama ortamında 2-3 saat bekletin. Kemik artıkları, kanın ortamda dışarı akması için zamana sahip olacaktır.
   31. Eksplantları, tam kültür ortamını içeren yeni bir kuyu plakasına aktarın. Dikkatli olun: pipetle hiçbir şeye dokunmayın.
   32. Eksplantların hala doğru konumda olup olmadığını kontrol edin (kemik, kuyu plakasının alt kısmına bakacak şekilde).
   33. Her şeyi temizleyin ve klinik atıkları uygun bir yere atın.
   34. Eksplantlar,% 5 CO₂ ile 37 ° C'de bir inkübatörde kültüre yerleştirildikten sonra, hücrelerin / dokuların farklı ihtiyaçlarını karşılamak için eksplant kültür ortamını her iki günde bir ılık taze ortam ile değiştirin. Eksplantların hala doğru konumda olup olmadığını kontrol edin (kemik, kuyu plakasının alt kısmına bakacak şekilde).
3. Numune fiksasyonu (isteğe bağlı)
   NOT: Bu adımı sadece hücre kültürünün sonunda, yani 3 haftalık kültürden sonra gerçekleştirin. Eksplantlar daha sonra olgunlaşmış aşamaya ulaşmıştır.
   1. Eksplantları DMEM-F12 ile doku kültürü başlığının altında bir pipetle yıkayın.
   2. Eksplantları PBS ile iki kez, doku kültürü başlığının altında bir pipetle yıkayın.
   3. %10 NBFS (Nötr Tampon Formalin Salin) içine batırarak gece boyunca 4 °C'de sabitleyin.
   4. PBS'deki sabit eksplantları bir mikrosantrifüj tüpüne yerleştirin
   5. Eksplantları 4 °C'de saklayın. Sabit eksplantlar bu koşullarda 6 aya kadar kalabilir.

2. Görüntüleme oturumu için numune hazırlama

1. Numuneye ve kamera görüş alanına göre uygun boyutta (genellikle 1 mL uç) konik plastik uçlar kullanın.
2. Su geçirmez bir numune kabına sahip olmak için koni ucunu (alevle ısıtarak) kapatın.
3. Ucu PBS ile doldurun. Numuneyi cımbızla tutun ve tüpe yerleştirin. Yavaş sallayarak hava kabarcığını çıkarın.
4. Tüpü tomografi aşamasına monte edin ve basit radyografiler çekerek hizalayın.

3. X-ışını Faz Kontrast görüntüleme seansı

1. Dedektörü numuneden 2.5 m uzağa yerleştirin
2. Bragg-Bragg geometrisi içinde bir çift Silikon kristal sistemi kullanarak X-ışını foton enerjisini 17 keV'ye ayarlayın.
3. Mount Imaging dedektörü, 3D görüntüde 3,5 μm ile sonuçlanan izotropik voksel boyutuna sahip bir optik üzerinde bilimsel bir CMOS kamera^22'den oluşuyordu.
4. X-ışınını görünür ışığa dönüştürmek için 60 μm kalınlığında bir Gadolinyum Oksisülfür sintilatör ekranı kullanın
5. Veri toplama: Numunenin 360° taraması sırasında, her projeksiyon için 2 sn maruz kalma süresiyle 2000 projeksiyon elde edin.
6. ^Ref.23'te açıklandığı gibi faz sinyalini çıkarmak için bir faz alma algoritması kullanın. Algoritma, numune içindeki karmaşık kırılma indisi dağılımı hakkında a priori bir bilgi kullanır. Burada doğrulanmayan ana hipotez, yeniden yapılandırılacak tek bir malzeme olduğudur. Bu özel durumda, kırılma ve emilim indeksi arasındaki oran, kemik ve kıkırdak görselleştirmesi için deneysel olarak en iyi uzlaşma olarak gözlemlenen 1.200'e ayarlanmıştır.
7. PyHST2 kodu^24'ün açık kaynaklı, Grafik İşleme Birimi (GPU) tabanlı bir uygulamasını kullanarak standart filtrelenmiş geri projeksiyon CT yeniden yapılandırma algoritmasını kullanın.

Şekil 3'te çizildiği gibi basit bir yayılım tabanlı görüntüleme düzeneği²⁵ kullanıldı. Senkrotron yayılım tabanlı görüntülemede, tutarlı bir X-ışını demeti nesneyi aydınlatır ve uzamsal olarak değişen faz kaymalarına^{yol açar 19}. X-ışını ışını numuneden sonra yayılırken, bozulmuş dalga cephesi karakteristik model oluşturur. Bu karakteristik kalıpları özel algoritmalar...

İn vitro hızlı olgunlaşan eklem kıkırdağı çalışması için numune hazırlamadan veri toplama protokolleri de dahil olmak üzere görüntü görselleştirmeye kadar eksiksiz bir çalışma sunduk. Bir senkrotron görüntüleme seansının sonuçları, modelin iyiliğini gösterdi.

Burada sunulan modelde bazı gözlem ve sınırlardan bahsetmek gerekir. Bu "hızlandırılmış olgunlaşma", kültürden sonraki 21 gün içinde gerçekleşir. D...

Hiç kimse.

Yazarlar, kurum içi ışın süresi sağladığı için ESRF'ye teşekkür eder. Yazarlar bilimsel tartışmalar için Eric Ziegler'e teşekkür eder. Açıklanan PCI deneyi, Fransa'nın Grenoble kentindeki Avrupa Sinkrotron Radyasyon Tesisi'nin (ESRF) BM05 ışın hattında gerçekleştirildi. CB, bu çalışmanın bir bölümünü finanse ettiği için Explora'doc Auvergne Rhone Alpes'e ve Swansea Üniversitesi ve Université Grenoble Alpes'ten burslara teşekkür eder.