Name: cochlear implantation in the guinea pig
Uploaded: 2018-06-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 56 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Cochlear Implantation in the Guinea Pig at JoVE.com

Yazarlar Sandra Peiritsch hayvan ve Noelani Peet bakım tıbbi yazma için teşekkür ederim. Avusturyalı bilim Fonu (FWF grant P 24260-B19) ve MED-EL Avusturya tarafından mali destek minnetle kabul edilmektedir.

Tüm hayvan deneyleri yerel hayvan refahı Komitesi ve Avusturya Federal Bakanlığı tarafından bilim, araştırma ve ekonomi için kabul edildi.
1. ekipman ve ameliyat için gerekli kurulum hazırlamak
<ol><li>Cerrahi mikroskop, matkap, Isıtma yüzeyi getirin ve Nabız oksimetre kolay ve verimli ameliyat sırasında işleme izin vermek için. Üreticisinin üzerinde tabanlı aygıtlar işlev denetleyin. Isıtma yüzeyi 38 ° C'de hayvan hipotermi ameliyat sırasında korumak için ayarlandığından emin olun.</li>
	<li>KukuIeta ve maske taktı.</li>
	<li>Cerrahi el dezenfeksiyonu gerçekleştirin. Titizlikle sabunla ellerinizi yıkayın. Eller kuru ve sonra ellerini dezenfekte için bir alkollü el dezenfektanı kullanın. Sonra eller kuru eldiven takmışım.</li>
	<li>Steril Cerrahi aletler ve koklear implantasyon için gerekli donanımları hazırlamak. Cerrahi alet ve cihazları için eskiden şiling şimdi domuz CI implantasyon bu iletişim kuralı için Malzemeler tablo görmek.</li>
	<li>Bileşik Aksiyon potansiyeli (CAP) ölçümleri yöneliktir, altın tel Teflon İzoleli yaklaşık 3,5 cm uzunluğundaki parçası (yaklaşık olarak bir ucundan 3 mm ile 5 mm mikro forseps kullanarak her iki uçtan dikkatle yalıtım bölümlerini kaldırarak hazırlık diğer ucunu). İkinci parça altın tel (yaklaşık 2,5 cm) alkol veya dezenfektan hazır teller yalıtılmamış biter, yaklaşık 5 mm. yer ile hazırlayın.</li>
</ol>2. anestezi, ilaç ve hayvan hazırlama
<ol><li>Hayvan tartın. Not: kullanılan kadın Dunkin Hartley albino eskiden şiling şimdi pigs hayvanlardır. Yaklaşık 4-6 hafta eski olan kullanıldığında, hayvanların ağırlığı 300 400 g arasında değişmektedir.</li>
	<li>Anestezi ve hayvan ağırlığına göre ameliyat için gerekli ilaç hazırlamak. 0,72 mL 0.12 mL midazolam (5 mg/mL) ve fentanil (50 µg/mL) 400 g eskiden şiling şimdi domuz ameliyat için 0.36 mL 0,06 mL ketamin (100 mg/mL), 0,18 mL medetomidine (1 mg/mL), oluşan anestezik karışımı hazırlayın. Anestezi ağırlık tabanlı doz bkz. Tablo 1 .</li>
	<li>Ketamin, medetomidine, midazolam ve fentanil subkutan yağ yastığı 27 G iğne kullanarak hayvan boyun için karışımı enjekte. Bkz: Tablo 1 kilo için anestezi doz tabanlı. Kafes kapak ve hayvan devam etmeden önce 10 min için sessiz bir yerde bekletin.</li>
	<li>Hayvan gözünde yağlamak ve almak onları tüm prosedürü sırasında yağlanır. Bulla yeterli bir cerrahi erişim için izin vermek için retroauricular bölge odaklanan hayvan, Başkanı tıraş.</li>
	<li>Hayvan yüzükoyun ısıtma yüzeyi üzerinde konumlandırın ve hayvan termal yanıklar önlemek için ısıtma yüzeyi ile doğrudan temas olmadığından emin olun. Nabız oksimetre probu hayvan yürüyerek yerleştirin. Sonra dikkatli bir şekilde küçük Laringoskop ile hayvan ağzı açık ve temiz bir enayi kullanarak tüm ağız boşluğu gıdalardan aittir.</li>
	<li>Laringoskop ile açılan hayvan ağzında tut. Dikkatle mide tüpü hayvan yemek borusu içine yerleştirin ve yavaş yavaş mide yönünde bir direnç hissetti kadar itin.<ol>
<li>O2izlemek-doygunluk hayvan mide tüpü borusunda olmadığından emin olun. O2 doygunluk bir düşüş ise mide tüpü çıkarması ve hayvan tamamen oksijenli sonra yeniden deneyin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Fizyolojik serum, %5 glikoz ve enrofloksasin karışımı yağ yastığı ve boyun 23 G iğne kullanarak hayvanın içine enjekte.</li>
	<li>Alkollü el dezenfektanı eller tekrar dezenfekte için kullanın. Yeni temiz eldiven takmışım.</li>
	<li>Scrubs povidone iyot ve % 70 etanol alternatif ile cerrahi alan hazırlamak ve hayvan kapsar. Kullanım kendinden yapışkanlı perdeler veya havlu Mengeneler sadece cerrahi alan işlem sırasında ortaya çıkarılan kalmasına dikkat edin.</li>
	<li>Subkutan yeterli lokal anestezi için planlanan kesi alana 0.1 mL %2 lidokain çözeltisi enjekte ve hayvan yan pozisyon.</li>
	<li>Anestezik karışımı her 30 dakikada ilk doz ¼ hayvanla yeterli anestezi korumak için ilk enjeksiyon sonra yeniden doz.</li>
</ol>3. koklear implantasyon
<ol><li>Gerçekleştirmek bir yaklaşık 2-3 cm cilt kesi 3-5 mm bir neşter kullanarak pinna posterior. Bipolar koter kanama en aza indirmek gerektiğinde kullanın. Not: Anestezik derinlik ilk kesi önce pedal para çekme eksikliği ile onaylanması. Bu test her 15-20 dakikada anestezik derinliği boyunca yordamı izlemek için yinelenmelidir.</li>
	<li>Dikkatle retroauricular alan kaslarında bir 15 neşter veya cerrahi makas kullanılarak işitsel bulla palpating sonra kesin. Not: işitsel bulla kas altında bir çıkıntı olarak muayene et.</li>
	<li>Kasları bulla üzerinden yavaşça kenara bir raspatory kullanarak veya bir pamuk bud iterek incelemek. Belgili tanımlık kesme tam uzunlukta ve bulla erişim engelsiz bir Retraktörü kullanın.</li>
	<li>15 bir bisturi ucu bulla bir delik için kullanın. Kemik orta kulak yapılarının incelenmesi için izin vermek için delikli kadar dikkatle neşteri döndürün.</li>
	<li>Bullostomy koklea bazal dönüş emin olmak için gerektiği şekilde büyütmek ve yuvarlak pencere niş yeterince görüntülenmeyecektir. Hayvan Başkanı bu yapıların erişmek için çekimli bir duruma getirin. Bullostomy kan ve ekstraselüler sıvı orta kulak çalışmasını engellemek için bir kompres küçük bir parça ile alanı kapsamaktadır. Not: Hava yolu hayvan başına çekimli konumunu engel. Bu nedenle, hayvan oksijen doygunluğu sık sık kontrol edilmesi gerekir.</li>
	<li>Hayvan yüzükoyun sígara getirin. Hayvan köşe dikdörtgen bir kesi gerçekleştirme ve cilt kaldırma maruz. Kapaklarini teşrih ve diğer herhangi bir doku ya da kan kemiğinden bir neşter kullanarak temiz.</li>
	<li>CAP ölçümleri yöneliktir, 3,5 cm teflon İzoleli altın tel hazırlanması için 3 mm yalıtılmamış oldu tel, sonunda bir mikro forseps ile küçük bir kanca oluşturarak bitirmek.</li>
	<li>CAP ölçümleri yöneliktir, 5 mm, subkutan mikro forseps kullanarak bir 18 G periferik venöz kateter aracılığıyla izdüşümü için yalıtılmamış oldu altın tel sonu rehberlik. Başka bir mikro forseps diğer elini de dikkatle içinde tel çengel sonu rehberlik kullanmak için orta kulak.</li>
	<li>CAP ölçümleri tasarlanmıştır zaman bullostomy aracılığıyla yuvarlak pencere niş alan görselleştirmek için hayvan Başkanı çekmek. Öte yandan bir mikro forseps kullanarak yuvarlak pencere niş kemik çıkıntı altın tel bağlamak için kullanın.</li>
	<li>Altın tel nazik gerginlik korumak ve bullostomy kafatası eşiğinde 10-15 µL doku yapıştırıcısı ile 27 G iğne ile 1 mL şırınga kullanarak düzeltebilirsiniz. Deplasman tutkal orta kulak içine kaçının. Altın tellerle yerinde yuvarlak pencere alanının bir intraoperatif resmi için bkz: Şekil 1 .</li>
	<li>CAP ölçümleri tasarlanmıştır zaman yalıtılmamış sonuna altın tel işitsel potansiyelleri ölçmek ve temel CAP ölçü birimlerinin gerçekleştirmek için kullanılan RGB sinyali. Honeder vd., 2016, ayrıntılı bir açıklama için düzenli olarak bizim laboratuvarda yapılan kap ölçümlerin bakın. 12
</li>
	<li>Hayvan yüzükoyun sígara getirin. 2 1-mm burr beyin zarı zarar vermeden kullanarak lambda dikiş anterior 1 mm delik. 2 Paslanmaz vida 2 mm kafatası implant. Not: Vidaları elektrot bağlamak için fiksasyon noktaları olarak hizmet vermektedir. Vida belgili tanımlık bağlamak boyutu ile ilgili olarak arasındaki mesafe uyum.</li>
	<li>Bir 18 G periferik venöz kateter elektrot konektörden doku tabakasında bulla için kafatası gibi mümkün olduğunca yakın yol göstermesi için kullanın.</li>
	<li>Diş çimentosu tozu diş çimentosu tozu Üretici kılavuzuna göre bir spatula kullanarak için sıvı ile karıştırın.</li>
	<li>Yer 0.5 - 0.7 mL arasında bir spatula kullanarak vidaları semifluid diş çimento. Belgili tanımlık bağlamak konumunu sabitleyen vidayı arasında elektrot.</li>
	<li>Diş çimento sertleştirilmiş kadar bağlayıcı pozisyonda tutun. Vidaları bağlayıcı stabil fiksasyonu için izin vermek için çimento ile kaplı emin olun.</li>
	<li>Hayvan yana doğru getirin. Dikkatle cochleostomy dakikada 5000 mermi döndürme hızında 0,5 mm elmas burr kullanarak yuvarlak pencere niş üzerinden 1 mm matkap.</li>
	<li>Dikkatle içinde elektrot scala tympani derinliğe kadar 4 mm için ekleyin. Elektrot geri çekilin ve ekleme yineleyin. Eskiden şiling şimdi domuz koklear implantasyon için kullanılan elektrot için bkz: Şekil 2 .</li>
	<li>Düz iğne kullanarak, kas küçük bir parça ile cochleostomy alanı kapatın. Bullostomy kafatası eşiğinde 10 µL doku yapıştırıcısı ile için elektrot 27 G iğne ile 1 mL şırınga kullanarak düzeltebilirsiniz.</li>
	<li>Diş çimento 3.14 içinde belirtildiği gibi hazırlayın. Dikkatle yaklaşık 0.3 mL diş çimento ile bullostomy bir spatula kullanarak kapatın. 5-0 absorbe dikiş kullanarak retroauricular kesi kapatın.</li>
	<li>Hayvan yüzükoyun için açın.</li>
	<li>CAP ölçümleri yöneliktir, dikdörtgen kesik hayvan izdüşümü, posterior kenarı bir doku forseps kullanarak kapmak. Makas diğer elini de yaklaşık 2 cm uzunlukta subkutan tünel hayvanın boynuna olun</li>
	<li>Ne zaman CAP ölçümleri yöneliktir, subkutan içine bir forseps kullanarak hayvan boyun 2.5 cm altın tel implant. Daha kısa yalıtılmamış sonuna kadar hayvan izdüşümü konektörüne belirlenen PIN lehim.</li>
	<li>CAP ölçümleri tasarlanmıştır zaman hayvan izdüşümü konektörüne uygun pin yuvarlak pencere niş elektrot (altın tel) lehim.</li>
	<li>Ek bir miktar tamamen yalıtılmış iğneler ve elektrot kapsayacak şekilde bağlayıcı üst diş çimento uygulanır.</li>
	<li>CAP ölçümleri yöneliktir, ameliyat sonrası ölçümlerine göre araştırma Protokolü gerçekleştirin.</li>
</ol>4. ameliyat sonrası bakım
<ol><li>Atipamezole ve flumazenil subkutan cerrahi ve ölçümleri sonra anestezi kışkırtmak için geçerlidir.</li>
	<li>Fizyolojik serum hayvan kurtarma ameliyat sonrası desteklemek için sıvı ikame olarak uygulanır.</li>
	<li>Bu tamamen anesteziden kurtarıldı ve kafes içinde taşımak başlar kadar Isıtma lambası altında hayvan koyun.<ol>
<li>Hipertermi önlemek veya Isıtma lambası yerleştirerek yanmak belgili tanımlık hayvan için yaklaşık 50 cm. Hayvanın vücut sıcaklığı her zaman 37,5 ° C ve 39 ° c arasında olduğundan emin olun</li>
	</ol>
</li>
	<li>Nistagmus, çember veya haddeleme gibi vestibüler yaralanma belirtileri için hayvan kontrol edin. 13 , 14
</li>
	<li>Buprenorfin analjezi için günde iki daha fazla gün ameliyat sonrası için geçerlidir. Not: buprenorfin ameliyat sonrası ilk uygulama önce hayvan tamamen iyileşmiş ve istikrarlı solunum olduğundan emin olun. Hayvan hala anestezi altında ise bu ilaç uygulama solunum depresyona yol açabilir.</li>
	<li>Bu süre içinde sıkıntı surrogate marker olarak mümkün kilo kaybı algılamaya ilk 3 gün sonrası ameliyat sırasında hayvan tartın. Not: İlk 3 gün sonrası ameliyat sırasında yaklaşık % 10 kilo kaybı beklenebilir ve ortak düşünülmelidir. Bu kilo kaybı geçicidir ve birkaç gün içinde iyileşir.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Stevens, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+and+regional+hearing+impairment+prevalence:+an+analysis+of+42+studies+in+29+countries.">Global and regional hearing impairment prevalence: an analysis of 42 studies in 29 countries.</a> Eur J Public Health. 23 (1), 146-152 (2013).</li><li>Ciorba, A., Bianchini, C., Pelucchi, S., Pastore, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+impact+of+hearing+loss+on+the+quality+of+life+of+elderly+adults.">The impact of hearing loss on the quality of life of elderly adults.</a> Clin Interv Aging. 7, 159-163 (2012).</li><li>Arnoldner, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electric+acoustic+stimulation+in+patients+with+postlingual+severe+high-frequency+hearing+loss:+clinical+experience.">Electric acoustic stimulation in patients with postlingual severe high-frequency hearing loss: clinical experience.</a> Adv Otorhinolaryngol. 67, 116-124 (2010).</li><li>Kral, A., O'Donoghue, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Profound+deafness+in+childhood.">Profound deafness in childhood.</a> N Engl J Med. 363 (15), 1438-1450 (2010).</li><li>DeMason, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophysiological+properties+of+cochlear+implantation+in+the+gerbil+using+a+flexible+array.">Electrophysiological properties of cochlear implantation in the gerbil using a flexible array.</a> Ear Hear. 33 (4), 534-542 (2012).</li><li>Eshraghi, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pattern+of+hearing+loss+in+a+rat+model+of+cochlear+implantation+trauma.">Pattern of hearing loss in a rat model of cochlear implantation trauma.</a> Otol Neurotol. 26 (3), 442-447 (2005).</li><li>Mistry, N., Nolan, L. S., Saeed, S. R., Forge, A., Taylor, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+implantation+in+the+mouse+via+the+round+window:+effects+of+array+insertion.">Cochlear implantation in the mouse via the round window: effects of array insertion.</a> Hear Res. 312, 81-90 (2014).</li><li>Wysocki, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Topographical+anatomy+of+the+guinea+pig+temporal+bone.">Topographical anatomy of the guinea pig temporal bone.</a> Hear Res. 199 (1-2), 103-110 (2005).</li><li>Heffner, H. E., Heffner, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hearing+ranges+of+laboratory+animals.">Hearing ranges of laboratory animals.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 46 (1), 20-22 (2007).</li><li>Van Beek-King, J. M., Bhatti, P. T., Blake, D., Crawford, J., McKinnon, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Silicone-coated+thin+film+array+cochlear+implantation+in+a+feline+model.">Silicone-coated thin film array cochlear implantation in a feline model.</a> Otol Neurotol. 35 (1), 45-49 (2014).</li><li>Marx, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+implantation+feasibility+in+rhesus+macaque+monkey:+anatomic+and+radiologic+results.">Cochlear implantation feasibility in rhesus macaque monkey: anatomic and radiologic results.</a> Otol Neurotol. 34 (7), 76-81 (2013).</li><li>Honeder, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+sustained+release+dexamethasone+hydrogels+in+hearing+preservation+cochlear+implantation.">Effects of sustained release dexamethasone hydrogels in hearing preservation cochlear implantation.</a> Hear Res. , (2016).</li><li>Ris, L., Capron, B., de Waele, C., Vidal, P. P., Godaux, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dissociations+between+behavioural+recovery+and+restoration+of+vestibular+activity+in+the+unilabyrinthectomized+guinea-pig.">Dissociations between behavioural recovery and restoration of vestibular activity in the unilabyrinthectomized guinea-pig.</a> J Physiol. 500, 509-522 (1997).</li><li>Jin, Z., Mannstrom, P., Skjonsberg, A., Jarlebark, L., Ulfendahl, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Auditory+function+and+cochlear+morphology+in+the+German+waltzing+guinea+pig.">Auditory function and cochlear morphology in the German waltzing guinea pig.</a> Hear Res. 219 (1-2), 74-84 (2006).</li><li>Honeder, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+intraoperatively+applied+glucocorticoid+hydrogels+on+residual+hearing+and+foreign+body+reaction+in+a+guinea+pig+model+of+cochlear+implantation.">Effects of intraoperatively applied glucocorticoid hydrogels on residual hearing and foreign body reaction in a guinea pig model of cochlear implantation.</a> Acta Otolaryngol. 135 (4), 313-319 (2015).</li><li>Moteki, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+results+of+hearing+preservation+cochlear+implant+surgery+in+patients+with+residual+low+frequency+hearing.">Long-term results of hearing preservation cochlear implant surgery in patients with residual low frequency hearing.</a> Acta Otolaryngol. 137 (5), 516-521 (2017).</li><li>Eshraghi, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical,+surgical,+and+electrical+factors+impacting+residual+hearing+in+cochlear+implant+surgery.">Clinical, surgical, and electrical factors impacting residual hearing in cochlear implant surgery.</a> Acta Otolaryngol. 137 (4), 384-388 (2017).</li><li>Reiss, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphological+correlates+of+hearing+loss+after+cochlear+implantation+and+electro-acoustic+stimulation+in+a+hearing-impaired+Guinea+pig+model.">Morphological correlates of hearing loss after cochlear implantation and electro-acoustic stimulation in a hearing-impaired Guinea pig model.</a> Hear Res. 327, 163-174 (2015).</li><li>Chang, M. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Effect+of+Systemic+Steroid+on+Hearing+Preservation+After+Cochlear+Implantation+via+Round+Window+Approach:+A+Guinea+Pig+Model.">The Effect of Systemic Steroid on Hearing Preservation After Cochlear Implantation via Round Window Approach: A Guinea Pig Model.</a> Otol Neurotol. 38 (7), 962-969 (2017).</li><li>Eshraghi, A. A., Yang, N. W., Balkany, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+study+of+cochlear+damage+with+three+perimodiolar+electrode+designs.">Comparative study of cochlear damage with three perimodiolar electrode designs.</a> Laryngoscope. 113 (3), 415-419 (2003).</li></ol>

Christoph Arnoldner ve Clemens Honeder MED-EL Avusturya Araştırma Bursu sahipleri vardır. Bu yayında kullanılan elektrotlar MED-EL Avusturya tarafından temin edilmiştir. Kalan yazarlar ifşa gerek yok.

Sunulan Protokolü koklear implantasyon eskiden şiling şimdi domuz modelinde gerçekleştirmek açıklar. Bu iletişim kuralı için kalan işitme ve yabancı cisim tepki CI elektrot üzerindeki etkileri farklı müdahaleler değerlendirmek için kullanılabilir. Bir yüksek tekrarlanabilirlik ve deneyler doğruluk elde etmek için çeşitli önlemler alınmalıdır.
Temel işitme eşikleri tüm kobay preoperatively Örneğin işitsel beyin sapı yanıt-e doğru kullanma ölçülmelidir. Bazı ticari olarak mevcut eskiden şiling şimdi pigs ilgili işitme kaybı sergi ve bu nedenle deneysel kohort dahil edilmemesini. Cerrahi ve bu değerlendirme ya hemen cerrahi veya koklear implantasyon önce bir kaç gün önce gerçekleştirilen iletişim kuralı uzunluğuna bağlı olarak, anesteziden kurtarmak için hayvan yeterli süre veriyor.
Ameliyat genel anestezi altında bir kendiliğinden nefes gerçekleştirirken hayvan, hız önemlidir. Anestezik protokolü seçiminde olduğu gibi bu nedenle, cerrahi öncesi titiz hazırlık esastır. Ketamin, medetomidine, midazolam ve yeterli anestezi ve analjezi, aynı zamanda hayvan kendiliğinden nefes almaya devam ederken lokal anestezi sonuçlarla birlikte fentanil kullanımı. Ketamin ve xylazine kez açıklanan kullanım karşılaştırıldığında, bu rejimi daha iyi analjezi ve düşük Perioperatif morbidite ve mortalite sonuçları. Tüm enstrümanlar ve ilaçlar (anestezi booster dahil) olması önemlidir uyku hayvan getirmeden önce hazır.
Pozisyon değişiklikler nedeniyle (yana pozisyon ve geri eğilimli konum değiştirme) ameliyat sırasında hayvanların, akciğerlere içerik içinde mide aspirasyon riski yoktur. Bu nedenle, iletişim kuralı da aspirasyon hayvan korumak ve perioperatif mortalite azaltmak için hızlı ve kolay bir şekilde bir mide tüpü uygulama içerir.
Kısırlık yeniden konumlandırma sırasında alanları korumak için hayvan nerede eldiven steril örtüler tarafından karşılanacaktır gerek dokundu gerekir bundan sonra değiştirilmesi veya yeniden konumlandırma steril değil başka bir kişi tarafından yapılması gerekiyor.
O2-doygunluk izlenmesi önemlidir ayrıca ameliyat sırasında son derece önemlidir. Başkanı konumlandırma promontory görselleştirme için gerekli ve yuvarlak pencere niş yeterince erken tespit zaman kolayca işlenebilir hava yolu bir tıkanıklık neden olabilir.
Genellikle hayvanlar ameliyat sırasında vücut sıvıları (Örneğin kan, idrar, ekstra hücresel sıvı) büyük bir miktarı kaybedersiniz. Bu nedenle, bu makale tanıttı sıvı değişimi Protokolü hayvanlar hemodinami stabilize etmek iyi tolere bir yöntemi temsil eder ve anestezi onların hızlı kurtarma desteği.
Audiometrical ölçüm işlemi sırasında hataları önlemek için bu aynı iğneyi bağlantılarının her ameliyat sırasında belirli bir elektrot bağlanmak için tavsiye edilir.
Bir bu yöntemi sık sık de cerrahın algı ile ilişkilendirmek değil ameliyat sonrası işitme eşiği vardiya nispeten yüksek değişkenlik kısıtlamasıdır. Sonuçlar bu değişkenlik kalan işitme ile insan CI alıcı durumda benzer olsa da, bu tam olarak ne değişken sonuçları nedenleri anlaşılamamıştır. 16 , 17 , 18 genel olarak, zaman ve cerrahın tecrübesi ile değişkenliği azaltır. Aşırı kuvvetleri tarafından yavaş ekleme hızı elde edilebilir elektrot eklerken önlemek önemlidir. Çünkü CI elektrot dikkatli ekleme neden olabilir sadece çok sınırlı işitme kaybı, sunulan Protokolü elektrodu, daha yüksek bir neden olur ve daha öngörülebilir işitme kaybı tekrarlanan bir ekleme açıklar. Bu işitme kaybı en yüksek frekans alanında, 16 ve 32 kHz arasında telaffuz edilir. İntracochlear travma üzerinde ekleme derinliği bağlı olarak dikkate alınması gereken koklea ve yaklaşım (cochleostomy yuvarlak pencere ekleme karşı) morfolojisi. Genellikle insan işitme koruma koklear implantasyon, gerçekleştirilen yuvarlak pencere membran aracılığıyla CI elektrot yerleştirilmesi eskiden şiling şimdi domuz modelinde de kullanılan. 19 yuvarlak pencere membran eskiden şiling şimdi domuz ve elektrot ekleme yuvarlak pencere membran sonuçları bir olumsuz giriş açısı içinde gizlenmiş olur çünkü, bir cochleostomy sondaj daha öngörülebilir işitme eşiği vardiya için açar. Çünkü bu bir azaltılmış gürültü pozlama implante olması kulak sonuçlar bu iletişim kuralı bir tatbikat tympanic bulla açılışı için yerine bir neşter kullanımını öneriyor. Histolojik değerlendirme yabancı cisim reaksiyonu elektrot, saç hücreleri ve sarmal ganglion hücrelerinin yanı sıra travma yapılarına miktarı için adresleme iç kulak gibi kemik sarmal lamina ve elektrot translocation gore yapılmalıdır Bu sonuçlar ölçülen fonksiyonel sonuçları daha iyi anlaşılmasını kolaylaştırmak gibi toplamda kulaklar, implante. 12 , 20

500 milyondan fazla kişi dünya çapında işitme kaybı muzdarip. 1 bozulmuş işitme daha yüksek oranda depresyon, düşük benlik saygısı ve kendine değer, hangi düşük yaşam kalitesi için yol alt duyguları için bağlantılı olmuştur. 2 işitme duyusal işlev Orta işitme kaybı durumlarında geri yüklemek için yeterli bir yol olmakla birlikte, koklear implant (CI) derin işitme kaybı sorunum hastalar için en etkili tedavi yöntemi var. Mükemmel sonuçlar ile ilgili konuşma algı nedeniyle koklear implantasyon için adaylığını ölçüt şimdi de önemli artık düşük frekanslı bölgede işitme<s>s</s> hastalar içerir, ancak işitme cihazları faydası yok. 3 bu hastalar beri elektrik ve Akustik Stimülasyon implante kulakta kullanım kombine, işitme koruma CI cerrahlar için büyük bir sorun haline gelmiştir. Koklear implantasyon sırasında bir elektrot dizi nerede bu elektrikle siniri uyarır koklea, scala tympani eklenir. 4 elektrot ekleme travma kalan işitme için bir risk teşkil etmektedir ve elektrot impedances ve implantın pil tüketimi artar fibrozis neden olmaktadır. Böylece, işitme kaybı ve elektrot ekleme tarafından neden fibrozis azaltan ilaç müdahaleler çalışmaya modelleri gereklidir.
Eskiden şiling şimdi domuz uygun ve uygun hayvan için bir model CIS, nedeniyle daha kolay ve iç kulak gerbils, fareler ya da fareler karşılaştırıldığında daha fazla tekrarlanabilir cerrahi erişim var. 5 , 6 , 7 , 8 Ayrıca, bu tür işitme aralığı için insan kulağının nispeten karşılaştırılabilir. 9 daha büyük tür beğenmek cats veya belirli araştırma soruları CIS için ilgili adres için kullanılmıştır, maymunlar en CI çalışmaları nedeniyle etik ve mali konuları için makul bir seçim temsil etmemektedir. 10 , 11
Özetle, eskiden şiling şimdi domuz koklear implantasyon ortamda farmakolojik müdahaleler etkilerini değerlendirmek için bir güvenilir ve nispeten maliyet-etkin modelidir.

<table><tbody><tr><td>Scale</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Oxygen insufflator</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Shaver</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sucker</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Povidone Iodine Solution</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alcohol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Laryngoscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stomach tube&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>Fr 06, Lg 80 cm</td></tr><tr><td>Surgical binocular microscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Drill</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.5 mm diamond burr</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 mm diamond burr</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heating plate</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pulse oximeter</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tissue glue</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dental cement powder</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fluid for dental cement powder</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bipolar cautery</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gauze compress</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cotton bud</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cement mixing bowl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Teflon insulated gold wire</td><td></td><td></td><td>99.99 % gold, diameter: 0.125 mm, isolation: 0,016 mm, PTFE (Polytetrafluoroethylen)&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Scalpel with blade No. 10</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scalpel with blade No. 15</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scissors</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mosquito forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dressing forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tissue forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Delicate dressing forceps 2X</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micro forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Screw driver</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stainless steel screws</td><td></td><td></td><td>diameter: 1 mm</td></tr><tr><td>Retractor</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle probe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spatula</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle holder</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5-0 absorbable sutures&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle 23G</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle 27G</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Medetomidine 1 mg/mL</td><td></td><td></td><td>0.36 mg/kg</td></tr><tr><td>Midazolam g mg/mL</td><td></td><td></td><td>1.2 mg/kg</td></tr><tr><td>Fentanyl 50 &amp;micro;g/mL</td><td></td><td></td><td>0.036 mg/kg</td></tr><tr><td>Ketamine 100 mg/mL</td><td></td><td></td><td>12 mg/kg</td></tr><tr><td>Lidocaine (local anesthesia)</td><td></td><td></td><td>4 mg/kg</td></tr><tr><td>Atipamezole 5 mg/mL</td><td></td><td></td><td>1 mg/kg</td></tr><tr><td>Flumazenil 0.1 mg/mL</td><td></td><td></td><td>0.1 mg/kg</td></tr><tr><td>Enrofloxacin 100 mg/mL</td><td></td><td></td><td>7 mg/kg</td></tr><tr><td>Buprenorphin&amp;nbsp; 0.3 mg/mL</td><td></td><td></td><td>0.05 mg/kg&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Physiological Saline (at body temperature)</td><td></td><td></td><td>12.5 mL/Kg (pre-surgery)</td></tr><tr><td>Glucose 5 % (preoperative, at body temperature)</td><td></td><td></td><td>12.5 mL/Kg</td></tr><tr><td>Physiological Saline (at body temperature)</td><td></td><td></td><td>25 mL/kg (post-surgery)</td></tr></tbody></table>

cochlear implantation in the guinea pig

Koklear implant işitme derin işitme kaybı olan bireylerde geri yükleyebilirsiniz yüksek verimli aygıtlardır. Gelişmiş konuşma algılama sonuçları nedeniyle son birkaç on yıl boyunca adaylığı kriterleri genişletmiştir. Bu önemli kalıntı işitme işitme koruma koklear implantasyon sırasında önemli bir sorun yapar aynı kulak, elektrik ve Akustik Stimülasyon yarar hastalarda içerir. Elektrot impedances ve enerji tüketimi ilişkili konu başka bir büyük araştırma alanı, bu alanda ilerleme tamamen implante edilebilir işitsel protezleri için önünü açabilir gibi. Sistematik bir şekilde bu sorunlara yönelik olarak yeterli hayvan modelleri gereklidir. Bu nedenle, bu iletişim kuralının amacı çeşitli araştırma soruları gidermek için kullanılan koklear implantasyon bir hayvan modeli sağlamaktır. İç kulak, işitme menzili nispeten insanlar işitme aralığına benzer olarak kolay cerrahi erişim sağlayan onun büyük tympanic bulla dolayı eskiden şiling şimdi domuz işitsel araştırmalarda yaygın olarak kullanılan bir türdür. Eskiden şiling şimdi domuz koklear implantasyon retroauricular yaklaşım gerçekleştirilir. Bullostomy bir cochleostomy delinmiş ve koklear implant elektrot scala tympani eklenir. Bu elektrot daha sonra elektriksel stimülasyon, elektrot impedances belirlenmesi ve bileşik Aksiyon potansiyelleri işitme ölçümü için kullanılabilir. Hücrelere ilaç ajanların topikal bir teslimat veya iç kulak sıvıları isteniyorsa bu uygulamaların yanı sıra koklear implant elektrotlar de uyuşturucu teslim cihazlar olarak kullanılabilir.

Genellikle hızlı ve komplikasyonsuz eskiden şiling şimdi domuz modelinde cerrahi yaraların iyileşmesi ve ameliyat sonrası elektrofizyolojik ölçümleri için ilgili kişileri (Şekil 3) hayvan izdüşümü kolayca erişilebilir kalır. Şekil 4 temsilcisi bir hayvan öncesi ve ameliyat sonrası tıklayın-CAP ölçümü gösterir. Elektrot ekleme 16 desibel (dB) (rakamlar 4A ve 4B) bir eşik vardiyada sonuçlandı. Şekil 4 C aynı hayvan öncesi ve ameliyat sonrası frekans özel kap eşikleri göstermektedir. Yaklaşık 25-30 dB bir eşik kayması 8 kHz başlayan yüksek frekans alanında elde edilir, ancak CAP eşikleri düşük frekansları neredeyse değiştirilmemiştir.
Elektrot ekleme iç kulak travması neden olabilir. Akut cerrahi travma ek olarak yabancı cisim reaksiyonu elektrot için olumsuz koklear implant performansını etkiler. Şekil 5 CI ekleme ve farklı histolojik yordamlar sonra eskiden şiling şimdi pigs cochleae gösterir. Şekil 5B elektrot histolojik testleri daha önce çıkarılmış ise Şekil 5'A doğru scala tympani yerleştirilmiş, elektrot, in situ, bırakılmış. Şekil 5içindeA hemen hemen herhangi bir yabancı cisim tepki ise Şekil 5' teB scala tympani geniş bir alanda fibrotik doku ile doludur, görülüyor. Şekil 5 C kemik sarmal lamina da bu hayvan sarmal ganglion hücrelerinin kaybı neden CI elektrot ekleme nedeniyle kırılması gösteriyor. Böyle kırıklar beklenen eşik vardiyalar halinde bazı hayvanlar daha yüksek açıklayabilir.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig1.jpg"> Resim 1 : Yuvarlak pencere alanının altın tellerle yerinde. Bir x koklea bazal açmak, yuvarlak pencere bir yıldız işareti işaretler. Altın tel bir okla işaretlenmiştir. Çap 2 mm. bar <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig2.jpg"> Resim 2 : Eskiden şiling şimdi domuz koklear implant elektrot. İki kişiler ile elektrot için 4 mm eklenir. Elektrot çapı konik ucunu 0.5 mm. için 0.3 mm çizgiler 0,5 mm. gösterir <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig3.jpg"> Şekil 3 : Eskiden şiling şimdi domuz yaklaşık iki hafta Koklear implantasyonu sonrası. CI elektrot in situ ve elektrofizyolojik ölçümleri için ilgili kişileri hayvan izdüşümü kolayca erişilebilir. <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig4.jpg"> Şekil 4 : Temsilcisi CAP eşikleri (A) Preoperatif click CAP eşik temsilcisi bir hayvan. (B) Postoperative tıklayın CAP eşik aynı hayvan 16 dB bir eşik kayması sergilenmesi. Çizgiler 10 dB gösterir. (C) öncesi ve ameliyat sonrası frekans özel kap eşikleri. Düşük frekanslarda hemen hemen değişmeden olmakla birlikte, 25-30 dB bir eşik kayması 8-32 kHz Frekans aralığı görülebilmektedir. <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig5.jpg"> Şekil 5 : Olası yerel sonuçları CI elektrot yerleştirme. (A) test CI elektrot yerinde (#) ve sadece çok az yabancı cisim reaksiyonu ile bir kobay koklea bazal bir dönüş. Histolojik analiz bir zımpara kullanarak ve sonra reçine gömme ve Giemsa boyama tekniği parlatma gerçekleştirildi. 15 (B) test üst bazal tympanic kanalının açmak koklea elektrot CI çıkarıldıktan sonra bir kanal bırakarak görünür doku Yanıt ile Scalebar 100 µm (#). Scalebar 100 µm (C) daha düşük bazal dönüş koklea kırık kemik sarmal lamina (kalın ok) ve bitişik doku yanıt: (i) kaybı sarmal ganglion hücrelerinin (ok) Rosenthal'ın kanal (II) fibrozis ve vestibüler kanalı (●) ve () osteoneogenesis III) organ ve Corti (*) kaybı. Delme-delik ekleme bitişik osteoneogenesis CI (○) için. Scalebar 500 µm. rakamlar 5B ve 5C hematoksilen (mavi) ve eozin (kırmızı) lekeli. <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Cochlear Implantation in the Guinea Pig at JoVE.com

Cochlear Implantation in the Guinea Pig

Bu iletişim kuralı, çok sayıda araştırma soruları gidermek için kullanılan koklear implantasyon bir hayvan modeli sağlamak için hedeftir. Potansiyel uygulamalar ilaç müdahaleler veya işitme eşikleri veya elektrot impedances yararlı etkileri için elektriksel stimülasyon değerlendirilmesi içerir.

Eskiden şiling şimdi domuz koklear implantasyon

Cochlear implants are highly efficient devices that can restore hearing in subjects with profound hearing loss. Due to improved speech perception ...

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Medicine

11.1K Görüntüleme.  Medical University of Vienna. Bu iletişim kuralı, çok sayıda araştırma soruları gidermek için kullanılan koklear implantasyon bir hayvan modeli sağlamak için hedeftir. Potansiyel uygulamalar ilaç müdahaleler veya işitme eşikleri veya elektrot impedances yararlı etkileri için elektriksel stimülasyon değerlendirilmesi içerir.

Video: Cochlear Implantation in the Guinea Pig

Surgical Induction of Endolymphatic Hydrops by Obliteration of the Endolymphatic Duct

Surgical induction of endolymphatic hydrops (ELH) in the guinea pig by obliteration and obstruction of the endolymphatic duct is a well-accepted animal model of the condition and an important correlate for human Meniere's disease. In 1965, Robert Kimura and Harold Schuknecht first described an intradural approach for obstruction of the endolymphatic duct (Kimura 1965). Although effective, this technique, which requires penetration of the brain's protective covering, incurred an undesirable level of morbidity and mortality in the animal subjects. Consequently, Andrews and Bohmer developed an extradural approach, which predictably produces fewer of the complications associated with central nervous system (CNS) penetration.(Andrews and Bohmer 1989) 
The extradural approach described here first requires a midline incision in the region of the occiput to expose the underlying muscular layer. We operate only on the right side. After appropriate retraction of the overlying tissue, a horizontal incision is made into the musculature of the right occiput to expose the right temporo-occipital suture line. The bone immediately inferio-lateral the suture line (Fig 1) is then drilled with an otologic drill until the sigmoid sinus becomes visible. Medial retraction of the sigmoid sinus reveals the operculum of the endolymphatic duct, which houses the endolymphatic sac. Drilling medial to the operculum into the area of the endolymphatic sac reveals the endolymphatic duct, which is then packed with bone wax to produce obstruction and ultimately ELH. 
In the following weeks, the animal will demonstrate the progressive, fluctuating hearing loss and histologic evidence of ELH.

This video shows how to surgically obstruct the guinea pig's endolymphatic duct to produce endolymphatic hydrops.

Endolenfatik Kanal obliterasyonu endolenfatik hidrops Cerrahi İndüksiyon

Surgical induction of endolymphatic hydrops (ELH) in the guinea pig by obliteration and obstruction of the endolymphatic duct is a well-accepted animal ...

Biyoloji

Cochlear Implant Surgery and Electrically-evoked Auditory Brainstem Response Recordings in C57BL/6 Mice

Cochlear implants (CIs) are neuroprosthetic devices that can provide a sense of hearing to deaf people. However, a CI cannot restore all aspects of hearing. Improvement of the implant technology is needed if CI users are to perceive music and perform in more natural environments, such as hearing out a voice with competing talkers, reflections, and other sounds. Such improvement requires experimental animals to better understand the mechanisms of electric stimulation in the cochlea and its responses in the whole auditory system. The mouse is an increasingly attractive model due to the many genetic models available. However, the limited use of this species as a CI model is mainly due to the difficulty of implanting small electrode arrays. More details about the surgical procedure are therefore of great interest to expand the use of mice in CI research.
In this report, we describe in detail the protocol for acute deafening and cochlear implantation of an electrode array in the C57BL/6 mouse strain. We demonstrate the functional efficacy of this procedure with electrically-evoked auditory brainstem response (eABR) and show examples of facial nerve stimulation. Finally, we also discuss the importance of including a deafening procedure when using a normally hearing animal. This mouse model provides a powerful opportunity to study genetic and neurobiological mechanisms that would be of relevance for CI users.

Animal models of cochlear implants can advance knowledge of the technological bases of treating permanent sensorineural hearing loss with electrical stimulation. This study presents a surgical protocol for acute deafening and cochlear implantation of an electrode array in mice as well as the functional assessment with auditory brainstem response.

Koklear Implant ameliyatı ve elektriksel olarak uyarılmış işitsel beyin sapı yanıt kayıtları C57BL/6 farelerde

Cochlear implants (CIs) are neuroprosthetic devices that can provide a sense of hearing to deaf people. However, a CI cannot restore all aspects of ...

Nörobilim

Subretinal Implantation of RPE on a Carrier in Minipigs: Guidelines for Preoperative Preparations, Surgical Techniques, and Postoperative Care

Degenerative disorders of the retina (including age-related macular degeneration), which originate primarily at or within the retinal pigmented epithelial (RPE) layer, lead to a progressive disorganization of the retinal anatomy and the deterioration of visual function. The substitution of damaged RPE cells (RPEs) with in vitro cultured RPE cells using a subretinal cell carrier has shown potential for re-establishing the anatomical structure of the outer retinal layers and is, therefore, being further studied. Here, we present the principles of a surgical technique that allows for the effective subretinal transplantation of a cell carrier with cultivated RPEs into minipigs. The surgeries were performed under general anesthesia and included a standard lens-sparing three-port pars plana vitrectomy (PPV), subretinal application of a balanced salt solution (BSS), a 2.7 mm retinotomy, implantation of a nanofibrous cell carrier into the subretinal space through an additional 3.0 mm sclerotomy, fluid-air exchange (FAX), silicone oil tamponade, and closure of all the sclerotomies. This surgical approach was used in 29 surgeries (18 animals) over the past 8 years with a success rate of 93.1%. Anatomic verification of the surgical placement was carried out using in vivo fundus imaging (fundus photography and optical coherence tomography). The recommended surgical steps for the subretinal implantation of RPEs on a carrier in minipig eyes can be used in future preclinical studies using large-eye animal models.

The subretinal implantation of retinal pigmented epithelium (RPE) is one of the most promising approaches for the treatment of degenerative retinal diseases. However, the performance of preclinical studies on large-eye animal models remains challenging. This report presents guidelines for the subretinal transplantation of RPE on a cell carrier into minipigs.

Minipiglerde RPE'nin taşıyıcı üzerine subretinal implantasyonu: Preoperatif preparatlar, cerrahi teknikler ve postoperatif bakım için kılavuzlar

Degenerative disorders of the retina (including age-related macular degeneration), which originate primarily at or within the retinal pigmented epithelial ...

Biyomühendislik

Subdural Soft Electrocorticography (ECoG) Array Implantation and Long-Term Cortical Recording in Minipigs

Neurological impairments and diseases can be diagnosed or treated using electrocorticography (ECoG) arrays. In drug-resistant epilepsy, these help delineate the epileptic region to resect. In long-term applications such as brain-computer interfaces, these epicortical electrodes are used to record the movement intention of the brain, to control the robotic limbs of paralyzed patients. However, current stiff electrode grids do not answer the need for high-resolution brain recordings and long-term biointegration. Recently, conformable electrode arrays have been proposed to achieve long-term implant stability with high performance. However, preclinical studies for these new implant technologies are needed to validate their long-term functionality and safety profile for their translation to human patients. In this context, porcine models are routinely employed in developing medical devices due to their large organ sizes and easy animal handling. However, only a few brain applications are described in the literature, mostly due to surgery limitations and integration of the implant system on a living animal.
Here, we report the method for long-term implantation (6 months) and evaluation of soft ECoG arrays in the minipig model. The study first presents the implant system, consisting of a soft microfabricated electrode array integrated with a magnetic resonance imaging (MRI)-compatible polymeric transdermal port that houses instrumentation connectors for electrophysiology recordings. Then, the study describes the surgical procedure, from subdural implantation to animal recovery. We focus on the auditory cortex as an example target area where evoked potentials are induced by acoustic stimulation. We finally describe a data acquisition sequence that includes MRI of the whole brain, implant electrochemical characterization, intraoperative and freely moving electrophysiology, and immunohistochemistry staining of the extracted brains.
This model can be used to investigate the safety and function of novel design of cortical prostheses; mandatory preclinical study to envision translation to human patients.

Subdural Soft Electrocorticography ECoG Array Implantation and Long-Term Cortical Recording in Minipigs

Here, we present a method for the long-term performance and safety assessment of soft subdural electrode arrays in a minipig model, describing surgical method and tools, postoperative magnetic resonance imaging, electrophysiology of the auditory cortex, electrochemical properties of the implant, and postmortem immunochemistry.

Minipiglerde Subdural Yumuşak Elektrokortikografi (ECoG) Dizisi İmplantasyonu ve Uzun Süreli Kortikal Kayıt

Neurological impairments and diseases can be diagnosed or treated using electrocorticography (ECoG) arrays. In drug-resistant epilepsy, these help ...

A Revised Surgical Approach to Induce Endolymphatic Hydrops in the Guinea Pig

Endolymphatic hydrops is an enlargement of scala media that is most often associated with Meniere&#39;s disease, though the pathophysiologic mechanism(s) remain unclear. In order to adequately study the attributes of endolymphatic hydrops, such as the origins of low-frequency hearing loss, a reliable model is needed. The guinea pig is a&#160;good model because it hears in the low-frequency regions that are putatively affected by endolymphatic hydrops. Previous research has demonstrated that endolymphatic hydrops can be induced surgically via intradural or extradural approaches that involve drilling on the endolymphatic duct and sac. However, whether it was possible to create an endolymphatic hydrops model using an extradural approach that avoided dangerous drilling on the endolymphatic duct and sac was unknown. The objective of this study was to demonstrate a revised extradural approach to induce experimental endolymphatic hydrops at 30 days post-operatively by obliterating the endolymphatic sac and injuring the endolymphatic duct with a fine pick. The sample size consisted of seven guinea pigs. Functional measurements of hearing were made and temporal bones were subsequently harvested for histologic analysis. The approach had a success rate of 86% in achieving endolymphatic hydrops. The risk of cerebrospinal fluid leak was minimal. No perioperative deaths or injuries to the posterior semicircular canal occurred in the sample. The presented method demonstrates a safe and reliable way to induce endolymphatic hydrops at a relatively quick time point of 30 days. The clinical implications are that the presented method provides a reliable model to further explore the origins of low-frequency hearing loss that can be associated endolymphatic hydrops.

This article demonstrates an extradural approach to obliterate the guinea pig endolymphatic sac and injure the endolymphatic duct with a fine pick in order to induce experimental endolymphatic hydrops.

Kobayda Endolenfatik Hidrops İndüklemek için Gözden Geçirilmiş Cerrahi Yaklaşım

Endolymphatic hydrops is an enlargement of scala media that is most often associated with Meniere&#39;s disease, though the pathophysiologic mechanism(s) ...

Implantation of hiPSC-derived Cardiac-muscle Patches after Myocardial Injury in a Guinea Pig Model

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss of relevant amounts of heart muscle mass can lead to the heart failure. Besides heart transplantation, there is no curative treatment option for the end-stage heart failure. In times of organ donor shortage, organ independent treatment modalities are needed. Left-ventricular assist devices are a promising therapy option, however, especially as destination therapy, limited by its side-effects like stroke, infections and bleedings. In recent years, several cardiac repair strategies including stem cell injection, cardiac progenitors or myocardial tissue engineering have been investigated. Recent improvements in cell biology allow for the differentiation of large amounts of cardiomyocytes derived from human induced pluripotent stem cells (iPSC). One of the cardiac repair strategies currently under evaluation is to transplant artificial heart tissue. Engineered heart tissue (EHT) is a three-dimensional in vitro created cardiomyocyte network, with functional properties of native heart tissue. We have created EHT-patches from hiPSC derived cardiomyocytes. Here we present a protocol for the induction of left ventricular myocardial cryoinjury in a guinea pig, followed by implantation of hiPSC derived EHT on the left ventricular wall.

Here we present a protocol for the induction of left ventricular cryoinjury followed by the implantation of a cardiac muscle patch, derived from human iPS-cell cardiomyocytes in a guinea pig model.

HiPSC elde edilen kalp kası yamalar implantasyonu eskiden şiling şimdi domuz modelinde miyokardiyal yaralanma sonra

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss ...

Tıp

Pupillometry to Assess Auditory Sensation in Guinea Pigs

Noise exposure is a leading cause of sensorineural hearing loss. Animal models of noise-induced hearing loss have generated mechanistic insight into the underlying anatomical and physiological pathologies of hearing loss. However, relating behavioral deficits observed in humans with hearing loss to behavioral deficits in animal models remains challenging. Here, pupillometry is proposed as a method that will enable the direct comparison of animal and human behavioral data. The method is based on a modified oddball paradigm - habituating the subject to the repeated presentation of a stimulus and intermittently presenting a deviant stimulus that varies in some parametric fashion from the repeated stimulus. The fundamental premise is that if the change between the repeated and deviant stimulus is detected by the subject, it will trigger a pupil dilation response that is larger than that elicited by the repeated stimulus. This approach is demonstrated using a vocalization categorization task in guinea pigs, an animal model widely used in auditory research, including in hearing loss studies. By presenting vocalizations from one vocalization category as standard stimuli and a second category as oddball stimuli embedded in noise at various signal-to-noise ratios, it is demonstrated that the magnitude of pupil dilation in response to the oddball category varies monotonically with the signal-to-noise ratio. Growth curve analyses can then be used to characterize the time course and statistical significance of these pupil dilation responses. In this protocol, detailed procedures for acclimating guinea pigs to the setup, conducting pupillometry, and evaluating/analyzing data are described. Although this technique is demonstrated in normal-hearing guinea pigs in this protocol, the method may be used to assess the sensory effects of various forms of hearing loss within each subject. These effects may then be correlated with concurrent electrophysiological measures and post-hoc anatomical observations.

Pupillometry, a simple and non-invasive technique, is proposed as a method to determine hearing-in-noise thresholds in normal hearing animals and animal models of various auditory pathologies.

Gine Domuzlarında İşitsel Hissi Değerlendirmek için Pupillometri

Noise exposure is a leading cause of sensorineural hearing loss. Animal models of noise-induced hearing loss have generated mechanistic insight into the ...

The Miniature Pig: A Large Animal Model for Cochlear Implant Research

Cochlear implants (CI) are the most effective method to treat people with severe-to-profound sensorineural hearing loss. Although CIs are used worldwide, no standard model exists for investigating the electrophysiology and histopathology in patients or animal models with a CI or for evaluating new models of electrode arrays. A large animal model with cochlea characteristics similar to those of humans may provide a research and evaluation platform for advanced and modified arrays before their use in humans. 
To this end, we established standard CI methods with Bama mini-pigs, whose inner ear anatomy is highly similar to that of humans. Arrays designed for human use were implanted into the mini pig cochlea through a round window membrane, and a surgical approach followed that was similar to that used for human CI recipients. Array insertion was followed by evoked compound action potential (ECAP) measurements to evaluate the function of the auditory nerve. This study describes the preparation of the animal, surgical steps, array insertion, and intraoperative electrophysiological measurements. 
The results indicated that the same CI used for humans could be easily implanted in mini-pigs via a standardized surgical approach and yielded similar electrophysiological outcomes as measured in human CI recipients. Mini-pigs could be a valuable animal model to provide initial evidence of the safety and potential performance of novel electrode arrays and surgical approaches before applying them to human beings.

Miniature pigs (mini-pigs) are an ideal large animal model for research into cochlear implants. Cochlear implantation surgery in mini-pigs can be utilized to provide initial evidence of the safety and potential performance of novel electrode arrays and surgical approaches in a living system similar to human beings.

Minyatür Domuz: Koklear İmplant Araştırması için Büyük Bir Hayvan Modeli

Cochlear implants (CI) are the most effective method to treat people with severe-to-profound sensorineural hearing loss. Although CIs are used worldwide, ...

Endoscopic Balloon Dilatation of the Eustachian Tube via the Soft Palate Approach in Miniature Pigs

The eustachian tube (ET) is one of the most complex organs in the human body, and its dysfunction may lead to a variety of diseases. In recent years, an increasing number of scholars have opted to conduct ET-related studies using large experimental animals such as miniature pigs or sheep, yielding promising results. Typically, conventional endoscopic procedures are performed through the nasal approach for large experimental animals. However, due to the elongated and narrow nasal cavity in these animals, transnasal surgeries are challenging. 
To address this issue, we explored an ET surgery approach via the soft palate. The animal was placed in a supine position. After endotracheal intubation under general anesthesia, a mouth opener was used to fully expose the upper palate. Local infiltration with diluted adrenal fluid was performed for anesthesia of the area. A sickle knife was then used to make a longitudinal soft palate incision at the junction of the soft and hard palates. After hemostasis, an endoscope was inserted into the nasopharynx cavity, allowing the visualization of the pharyngeal opening of the ET on the posterior lateral wall of the nasal cavity. 
Subsequently, a specialized pusher was used to insert a balloon into ET. The balloon was inflated, maintained at 10 bar for 2 min, and then removed. The incision in the soft palate was then sutured to ensure proper alignment. The soft palate healed well after the operation. This surgical approach is suitable for ET-related procedures in large experimental animals (e.g., miniature pigs, sheep, and dogs). The surgical procedure is simple, with a short surgical time, and wound healing is rapid. Under endoscopy, the pharyngeal opening of the ET is visible, and it is thus a good choice for procedures such as balloon dilation of the ET.

In this study, we present a protocol to explore an eustachian tube surgery approach via the soft palate in miniature pigs. The surgical procedure is simple, with short surgical time, and wound healing is rapid; it is thus a good choice for procedures such as balloon dilation of the eustachian tube.

The eustachian tube (ET) is one of the most complex organs in the human body, and its dysfunction may lead to a variety of diseases. In recent years, an ...

Gine Domuzu Yuvarlak Pencere Membran Eksplantasyonu

Guinea Pig Round Window Membrane Explantation for Ex Vivo Studies

Efficient and minimally invasive drug delivery to the inner ear is a significant challenge. The round window membrane (RWM), being one of the few entry points to the inner ear, has become a vital focus of investigation. However, due to the complexities of isolating the RWM, our understanding of its pharmacokinetics remains limited. The RWM comprises three distinct layers: the outer epithelium, the middle connective tissue layer, and the inner epithelial layer, each potentially possessing unique delivery properties.
Current models for investigating transport across the RWM utilize in vivo animal models or ex vivo RWM models which rely on cell cultures or membrane fragments. Guinea pigs serve as a validated preclinical model for the investigation of drug pharmacokinetics within the inner ear and are an important animal model for the translational development of delivery vehicles to the cochlea. In this study, we describe an approach for explantation of a guinea pig RWM with surrounding cochlear bone for benchtop drug delivery experiments. This method allows for preservation of native RWM architecture and may provide a more realistic representation of barriers to transport than current benchtop models.

Yazar Spot Işığı: İç Kulak İlaç Dağıtım Araştırmasını Kolaylaştırmak İçin Kobay Yuvarlak Pencere Zarının Çıkarılması

This protocol outlines a method for the explantation of the round window membrane from guinea pig temporal bones, providing a valuable resource for ex vivo studies.

Ex Vivo Çalışmalar için Gine Domuzu Yuvarlak Pencere Membran Eksplantasyonu

Efficient and minimally invasive drug delivery to the inner ear is a significant challenge. The round window membrane (RWM), being one of the few entry ...