著者は、メディカルライティングの動物とノエラニ ピートの心配のためサンドラ Peiritsch を感謝したいです。オーストリア科学基金 (FWF 付与 P 24260 B19) や MED エル オーストリアによる財政支援を感謝します。

すべての動物実験は、科学・研究・経済動物愛護委員会とオーストリアの中央政府大臣によって承認されました。
1. 機器と手術に必要なセットアップを準備します。
<ol><li>手術顕微鏡、ドリル、加熱プレートを置き、パルスオキシメータ簡単で効率的な手術中に処理できるようにします。製造元のマニュアルに基づくデバイスの機能を確認します。手術中に低体温症から動物を保護するために 38 ° C で加熱プレートが設定されていることを確認します。</li>
	<li>フードとマスクを置きます。</li>
	<li>手術の手の消毒を行います。細かいところまで石鹸で手を洗います。手を乾燥し、手を消毒するアルコール手消毒剤を使用します。手が乾燥した後に手袋を入れてください。</li>
	<li>滅菌手術用器具、人工内耳に必要な機器を準備します。手術器具、このプロトコルではモルモット CI 注入用の装置のための材料表を参照してください。</li>
	<li>複合活動電位 (CAP) の測定を目的とするときは慎重に (約 1 つの端から 3 mm と 5 mm のマイクロ鉗子を用いた両端から絶縁材の部分を削除することによって金ワイヤのテフロン絶縁の約 3.5 cm の長い作品を準備します。もう一方の端)。アルコールまたは消毒剤の準備ワイヤ絶縁両端の約 5 mm. の場所で金線 (約 2.5 cm) の 2 番目の部分を準備します。</li>
</ol>2. 麻酔、薬、動物の準備
<ol><li>動物の重量を量る。 注: 使用される動物、女性ダンキン ・ ハートレー アルビノ モルモットです。約 4-6 週間の古いである、動物の重量は、300 から 400 g の範囲します。</li>
	<li>麻酔薬および動物の重量に基づいて手術に必要な薬物を準備します。麻酔薬の混合物、0.06 mL ケタミン (100 mg/mL)、メデトミジン 0.18 mL (1 mg/mL)、ミダゾラム (5 mg/mL) とフェンタニル (50 μ g/mL) 400 g モルモットの手術のための mL の 0.36 0.12 mL から成る 0.72 mL を準備します。麻酔薬の投与量を重量ベースの表 1を参照してください。</li>
	<li>ケタミン、メデトミジン、ミダゾラム、27 G 針を使用して動物の首の脂肪パッドの皮下にフェンタニルの混合物を注入します。重量の表 1による麻酔薬の用量を参照してください。ケージをカバーし、続行する前に 10 分の静かな場所に動物を残します。</li>
	<li>動物の目を注油し、それら全体の手順中に潤滑を保ちます。ブラに十分な外科的アクセスを許可する着けた地域に焦点を当て、動物の頭部を剃る。</li>
	<li>腹臥位で加熱プレートに動物を置き、動物が低温火傷を防ぐために加熱板との直接接触にないことを確認してください。動物の足にパルス パルスオキシメータ プローブを配置します。動物の口の中を慎重に小さな喉頭鏡に開き、吸盤を使用してクリーンな食品から全体の口腔内がかかっています。</li>
	<li>喉頭鏡で開かれた動物の口を保ちます。慎重に動物の食道に胃管を挿入し、胃の方向に抵抗を感じるまでゆっくりと差し込みます。<ol>
<li>モニター O2-胃管が気管ではないことを確認してください動物の飽和。O2飽和の減少がある場合、胃管を削除および動物は完全に酸素化した後にもう一度試してください。</li>
	</ol>
</li>
	<li>23 G 針を使用して動物の首の脂肪パッドに生理食塩液、5% ブドウ糖、エンロフロキサシンの混合物を注入します。</li>
	<li>再び手を消毒するのにアルコール手消毒剤を使用します。新しいきれいな手袋を入れてください。</li>
	<li>ポビドン ヨード、70% エタノールのスクラブを交互に手術野を準備し、動物をカバーします。プロシージャの間に覆いを取られた外科分野だけにとどまることを確認する使用粘着シーツやタオルにクランプします。</li>
	<li>皮下十分な局所麻酔のため予定の切開部に 2% リドカイン液の 0.1 mL を注入し、動物を横に配置します。</li>
	<li>十分な麻酔を維持するために最初の注射後麻酔薬の混合物 30 分毎の初回投与量の 1/4 で動物を線量再。</li>
</ol>3. 人工内耳
<ol><li>実行、約 2-3 cm の皮膚切開 3 ~ 5 mm、メスによる耳介の後方。焼灼の出血を最小限に抑える必要があるときに使用します。 注: 最初の切開前にペダルの撤退の欠如によって麻酔の深さを確認すべき。このテストは、プロシージャ全体で麻酔の深さを監視する 15-20 分ごと繰り返す必要があります。</li>
	<li>15 メスや手術用ハサミを使用して聴覚のブラを触診した後地区に着けた筋肉を慎重にカットします。 注: は、筋肉の下で隆起として聴覚ブラを触診します。</li>
	<li>そっと脇を raspatory を使用してまたは綿棒を押してブラから筋肉を解剖します。切開のフルの長さを公開し、ブラへのアクセスが妨げられることがなく、リトラクターを使用します。</li>
	<li>15 メスの先端を使って、ブラに穴を開けます。中耳の構造の検査をすることに骨を穿孔まで慎重にメスを回転させます。</li>
	<li>確認する蝸牛の基部の回転に応じて、bullostomy を拡大して丸い窓のニッチを的確に視覚化できます。これらの構造体にアクセスするために動物の頭を屈折位置に置きます。血液と細胞外液が中耳にで実行されていることを防ぐために圧縮の小片と bullostomy の領域をカバーします。 注: 頭の屈折位置動物の気道を妨害する可能性があります。したがって、動物の酸素飽和度は、頻繁にチェックする必要があります。</li>
	<li>腹臥位で動物を配置します。長方形の切開を行うと、皮膚を取り除くことによって動物の頂点を公開します。骨膜を解剖し、メスを使用して、他の種の組織や血液から骨をきれい。</li>
	<li>キャップ測定をしようとするときは、3 mm の絶縁されているワイヤの終わりにマイクロ鉗子で小さなフックを形成することにより 3.5 cm テフロン絶縁の金ワイヤの準備を完了します。</li>
	<li>キャップ測定をしようとするとき、5 mm の皮下にマイクロ鉗子を使用して、18 G の末梢の静脈カテーテルを頂点に絶縁されているゴールドのワイヤーの端をガイドします。もう片方の手で慎重にワイヤのフックの端をガイドに別マイクロ鉗子を使用、中耳に。</li>
	<li>キャップの測定を目的とする場合、bullostomy で丸い窓のニッチの領域を視覚化するための動物の頭に活用し。マイクロ鉗子を使用してラウンド ウィンドウのニッチの骨隆起に金ワイヤをフックをもう一方の手を使用します。</li>
	<li>金ワイヤで穏やかな緊張感を維持し、27 G の針を用いて 1 mL 注射器を使用して組織接着剤の 10-15 μ L で、bullostomy の頭蓋の寸前にそれを修正します。中耳の中に接着剤の変位を避けてください。その場でゴールドのワイヤーで丸い窓領域の術中画像の図 1を参照してください。</li>
	<li>キャップの測定を目的とするときは、聴覚電位を測定し、ベースライン キャップ測定を実行するために使用する機器に金ワイヤの絶縁されていない端を接続します。Honeder et al., 2016, 詳細については日常的に私たちの研究室で実行キャップ測定を参照してください。12
</li>
	<li>腹臥位で動物を配置します。硬膜への損傷を引き起こすことがなく 1 mm バリを使用してラムダ縫合前方 1 mm 2 穴をあけます。頭蓋骨に 2 のステンレス鋼ねじ 2 mm を注入します。 メモ: ネジは、コネクタの電極の注視点として機能します。コネクタのサイズに関してはネジの間の間隔を合わせます。</li>
	<li>18 G 末梢静脈カテーテルを使用して、可能な限り頭蓋骨に近い組織層で水疱にコネクタから電極を進めます。</li>
	<li>製造元のマニュアルによるとへらを使用して歯科用セメント粉体の流体と歯科用セメントの粉を混ぜます。</li>
	<li>場所 0.5 - 0.7 mL スパチュラを使用してネジ間 semifluid 歯科用セメントの。ネジ間電極コネクタを配置します。</li>
	<li>歯科用のセメントが固まるまでは、コネクタ位置にしてください。ネジがコネクタの安定固定できるようにセメントで包まれていることを確認します。</li>
	<li>動物を横に配置します。慎重に cochleostomy 毎分 5000 発の回転率で 0.5 mm ダイヤモンド バリを使用して丸い窓のニッチから 1 mm をドリルします。</li>
	<li>慎重に 4 mm の深さにスカラー座索に電極を挿入します。電極を撤回し、挿入を繰り返します。モルモット内耳用電極の図 2を参照してください。</li>
	<li>ストレート針を使用して、筋肉の小片を cochleostomy 領域をシールします。27 G の針を用いて 1 mL 注射器を使用して組織接着剤の 10 μ L で、bullostomy の頭蓋寸前に電極を修正します。</li>
	<li>前述の 3.14 では、歯科用セメントを準備します。慎重にヘラを使用して、歯科用セメントの約 0.3 ml bullostomy を閉じます。5-0 吸収性縫合糸を使用して着けた切開を閉じる。</li>
	<li>腹臥位に動物をオンにします。</li>
	<li>キャップの測定を目的とするときは、組織鉗子を使用して動物の頂点に長方形の切開の後部の端をつかみます。片方の手でハサミを使用して、動物の首に約 2 cm の長さの皮下トンネルを作る。</li>
	<li>キャップ測定をしようとするとき、インプラント、鉗子を使用して動物の首に皮下 2.5 cm ゴールド ワイヤー。動物の頂点にコネクタの指定されたピンに短い方の絶縁されていない端をはんだ付けします。</li>
	<li>キャップの測定を目的とするときは、適切な動物の頂点上のコネクタのピンに丸い窓のニッチ電極 (金線) をはんだ付けします。</li>
	<li>追加の絶縁端子と電極を完全にカバーするコネクタ上に歯科用セメントの量を適用します。</li>
	<li>キャップの測定を目的とするときは、研究計画書によると術後測定を実行します。</li>
</ol>4. 術後のケア
<ol><li>適用に対するアチパメゾールおよびフルマゼニル皮下の手術と測定後麻酔の反感を買います。</li>
	<li>動物の手術からの回復をサポートする流体置換として生理食塩水を適用します。</li>
	<li>完全に麻酔から回復し、ケージ内で移動を開始するまでは、加熱ランプの下で動物を配置します。<ol>
<li>温熱療法を防ぐため焼いたり、加熱ランプを配置することによって動物に約 50 cm。動物の体温は 37.5 ° C から 39 ° C の間に常にことを確認してください。</li>
	</ol>
</li>
	<li>眼振、旋回やロール オーバーのような前庭障害の症状のための動物を確認します。13,14
</li>
	<li>1 日 2 回より多くの 2 つの日の手術後の鎮痛に対するブプレノルフィンを適用します。 注: ブプレノルフィン手術後の最初のアプリケーションの前に動物が完全に回復しているおり安定した呼吸であることを確認してください。この薬中動物は麻酔のアプリケーションは呼吸うつ病につながる可能性があります。</li>
	<li>この時間の間に苦痛のサロゲート マーカーとして可能な重量の損失を検出する最初の 3 日後手術中に動物の重量を量る。 注: 最初の 3 日後の手術中に約 10% の減量が期待できる、一般的な考慮する必要があります。この減量は一時的で、数日以内に回復されます。</li>
</ol>

<ol>
	<li>Stevens, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+and+regional+hearing+impairment+prevalence:+an+analysis+of+42+studies+in+29+countries.">Global and regional hearing impairment prevalence: an analysis of 42 studies in 29 countries.</a> Eur J Public Health. 23 (1), 146-152 (2013).</li><li>Ciorba, A., Bianchini, C., Pelucchi, S., Pastore, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+impact+of+hearing+loss+on+the+quality+of+life+of+elderly+adults.">The impact of hearing loss on the quality of life of elderly adults.</a> Clin Interv Aging. 7, 159-163 (2012).</li><li>Arnoldner, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electric+acoustic+stimulation+in+patients+with+postlingual+severe+high-frequency+hearing+loss:+clinical+experience.">Electric acoustic stimulation in patients with postlingual severe high-frequency hearing loss: clinical experience.</a> Adv Otorhinolaryngol. 67, 116-124 (2010).</li><li>Kral, A., O'Donoghue, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Profound+deafness+in+childhood.">Profound deafness in childhood.</a> N Engl J Med. 363 (15), 1438-1450 (2010).</li><li>DeMason, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophysiological+properties+of+cochlear+implantation+in+the+gerbil+using+a+flexible+array.">Electrophysiological properties of cochlear implantation in the gerbil using a flexible array.</a> Ear Hear. 33 (4), 534-542 (2012).</li><li>Eshraghi, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pattern+of+hearing+loss+in+a+rat+model+of+cochlear+implantation+trauma.">Pattern of hearing loss in a rat model of cochlear implantation trauma.</a> Otol Neurotol. 26 (3), 442-447 (2005).</li><li>Mistry, N., Nolan, L. S., Saeed, S. R., Forge, A., Taylor, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+implantation+in+the+mouse+via+the+round+window:+effects+of+array+insertion.">Cochlear implantation in the mouse via the round window: effects of array insertion.</a> Hear Res. 312, 81-90 (2014).</li><li>Wysocki, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Topographical+anatomy+of+the+guinea+pig+temporal+bone.">Topographical anatomy of the guinea pig temporal bone.</a> Hear Res. 199 (1-2), 103-110 (2005).</li><li>Heffner, H. E., Heffner, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hearing+ranges+of+laboratory+animals.">Hearing ranges of laboratory animals.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 46 (1), 20-22 (2007).</li><li>Van Beek-King, J. M., Bhatti, P. T., Blake, D., Crawford, J., McKinnon, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Silicone-coated+thin+film+array+cochlear+implantation+in+a+feline+model.">Silicone-coated thin film array cochlear implantation in a feline model.</a> Otol Neurotol. 35 (1), 45-49 (2014).</li><li>Marx, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+implantation+feasibility+in+rhesus+macaque+monkey:+anatomic+and+radiologic+results.">Cochlear implantation feasibility in rhesus macaque monkey: anatomic and radiologic results.</a> Otol Neurotol. 34 (7), 76-81 (2013).</li><li>Honeder, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+sustained+release+dexamethasone+hydrogels+in+hearing+preservation+cochlear+implantation.">Effects of sustained release dexamethasone hydrogels in hearing preservation cochlear implantation.</a> Hear Res. , (2016).</li><li>Ris, L., Capron, B., de Waele, C., Vidal, P. P., Godaux, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dissociations+between+behavioural+recovery+and+restoration+of+vestibular+activity+in+the+unilabyrinthectomized+guinea-pig.">Dissociations between behavioural recovery and restoration of vestibular activity in the unilabyrinthectomized guinea-pig.</a> J Physiol. 500, 509-522 (1997).</li><li>Jin, Z., Mannstrom, P., Skjonsberg, A., Jarlebark, L., Ulfendahl, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Auditory+function+and+cochlear+morphology+in+the+German+waltzing+guinea+pig.">Auditory function and cochlear morphology in the German waltzing guinea pig.</a> Hear Res. 219 (1-2), 74-84 (2006).</li><li>Honeder, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+intraoperatively+applied+glucocorticoid+hydrogels+on+residual+hearing+and+foreign+body+reaction+in+a+guinea+pig+model+of+cochlear+implantation.">Effects of intraoperatively applied glucocorticoid hydrogels on residual hearing and foreign body reaction in a guinea pig model of cochlear implantation.</a> Acta Otolaryngol. 135 (4), 313-319 (2015).</li><li>Moteki, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+results+of+hearing+preservation+cochlear+implant+surgery+in+patients+with+residual+low+frequency+hearing.">Long-term results of hearing preservation cochlear implant surgery in patients with residual low frequency hearing.</a> Acta Otolaryngol. 137 (5), 516-521 (2017).</li><li>Eshraghi, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical,+surgical,+and+electrical+factors+impacting+residual+hearing+in+cochlear+implant+surgery.">Clinical, surgical, and electrical factors impacting residual hearing in cochlear implant surgery.</a> Acta Otolaryngol. 137 (4), 384-388 (2017).</li><li>Reiss, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphological+correlates+of+hearing+loss+after+cochlear+implantation+and+electro-acoustic+stimulation+in+a+hearing-impaired+Guinea+pig+model.">Morphological correlates of hearing loss after cochlear implantation and electro-acoustic stimulation in a hearing-impaired Guinea pig model.</a> Hear Res. 327, 163-174 (2015).</li><li>Chang, M. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Effect+of+Systemic+Steroid+on+Hearing+Preservation+After+Cochlear+Implantation+via+Round+Window+Approach:+A+Guinea+Pig+Model.">The Effect of Systemic Steroid on Hearing Preservation After Cochlear Implantation via Round Window Approach: A Guinea Pig Model.</a> Otol Neurotol. 38 (7), 962-969 (2017).</li><li>Eshraghi, A. A., Yang, N. W., Balkany, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+study+of+cochlear+damage+with+three+perimodiolar+electrode+designs.">Comparative study of cochlear damage with three perimodiolar electrode designs.</a> Laryngoscope. 113 (3), 415-419 (2003).</li></ol>

クリストフ ・ Arnoldner、クレメンス Honeder MED エル オーストリアからの研究助成金の保有者。この文書で用いられる電極は、MED エル オーストリアによって提供されました。残りの著者が明らかに何もありません。

提案するプロトコルは、モルモット モデルで人工内耳を実行する方法について説明します。このプロトコルは、きこえと CI 電極に異物反応への影響の異なる介入を評価する使用することができます。高い再現性と実験の精度を達成するためにいくつか講じる必要があります。
すべてのモルモットの聴覚閾値を基準は、聴性脳幹反応などを用いた術前測定べきであります。市販のモルモットのいくつかは、関連する聴力損失を展示し、したがって、実験的コホートには含まれないする必要があります。手術と、手術や人工内耳の前に数日前にすぐにこの評価を実行できるプロトコルの長さに応じて麻酔から回復する動物のための十分な時間を与えます。
自発的に呼吸で全身麻酔下で手術を行うとき動物、スピードが重要です。したがって、麻酔のプロトコルの選択は、手術前に綿密な準備が不可欠です。ケタミン、メデトミジン、ミダゾラム、十分な麻酔と鎮痛、同時に動物が自発的に呼吸を続けながら局所麻酔結果との組み合わせでフェンタニルの使用。ケタミン ・ キシラジンの頻繁に記述されている使用と比較して、この療法の良い鎮痛および減らされた周術期合併症と死亡率の結果します。すべての楽器と薬 (麻酔薬のブースターを含む) を持っていることが重要だ寝る動物を置く前にすぐに利用できます。
(腹臥位から脇位置とバックに変更する) 手術中の動物の位置の変更、コンテンツの肺を胃の誤嚥のリスクがあります。このため、プロトコルには吸引から動物を保護し、周術期死亡率を減少する高速かつ簡単な方法は、胃チューブのアプリケーションも含まれています。
滅菌されていない別の個人によって行われる必要があります再配置や再配置、地域中に無菌性を維持するために触れる必要滅菌ドレープ、手袋でカバーされる動物はどこそれ以降は変更する必要があります。
O2-も手術中に最も重要なは、飽和度をモニタリングします。岬の可視化に必要な頭の位置決めと、丸い窓のニッチは、早期に十分な識別されたときに簡単に処理することができます気道の閉塞を引き起こす可能性が。
通常、動物は手術中に大量の体液 (血液など細胞外液、尿) を失います。したがって、本稿で紹介した流体置換プロトコルは動物の循環動態を安定させるために十分な忍容性メソッドを表します、麻酔からの高速回復をサポートしています。
Audiometrical 測定を実行する場合は、間違いを避けるため、するためには、各手術の間に特定の電極にコネクタの同じピンを接続することをお勧めします。
このメソッドの 1 つの制限は、術後聴力閾値シフトは、多くの場合は外科医の認識とよく相関がない比較的高い可変性です。にもかかわらず、成果できこえと人間の CI 受信者の状況のようなわかっていないのです完全に変数の結果の原因は何です。16,17,18一般、変動減少時間と外科医の経験とします。ゆっくり挿入速度によって達成することができる電極を挿入するときに過度な力を避けるために重要です。CI 電極の慎重な挿入が非常に限られた聴力損失、提案するプロトコル説明電極より高い発生より予測可能な難聴の繰り返された挿入だけで可能性があるため。この難聴は 16 と 32 の kHz 間の高周波領域において最も顕著です。Intracochlear 外傷挿入深さに依存し、蝸牛とアプローチ (丸窓挿入対 cochleostomy) の形態が考慮する必要があります。通常人間の聴覚保全内耳で行われ、丸い窓膜を介して CI 電極の挿入は、モルモットのモデルで使用されています。19丸い窓膜がモルモットと不利な挿入角度で丸い窓の膜により電極挿入で隠れているためにより予測可能な聴覚のしきい値シフトにつながる、cochleostomy を掘削します。このプロトコルは、植え付けられるべき耳の減らされた騒音になるので鼓室胞の開口部のドリルではなくメスの使用を提案します。電極、構造への外傷と同様に有毛細胞とらせん神経節細胞の量に異物反応を対処内側の耳の組織学的評価のようにらせん状の骨板と電極移行レートを実行する必要があります。すべてのこれらの結果は測定機能の結果のよりよい理解を促進するよう、耳を注入しました。12,20

世界中で以上 5 億人は聴力損失に苦しみます。1聴覚障害者は、不況、低い自尊心、すべて低い生活の質につながる自己価値の低い感情の高い率にリンクされています。2補聴器は、中等度の難聴の場合感覚機能を復元する適切な方法は中、重度の難聴を患っている患者のための最も効果的な治療法は、人工内耳 (CI) です。音声知覚に関して優れた成果による人工内耳の立候補条件今低周波領域での実質的な残存を持っている<s>s</s>患者を含めるも補聴器の恩恵はありません。3これらの患者にすることができますので使用注入耳エレクトリックとアコースティックの刺激を組み合わせて、聴力保護 CI の外科医のための主要な問題となっています。、人工内耳の中に電極配列は、蝸牛、それは電気的、聴覚神経を刺激するのスカラー座索に挿入されます。4電極挿入トラウマきこえにリスクをもたらすため、電極インピー ダンスとインプラントのバッテリ消費を増加させる線維化を誘導します。このように、難聴と電極の挿入による線維症を減らすことができる医薬品の介入を研究するモデルが不可欠です。
モルモットは、簡単のため、cis 諸国の適切かつ便利な動物モデル、スナネズミ、ラットやマウスと比較して内耳への再現性のある外科アクセス。5,6,7,8さらに、この種の聴力の範囲は比較的人間の聴覚に匹敵します。9より大きい種は猫が好きか、サル、CIs に関連する特定の研究の質問のアドレスに使用されている、ほとんどの CI 研究倫理や財務の問題のための合理的な選択を表さない。10,11
モルモットは、要約すると、内耳の設定における薬理学的介入の効果を評価するための信頼性が高く、比較的コスト パフォーマンスに優れたモデルです。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1104px;" width="1103">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;width:308px;">Scale</td>
			<td style="width:155px;"></td>
			<td style="width:123px;"></td>
			<td style="width:519px;"></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Oxygen insufflator</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Shaver</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Sucker</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Povidone Iodine Solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Alcohol</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Laryngoscope</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Stomach tube&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Fr 06, Lg 80 cm</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Surgical binocular microscope</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Drill</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">0.5 mm diamond burr</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">1 mm diamond burr</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Heating plate</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Pulse oximeter</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Tissue glue</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Dental cement powder</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Fluid for dental cement powder</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Bipolar cautery</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Gauze compress</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Cotton bud</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Cement mixing bowl</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Teflon insulated gold wire</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>99.99 % gold, diameter: 0.125 mm, isolation: 0,016 mm, PTFE (Polytetrafluoroethylen)&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Scalpel with blade No. 10</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Scalpel with blade No. 15</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Scissors</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Mosquito forceps</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Dressing forceps</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Tissue forceps</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Delicate dressing forceps 2X</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Micro forceps</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Screw driver</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Stainless steel screws</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>diameter: 1 mm</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Retractor</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Needle probe</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Spatula</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Needle holder</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">5-0 absorbable sutures&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Needle 23G</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Needle 27G</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Medetomidine 1 mg/mL</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>0.36 mg/kg</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Midazolam g mg/mL</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1.2 mg/kg</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Fentanyl 50 &#181;g/mL</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>0.036 mg/kg</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Ketamine 100 mg/mL</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>12 mg/kg</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Lidocaine (local anesthesia)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>4 mg/kg</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Atipamezole 5 mg/mL</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1 mg/kg</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Flumazenil 0.1 mg/mL</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>0.1 mg/kg</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Enrofloxacin 100 mg/mL</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>7 mg/kg</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Buprenorphin&#160; 0.3 mg/mL</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>0.05 mg/kg&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Physiological Saline (at body temperature)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>12.5 mL/Kg (pre-surgery)</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Glucose 5 % (preoperative, at body temperature)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>12.5 mL/Kg</td>
		</tr>
		<tr height="36">
			<td height="36" style="height:36px;">Physiological Saline (at body temperature)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>25 mL/kg (post-surgery)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cochlear implantation in the guinea pig

内耳は、重度の難聴者の聴力を復元することができます非常に効率的なデバイスです。音声認識結果のため立候補条件は、最後の数十年にわたって展開されています。これには、内耳の中に聴力保護の重要な問題は、同じ耳の電気および音響の刺激からの利益に実質的なきこえ患者が含まれます。電極のインピー ダンスとエネルギー消費量の関連する問題は、この領域における作業進行は聴覚完全埋込型の人工の道を開くことができるもう一つの主要な研究フィールドです。体系的な方法でこれらの問題に対処するため、適切な動物モデルが不可欠です。したがって、このプロトコルの目的は、様々 な研究の質問に対処するため, 人工内耳の移植の動物モデルを提供します。人間の聴力範囲に比較的似ている聴覚範囲と同様に、内耳手術簡単にアクセスできる大きな鼓室胞によるモルモット聴覚研究は一般的に使用される種。モルモットの内耳が着けたアプローチを介して実行されます。Bullostomy から、cochleostomy に穴を開けて、スカラー座索に人工内耳の電極が挿入されます。この電極は、電気刺激、電極インピー ダンスによる聴覚神経の複合活動電位の測定に使用できます。これらのアプリケーションだけでなく人工内耳の電極も使えます薬物送達デバイスとして細胞への薬剤の局所配信や、内耳の流体をする場合。

通常高速およびモルモット モデルで合併症なく手術の傷の治癒し、術後の電気生理学的測定のための連絡先のまま動物 (図 3) の頂点に簡単にアクセスできます。図 4は、代表的な動物の術前・術後クリック キャップ測定を示しています。電極挿入の結果 16 デシベル (dB) (図 4 aおよび4 b) のしきい値シフト。図 4Cは、同じ動物の術前・術後の特定周波数キャップしきい値を示しています。8 kHz から高周波領域で約 25 ~ 30 dB のしきい値シフトが得られるに対し、キャップしきい値は低頻度でほとんど変更されません。
電極挿入は、内耳への外傷を引き起こす可能性が。急性外科外傷に加えて電極に異物反応では、人工内耳の性能が低下します。図 5は、CI 挿入と異なる組織手順後モルモットの蝸牛を示しています。図 5Aスカラー ティンパニーで収まりますが、電極残されたその場で図 5Bの電極は、組織学的精密検査の前に削除されたに対し。図 5A異物反応がほとんどないが表示されますが、図 5B座鼓の大面積で線維組織が表示されます。図 5Cは、CI 電極挿入もこの動物のらせん神経節細胞損失が発生による骨スパイラル ラミナの破壊を示しています。このような骨折をいくつかの動物で予想されるしきい値シフト以上説明できます。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig1.jpg"> 図 1: ラウンド金線原とウィンドウ領域。アスタリスク マーク丸い窓、x 蝸牛の基底にします。金ワイヤは、矢印で示されます。スケール バー 2 mm.<a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig2.jpg"> 図 2: モルモット内耳電極。4 mm で 2 つの接触電極が挿入されます。電極の直径をテーパーから 0.5 mm. に先端に 0.3 mm 線を示す 0.5 mm<a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するにはここをクリックしてください。</a> 。
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig3.jpg"> 図 3: モルモット蝸牛移植後約 2 週間です。CI 電極はその場で電気生理学的測定のため連絡先は動物の頂点に簡単にアクセスできます。<a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig4.jpg"> 図 4: 代表的なキャップのしきい値 (A)代表的な動物の術前クリック上限しきい値。(B)術後は 16 dB のしきい値シフトを示す同じ動物の上限しきい値をクリックします。行は、10 dB を示しています。(C)術前・術後特定周波数のキャップしきい値低周波、ほとんど変更された 25-30 dB のしきい値シフトは 8 に 32 kHz の周波数範囲で観察できます。<a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig5.jpg"> 図 5: CI 電極挿入の潜在的なローカルの結果。(A) CI 電極原 (#) のみ最小限の異物反応とモルモット蝸牛の基底回転の顕微鏡写真。組織学的解析を行った砥石を使用し、樹脂埋め込み、ギムザ染色後研磨技術。15縮尺記号 100 μ CI 電極を除去した後、運河を残し目に見える組織の応答蝸牛の基底の上の鼓膜のダクト(B)顕微鏡ターン (#)。骨折骨スパイラル ラミナ (太字矢印) と隣接する組織の応答と蝸牛の縮尺記号 100 μ m (C)低い基底のターン: (i) ローゼン タールの運河 (ii) 線維症や前庭 (●) と (osteoneogenesis の螺旋神経節細胞 (矢印) の損失iii) (*) コルチ器官の損失。掘削-穴挿入の CI (○) と隣接する osteoneogenesis。縮尺記号 500 μ m の範囲の数字 5 b と 5 C が (青) ヘマトキシリンとエオシン ステンド グラス (赤)。<a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig5large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

Watch this Scientific Journal Video about Cochlear Implantation in the Guinea Pig at JoVE.com

Cochlear Implantation in the Guinea Pig

このプロトコルの目的は、研究の質問の多数に対処するため, 人工内耳の移植の動物モデルを提供することです。潜在的なアプリケーションには、医薬品の介入または聴覚閾値や電極のインピー ダンスに対する有利な効果のための電気刺激の評価が含まれます。

モルモットの内耳

Cochlear implants are highly efficient devices that can restore hearing in subjects with profound hearing loss. Due to improved speech perception ...

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Medicine

11.1K ビュー.  Medical University of Vienna. このプロトコルの目的は、研究の質問の多数に対処するため, 人工内耳の移植の動物モデルを提供することです。潜在的なアプリケーションには、医薬品の介入または聴覚閾値や電極のインピー ダンスに対する有利な効果のための電気刺激の評価が含まれます。

ビデオ: Cochlear Implantation in the Guinea Pig

The Polyvinyl Alcohol Sponge Model Implantation

Wound healing is a complicated, multistep process involving many cell types, growth factors and compounds1-3. Because of this complexity, wound healing studies are most comprehensive when carried out in vivo. There are many in vivo models available to study acute wound healing, including incisional, excisional, dead space, and burns. Dead space models are artificial, porous implants which are used to study tissue formation and the effects of substances on the wound. Some of the commonly used dead space models include polyvinyl alcohol (PVA) sponges, steel wire mesh cylinders, expanded polytetrafluoroethylene (ePTFE) material, and the Cellstick1,2.
Each dead space model has its own limitations based on its material's composition and implantation methods. The steel wire mesh cylinder model has a lag phase of infiltration after implantation and requires a long amount of time before granulation tissue formation begins1. Later stages of wound healing are best analyzed using the ePTFE model1,4. The Cellstick is a cellulose sponge inside a silicon tube model which is typically used for studying human surgery wounds and wound fluid2. The PVA sponge is limited to acute studies because with time it begins to provoke a foreign body response which causes a giant cell reaction in the animal5. Unlike other materials, PVA sponges are easy to insert and remove, made of inert and non-biodegradable materials and yet are soft enough to be sectioned for histological analysis2,5.
In wound healing the PVA sponge is very useful for analyzing granulation tissue formation, collagen deposition, wound fluid composition, and the effects of substances on the healing process1,2,5. In addition to its use in studying a wide array of attributes of wound healing, the PVA sponge has also been used in many other types of studies. It has been utilized to investigate tumor angiogenesis, drug delivery and stem cell survival and engraftment1,2,6,7. With its great alterability, prior extensive use, and reproducible results, the PVA sponge is an ideal model for many studies1,2.
Here, we will describe the preparation, implantation and retrieval of PVA sponge disks (Figure 1) in a mouse model of wound healing.

A useful tool to analyze the effects of drugs, growth factors, and/or manipulated cells in an animal model of wound repair is described. This technique utilizes the properties of a polyvinyl alcohol (PVA) sponge to deliver and contain the desired treatment and also provide a platform to be excised and analyzed.

ポリビニルアルコールスポンジモデル注入

Wound healing is a complicated, multistep process involving many cell types, growth factors and compounds1-3. Because of this complexity, wound healing ...

医学

Implantation of the Syncardia Total Artificial Heart

With advances in technology, the use of mechanical circulatory support devices for end stage heart failure has rapidly increased. The vast majority of such patients are generally well served by left ventricular assist devices (LVADs). However, a subset of patients with late stage biventricular failure or other significant anatomic lesions are not adequately treated by isolated left ventricular mechanical support. Examples of concomitant cardiac pathology that may be better treated by resection and TAH replacement includes: post infarction ventricular septal defect,&#160;aortic root aneurysm / dissection, cardiac allograft failure, massive ventricular thrombus, refractory malignant arrhythmias (independent of filling pressures), hypertrophic / restrictive cardiomyopathy, and complex congenital heart disease. Patients often present with cardiogenic shock and multi system organ dysfunction. Excision of both ventricles and orthotopic replacement with a total artificial heart (TAH) is an effective, albeit extreme, therapy for rapid restoration of blood flow and resuscitation. Perioperative management is focused on end organ resuscitation and physical rehabilitation. In addition to the usual concerns of infection, bleeding, and thromboembolism common to all mechanically supported patients, TAH patients face unique risks with regard to renal failure and anemia. Supplementation of the abrupt decrease in brain natriuretic peptide following ventriculectomy appears to have protective renal effects. Anemia following TAH implantation can be profound and persistent. Nonetheless, the anemia is generally well tolerated and transfusion are limited to avoid HLA sensitization. Until recently, TAH patients were confined as inpatients tethered to a 500 lb pneumatic console driver. Recent introduction of a backpack sized portable driver (currently under clinical trial) has enabled patients to be discharged home and even return to work. Despite the profound presentation of these sick patients, there is a 79-87% success in bridge to transplantation.

The purpose of this manuscript is to briefly review indications, management, and outcomes for the total artificial heart. Video operative techniques for device implantation are presented.

Syncardia完全人工心臓の植え込み

With advances in technology, the use of mechanical circulatory support devices for end stage heart failure has rapidly increased. The vast majority of ...

Implantation of Total Artificial Heart in Congenital Heart Disease

In patients with end-stage heart failure (HF), a total artificial heart (TAH) may be implanted as a bridge to cardiac transplant. However, in congenital heart disease (CHD), the malformed heart presents a challenge to TAH implantation. 
In the case presented here, a 17 year-old patient with congenital transposition of the great arteries (CCTGA) experienced progressively worsening HF due to his congenital condition. He was hospitalized multiple times and received an implantable cardioverter defibrillator (ICD). However, his condition soon deteriorated to end-stage HF with multisystem organ failure. 
Due to the patient's grave clinical condition and the presence of complex cardiac lesions, the decision was made to proceed with a TAH. The abnormal arrangement of the patient's ventricles and great arteries required modifications to the TAH during implantation.
With the TAH in place, the patient was able to return home and regain strength and physical well-being while awaiting a donor heart. He was successfully bridged to heart transplantation 5 months after receiving the device. This report highlights the TAH is feasible even in patients with structurally abnormal hearts, with technical modification.

This is a case report of a patient with congenitally corrected transposition of the great arteries (CCTGA) who received a total artificial heart (TAH) as a bridge to heart transplant. The TAH was successfully implanted with modifications to accommodate the patient's congenitally malformed heart.

先天性心疾患における完全人工心臓の移植

In patients with end-stage heart failure (HF), a total artificial heart (TAH) may be implanted as a bridge to cardiac transplant. However, in congenital ...

Techniques for Processing Eyes Implanted with a Retinal Prosthesis for Localized Histopathological Analysis: Part 2 Epiretinal Implants with Retinal Tacks

Retinal prostheses for the treatment of certain forms of blindness are gaining traction in clinical trials around the world with commercial devices currently entering the market. In order to evaluate the safety of these devices, in preclinical studies, reliable techniques are needed. However, the hard metal components utilised in some retinal implants are not compatible with traditional histological processes, particularly in consideration for the delicate nature of the surrounding tissue. Here we describe techniques for assessing the health of the eye directly adjacent to a retinal implant secured epiretinally with a metal tack.
Retinal prostheses feature electrode arrays in contact with eye tissue. The most commonly used location for implantation is the epiretinal location (posterior chamber of the eye), where the implant is secured to the retina with a metal tack that penetrates all the layers of the eye. Previous methods have not been able to assess the proximal ocular tissue with the tack in situ, due to the inability of traditional histological techniques to cut metal objects. Consequently, it has been difficult to assess localized damage, if present, caused by tack insertion.
Therefore, we developed a technique for visualizing the tissue around a retinal tack and implant. We have modified an established technique, used for processing and visualizing hard bony tissue around a cochlear implant, for the soft delicate tissues of the eye. We orientated and embedded the fixed eye tissue, including the implant and retinal tack, in epoxy resin, to stabilise and protect the structure of the sample. Embedded samples were then ground, polished, stained, and imaged under various magnifications at incremental depths through the sample. This technique allowed the reliable assessment of eye tissue integrity and cytoarchitecture adjacent to the metal tack.

Here we describe histological techniques for visualising ocular tissue directly adjacent to a metal epiretinal tack and retinal prosthesis.

網膜タックと2部網膜上インプラント：ローカライズされた病理組織学的分析のための人工網膜を移植した処理の目のための技術

Retinal prostheses for the treatment of certain forms of blindness are gaining traction in clinical trials around the world with commercial devices ...

Primary Outcome Assessment in a Pig Model of Acute Myocardial Infarction

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are therefore required to confine cardiac damage, promote survival and reduce the disease burden of heart failure. Large animal experiments are an essential part in the translational process from experimental to clinical therapies. To optimize clinical translation, robust and representative outcome measures are mandatory. The present manuscript aims to address this need by describing the assessment of three clinically relevant outcome modalities in a pig acute myocardial infarction (AMI) model: infarct size in relation to area at risk (IS/AAR) staining, 3-dimensional transesophageal echocardiography (TEE) and admittance-based pressure-volume (PV) loops. Infarct size is the main determinant driving the transition from AMI to heart failure and can be quantified by IS/AAR staining. Echocardiography is a reliable and robust tool in the assessment of global and regional cardiac function in clinical cardiology. Here, a method for three-dimensional transesophageal echocardiography (3D-TEE) in pigs is provided. Extensive insight into cardiac performance can be obtained by admittance-based pressure-volume (PV) loops, including intrinsic parameters of myocardial function that are pre- and afterload independent. Combined with a clinically feasible experimental study protocol, these outcome measures provide researchers with essential information to determine whether novel therapeutic strategies could yield promising targets for future testing in clinical studies.

Reliable and accurate outcome assessment is the key for translation of preclinical therapies into clinical treatment. The current paper describes how to assess three clinically relevant primary outcome parameters of cardiac performance and damage in a pig acute myocardial infarction model.

急性心筋梗塞の豚モデルにおける主要アウトカム評価

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are ...

Neonatal Murine Cochlear Explant Technique as an In Vitro Screening Tool in Hearing Research

While there have been remarkable advances in hearing research over the past few decades, there is still no cure for Sensorineural Hearing Loss (SNHL), a condition that typically involves damage to or loss of the delicate mechanosensory structures of the inner ear. Sophisticated in vitro and ex vivo assays have emerged in recent years, enabling the screening of an increasing number of potentially therapeutic compounds while minimizing resources and accelerating efforts to develop cures for SNHL. Though homogenous cultures of certain cell types continue to play an important role in current research, many scientists now rely on more complex organotypic cultures of murine inner ears, also known as cochlear explants. The preservation of organized cellular structures within the inner ear facilitates the in situ evaluation of various components of the cochlear infrastructure, including inner and outer hair cells, spiral ganglion neurons, neurites, and supporting cells. Here we present the preparation, culture, treatment, and immunostaining of neonatal murine cochlear explants. The careful preparation of these explants facilitates the identification of mechanisms that contribute to SNHL and constitutes a valuable tool for the hearing research community.

Neonatal Murine Cochlear Explant Technique as an In Vitro Screening Tool in Hearing Research

The goal of this protocol is to demonstrate the preparation, culture, treatment, and immunostaining of neonatal murine cochlear explants. The technique can be utilized as an in vitro screening tool in hearing research.

新生児マウス蝸牛移植法<em&gt;インビトロ</em&gt;聴覚研究のスクリーニングツール

While there have been remarkable advances in hearing research over the past few decades, there is still no cure for Sensorineural Hearing Loss (SNHL), a ...

Implantation of hiPSC-derived Cardiac-muscle Patches after Myocardial Injury in a Guinea Pig Model

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss of relevant amounts of heart muscle mass can lead to the heart failure. Besides heart transplantation, there is no curative treatment option for the end-stage heart failure. In times of organ donor shortage, organ independent treatment modalities are needed. Left-ventricular assist devices are a promising therapy option, however, especially as destination therapy, limited by its side-effects like stroke, infections and bleedings. In recent years, several cardiac repair strategies including stem cell injection, cardiac progenitors or myocardial tissue engineering have been investigated. Recent improvements in cell biology allow for the differentiation of large amounts of cardiomyocytes derived from human induced pluripotent stem cells (iPSC). One of the cardiac repair strategies currently under evaluation is to transplant artificial heart tissue. Engineered heart tissue (EHT) is a three-dimensional in vitro created cardiomyocyte network, with functional properties of native heart tissue. We have created EHT-patches from hiPSC derived cardiomyocytes. Here we present a protocol for the induction of left ventricular myocardial cryoinjury in a guinea pig, followed by implantation of hiPSC derived EHT on the left ventricular wall.

Here we present a protocol for the induction of left ventricular cryoinjury followed by the implantation of a cardiac muscle patch, derived from human iPS-cell cardiomyocytes in a guinea pig model.

モルモット モデルにおける心筋傷害の後 - 心筋パッチのこと由来の注入

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss ...

Performing Intracochlear Electrocochleography During Cochlear Implantation

Electrocochleography (ECochG) measures inner ear potentials generated in response to acoustic stimulation of the ear. These potentials reflect the residual function of the cochlea. In cochlear implant candidates with residual hearing, the implant electrode can directly measure ECochG responses during the implantation process. Various authors have described the ability to monitor the inner ear function by continuous ECochG measurements during the surgery. The measurement of ECochG signals during surgery is not trivial. There are no interpretable signals in up to 20% of cases. For a successful recording, a standardized procedure is recommended to achieve the highest measurement reliability and avoid possible pitfalls. Therefore, seamless collaboration between the CI surgeon and CI technician is key. This video consists of an overview of the system setup and a stepwise procedure of performing intracochlear ECochG measurements during CI surgery. It shows the surgeon's and the CI technician's roles in the process, and how a smooth collaboration between the two is made possible.

Electrocochleography (ECochG) measures inner ear potentials generated in response to acoustic stimulation. In cochlear implant (CI) candidates, such inner ear potentials can be measured directly with the implant electrodes. In this video, we systematically explain how to perform ECochG recordings during CI surgery.

蝸牛移植中の蝸牛内電気蝸牛造影の実施

Electrocochleography (ECochG) measures inner ear potentials generated in response to acoustic stimulation of the ear. These potentials reflect the ...

Robotic Cochlear Implantation for Direct Cochlear Access

Robot-assisted systems offer great potential for gentler and more precise cochlear implantation. In this article, we provide a comprehensive overview of the clinical workflow for robotic cochlear implantation using a robotic system specifically developed for a minimally invasive, direct cochlear access. The clinical workflow involves experts from various disciplines and requires training to ensure a smooth and safe procedure. The protocol briefly summarizes the history of robotic cochlear implantation. The clinical sequence is explained in detail, beginning with the assessment of patient eligibility and covering surgical preparation, preoperative planning with the special planning software, drilling of the middle ear access, intraoperative imaging to confirm the trajectory, milling of the inner ear access, insertion of the electrode array, and implant management. The steps that require special attention are discussed. As an example, the postoperative outcome of robotic cochlear implantation in a patient with advanced otosclerosis is presented. Finally, the procedure is discussed in the context of the authors' experience.

Robotic cochlear implantation is a procedure for minimally invasive inner ear access. Compared to conventional surgery, robotic cochlear implantation involves additional steps that need to be carried out in the operating room. In this article we give a description of the procedure and highlight the important aspects of robotic cochlear implantation.

直接蝸牛アクセスのためのロボット人工内耳

Robot-assisted systems offer great potential for gentler and more precise cochlear implantation. In this article, we provide a comprehensive overview of ...

The Miniature Pig: A Large Animal Model for Cochlear Implant Research

Cochlear implants (CI) are the most effective method to treat people with severe-to-profound sensorineural hearing loss. Although CIs are used worldwide, no standard model exists for investigating the electrophysiology and histopathology in patients or animal models with a CI or for evaluating new models of electrode arrays. A large animal model with cochlea characteristics similar to those of humans may provide a research and evaluation platform for advanced and modified arrays before their use in humans. 
To this end, we established standard CI methods with Bama mini-pigs, whose inner ear anatomy is highly similar to that of humans. Arrays designed for human use were implanted into the mini pig cochlea through a round window membrane, and a surgical approach followed that was similar to that used for human CI recipients. Array insertion was followed by evoked compound action potential (ECAP) measurements to evaluate the function of the auditory nerve. This study describes the preparation of the animal, surgical steps, array insertion, and intraoperative electrophysiological measurements. 
The results indicated that the same CI used for humans could be easily implanted in mini-pigs via a standardized surgical approach and yielded similar electrophysiological outcomes as measured in human CI recipients. Mini-pigs could be a valuable animal model to provide initial evidence of the safety and potential performance of novel electrode arrays and surgical approaches before applying them to human beings.

Miniature pigs (mini-pigs) are an ideal large animal model for research into cochlear implants. Cochlear implantation surgery in mini-pigs can be utilized to provide initial evidence of the safety and potential performance of novel electrode arrays and surgical approaches in a living system similar to human beings.

ミニブタ:人工内耳研究のための大型動物モデル

Cochlear implants (CI) are the most effective method to treat people with severe-to-profound sensorineural hearing loss. Although CIs are used worldwide, ...

モルモットの内耳

要約

さらに動画を探す

この動画の章

ポリビニルアルコールスポンジモデル注入

Syncardia完全人工心臓の植え込み

先天性心疾患における完全人工心臓の移植

網膜タックと2部網膜上インプラント：ローカライズされた病理組織学的分析のための人工網膜を移植した処理の目のための技術

急性心筋梗塞の豚モデルにおける主要アウトカム評価

新生児マウス蝸牛移植法

モルモットモデルにおける心筋傷害の後 - 心筋パッチのこと由来の注入

蝸牛移植中の蝸牛内電気蝸牛造影の実施

直接蝸牛アクセスのためのロボット人工内耳

ミニブタ:人工内耳研究のための大型動物モデル

モルモットの内耳

要約

さらに動画を探す

この動画の章

ポリビニルアルコールスポンジモデル注入

Syncardia完全人工心臓の植え込み

先天性心疾患における完全人工心臓の移植

網膜タックと2部網膜上インプラント：ローカライズされた病理組織学的分析のための人工網膜を移植した処理の目のための技術

急性心筋梗塞の豚モデルにおける主要アウトカム評価

新生児マウス蝸牛移植法

モルモット モデルにおける心筋傷害の後 - 心筋パッチのこと由来の注入

蝸牛移植中の蝸牛内電気蝸牛造影の実施

直接蝸牛アクセスのためのロボット人工内耳

ミニブタ:人工内耳研究のための大型動物モデル

モルモットモデルにおける心筋傷害の後 - 心筋パッチのこと由来の注入