Name: puncture-induced iris neovascularization as a mouse model of rubeosis iridis
Uploaded: 2018-03-08T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 57 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Puncture-Induced Iris Neovascularization as a Mouse Model of Rubeosis Iridis at JoVE.com

Yazarlar Linnea Tankred ve Diana Rydholm hayvancılık için teşekkür ederiz.

Her iki cinsiyetten BALB/c fare pups göre bildirimi kullanım hayvan Ophthalmologic ve vizyon araştırma için kullanılan ve iletişim kuralları etik hayvan araştırma için Stokholm'ün Komitesi tarafından kabul edildi. Fareler Hemşirelik Anne, 12 h gündüz/gece döngüsü, yiyecek ve su, ücretsiz erişim ile birlikte çöp içinde yer alan ve her gün takip.
Not: cerrahi işlem için fare ile uçucu isoflurane anestezi altında tutuldu. Tedaviler ve kullanılan maddeler ile etkileşebilir gibi oküler merhem oküler işlemler sırasında cesareti. Gerekirse, Kuru göz, önlemek için steril normal tuzlu çözüm bir damla uygulanabilir. Üveal delikler kendi kendini iyileştirme olmasına rağmen bakım kısırlık cerrahi aletler ile sağlamak için Üveal delikler sırasında çekilmiş. Ameliyat sonrası tedavi subkutan, normal serum fizyolojik solüsyonu ile hidrasyon dahil ve oküler topikal yönetimi tetracaine hidroklorür ile analjezi. Belgili tanımlık pups Hemşirelik Anne, temiz bir kafes için iade edilmeden önce bir Isıtma yastık üzerinde sternal recumbency kurtarmak için izin verildi. Çöp stres önlemek için aynı Hemşirelik annesiyle tutuldu.
1. anestezi
<ol><li>İsoflurane anestezik yönetmek ve bir küçük fare maskesi de birleştiğinde emin olmak için anestezi indüksiyon odası, hazır olun. Not: tüm ilgili etik izni ile anlaşma tüm hayvan deneyleri gerçekleştirin.</li>
	<li>İndüksiyon odası ile 3-%4 uçucu isoflurane atmosferik havada prefill. Not: Farklı anestezik maddeler isoflurane başka göre etik izni kullanılabilir. Uçucu anestezik yordamlar havalandırılmış bir tezgah veya duman kaputa yapılmalıdır.</li>
	<li>Bir doğum sonrası (P) 12.5 bayat BALB/c fare yavru indüksiyon odasına koyun. Anestezi cihazları isoflurane indüksiyon odasına teslim etmeye hazır olduğunu doğrulayın. Not: Fare pups kırılgan ve scruff tarafından en iyi işlenmiş. Belgili tanımlık pups arada bir çöp olarak veya stres önlemek için Hemşirelik Anne ile tutmak.</li>
	<li>Yavru tam anestezi sağlar.</li>
	<li>Yavaşça, scruff tarafından fare yavru almak. Not: indüksiyon odası her zaman güvenli ve istikrarlı indüksiyon için kapalı tutun.</li>
	<li>Fare kemirgen maskeyi aktarın. Anestezik akışı indüksiyon odasından maskeyi zaman fareyi hareket ettirerek geçmek emin olun.</li>
	<li>Anestezi onaylamak için bir ayak çimdik gerçekleştirin.</li>
</ol>2. cerrahi Stereoscope altında yordamı ponksiyon
<ol><li>Fare yan recumbency bulunduğu getirin. Yani fare göz stereoscope görüş alanı içinde mask iyi konumlandırılmış onaylayın.</li>
	<li>Yavaşça fare kafa göz stereoscope doğru bakıyor döndürmek. Not: NET odak göz altında stereoscope elde edilmelidir. 40 X cerrahi işlem gerçekleştirmek için kullanılması gereken konumlandırma için 16 X büyütme, önerilir. Etik izni izin veriyorsa, bıyık ucu kırpma göz görselleştirme kolaylaştırabilir.</li>
	<li>Küçük bağlama forseps kullanarak, dikkatle pups göz dorsal ve ventral göze göz kapakları aşağı doğru basınç uygulayarak çıkıntı.</li>
	<li>Pups göz kapağı, bir yumuşak ama sağlam tutun küçük Forseps ile tutun. Not: Bu göz çıkıntı gerçekleştirmek ve sigara dominant eliyle tutarak dominant el ponksiyon yordamı gerçekleştirmelisiniz gibi kapak için tavsiye edilir.</li>
	<li>Kornea limbus bulmak için stereoscope kullanın. Albino BALB/c limbus dairesel vasküler pleksus kornea için posterior kolayca belirlenebilir.</li>
	<li>0,25 mm çap (30 G) eğimli iğne ile uvea posterior limbal sınırı yakınındaki küçük bir Üveal ponksiyon gerçekleştirin. Sadece iğne kullanmanızı ve yarısından fazlası eğimi (0.5 mm fotoğrafçılık eşdeğeri), delinme uvea. Eğer düzgün idam, Üveal delikler kendinden contalı henüz çalışma maddelerin göz içi enjeksiyon aynı yara yönetilemez duruma gelir. Not: Eğer fare ile oküler anatomi deneyimli Üveal ponksiyon silier beden ve ora serrata arasında yürütülür. Üveal ponksiyon yaparken objektif rüptür uzak durmaya özen göstermelidir.</li>
	<li>Gözün ilk ponksiyon sitesinden ters sitedeki ikinci Üveal ponksiyon gerçekleştirin. Mesafe ve delikler konumunu en iyi duruma getir; 12: 00 olarak dorsal olmak ile 12 ve 06: 00 delikler, göz önünde bulundurun.</li>
	<li>Üveal delikler yordamı her dört gün P24.5 kadar yineleyin. Her ardışık Üveal delik önce belirli objektif zarar nedeniyle travmatik katarakt varlığı Üveal ponksiyon veya açık azalmış oküler baskı sırasında dikkat hayvan durumunu izleyin. Önceki delikler için en iyi sonuç olarak aynı pozisyonlarda tekrar delikler yürütmek için nişan al.</li>
</ol>3. noninvaziv Vivo içinde izleme
<ol><li>Delik veya enjeksiyon deneysel her gün önce fare üzerinde gerçekleştirilen gibi anestezi.</li>
	<li>Yanal recumbency pozisyonda fare ile hafifçe göz çıkıntı.</li>
	<li>Iris damarlara ile cerrahi stereoscope odaklan.</li>
	<li>Iris damarlara cerrahi stereoscope donatılmış bir kamera ile fotoğrafını. Not: gerekli değil rağmen mayoz inducing Iris alan hayvan başına normalize etmek yararlı olabilir. Etik izni mayoz indükleyici Ajan seçerken göz önünde bulundurun. Iris damarlara dikkatli odak daha fazla nicel analiz kolaylaştıracaktır. 40 X büyüklüğü önerilir.</li>
</ol>4. ameliyat sonrası bakım
<ol><li>Ve yavaşça bir cerrahi mat ile katmanlı bir Isıtma yastığı için transfer BALB/c yavru kemirgen maskeden çıkarın.</li>
	<li>Bir damla % 1 tetracaine çözüm delinmiş gözler için geçerlidir. Not: Analjezik diğer çözümleri kullanılabilir, göre etik izin verir.</li>
	<li>Steril normal tuzlu çözüm 200 µL Subkutan Enjeksiyon hayvanla hidrat.</li>
	<li>Yavru fok Hemşirelik Anne bir temiz fare kafes içinde dönün.</li>
	<li>Kurtarma işlemi izlemek. Yavru köpek-meli muktedir deambulate ve çöp için dönmek.</li>
</ol>5. göz enükleasyon
<ol><li>Hayvan tarafından servikal çıkığı ötenazi. Enükleasyon ve bir stereoscope altında diseksiyon yordamı daha iyi görselleştirme için gerçekleştirin. Not: Farklı ötenazi yordamlar kullanılabilir. Bu kesinlikle uygun etik izni için önerilir.</li>
	<li>Göz maruz geliştirmek için göz kapakları ayır.</li>
	<li>Küçük bir kesim (yaklaşık 0.5 cm) eğri Bonn göz makasla göz kapaklarının canthus olun.</li>
	<li>Maruz Perioküler alanı arkasında mikro bağlama forseps (altında) Dünya yörüngesinde eklemek için kullanın.</li>
	<li>Göz çevresindeki doku al ve yavaşça yukarı doğru çekin. Göz küresi üzerine tutarak önlemek, göz çukuru daha yakın çevre dokular kullanın.</li>
	<li>Eğri Bonn göz makas göz dünyanın arkasında yörüngede yerleştirin.</li>
	<li>Gözün yuvasından serbest bırakılıncaya kadar çevre dokular ile kesti. Not: Bu diseksiyonu tekniği göz anatomisi korur ve daha sonraki analiz yararlanır.</li>
	<li>Konu dışı doku kaldırılması için göz geçin. Konu dışı doku kaldırılması düzelttikten sonra tercih edilen yapılabilir. Not: BALB/c fare melanin eksikliği, bu nedenle, kontrast, artırmak için olan koyu arka planda diseksiyon yordamı kolaylaştırmak için önerilir.</li>
	<li>Kısaca durulama Petri kabına bütün göz steril fosfat tamponlu tuz ile (PBS) dolu.</li>
	<li>Göz 1,5 mL % 4 arabelleğe alınmış formalin çözeltisi içeren bir 2 mL tüp aktarın.</li>
	<li>6 h için göz oda sıcaklığında düzeltmek. Not: Doku sertlik confers sabitleme ve iris diseksiyon kolaylaştırır. Saat tamir olmalı test ve farklı uygulamalar için ayarlanabilir.</li>
</ol>6. Iris diseksiyon yordamı Stereoscope altında
<ol><li>Sabitleştirici çözümü 1,5 mL plastik Pasteur pipet ile (veya benzeri) tüpünden kaldırmak ve göz üç kez taze PBS ile durulayın.</li>
	<li>Sabit göz pürüzsüz bir kuru yüzey (diseksiyon stand) içinde ön odası ile yukarı bakacak şekilde yerleştirin.</li>
	<li>Eğimli bir 30 G iğne ile bir giriş noktası için limbus arka gerçekleştirin.</li>
	<li>Anterior segment küçük bağlama Forseps ile tutarak, bir ucu Clayman-kenasen düz makas önceden oluşturulmuş ataşını. Not: Bu sigara dominant el ile forseps ve makas ile baskın kontrol etmek için tavsiye edilir.</li>
	<li>Döndürme sırasında göz bağlama Forseps ile gözün arka segment kaldırmak için limbus kesin. Not: kısmi kesim gerçekleştirme, doku ve büyük ölçüde devam etmek için makas iç ucu işlemini kolaylaştırır izin verir.</li>
	<li>Aşağı doğru bakan, objektif ortaya ön parçasının getirin.</li>
	<li>Lens dikkatli bir şekilde küçük Forseps ile kapma ve yukarı doğru çekerek çıkarın. Not: Eğimli bir iğne ponksiyon ve objektif çekmek için kullanılabilir.</li>
	<li>Aşağı bakacak şekilde kornea ve görüş alanı için dikey kesim ile ön parçasının getirin.</li>
	<li>Yavaşça silier vücuda posterior doku küçük bağlama Forseps ile kapmak.</li>
	<li>Clayman-kenasen düz makasla vücut silier'Trabeküler meshwork kaldırmak ve iris yalıtmak için anterior kırpmaya devam edin. Trabeküler meshwork kaldırılmasını onaylamak; gözü kornea içinde hareket etmeliyiz.</li>
	<li>Dikkatli bir şekilde ön kadeh PBS 200 µL içeren bir 96-şey plakasına kornea tutan küçük bağlama Forseps ile aktarın.</li>
	<li>Kornea su kuyusunda tutarak devam edin ve bir pipet ile PBS ile temizlenerek iris incelemek. Not: iris kalır yapışık kornea, Trabeküler bazı meshwork için hediye ve eğimi 30 G iğne olabilir eğer gözü yerinden yardımcı olmak için kullanılabilir.</li>
	<li>Kornea küçük bağlama Forseps ile 96 kuyudan çıkarın ve daha fazla çözümleme için iyi izole Iris tutun.</li>
	<li>Serbest dalgalanma Iris örnekleri 4 ° C'de depolayın Not: sabit varlık rağmen Iris serbest yüzer örnekleri uzun süreli depolama tavsiye edilmez.</li>
</ol>7. olası deneysel okuma
<ol><li>Disseke süsen kan damarlarının görselleştirmek için boyama yöntemleri işaretleri trombosit endotel hücre adezyon molekülü (PECAM) -1 gibi yüzen bütün Dağı immünhistokimya kullanın veya isolectin B4. Alternatif olarak, tüm vücut perfüzyon vasküler, floresan etiketli yüksek molekül ağırlıklı dextrans gibi boyama ile kullanın.</li>
	<li>Vivo noninvaziv resimler silico düz montaj yapmak ve tam Iris damarlara uygun görüntüleme yazılımlarıyla ölçmek için kullanın. Not: Damarlara sayılabilir, in vivo ve in vitroDansitometresi kullanarak, veya damarlara analiz yazılım9.</li>
	<li>Nükleik asitler ve protein çıkarma, delinmiş gözlerin moleküler analizi yapmak için PCR veya immunoblotting yöntemini tarafından takip için bütün göz küresi işlemek. Not: Moleküler analiz dokuların en iyi sabit olmayan doku ile gerçekleştirilir ama sabit olmayan Iris diseksiyon son derece zordur ve tüm göz kullanımı istatistiksel olarak anlamlı sonuçlar önceki çalışmalar8' render.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Morrison, J. C., Van Buskirk, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anterior+collateral+circulation+in+the+primate+eye.">Anterior collateral circulation in the primate eye.</a> Ophthalmology. 90 (6), 707-715 (1983).</li><li>Dreyfuss, J. L., Giordano, R. J., Regatieri, C. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ocular+Angiogenesis.">Ocular Angiogenesis.</a> J Ophthalmol. 2015, 892043 (2015).</li><li>Breuss, J. M., Uhrin, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=VEGF-initiated+angiogenesis+and+the+uPA/uPAR+system.">VEGF-initiated angiogenesis and the uPA/uPAR system.</a> Cell Adh Migr. 6 (6), 535-615 (2012).</li><li>Rodrigues, G. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neovascular+glaucoma:+a+review.">Neovascular glaucoma: a review.</a> Int J Retina Vitreous. 2, 26 (2016).</li><li>Stahl, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mouse+retina+as+an+angiogenesis+model.">The mouse retina as an angiogenesis model.</a> Invest Ophth Vis Sci. 51 (6), 2813-2826 (2010).</li><li>DiPietro, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Angiogenesis+and+wound+repair:+when+enough+is+enough.">Angiogenesis and wound repair: when enough is enough.</a> J Leukocy Biol. 100 (5), 979-984 (2016).</li><li>Eming, S., Brachvogel, B., Odorisio, T., Koch, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulation+of+angiogenesis:+Wound+healing+as+a+model.">Regulation of angiogenesis: Wound healing as a model.</a> Prog Histochem Cytoc. 42 (3), 115-170 (2007).</li><li>Beaujean, O., Locri, F., Aronsson, M., Kvanta, A., Andr&#233;, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+in+vivo+model+of+puncture-induced+iris+neovascularization.">A novel in vivo model of puncture-induced iris neovascularization.</a> PloS One. 12 (6), e0180235 (2017).</li><li>Zudaire, E., Gambardella, L., Kurcz, C., Vermeren, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Computational+Tool+for+Quantitative+Analysis+of+Vascular+Networks.">A Computational Tool for Quantitative Analysis of Vascular Networks.</a> PloS One. 6 (11), (2011).</li><li>Dorrell, M., Uusitalo-Jarvinen, H., Aguilar, E., Friedlander, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ocular+neovascularization:+basic+mechanisms+and+therapeutic+advances.">Ocular neovascularization: basic mechanisms and therapeutic advances.</a> Surv Ophthalmol. 52 Suppl 1, S3-S19 (2007).</li><li>Kvanta, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ocular+angiogenesis:+the+role+of+growth+factors.">Ocular angiogenesis: the role of growth factors.</a> Acta Ophthalmol. 84 (3), 282-288 (2006).</li><li>Salman, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intrasilicone+Bevacizumab+Injection+for+Iris+Neovascularization+after+Vitrectomy+for+Proliferative+Diabetic+Retinopathy.">Intrasilicone Bevacizumab Injection for Iris Neovascularization after Vitrectomy for Proliferative Diabetic Retinopathy.</a> Ophthalmic Res. 49 (1), 20-24 (2013).</li><li>Jeong, Y. C., Hwang, Y. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Etiology+and+Features+of+Eyes+with+Rubeosis+Iridis+among+Korean+Patients:+A+Population-Based+Single+Center+Study.">Etiology and Features of Eyes with Rubeosis Iridis among Korean Patients: A Population-Based Single Center Study.</a> PloS One. 11 (8), e0160662 (2016).</li><li>Speier, S., Nyqvist, D., K&#246;hler, M., Caicedo, A., Leibiger, I. B., Berggren, P. -. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Noninvasive+high-resolution+in+vivo+imaging+of+cell+biology+in+the+anterior+chamber+of+the+mouse+eye.">Noninvasive high-resolution in vivo imaging of cell biology in the anterior chamber of the mouse eye.</a> Nat Protoc. 3 (8), 1278-1286 (2008).</li><li>Stefansson, E., Landers, M. B., Wolbarsht, M. L., Klintworth, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neovascularization+of+the+Iris+-+an+Experimental-Model+in+Cats.">Neovascularization of the Iris - an Experimental-Model in Cats.</a> Invest Ophth Vis Sci. 25 (3), 361-364 (1984).</li><li>Nork, T. M., Tso, M., Duvall, J., Hayreh, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cellular+Mechanisms+of+Iris+Neovascularization+Secondary+to+Retinal+Vein+Occlusion.">Cellular Mechanisms of Iris Neovascularization Secondary to Retinal Vein Occlusion.</a> Arch Ophthalmol-Chic. 107 (4), 581-586 (1989).</li><li>Hjelmeland, L. M., Stewart, M. W., Li, J. W., Toth, C. A., Burns, M. S., Landers, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+Experimental-Model+of+Ectropion+Uveae+and+Iris+Neovascularization+in+the+Cat.">An Experimental-Model of Ectropion Uveae and Iris Neovascularization in the Cat.</a> Invest Ophth Vis Sci. 33 (5), 1796-1803 (1992).</li><li>Tolentino, M. J., Miller, J. W., Gragoudas, E. S., Chatzistefanou, K., Ferrara, N., Adamis, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascular+endothelial+growth+factor+is+sufficient+to+produce+iris+neovascularization+and+neovascular+glaucoma+in+a+nonhuman+primate.">Vascular endothelial growth factor is sufficient to produce iris neovascularization and neovascular glaucoma in a nonhuman primate.</a> Arch Ophthalmol-Chic. 114 (8), 964-970 (1996).</li><li>Paula, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabbit+Rubeosis+Iridis+Induced+by+Intravitreal+Latex-derived+Angiogenic+Fraction.">Rabbit Rubeosis Iridis Induced by Intravitreal Latex-derived Angiogenic Fraction.</a> Curr Eye Res. 36 (9), 857-859 (2011).</li><li>Takei, A., Ekstr&#246;m, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gene+Transfer+of+Prolyl+Hydroxylase+Domain+2+Inhibits+Hypoxia-inducible+Angiogenesis+in+a+Model+of+Choroidal+Neovascularization.">Gene Transfer of Prolyl Hydroxylase Domain 2 Inhibits Hypoxia-inducible Angiogenesis in a Model of Choroidal Neovascularization.</a> Sci Rep. 7, 42546 (2017).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Mevcut iletişim kuralında, indüksiyon Üveal ponksiyon tarafından Iris vasküler tepki için yeni bir yöntem sunulur. Ponksiyon yara iyileşme mekanizmalarını tetikler ve vasküler Iris10,11yanıt-e doğru teşvik etmektedir. Gibi PDR ve nerede retina göz posterior segmentte yanıtlarını yaygınlaşacak anjiogenik rubeosis iridis, İris12 artan bir vaskülarizasyon klinik durumda sonuçlanacak NVG, oküler patolojiler anlaşarak bu </s...

Silier vücut ve koroid ile birlikte iris gözün en bozukluklarına doku uvea oluşmaktadır. Iris damarlara göz ön TMMOB homeostazı korumada esastır. Atar ve toplar damarlardaki arasında bol anastomoz bağlantıları bir sonucu olarak, besin ve oksijen Iris kendisi sadece, ama tüm ön bölümüne göz1temini Iris kan damarları sağlar.
Yeni kan damarları veya önceden varolan olanlardan angiogenez oluşumu geliştirme ve2şifa yara gibi fizyolojik süreçlerde esastır. Angiogenez ince kurallı faktörlere, vasküler endotelyal büyüme faktörü (VEGF) ve plazminojen aktivatör inhibitör (PAI), hem de birden fazla inflamatuar faktörleri çok sayıda tarafından düzenlenir ve bu faktörlerin bir dengesizlik için patolojik yol açabilir angiogenez3.
Gözlerimin içine neovaskülarizasyon proliferatif Diyabetik retinopati (PDR) ve neovasküler glokom (NVG) gibi görme tehdit eden hastalıkların nedeni. Bu oküler hastalıklar, Fokal neovaskülarizasyon yaygın olarak retina dokularının henüz inflamatuar dengesizlik bulunur ve anjiogenik faktörler derinliklerinde her iki arka ve ön oküler göz rubeosis iridis ile ilişkili olmuştur Iris patolojik neoangiogenesis4için klinik terim. Bu patolojiler angiogenez geçmesi yetişkin Iris kapasitesini gösterir. Farelerde, oküler damarlara doğumdan sonra olgunlaşmamış ve olgunlaşma doğum sonrası devam ediyor. Bu özelliği gelişme oksijen kaynaklı retinopati, yakından retinopati Prematüre5klinik durumunu taklit eden bir model fare modeli istismar edilir. Buna ek olarak, anjiogenez ve iltihap yara iyileşme mekanizmalarını6önemli bir rol oynamaktadır ve kendisi şifa yara angiogenez modelleri7ile ilişkili olduğu düşünülmektedir.
Bu çalışmada, delik kaynaklı Iris neovaskülarizasyon modeli açıklar. Üveal delikler limbus, dış sınırı hangi sistem şifa yara tetikleyen tarafından Iris neovaskülarizasyon neden gerçekleştirilir. Nedeniyle şeffaflık kornea, iris damarlara olabilir kolayca vivo içinde noninvaziv yöntemlerle analiz. Delinmiş gözleri plazminojen etkinleştirme ve inflamatuar işaretleri8artış ile ilişkili olduğu düşünülmektedir iris vasküler yatağın bir artış mevcut. Sunulan model anjiogenez ve anjiogenik bileşikler eleme çalışma için yeni bir araç olarak büyük bir potansiyele sahiptir ve anjiogenik işlemleri doğrudan vivo içinde görselleştirme sağlar.

<table><tbody><tr><td>Bonn eye scissors</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>23060</td><td></td></tr><tr><td>Clayman-Vannas curved scissors</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>E3383 C</td><td></td></tr><tr><td>Clayman-Vannas straight scissors</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>E3383 S</td><td></td></tr><tr><td>Objective adapter for camera</td><td>Handcrafted</td><td>N/A</td><td>Or any system that allows adapting a camera to the microscope</td></tr><tr><td>Heating Pad 100-110 watts</td><td>Non Applicable</td><td>N/A</td><td>Available in pet/veterinarian stores</td></tr><tr><td>Hypodermic 30g beveled needle</td><td>KDM GmBH germany</td><td>911914</td><td></td></tr><tr><td>Iphone 4S</td><td>Apple</td><td>Non Applicable</td><td>Or other high resolution image acquistion device</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Baxter</td><td>KDG 9623</td><td></td></tr><tr><td>McPherson tying forceps</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>E1815 S</td><td></td></tr><tr><td>Micro tying forceps</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>63140</td><td></td></tr><tr><td>Minims tetracaine hydrochloride</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>N/A</td><td>1 % (w/v) Eye Drops</td></tr><tr><td>Neutral-buffered formalin</td><td>Bioreagens</td><td>0018-40</td><td></td></tr><tr><td>Normal saline solution</td><td>Fresenius Kabi</td><td>210352</td><td>0.9 % (w/v) NaCl in injectable water</td></tr><tr><td>Phosphate-buffered saline</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>10010023</td><td>Balanced and buffered PBS pH 7.4</td></tr><tr><td>Petri dish 10 cm</td><td>Starstedt</td><td>83.3902</td><td></td></tr><tr><td>Petri dish 3 cm</td><td>Starstedt</td><td>83.3900</td><td></td></tr><tr><td>Safe Seal Tube 2.0 mL</td><td>Starstedt</td><td>72.685.200</td><td>Or any eppendorf style tubes</td></tr><tr><td>TC plate 96-well</td><td>Starstedt</td><td>83.3924</td><td></td></tr><tr><td>Transfer pipette 3.5 mL</td><td>Starstedt</td><td>86.1171</td><td>Or any other Pasteur pipette style</td></tr><tr><td>Univentor 400 anesthesia unit</td><td>Univentor Limited</td><td>N/A</td><td>Or equivalent flow regulator with induction chamber and mask for volatile anesthesia</td></tr><tr><td>Wild M650 surgical microscope</td><td>Wild Heerbrugg</td><td>N/A</td><td>Or other surgical or magnifying stereoscope</td></tr></tbody></table>

puncture-induced iris neovascularization as a mouse model of rubeosis iridis

Angiogenez noninvaziv değerlendirme için genel bir model olarak delik kaynaklı Iris neovaskülarizasyon modeli açıklar. Model neovasküler Glokom, görme tehdit komplikasyonu diabetik retinopati hedefleme için uygundur. Bu yöntem Iris vasküler yanıt indüksiyon üzerinde kendinden contalı Üveal delikler BALB/c fareler üzerinde bir dizi dayanmaktadır ve fare oküler damarlara doğum sonrası olgunlaşma yararlanır. Fare pups Üveal delikler günden ne zaman belgili tanımlık pups doğal doğum sonrası güne kadar 24,5 onların gözlerini açmak postnatal 12.5, tabi. Nedeniyle saydamlığı kornea Iris damarlara kolayca zaman içinde noninvaziv in vivo yöntemler tarafından çözümlenebilir. Ayrıca, yarı saydam Iris BALB/c farelerin flatmounted en az belirsiz arka plan boyama ile detaylı immunohistologic analiz için olabilir. Bu modelde, anjiogenez esas olarak enflamatuar tarafından tahrik edilmektedir ve plazminojen sistemleri etkinleştirme. Delik kaynaklı modeli Iris neovaskülarizasyon küçük Rodents ikna etmek için ilk ve doğrudan noninvaziv vivo içinde analiz anjiogenik sürecinin izin avantajı vardır. Ayrıca, model anjiogenik modülasyonlu maddelerle, hangi potansiyel angiogenez bir vivo içinde bakış açısı ile çalışmada vurgulamaktadır birleştirilebilir.

Albino BALB/c fare pups P12.5, dördüncü hergün tekrarlanan Üveal delikler için tabi (deneysel gün 0, 4, 8, 12), P24.5 kadar. P27.5, fareler euthanized ve irisler dikkatle (deneysel gün 15) disseke. Fotoğraf fare göz iris vasküler yanıt noninvaziv değerlendirme değerlendirmek için her ponksiyon serisi deneysel her gün önce cerrahi stereoscope bağlı bir kamera ile çekildi. Üveal delikler iris vasküler yanıt sistemi (şekil 1) şifa yara t...

Watch this Scientific Journal Video about Puncture-Induced Iris Neovascularization as a Mouse Model of Rubeosis Iridis at JoVE.com

Puncture-Induced Iris Neovascularization as a Mouse Model of Rubeosis Iridis

Iris neovaskülarizasyon, iskemik retina hastalığı, ortak bir komplikasyonu görme tehdit neovasküler glokom için neden olabilir. Burada, anjiogenez oransal maddeler noninvaziv değerlendirme için kullanılabilir deneysel Iris neovaskülarizasyon inducing için fare bir protokol açıklayın.

Delici cisim kaynaklı Iris neovaskülarizasyon Rubeosis Iridis bir fare modeli olarak

We describe a model of puncture-induced iris neovascularization as a general model for noninvasive evaluation of angiogenesis. The model is also relevant ...

puncture-induced-iris-neovascularization-as-mouse-model-rubeosis

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Medicine

8.8K Görüntüleme.  Karolinska Institutet. Iris neovaskülarizasyon, iskemik retina hastalığı, ortak bir komplikasyonu görme tehdit neovasküler glokom için neden olabilir. Burada, anjiogenez oransal maddeler noninvaziv değerlendirme için kullanılabilir deneysel Iris neovaskülarizasyon inducing için fare bir protokol açıklayın.

Video: Puncture-Induced Iris Neovascularization as a Mouse Model of Rubeosis Iridis

A Mouse Model for Laser-induced Choroidal Neovascularization

The mouse laser-induced choroidal neovascularization (CNV) model has been a crucial mainstay model for neovascular age-related macular degeneration (AMD) research. By administering targeted laser injury to the RPE and Bruch&#8217;s membrane, the procedure induces angiogenesis, modeling the hallmark pathology observed in neovascular AMD. 
First developed in non-human primates, the laser-induced CNV model has come to be implemented into many other species, the most recent of which being the mouse. Mouse experiments are advantageously more cost-effective, experiments can be executed on a much faster timeline, and they allow the use of various transgenic models. The miniature size of the mouse eye, however, poses a particular challenge when performing the procedure. Manipulation of the eye to visualize the retina requires practice of fine dexterity skills as well as simultaneous hand-eye-foot coordination to operate the laser. However, once mastered, the model can be applied to study many aspects of neovascular AMD such as molecular mechanisms, the effect of genetic manipulations, and drug treatment effects. 
The laser-induced CNV model, though useful, is not a perfect model of the disease. The wild-type mouse eye is otherwise healthy, and the chorio-retinal environment does not mimic the pathologic changes in human AMD. Furthermore, injury-induced angiogenesis does not reflect the same pathways as angiogenesis occurring in an age-related and chronic disease state as in AMD.
Despite its shortcomings, the laser-induced CNV model is one of the best methods currently available to study the debilitating pathology of neovascular AMD. Its implementation has led to a deeper understanding of the pathogenesis of AMD, as well as contributing to the development of many of the AMD therapies currently available.

Here, we present the mouse laser-induced choroidal neovascularization (CNV) protocol, an experimental model that re-creates the vascular hallmarks of neovascular age-related macular degeneration (AMD). Once mastered, it can reliably and effectively induce CNV as a model system to test various experimental measures.

Lazer kaynaklı Koroid Neovaskülarizasyonlarında A Fare Modeli

The mouse laser-induced choroidal neovascularization (CNV) model has been a crucial mainstay model for neovascular age-related macular degeneration (AMD) ...

Tıp

A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, diabetic retinopathy, and retinal vascular occlusions. Rodent models of I/R injury are providing significant insights into mechanisms and treatment strategies for human I/R injury, especially with regard to neurodegenerative damage in the retinal neurovascular unit. Presented here is a protocol for inducing retinal I/R injury in mice through elevation of intraocular pressure (IOP). In this protocol, the ocular anterior chamber is cannulated with a needle, through which flows the drip of an elevated saline reservoir. Using this drip to raise IOP above systolic arterial blood pressure, a practitioner temporarily halts inner retinal blood flow (ischemia). When circulation is reinstated (reperfusion) by removal of the cannula, severe cellular damage ensues, resulting ultimately in retinal neurodegeneration. Recent studies demonstrate inflammation, vascular permeability, and capillary degeneration as additional elements of this model. Compared to alternative retinal I/R methodologies, such as retinal arterial ligation, retinal I/R injury by elevated IOP offers advantages in its&#160;anatomical specificity, experimental tractability, and technical accessibility, presenting itself as a valuable tool for examining neuronal pathogenesis and therapy in the retinal neurovascular unit.

This article describes a procedure for inducing retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure in mice. Retinal ischemia-reperfusion injury by elevated intraocular pressure serves to model human pathologies characterized by compromised oxygen and nutrient delivery in the retina, enabling researchers to examine potential cellular mechanisms and treatments for human diseases of the retinal neurovascular unit.

Göz İçi Basıncı Yükselmesi ile Retina İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, ...

In Vivo Multimodal Imaging and Analysis of Mouse Laser-Induced Choroidal Neovascularization Model

Laser-induced choroidal neovascularization (CNV) is a well-established model to mimic the wet form of age-related macular degeneration (AMD). In this protocol, we aim to guide the reader not simply through the technical considerations of generating laser-induced lesions to trigger neovascular processes, but rather focus on the powerful information that can be obtained from multimodal longitudinal in vivo imaging throughout the follow-up period.
The laser-induced mouse CNV model was generated by a diode laser administration. Multimodal in vivo imaging techniques were used to monitor CNV induction, progression and regression. First, spectral domain optical coherence tomography (SD-OCT) was performed immediately after the lasering to verify a break of Bruch&#39;s membrane. Subsequent in vivo imaging using fluorescein angiography (FA) confirmed successful damage of Bruch&#39;s membrane from serial images acquired at the choroidal level. Longitudinal follow-up of CNV proliferation and regression on days 5, 10, and 14 after the lasering was performed using both SD-OCT and FA. Simple and reliable grading of leaky CNV leasions from FA images is&#160;presented. Automated segmentation for measurement of total retinal thickness, combined with manual caliber application for measurement of retinal thickness at CNV sites, allow unbiased evaluation of the presence of edema. Finally, histological verification of CNV is performed using isolectin GS-IB4 staining on choroidal flatmounts. The staining is thresholded, and the isolectin-positive area is calculated with ImageJ.
This protocol is especially useful in therapeutics studies requiring high-throughput-like screening of CNV pathology as it allows fast, multimodal, and reliable classification of CNV pathology and retinal edema. In addition, high resolution SD-OCT enables the recording of other pathological hallmarks, such as the accumulation of subretinal or intraretinal fluid. However, this method does not provide a possibility to automate CNV volume analysis from SD-OCT images, which has to be performed manually.

In Vivo Multimodal Imaging and Analysis of Mouse Laser-Induced Choroidal Neovascularization Model

Here, we present the usefulness of longitudinal in vivo imaging in the follow-up of morphological changes of laser-induced choroidal neovascularization in mice.

Vivo Multimodal görüntüleme ve fare lazer kaynaklı Choroidal neovaskülarizasyon Model analizi

Laser-induced choroidal neovascularization (CNV) is a well-established model to mimic the wet form of age-related macular degeneration (AMD). In this ...

Nörobilim

A Model of Glaucoma Induced by Circumlimbal Suture in Rats and Mice

The circumlimbal suture is a technique for inducing experimental glaucoma in rodents by chronically elevating intraocular pressure (IOP), a well-known risk factor for glaucoma. This protocol demonstrates a step-by-step guide on this technique in Long Evans rats and C57BL/6 mice. Under general anesthesia, a "purse-string" suture is applied on the conjunctiva, around the equator and behind the limbus of the eye. The fellow eye serves as an untreated control. Over the duration of our study, which was a period of 8 weeks for rats and 12 weeks for mice, IOP remained elevated, as measured regularly by rebound tonometry in conscious animals without topical anesthesia. In both species, the sutured eyes showed electroretinogram features consistent with preferential inner retinal dysfunction. Optical coherence tomography showed selective thinning of the retinal nerve fiber layer. Histology of the rat retina in cross-section found reduced cell density in the ganglion cell layer, but no change in other cellular layers. Staining of flat-mounted mouse retinae with a ganglion cell specific marker (RBPMS) confirmed ganglion cell loss. The circumlimbal suture is a simple, minimally invasive and cost-effective way to induce ocular hypertension that leads to ganglion cell injury in both rats and mice.

Chronic ocular hypertension is induced by applying a circumlimbal suture in rats and mice, leading to functional and structural deterioration of the retinal ganglion cells consistent with glaucoma.

Manken Circumlimbal dikiş sıçanlar ve fareler tarafından indüklenen glokom

The circumlimbal suture is a technique for inducing experimental glaucoma in rodents by chronically elevating intraocular pressure (IOP), a well-known ...

Optimization of the Retinal Vein Occlusion Mouse Model to Limit Variability

Mouse models of retinal vein occlusion (RVO) are often used in ophthalmology to study hypoxic-ischemic injury in the neural retina. In this report, a detailed method pointing out critical steps is provided with recommendations for optimization to achieve consistently successful occlusion rates across different genetically modified mouse strains. The RVO mouse model consists primarily of the intravenous administration of a photosensitizer dye followed by laser photocoagulation using a retinal imaging microscope attached to an ophthalmic guided laser. Three variables were identified as determinants of occlusion consistency. By adjusting the wait time after rose bengal administration and balancing the baseline and experimental laser output, the variability across experiments can be limited and a higher success rate of occlusions achieved. This method can be used to study retinal diseases that are characterized by retinal edema and hypoxic-ischemic injury. Additionally, as this model induces vascular injury, it can also be applied to study the neurovasculature, neuronal death, and inflammation.

Here, we describe an optimized protocol for retinal vein occlusion using rose bengal and a laser-guided retinal imaging microscope system with recommendations to maximize its reproducibility in genetically modified strains.

Değişkenliği Sınırlamak için Retinal Ven Tıkanıklığı Fare Modelinin Optimizasyonu

Mouse models of retinal vein occlusion (RVO) are often used in ophthalmology to study hypoxic-ischemic injury in the neural retina. In this report, a ...

Oxygen-Induced Retinopathy Model for Ischemic Retinal Diseases in Rodents

One of the commonly used models for ischemic retinopathies is the oxygen-induced retinopathy (OIR) model. Here we describe detailed protocols for the OIR model induction and its readouts in both mice and rats. Retinal neovascularization is induced in OIR by exposing rodent pups either to hyperoxia (mice) or alternating levels of hyperoxia and hypoxia (rats). The primary readouts of these models are the size of neovascular (NV) and avascular (AVA) areas in the retina. This preclinical in vivo model can be used to evaluate the efficacy of potential anti-angiogenic drugs or to address the role of specific genes in the retinal angiogenesis by using genetically manipulated animals. The model has some strain and vendor specific variation in the OIR induction which should be taken into consideration when designing the experiments.

Oxygen-induced retinopathy (OIR) can be used to model ischemic retinal diseases such as retinopathy of prematurity and proliferative diabetic retinopathy and to serve as a model for proof-of-concept studies in evaluating antiangiogenic drugs for neovascular diseases. OIR induces robust and reproducible neovascularization in the retina that can be quantified.

Kemirgenlerde İskemik Retina Hastalıkları için Oksijen Kaynaklı Retinopati Modeli

One of the commonly used models for ischemic retinopathies is the oxygen-induced retinopathy (OIR) model. Here we describe detailed protocols for the OIR ...

Quantification of Vascular Parameters in Whole Mount Retinas of Mice with Non-Proliferative and Proliferative Retinopathies

Retinopathies are a heterogeneous group of diseases that affect the neurosensory tissue of the eye. They are characterized by neurodegeneration, gliosis&#160;and a progressive change in vascular function and structure. Although the onset of the retinopathies is characterized by subtle disturbances in visual perception, the modifications in the vascular plexus are the first signs detected by clinicians. The absence or presence of neovascularization determines whether the retinopathy is classified as either non-proliferative (NPDR) or proliferative (PDR). In this sense, several animal models tried to mimic specific vascular features of each stage to determine the underlying mechanisms involved in endothelium alterations, neuronal death and other events taking place in the retina. In this article, we will provide a complete description of the procedures required for the measurement of retinal vascular parameters in adults and early birth mice at postnatal day (P)17. We will detail the protocols to carry out retinal vascular staining with Isolectin GSA-IB4 in whole mounts for later microscopic visualization. Key steps for image processing with Image J Fiji software are also provided, therefore, the readers will be able to measure vessel density, diameter and tortuosity, vascular branching, as well as avascular and neovascular areas. These tools are highly helpful to evaluate and quantify vascular alterations in both non-proliferative and proliferative retinopathies.

This article describes a well-established and reproducible lectin stain assay for the whole mount retinal preparations and the protocols required for the quantitative measurement of vascular parameters frequently altered in proliferative and non-proliferative retinopathies.

Proliferatif Olmayan ve Proliferatif Retinopatilerle Farelerin Tüm Mount Retinalarında Vasküler Parametrelerin Nicelemesi

Retinopathies are a heterogeneous group of diseases that affect the neurosensory tissue of the eye. They are characterized by neurodegeneration, ...

Full-Circle Cauterization of Limbal Vascular Plexus for Surgically Induced Glaucoma in Rodents

Glaucoma, the second leading cause of blindness worldwide, is a heterogeneous group of ocular disorders characterized by structural damage to the optic nerve and retinal ganglion cell (RGC) degeneration, resulting in visual dysfunction by interrupting the transmission of visual information from the eye to the brain. Elevated intraocular pressure is the most important risk factor; thus, several models of ocular hypertension have been developed in rodents by either genetic or experimental approaches to investigate the causes and effects of the disease. Among those, some limitations have been reported such as surgical invasiveness, inadequate functional assessment, requirement of extensive training, and highly variable extension of retinal damage. The present work characterizes a simple, low-cost, and efficient method to induce ocular hypertension in rodents, based on low-temperature, full-circle cauterization of the limbal vascular plexus, a major component of aqueous humor drainage. The new model provides a technically easy, noninvasive, and reproducible subacute ocular hypertension, associated with progressive RGC and optic nerve degeneration, and a unique post-operative clinical recovery rate that allows in vivo functional studies by both electrophysiological and behavioral methods.

The goal of this protocol is to characterize a novel model of glaucomatous neurodegeneration based on 360&#176; thermic cauterization of limbal vascular plexus, inducing subacute ocular hypertension.

Kemirgenlerde Cerrahi Olarak İndüklenen Glokom için Limbal Vasküler Pleksusun Tam Daire Koterizasyonu

Glaucoma, the second leading cause of blindness worldwide, is a heterogeneous group of ocular disorders characterized by structural damage to the optic ...

<meta charset="utf8"></head><body>Retina Patolojilerini İncelemek için Retinal İskemi-Reperfüzyon Hasarı için Fare Modeli

Induction of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury in a Mouse Eye Model

Ischemia-reperfusion injuries are known to cause a range of retinal pathologies, including diabetic retinopathy, glaucoma, retinal vascular occlusions, and other vaso-occlusive conditions. This manuscript presents a method for inducing ischemia-reperfusion injury in a mouse model. The method utilized anterior chamber cannulation attached to a saline reservoir, generating hydrostatic pressure to raise the intraocular pressure to 90-100 mmHg. This method effectively caused constriction of retinal capillaries to induce retinal ischemia. At the end of the ischemic period (60 min), the intraocular pressure was normalized (&#8804;20 mmHg) before removing the cannula from the anterior chamber to initiate reperfusion. Days after the ischemia/reperfusion procedure, the eyes were collected and sectioned for histological staining. The histopathology of the retinal sections was scored by evaluating eight parameters of retinal injury: folds, hemorrhage, deformation, cell loss in the ganglion cell, inner nuclear, outer nuclear, and photoreceptor layers, and damage to retinal pigment epithelial cells. This method provided a reproducible model to study the mechanisms and pathology of retinal ischemia/reperfusion injury. In addition, this model can facilitate the discovery of potential therapeutic targets to treat retinal ischemia/reperfusion injury, advancing the study of retinal pathologies and improving patient outcomes.

<meta charset="utf8"></head><body>Bir Fare Gözü Modelinde Retinal İskemi-Reperfüzyon Hasarının İndüksiyonu

This protocol models retinal ischemia-reperfusion injury in a mouse eye by inducing retinal ischemia via anterior chamber cannulation and intraocular pressure elevation, followed by intraocular pressure normalization to initiate the reperfusion.

Bir Fare Gözü Modelinde Retinal İskemi-Reperfüzyon Hasarının İndüksiyonu

Ischemia-reperfusion injuries are known to cause a range of retinal pathologies, including diabetic retinopathy, glaucoma, retinal vascular occlusions, ...

Delici cisim kaynaklı Iris neovaskülarizasyon Rubeosis Iridis bir fare modeli olarak

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Lazer kaynaklı Koroid Neovaskülarizasyonlarında A Fare Modeli

Göz İçi Basıncı Yükselmesi ile Retina İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Vivo Multimodal görüntüleme ve fare lazer kaynaklı Choroidal neovaskülarizasyon Model analizi

Manken Circumlimbal dikiş sıçanlar ve fareler tarafından indüklenen glokom

Değişkenliği Sınırlamak için Retinal Ven Tıkanıklığı Fare Modelinin Optimizasyonu

Kemirgenlerde İskemik Retina Hastalıkları için Oksijen Kaynaklı Retinopati Modeli

Proliferatif Olmayan ve Proliferatif Retinopatilerle Farelerin Tüm Mount Retinalarında Vasküler Parametrelerin Nicelemesi

Kemirgenlerde Cerrahi Olarak İndüklenen Glokom için Limbal Vasküler Pleksusun Tam Daire Koterizasyonu

Bir Fare Gözü Modelinde Retinal İskemi-Reperfüzyon Hasarının İndüksiyonu

Bir Fare Gözü Modelinde Retinal İskemi-Reperfüzyon Hasarının İndüksiyonu