The authors are solely responsible for the design and conduct of the presented study. Dr. Marbacher was supported by a grant from the Swiss National Science Foundation (PBSKP3-123454). The authors declare no conflict of interests. 
Author contributions to the study and manuscript preparation include the following. Conception and design: SM, JM, JF. Acquisition of data: SM, EA, JF. Analysis and interpretation of data: SM, JF, JM. Drafting the article: SM, JF, JM. Critically revising the article: JH, MN. Statistical analysis: SM, JF. Study supervision: JF, JH, MN.

Not: Erkek Wistar sıçanları (vücut ağırlığı ortalama 356 ± 44 g, 10-14 haftalık), 22-24 ° C ve on iki saat ışık / topak içeren bir diyete serbestçe erişimine, normal musluk suyu ile karanlık çevriminde hayvan odasında yuvalandırılmış ve ayrıca kurumsal kurallarına uygun olarak insancıl bakıma aldı. Deneyler yorumlanan ve Helsinki, Finlandiya Üniversitesi Hayvan Refahı Komitesi tarafından kabul edildi. Not: medetomidin hidroklorür (0.5 mg / kg) ve ketamin hidroklorür intraperitoneal enjeksiyonu (50 mg / kg) ağırlık uyarlanmış deri altına enjeksiyon ile sıçan anestezisi: Aşağıdaki tanıtımda cerrahi yöntemi aşağıdaki gibidir. Bir ayak tutam refleksi eksikliği için test sıçan tamamen uyuşturulduktan doğrulamak için. Örneğin, klorheksidin için, ya alkol ya da su, göz merhemi sürün cerrahi siteyi klibi, ve uygun bir dezenfektan ile cildi temizleyin. Koruyucu giysiler, bir baş örtüsü ve yüzünde koymak, ellerinizi yıkayınmaske ve steril cerrahi eldiven. Aseptik cerrahi koşullar muhafaza cerrahi bir asistan yardımı ve (Tablo 1 listelendiği gibi) cerrahi özelliklerini belgelemek. Zararlı uyarılmanın (ayak tutam testi) solunum hızı, kalp hızı ve reaksiyonu takiben cerrahi sırasında anestezi her 15 dk derinliğini izleyin. Buprenorfinin (0.03 mg / kg) deri altına enjeksiyon sonrası analjezi için verilir ve her 12 saatte gerektiğinde tekrarlanmıştır. 1. Donanım, Sarf ve Konumlandırma <ol><li> , Sessiz küçük hayvan ameliyathane tutun aseptik ve 23 +/- 3 ° C&#39;de oda sıcaklığını korumak. Aşağıdaki minimal teçhizatı gerekli deneysel anevrizma ameliyatı gerçekleştirmek için: <ol><li> Ideal bir asistan kapsam ve dijital mikroskop kamera ile donatılmış bir masa üstü cerrahi mikroskop kullanın. Laboratuar tezgah korumak için gözeneksiz yeniden çalıştırma yüzeyini ve temizlenebilir enstrüman yüzeyini kullanın. </li><li&gt; Bu cilt dezenfeksiyon, serum fizyolojik, küçük ve büyük gazlı bezlerden ve 9-0 mikro-sütür, 5-0 emilmeyen ve 3-0 emilebilir sütür dahil dikiş malzemesi olarak sarf hazırlayın. </li><li> Cerrahi makas, doku forseps, yumuşak doku yayıcı veya kendini tutan retraktörü ve iki Sivrisinek cerrahi sıkıştırmalar: Aşağıdaki standart cerrahi aletler kullanın. </li><li> Kavisli mikroiğne tutucu, kavisli bir ve iki düz microforceps ve düz veya kavisli microscissor: Bir içermektedir temel mikrocerrahi enstrüman seti kullanın. </li><li> , Ameliyat sırasında, yapışkan olmayan ve temiz aleti tutmak için steril tuzlu su ile dolu bir böbrek tabak mikrocerrahi aletleri tutun. Böbrek çanak kauçuk paspas veya mikro-araçların ipuçları zarar görmesini önlemek için cerrahi eldiven ile doldurulur. Tüm malzemeleri steril ve prosedür laboratuvar hayvanları üzerinde sağkalım cerrahi için geçerli önerilere göre aseptik tekniği ile yapılır emin olun <sup&gt; 8-10. </li><li> Buna ek olarak, damar klip aplikatör üç atravmatik geçici vasküler kelepçe kullanır. Kullanılan kelepçeler sıçan aort çok ince duvara yaralanmasını önlemek için düşük kapanış güce sahip olması önemlidir. Ayrıca yarım milimetre çaplı barlar, küçük renkli lastik pedi, ve kısa bir künt bir iğne ile bir cetvel hazırlar. </li><li> , Yatar pozisyonda sıçan yerleştirin hem ön hareketsiz ve deri streç veya sıkıştırma uygulamadan cerrahi bant ile arka pençeleri ve arka kereste bölgenin altında koyarak kalın bir işaretleyici veya koter kalem ile geri eğmek. Bu mikrocerrahi anastomoz kolaylaştırır infrarenal aorta retroperitoneal pozlama ve erişimi geliştirmek için mümkün olduğu kadar lomber omurga lordozu elde etmek önemlidir. Bu konumlandırma abdominal aort anevrizması oluşturulması için önerilen ancak toraks greft için gerekli değildir. </li></ol></li></ol> 2. Greft Hasat <ol><li> Under genel anestezi, göğüs boşluğu açın (greft iskemi başlangıç ​​zamanı). Sıçan aşağıdaki adımlara geçmeden önce tepkisiz olduğunu doğrulamak için bir zararlı ayak tutam uygulayın. Midventral karın duvarından kesme, sadece karaciğer üzerindeki diyaframı belirlemek ve göğüs kafesi erişim sağlamak için diyafram altındaki bağ dokusu kesilir. Kaburga kesti büyük makas, aşağı künt tarafı, sadece bir santimetrelik sol ve göğüs kafesi orta hat sağ ve göğüs boşluğu açmak. Akciğerler kalbin sağ tarafına seferber edilir. Ketamin hydrochloride.Pulmonary gövde, sol subklavian ven intrakardiyak enjeksiyon, sol kranial vena kava ile doz aşımı ile sıçan Kurban ve azygous ven proksimal torasik aorta hasat müdahale. </li><li> Kuyruk belirgin damarlar mikro-makas ve microforceps kullanarak inen torasik aort diseksiyonu başlamak için iyi bir giriş noktası vardır. </li><li> Aorta b Traceyukarı Sivrisinek cerrahi kelepçe ile nazik künt retraksiyonu ve diseksiyon ile aort kemer toraks dorsal duvarından ack. </li><li> Kelepçe ve sonra makasla damarları kesilmiş. Damarlar üzerinde kelepçeler korumak ve altta yatan aort arkı duyurmak için bir ekartör olarak kullanmak. </li><li> Sadece aorta bırakarak birinci interkostal arter üzerinde bir emilemeyen 6-0 ipek ligatürün yerleştirin. </li><li> Sadece sol subklavyan arterin altında ve daha sonra dikilen altına inen aorta kesin. Kırpma dik standart anevrizma geometri almak için yapılabilir, ya da gerekirse, anevrizma ve aort ekseni arasındaki belirli bir açıyı elde etmek. Genişliği ve uzunluğu greft ölçün. Not: Hasat edilen greft ya hemen alıcı farelere nakledilen ya da daha fazla aşı duvarın decellularization elde etmek için işlenebilir. Decellularized greftler daha sonraki bir tarihte tekrar implantasyonu (Şekil 1) kadar -4 derece santigrat saklanabilir. Thanevrizma duvarının E decellularization 11 büyütmek için anevrizmayı yatkınlık gösterilmiştir. </li></ol> 3. Greft Decellularization <ol style="margin-left: 40px;"><li> Donma verici greft fosfat içinde -4 ° C &#39;de tamponlanmış tuzlu su. </li><li> Ertesi gün, greft çözülme, oda sıcaklığında saflaştırılmış ve iyonu giderilmiş su ile durulama ve% 0.1 sodyum dodesil sülfat, 37 ° C&#39;de 10 saat boyunca inkübe edilir. </li><li> Son olarak, yumuşak çalkalama ile sodyum dodesil sülfat ile muamele edilmiş greftler üç kez yıkayın, fosfat tamponlu tuzlu su içinde dondurulabilir ve tutmak -4 ° C&#39;de kullanılana kadar. </li></ol> 4. Anevrizma Yaratılış <ol style="margin-left: 40px;"><li> Karın Aort diseksiyonu <ol><li> Hayvan anestezi edildikten sonra, cerrahi siteden kürk klibi ve uygun bir dezenfektan ile cildi temizleyin. Önce cilt kesisi bir ayak tutam yanıt eksikliği için test. Genital kesi 1cm proksimal başlayın in midventral pozisyonu (çalışma başlangıç ​​zamanı). Dikkatle yatan kasları cilt ayırmak. Sternum altında iki santimetre bir ucu diseksiyon. </li><li> Dikkatle ama sıkı temel organlarının zarar görmesini önlemek için altta yatan karın kasları yukarı çekin. Kılıç şeklinde sürece yukarı linea alba boyunca boylamasına kesitini uzanır ve mesane düzeyinde kaudal yönünde biter. </li><li> Yavaşça retroperitona erişimi kolaylaştırmak amacıyla boşaltmak için mesaneye baskı uygulamak. </li><li> Küçük bağırsak, sağa veya sola doğru belirgin çekum hareket ettirin. Karın boşluğunun sol alt büyük barsağı yani inen kolon tanımlayın. </li><li> Dorsal gövde duvarının daha geniş bir etkileşim sağlamak için ince bağırsak ve beyin yönünde inen kolon arasındaki bağ kesin. Dışında bağırsakları tutmak için kendini tutan ekartörünü yerleştirin. </li><li> Uç-yan anastomoz anevrizma i ideal konumuböbrek ve iliolumbar damarlar arasındaki düzeyde bulunan s. Abdominal aort yağ dokusunda gömülü retroperitoneal yatıyor. Diseksiyonu sırasında eşleştirilmiş neredeyse şeffaf üreterler ve testis damarlarının özellikle dikkat. </li><li> Bağırsakların fazla küçültme gerekli ise, daha büyük bir gazlı bez takaslarını kullanın. Sıçan alt sırt altına bir koter kalem veya benzer bir cisim yerleştirerek konumlandırma sırasında uyarılan lomber omurga lordoz, önemli ölçüde bağırsak retraksiyonun ihtiyacını azaltır. </li><li> Dorsal gövde duvarının ventral yüzeyi ince pariyetal periton ile kaplıdır. Bu açıldığında, sadece altında aorta görselleştirmek. Bitişik büyük damarlar abdominal aort dikkatli keskin ve künt diseksiyon sırasında damar duvarına zarar vermemek için sadece adventisya kavramak. </li><li> Nadiren, küçük lomber arterler abdominal aorta dorsal yüzeyinden segmental gemisi olarak ortaya çıkan ve hazırlık ile müdahale. Geminin bağlama ve kesilmiş J`o`kflanevrizma dikiş atma sırasında retrograd sızmaya önlemek için ded. Kavisli mikro forseps kullanımı derinlemesine bağ yerleştirme kolaylaştırabilir. </li></ol></li><li> Uç-yan Anastomoz <ol><li> Abdominal aort altında renkli bir lastik pedi koyun ve küçük bir gazlı bez çubukla ile döşemek. Planlanan anastomoz seviyesinde gevşek bağ dokusu ve adventisya çıkarın. </li><li> , Sonra proksimal anastomoz için abdominal aort distaline Kelepçe (aort sıkma başlangıç ​​zamanı). Bu ise haznedeki sağlam bir şekilde doldurulmasını sağlar ve daha sonra arteriyotomi kolaylaştırır. </li><li> Düz veya kavisli mikro-makas kullanılarak arteriyotomi gerçekleştirin. Bir mikro-forseps, elips şekline kesmek için damar duvarının çok küçük bir parçasını tutar. </li><li> Künt uçlu iğne kullanılarak her iki yönde de tuzlu su ile iyice yıkayın arteri. </li><li> (Arteriyotomi yakın ve uzak sonunda bu uç-yan anastomoz ilk iki stürler anastomoz başlangıç ​​zamanı). Mümkün mikro forseps ile damar duvarı tutmaktan kaçının. Her ameliyat dikiş ipliği, damar duvarının tüm katları boyunca yerleştirildiğinden emin olun. </li><li> Ya sürekli ya da kesintili sütür olarak dikilmesi gerçekleştirin. Kesintiye dikiş seçilirse ilk sonra arka taraftaki dokuz o&#39;clock dikiş yerleştirin. Daha sonra dikiş ilk dikişine bitişik başlangıç ​​birbirinden aralıklı olabilirler. Dikkatli adventisya kavrayın. Intima herhangi sıkma / tutulmasımn kaçının. </li><li> Arka duvar tamamlandığında, yanlış dikişler için anastomoz endolüminal bölümünü kontrol edin. Ön tarafta, aynı sıra ile aynı prosedürleri gerçekleştirin. Sütür başına üç düğüm toplam ilk çok sıkı sağlam değil ama emin olun. </li></ol></li><li> Hemostaz ve Kapanış <ol><li> Yan anastomoz için uç (uca anastomoz süresi) tamamlandıktan sonra, tuzlu su ile yıkayın ve sitesi (geri akış sağlamak için birinci uç, aort ve bitiş aşı iskemi Ti kıskaç uzak kelepçe kaldırmakbana). </li><li> Bariz kanama ekstra bir dikiş gerekebilir backflow dan oluşursa (hemostaz başlangıç ​​zamanı). Küçük sızma durumunda, bir gazlı bez çubukla küçük bir parça kullanılarak kanama sitesi üzerinden hafif basınç ile hemostaz. </li><li> , Proksimal vasküler kelepçeyi sökün kez daha anastomoz siteyi durulayın ve anevrizma kubbe de dikilen kalan uçları kesilmiş. </li><li> Pik arteriyel nabız dalgası sırasında anevrizmanın hacmi artış gözlenmesiyle anevrizma açıklığını onaylayın. Doğrudan &quot;sağım testi&quot; aracılığıyla uzak karın arter açıklığını değerlendirin. </li><li> Plastik levha ve altında küçük gazlı bez çubukla çıkarın. Oluşturulan anevrizma içinde titreşen kan koşuşturma açıkça görülebilir. </li><li> Küçük sızıntı hala mevcut olup olmadığını (hemostaz bitiş zamanı) ek hemostaz için adipoz doku veya Spongostan küçük parçalar ile anastomoz etrafında dikiş hatları kapsayacak. </li><li> Yumuşak doku serpme ve gazlı bezlerden çıkarın.Lütfen kendi doğru pozisyonda, küçük bağırsak, çekum ve yağ kütlesi yerleştirin. </li><li> 5-0, 4-0, veya 3-0 3-0 emilebilir polyfilament sütür (bitiş çalışma süresi) sürekli sütür tekniği kullanılarak deri yara kapanmasının ardından emilebilir veya non-emilebilir dikişlerle kullanarak orta hat karın kasları kapatın. Not: bizim deneyim fareler emilmeyen monofilament sütür daha iyi emilebilir dikişlerle deri tolere olarak. </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Bouzeghrane, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+experimental+intracranial+aneurysm+models:+a+systematic+review.">In vivo experimental intracranial aneurysm models: a systematic review.</a> AJNR Am J Neuroradiol. 31, 418-423 (2010).</li><li>Marbacher, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complex+bilobular,+bisaccular,+and+broad-neck+microsurgical+aneurysm+formation+in+the+rabbit+bifurcation+model+for+the+study+of+upcoming+endovascular+techniques.+AJNR.">Complex bilobular, bisaccular, and broad-neck microsurgical aneurysm formation in the rabbit bifurcation model for the study of upcoming endovascular techniques. AJNR.</a> American journal of neuroradiology. 32, 772-777 (2011).</li><li>Frosen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contribution+of+mural+and+bone+marrow-derived+neointimal+cells+to+thrombus+organization+and+wall+remodeling+in+a+microsurgical+murine+saccular+aneurysm+model.">Contribution of mural and bone marrow-derived neointimal cells to thrombus organization and wall remodeling in a microsurgical murine saccular aneurysm model.</a> Neurosurgery. 58, 936-944 (2006).</li><li>Marjamaa, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mice+with+a+deletion+in+the+first+intron+of+the+Col1a1+gene+develop+dissection+and+rupture+of+aorta+in+the+absence+of+aneurysms:+high-resolution+magnetic+resonance+imaging.">Mice with a deletion in the first intron of the Col1a1 gene develop dissection and rupture of aorta in the absence of aneurysms: high-resolution magnetic resonance imaging.</a> at 4.7 T, of the aorta and cerebral arteries. Magn Reson Med. 55, 592-597 (2006).</li><li>Oyamada, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Trans-iliac+rat+aorta+stenting:+a+novel+high+throughput+preclinical+stent+model+for+restenosis+and+thrombosis.">Trans-iliac rat aorta stenting: a novel high throughput preclinical stent model for restenosis and thrombosis.</a> The Journal of surgical research. , 166-191 (2011).</li><li>Lowe, H. C., James, B., Khachigian, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+model+of+in-stent+restenosis:+rat+aortic+stenting.">A novel model of in-stent restenosis: rat aortic stenting.</a> Heart. 91, 393-395 (2005).</li><li>Marjamaa, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Occlusion+of+neck+remnant+in+experimental+rat+aneurysms+after+treatment+with+platinum-+or+polyglycolic-polylactic+acid-coated+coils.">Occlusion of neck remnant in experimental rat aneurysms after treatment with platinum- or polyglycolic-polylactic acid-coated coils.</a> Surg Neurol. 71, 458-465 (2009).</li><li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=with+the+support+of+the+NC3Rs.">with the support of the NC3Rs.</a> Aseptic Technique in Rodent Surgery. , (2014).</li><li>Bernal, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guidelines+for+rodent+survival+surgery.">Guidelines for rodent survival surgery.</a> Journal of investigative surgery : the official journal of the Academy of Surgical Research. 22, 445-451 (2009).</li><li>Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Principles+of+rodent+surgery+for+the+new.">Principles of rodent surgery for the new.</a> , (2011).</li><li>Marbacher, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Loss+of+mural+cells+leads+to+wall+degeneration,+aneurysm+growth,+and+eventual+rupture+in+a+rat+aneurysm+model.">Loss of mural cells leads to wall degeneration, aneurysm growth, and eventual rupture in a rat aneurysm model.</a> Stroke. 45, 248-254 (2014).</li><li>Frosen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remodeling+of+saccular+cerebral+artery+aneurysm+wall+is+associated+with+rupture:+histological+analysis+of+24+unruptured+and+42+ruptured+cases.">Remodeling of saccular cerebral artery aneurysm wall is associated with rupture: histological analysis of 24 unruptured and 42 ruptured cases.</a> Stroke. 35, 2287-2293 (2004).</li><li>Frosen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Saccular+intracranial+aneurysm:+pathology+and+mechanisms.">Saccular intracranial aneurysm: pathology and mechanisms.</a> Acta neuropathologica. , 123-773 (2012).</li><li>Ysuda, R., Strother, C. M., Aagaard-Kienitz, B., Pulfer, K., Consigny, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+large+and+giant+bifurcation+aneurysm+model+in+canines:+proof+of+feasibility.">A large and giant bifurcation aneurysm model in canines: proof of feasibility.</a> AJNR Am J Neuroradiol. 33, 507-512 (2012).</li><li>Sherif, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microsurgical+venous+pouch+arterial-bifurcation+aneurysms+in+the+rabbit+model:+technical+aspects.">Microsurgical venous pouch arterial-bifurcation aneurysms in the rabbit model: technical aspects.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , (2011).</li><li>Marjamaa, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-resolution+TOF+MR+angiography+at+4.7+Tesla+for+volumetric+and+morphologic+evaluation+of+coiled+aneurysm+neck+remnants+in+a+rat+model.">High-resolution TOF MR angiography at 4.7 Tesla for volumetric and morphologic evaluation of coiled aneurysm neck remnants in a rat model.</a> Acta Radiol. 52, 340-348 (2011).</li></ol>

Yazarlar kullanılan ilaçlar, malzeme veya ekipman hiçbirinde mali veya ticari ilgi var.

Sakküler serebral arter anevrizması karmaşık biyoloji anlayışımızda ilerleme hayvan modellerinde 3,12,13 hasta numunelerinin ve deneysel çalışmaları laboratuvar çalışmaları ile tamamlanmaktadır epidemiyolojik ve klinik verilerin analizine bağlıdır. Gibi sıçan gibi küçük hayvanlar doğal deneyler ve konut düşük maliyetler ile ilişkili, ve özel ekipman ihtiyacı azalır. Sıçanlarda bir yanak anevrizma mikrocerrahi yaratılması için en az 60 dakikal?...

Sakküler serebral arter anevrizma rüptürü inme, kalıcı nörolojik hasar veya ölüme hayatı tehdit kanama neden olur. Kopma mikrocerrahi olarak kliplenmesiyle veya endovasküler anevrizma tıkanması ile önlenebilir. Anevrizma büyüme ve delinmesine önlemek için tıbbi bir tedavi henüz kurulmamıştır. Sakküler anevrizmalar için deneysel modeller arter anevrizması ve yeni tedavi cihazları ve stratejilerinin test edilmesi için biyoloji eğitimi gereklidir. Bu amaçlar için, farklı türlerde birçok farklı modeller geliştirilmiş ve 1 yayınlanmıştır. Domuz, köpek, tavşan ve daha büyük modeller anevrizma, tercihen kompleks anevrizma mimari 1,2 endovasküler yenilikleri test etmek için kullanılır. Murin anevrizma modelleri, diğer taraftan, genetik olarak modifiye edilmiş türlerin 3,4 araştırma sorular test olanak sağlar ve hücresel ve moleküler biyoloji anevrizma açıklık kolaylaştırmakbüyük türlerin 1 çok daha iyi seviyeye. Endovasküler trans-karotis ve trans-iliak cihaz dağıtım büyük sıçanlara sınırlı (&gt; 400-500 g) ve daha küçük 2.0 mm ve çapı 5,6 1.5 mm stent kullanımı olmasına rağmen, stentler de karın aort içine doğrudan yerleştirilmesi ile konabilir Deneysel anevrizmalar barındıran bölüm. Sıçan mikrocerrahi abdominal aort anevrizması yanak modeli kullanılarak Önceki iş test roman embolik cihazlara uygulanabilirliğini ve anevrizma biyoloji 3,7 moleküler temelini okuyan kullanımını gösterdi. Şu anda yayınlanan deneysel sakküler anevrizma modelleri birçok pahalı donanımları, özel ortamlar (floroskopi yetenekleri ile örneğin steril ameliyathane), girişimsel radyoloji yetkinlik, ya da pahalı türlerin kullanımını gerektirir. Bu gereksinimler bu modellerin yaygın kullanımını sınırlamak ve m farklı laboratuvarlarda, farklı modellerin kullanılmasına yolakes veri karşılaştırma ve meta-analizi imkansız değilse, zor. Basit, sağlam ve ucuz deneysel model, farklı kurumlardan karşılaştırılabilir sonuçlar elde etmek için çeşitli laboratuarlarda standart bir şekilde kullanılabilecek bir standart araç olarak gereklidir. Bu amaçla, biz sıçan aort yanak sakküler arter anevrizma modeli yarattık. Bu raporun amacı, gerekli ekipman adım adım prosedür talimatlarını, bilgi sunma ve sıçan abdominal aort anevrizması yanak başarılı mikrocerrahi oluşturulması için önemli anatomik ve cerrahi özelliklerini tartışmaktır.

<table><tbody><tr><td>Medetomidine</td><td></td><td></td><td>Any genericon</td></tr><tr><td>Ketamin</td><td></td><td></td><td>Any genericon</td></tr><tr><td>Buprenorphine</td><td></td><td></td><td>Any genericon</td></tr><tr><td>Phosphate buffered saline</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sodium dodecyl sulfate (0.1%)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>3-0 resorbable suture</td><td>Ethicon Inc., USA</td><td>&lt;a name=&quot;RANGE!C7&quot;&gt;VCP824G&lt;/a&gt;</td><td></td></tr><tr><td>5-0 non absorbable suture</td><td>Ethicon Inc., USA</td><td>8618G</td><td></td></tr><tr><td>6-0 non absorbable silk suture</td><td>B. Braun, Germany</td><td>C0761060</td><td></td></tr><tr><td>9-0 nylon micro suture</td><td>B. Braun, Germany</td><td>G1118471</td><td></td></tr><tr><td>Spongostan</td><td>Ethicon Inc., USA</td><td>MS0002</td><td></td></tr><tr><td>Operation microscope</td><td>Leica , Germany</td><td>M651</td><td></td></tr><tr><td>Digital microscope camera</td><td>Sony, Japan</td><td>SSC-DC58AP</td><td></td></tr><tr><td>Standard surgical instruments</td><td>B. Braun, Germany</td><td>Multiple</td><td>See protocol 1.4</td></tr><tr><td>Microsurgical instruments</td><td>B. Braun, Germany</td><td>Multiple</td><td>See protocol 1.5</td></tr><tr><td>Vascular clip applicator</td><td>B. Braun, Germany</td><td>FT495T</td><td></td></tr><tr><td>Temporary vascular clamps</td><td>B. Braun, Germany</td><td>FT250T</td><td></td></tr><tr><td>Graph Pad Prism statistical software&amp;nbsp;</td><td>GraphPad Software, San Diego, California, USA</td><td></td><td>V 6.02 for Windows</td></tr></tbody></table>

the helsinki rat microsurgical sidewall aneurysm model

Deneysel sakküler anevrizma modeller klinik uygulamaya girdikten önce yeni cerrahi ve endovasküler tedavi seçenekleri ve test cihazları için gereklidir. Ayrıca, deneysel modeller sakküler anevrizma yırtılmasına yol açan karmaşık anevrizma biyolojisini aydınlatmak için gereklidir. Sakküler anevrizmalar için deneysel modellerin birkaç farklı türde farklı türlerde kurulmuştur. Birçoğu, ancak bunların yaygın kullanımını sınırlayan, özel beceriler, pahalı ekipman veya özel ortamları gerektirir. Basit, sağlam ve ucuz deneysel model çeşitli kurumlarda standart bir şekilde kullanılabilecek bir standart araç olarak gereklidir. Mikrocerrahi sıçan abdominal aort anevrizması yanak modeli yeni endovasküler tedavi stratejileri ve bir standart ve ucuz anevrizma biyolojinin moleküler temelini hem çalışma imkanı birleştirirşekilde. Şekil, boyut, ve geometrisi ile standardize edilmiş bir greft verici sıçan torasik aort inen hasat edilir ve daha sonra bir alıcı, singenik fareye transplante edilir. Anevrizmalar Sürekli ile uç-yan dikildi veya infrarenal abdominal aort 9-0 naylon sütür kesilir. Biz gerekli ekipman adım adım prosedür talimatlarını, bilgi sunma ve sıçan abdominal aort anevrizması yanak başarılı mikrocerrahi oluşturulması için önemli anatomik ve cerrahi ayrıntılarını görüşmek.

Bir pilot serisi 14 sıçan oluşmaktadır. Ardından 84 hayvanların toplam 2012 ek 29 hayvan arteriyel sakküler greftler için donör olarak görev Mart ve Eylül ayları arasında çeşitli araştırma projeleri için sunulan protokole göre ameliyat edildi. Kalan deneyler hasat edildi ve aynı cinsiyet, ırk, kilo, yaş ve sıçanlar üzerinde yapılan daha önceki deneylerde saklanan ön-muamele edilmiş greft kullanılarak yapıldı. Vücut ağırlığı, genel çalışma süresi, aor...

Watch this Scientific Journal Video about The Helsinki Rat Microsurgical Sidewall Aneurysm Model at JoVE.com

The Helsinki Rat Microsurgical Sidewall Aneurysm Model

Microsurgical sidewall aneurysms in rats are created by end-to-side anastomosis of an aortic graft to the abdominal aorta. We present step-by-step instructions and discuss anatomical and surgical details for successful experimental saccular aneurysm creation.

Helsinki Rat Mikrocerrahi Yanduvar Anevrizma Modeli

Experimental saccular aneurysm models are necessary for testing novel surgical and endovascular treatment options and devices before they are introduced ...

the-helsinki-rat-microsurgical-sidewall-aneurysm-model

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Medicine

12.2K Görüntüleme.  University of Helsinki, Helsinki, Finland. Microsurgical sidewall aneurysms in rats are created by end-to-side anastomosis of an aortic graft to the abdominal aorta. We present step-by-step instructions and discuss anatomical and surgical details for successful experimental saccular aneurysm creation.

Video: The Helsinki Rat Microsurgical Sidewall Aneurysm Model

Microsurgical Venous Pouch Arterial-Bifurcation Aneurysms in the Rabbit Model: Technical Aspects

For ruptured human cerebral aneurysms endovascular embolization has become an equivalent alternative to aneurysm clipping.1 However, large clinical trials have shown disappointing long-term results with unacceptable high rates of aneurysm recanalization and delayed aneurysm rupture.2 To overcome these problems, animal experimental studies are crucial for the development of better endovascular devices.3-5
Several animal models in rats, rabbits, canines and swine are available.6-8 Comparisons of the different animal models showed the superiority of the rabbit model with regard to hemodynamics and comparability of the coagulation system and cost-effectiveness.9-11 
The venous pouch arterial bifurcation model in rabbits is formed by a venous pouch sutured into an artificially created true bifurcation of both common carotid arteries (CCA). The main advantage of this model are true bifurcational hemodynamics.12 The major drawbacks are the sofar high microsurgical technical demands and high morbidity and mortality rates of up to 50%.13 These limitations have resulted in less frequent use of this aneurysm model in the recent years. These shortcomings could be overcome with improved surgical procedures and modified peri- and postoperative analgetic management and anticoagulation.14-16 Our techniques reported in this paper demonstrate this optimized technique for microsurgical creation of arterial bifurcation aneurysms.

An optimized technique for the microsurgical creation of arterial bifurcation aneurysms mimicking bifurcation human cerebral aneurysms is described. A venous pouch is sutured into an artificially created true bifurcation of both common carotid arteries. Facilitated microsurgical techniques and aggressive postoperative anticoagulation and analgesia lead to minimized morbidity rates and high aneurysm patency rates.

Tavşan Modelinde Mikrocerrahi Venöz Kılıfı Arter Bifurkasyon Anevrizmalarının: Teknik Yönleri

For ruptured human cerebral aneurysms endovascular embolization has become an equivalent alternative to aneurysm clipping.1 However, large clinical trials ...

Tıp

A New Murine Model of Endovascular Aortic Aneurysm Repair

Endovascular aneurysm exclusion is a validated technique to prevent aneurysm rupture. Long-term results highlight technique limitations and new aspects of Abdominal aortic aneurysm (AAA) pathophysiology. There is no abdominal aortic aneurysm endograft exclusion model cheap and reproducible, which would allow deep investigations of AAA before and after treatment. We hereby describe how to induce, and then to exclude with a covered coronary stentgraft an abdominal aortic aneurysm in a rat. The well known elastase induced AAA model was first reported in 19901 in a rat, then described in mice2. Elastin degradation leads to dilation of the aorta with inflammatory infiltration of the abdominal wall and intra luminal thrombus, matching with human AAA. Endovascular exclusion with small covered stentgraft is then performed, excluding any interactions between circulating blood and the aneurysm thrombus. Appropriate exclusion and stentgraft patency is confirmed before euthanasia by an angiography thought the left carotid artery. Partial control of elastase diffusion makes aneurysm shape different for each animal. It is difficult to create an aneurysm, which will allow an appropriate length of aorta below the aneurysm for an easy stentgraft introduction, and with adequate proximal and distal neck to prevent endoleaks. Lots of failure can result to stentgraft introduction which sometimes lead to aorta tear with pain and troubles to stitch it, and endothelial damage with post op aorta thrombosis. Giving aspirin to rats before stentgraft implantation decreases failure rate without major hemorrhage. Clamping time activates neutrophils, endothelium and platelets, and may interfere with biological analysis.

Histological and biochemical modifications after aneurysm endograft exclusion are still unclear. We describe a new model of endograft implantation on a murine aneurysm. Through thrombus analysis with and without persistant circulating blood stream interface, and new endovascular biomaterials evaluation, this model will help to better understand endovascular aneurysm exclusion pathobiology.

Endovasküler Aort Anevrizma Onarımı Yeni Bir murin Modeli

Endovascular aneurysm exclusion is a validated technique to prevent aneurysm rupture. Long-term results highlight technique limitations and new aspects of ...

Biodegradable Magnesium Stent Treatment of Saccular Aneurysms in a Rat Model - Introduction of the Surgical Technique

The steady progess in the armamentarium of techniques available for endovascular treatment of intracranial aneurysms requires affordable and reproducable experimental animal models to test novel embolization materials such as stents and flow diverters. The aim of the present project was to design a safe, fast, and standardized surgical technique for stent assisted embolization of saccular aneurysms in a rat animal model.
Saccular aneurysms were created from an arterial graft from the descending aorta.The aneurysms were microsurgically transplanted through end-to-side anastomosis to the infrarenal abdominal aorta of a syngenic male Wistar rat weighing &#62;500 g. Following aneurysm anastomosis, aneurysm embolization was performed using balloon expandable magnesium stents (2.5 mm x 6 mm). The stent system was retrograde introduced from the lower abdominal aorta using a modified Seldinger technique.
Following a pilot series of 6 animals, a total of 67 rats were operated according to established standard operating procedures. Mean surgery time, mean anastomosis time, and mean suturing time of the artery puncture site were 167 &#177; 22 min, 26 &#177; 6 min and 11 &#177; 5 min, respectively. The mortality rate was 6% (n=4). The morbidity rate was 7.5% (n=5), and in-stent thrombosis was found in 4 cases (n=2 early, n=2 late in stent thrombosis).
The results demonstrate the feasibility of standardized stent occlusion of saccular sidewall aneurysms in rats - with low rates of morbidity and mortality. This stent embolization procedure combines the opportunity to study novel concepts of stent or flow diverter based devices as well as the molecular aspects of healing.

Reproducable experimental animal models are needed for the testing of novel embolization materials, which have been designed to treat endovascular occlusion of intracranial aneurysms (IA). The present study aims to develop a safe and standardized surgical technique for stent assisted embolization of saccular aneurysms in a rat animal model.

Bir sıçan modelinde - cerrahi tekniğin getirilmesi Saccular Anevrizmalarının biyobozunur magnezyum Stent tedavisi

The steady progess in the armamentarium of techniques available for endovascular treatment of intracranial aneurysms requires affordable and reproducable ...

Nörobilim

Creation of a Rodent Model of Abdominal Aortic Aneurysm by Blocking Adventitial Vasa Vasorum Perfusion

The adventitial vasa vasorum (VV) provides oxygen and nourishment to the aortic wall. Hypoxia in the aortic wall can cause enlarged abdominal aortic aneurysms (AAAs). This article introduces and describes a standard protocol used to induce AAAs through adventitial VV hypoperfusion created with a combination of polyurethane catheter insertion into the aortic lumen and suture ligation of the infrarenal abdominal aorta.
The protocol involves the use of male rats weighing 300-400 g, which are provided food and water ad libitum. After laparotomy with a ventral midline abdominal incision, exfoliation of the aorta is performed, which blocks blood flow from the perivascular tissue. Aortotomy involving a small incision adjacent to the renal artery branches is performed, and a polyurethane catheter is inserted using an 18-gauge indwelling needle. After repairing the incision, tight ligation of the aorta over the catheter blocks VV blood flow from the proximal direction through the aortic wall without disturbing the aortic blood flow. This technique can induce an AAA with progressive aortic dilatation.
The greatest benefit of this model is that VV hypoperfusion causes tissue hypoxia and the development of an infrarenal AAA, which has morphological and pathological characteristics similar to those of a human AAA.

Polyurethane catheter insertion into the aortic lumen and suture ligation of the aorta induce chronic hypoxia due to hypoperfusion of the adventitial vasa vasorum. This article describes a novel animal model of abdominal aortic aneurysm (AAA) with characteristics similar to those of AAA in humans.

Abdominal aort anevrizması Adventitial Vasa Vasorum perfüzyon engelleyerek kemirgen bir Model oluşturulması

The adventitial vasa vasorum (VV) provides oxygen and nourishment to the aortic wall. Hypoxia in the aortic wall can cause enlarged abdominal aortic ...

Arterial Pouch Microsurgical Bifurcation Aneurysm Model in the Rabbit

Endovascular treatment for intracranial aneurysms gained importance over the past decades, consequently there is an increased need of testing endovascular devices. Animal models respecting rheological, hemodynamic and aneurysm wall conditions are highly warranted. Therefore, the aim of the present study was to design a novel standardized and reproducible surgical technique to create autologous arterial pouch bifurcation aneurysms with non-modified and modified wall conditions in rabbits.
Bifurcation aneurysms were created by end-to-side anastomosis of the right on the left common carotid artery, both serving as parent arteries for the arterial pouch, which was microsurgically sewn on. Grafts were taken from the proximal right common carotid artery, either for the control (n = 7, immediate autologous re-implantation) or modified (n = 7, incubated with 100 international units elastase for 20 minutes before autologous re-implantation) group. Pouch and parent artery patency were controlled by fluorescence angiography immediately after creation. At follow-up (28 days), all rabbits underwent contrast enhanced magnetic resonance angiography and fluorescence angiography followed by aneurysm harvesting, macroscopic and histological evaluation.
A total of 16 female New Zealand White rabbits were operated upon. Two animals died prematurely. At follow-up, 85.72% of all aneurysms remained patent. Both groups revealed an increase in aneurysm size over time; this was more pronounced in the control group (6.48 &#177; 1.81 mm3 at time of creation vs. 19.85 &#177; 6.40 mm3 at follow-up, p = 0.037) than in the modified group (8.03 &#177; 1.08 mm3 at time of creation vs. 20.29 &#177; 6.16 mm3 at follow-up, p = 0.054).
Our findings demonstrate the adequacy of this new rabbit model which allows for the creation of bifurcation aneurysms with different wall conditions in a microsurgical approach. Given the excellent long-term patency and the property of aneurysm growth over time, this model may serve as an important tool for preclinical evaluation of novel endovascular therapies.

Developing and testing endovascular devices for intracranial aneurysm treatment is still of great importance. Most aneurysm models used today miss either the important characteristics of an arterial degenerated wall or the hemodynamics of a true bifurcation. Therefore, we aimed to design a novel arterial pouch bifurcation model in rabbits.

Arteriyel Poş Tavşanda Mikrocerrahi Bifurkasyon Anevrizması Modeli

Endovascular treatment for intracranial aneurysms gained importance over the past decades, consequently there is an increased need of testing endovascular ...

Murine Surgical Model of Topical Elastase Induced Descending Thoracic Aortic Aneurysm

According to the Center for Disease Control, aortic aneurysms (AAs) were considered a leading cause of death in all races and both sexes from 1999-2016. An aneurysm forms as a result of progressive weakening and eventual dilation of the aorta, which can rupture or tear once it reaches a critical diameter. Aneurysms of the descending aorta in the chest, called descending thoracic aortic aneurysms (dTAA), make up a large proportion of aneurysm cases in the United States. Uncontained dTAA rupture is almost universally lethal, and elective repair has a high rate of morbidity and mortality. The purpose of our model is to study dTAA specifically, to elucidate the pathophysiology of dTAA and to search for molecular targets to halt the growth or reduce the size of dTAA. By having a murine model to study thoracic pathology precisely, targeted therapies can be developed to specifically test dTAA. The method is based on the placement of porcine pancreatic elastase (PPE) directly on the outer murine aortic wall after surgical exposure. This creates a destructive and inflammatory reaction, which weakens the aortic wall and allows for aneurysm formation over weeks to months. Though murine models possess limitations, our dTAA model produces robust aneurysms of predictable size. Furthermore, this model can be used to test genetic and pharmaceutical targets which may arrest dTAA growth or prevent rupture. In human patients, interventions such as these could help avoid aneurysm rupture, and difficult surgical intervention.

We describe a surgical protocol to consistently induce robust descending thoracic aortic aneurysms in mice. The procedure involves left thoracotomy, thoracic aorta exposure, and placement of a sponge soaked in porcine pancreatic elastase on the aortic wall.

Topikal Elastaz Indüklenen İndüklenen Torasik Aort Anevrizması Murine Cerrahi Modeli

According to the Center for Disease Control, aortic aneurysms (AAs) were considered a leading cause of death in all races and both sexes from 1999-2016. ...

Endovascular Perforation Model for Subarachnoid Hemorrhage Combined with Magnetic Resonance Imaging (MRI)

The endovascular filament perforation model to mimic subarachnoid hemorrhage (SAH) is a commonly used model - however, the technique can cause a high mortality rate as well as an uncontrollable volume of SAH and other intracranial complications such as stroke or intracranial hemorrhage. In this protocol, a standardized SAH mouse model is presented, induced by endovascular filament perforation, combined with magnetic resonance imaging (MRI) 24 h after operation to ensure the correct bleeding site and exclude other relevant intracranial pathologies. Briefly, C57BL/6J mice are anesthetized with an intraperitoneal ketamine/xylazine (70 mg/16 mg/kg body weight) injection and placed in a supine position. After midline neck incision, the common carotid artery (CCA) and carotid bifurcation are exposed, and a 5-0 non-absorbable monofilament polypropylene suture is inserted in a retrograde fashion into the external carotid artery (ECA) and advanced into the common carotid artery. Then, the filament is invaginated into the internal carotid artery (ICA) and pushed forward to perforate the anterior cerebral artery (ACA). After recovery from surgery, mice undergo a 7.0 T MRI 24 h later. The volume of bleeding can be quantified and graded via postoperative MRI, enabling a robust experimental SAH group with the option to perform further subgroup analyses based on blood quantity.

Endovascular Perforation Model for Subarachnoid Hemorrhage Combined with Magnetic Resonance Imaging MRI

Here we present a standardized SAH mouse model, induced by endovascular filament perforation, combined with magnetic resonance imaging (MRI) 24 h after operation to ensure the correct bleeding site and exclude other relevant intracranial pathologies.

Manyetik Rezonans Görüntüleme (MRG) ile Kombine Subaraknoid Kanama için Endovasküler Perforasyon Modeli

The endovascular filament perforation model to mimic subarachnoid hemorrhage (SAH) is a commonly used model - however, the technique can cause a high ...

Using a Cell-Tracer Injection to Investigate the Origin of Neointima-Forming Cells in a Rat Saccular Side Wall Model

Microsurgical clipping creates a subsequent barrier of blood flow into intracranial aneurysms, whereas endovascular treatment relies on neointima and thrombus formation. The source of endothelial cells covering the endoluminal layer of the neointima remains unclear. Therefore, the aim of the present study was to investigate the origin of neointima-forming cells after cell-tracer injection in the already well-established Helsinki rat microsurgical sidewall aneurysm model.
Sidewall aneurysms were created by suturing decellularized or vital arterial pouches end-to-side to the aorta in male Lewis rats. Before arteriotomy with aneurysm suture, a cell-tracer injection containing CM-Dil dye was performed into the clamped aorta to label endothelial cells in the adjacent vessel and track their proliferation during follow-up (FU). Treatment followed by coiling (n = 16) or stenting (n = 15). At FU (7 days or 21 days), all rats underwent fluorescence angiography, followed by aneurysm harvesting and macroscopic and histological evaluation with immunohistological cell counts for specific regions of interest. 
None of the 31 aneurysms had ruptured upon follow-up. Four animals died prematurely. Macroscopically residual perfusion was observed in 75.0% coiled and 7.0% of stented rats. The amount of cell-tracer-positive cells was significantly elevated in decellularized stented compared to coiled aneurysms with respect to thrombus on day 7 (p = 0.01) and neointima on day 21 (p = 0.04). No significant differences were found in thrombus or neointima in vital aneurysms. 
These findings confirm worse healing patterns in coiled compared to stented aneurysms. Neointima formation seems particularly dependent on the parent artery in decellularized aneurysms, whereas it is supported by the recruitment from aneurysm wall cells in vital cell-rich walls. In terms of translation, stent treatment might be more appropriate for highly degenerated aneurysms, whereas coiling alone might be adequate for aneurysms with mostly healthy vessel walls.

We performed a one-point, lipophilic cell-tracer injection to track endothelial cells, followed by an arteriotomy and suturing of sidewall aneurysms on the abdominal rat aorta. Neointima formation seemed dependent on the parent artery in decellularized aneurysms and was promoted by the recruitment from aneurysm wall cells in vital cell-rich walls.

Bir Sıçan Sakküler Yan Duvar Modelinde Neointima Oluşturan Hücrelerin Kökenini Araştırmak için Bir Hücre İzleyici Enjeksiyonu Kullanma

Microsurgical clipping creates a subsequent barrier of blood flow into intracranial aneurysms, whereas endovascular treatment relies on neointima and ...

Creation of Two Saccular Elastase-Digested Aneurysms with Different Hemodynamics in One Rabbit

Preclinical animal models with hemodynamic, morphologic, and histologic characteristics close to human intracranial aneurysms play a key role in the understanding of the pathophysiological processes and the development and testing of new therapeutic strategies. This study aims to describe a new rabbit aneurysm model that allows the creation of two elastase-digested saccular aneurysms with different hemodynamic conditions within the same animal.
Five female New Zealand white rabbits with a mean weight of 4.0 (&#177; 0.3) kg and mean age of 25 (&#177;5) weeks underwent microsurgical stump and bifurcation aneurysm creation. One aneurysm (stump) was created by right common carotid artery (CCA) exposure at its origin at the brachiocephalic trunk. A temporary clip was applied at the CCA origin and another, 2 cm above. This segment was treated with a local injection of 100 U of elastase for 20 min. A second aneurysm (bifurcation) was created by suturing an elastase-treated arterial pouch into the end-to-side anastomosis of the right CCA to left CCA. Patency was controlled by fluorescence angiography immediately after creation.
The average duration of surgery was 221 min. The creation of two aneurysms in the same animal was successful in all rabbits without complication. All aneurysms were patent immediately after surgery except for one bifurcation aneurysm, which showed an extreme tissue reaction due to elastase incubation and an immediate intraluminal thrombosis. No mortality was observed during surgery and up to one-month follow-up. Morbidity was limited to a transient vestibular syndrome (one rabbit), which recovered spontaneously within one day.
Demonstrated here for the first time is the feasibility of creating a two-aneurysm rabbit model with stump and bifurcation hemodynamic characteristics and highly degenerated wall conditions. This model allows the study of the natural course and potential treatment strategies on the basis of aneurysm biology under different flow conditions.

This protocol describes the steps for the creation of a rabbit model with two elastase-digested aneurysms with different hemodynamics (stump and bifurcation constellation). This allows the testing of novel endovascular devices in aneurysms with different angioarchitecture and hemodynamic conditions within a single animal.

Bir tavşanda farklı hemodinamiğe sahip iki sakküler elastaz sindirilmiş anevrizmanın oluşturulması

Preclinical animal models with hemodynamic, morphologic, and histologic characteristics close to human intracranial aneurysms play a key role in the ...

Microsurgical Creation of Giant Bifurcation Aneurysms in Rabbits for the Evaluation of Endovascular Devices

Giant aneurysms are dangerous lesions requiring endovascular treatment, with high rates of aneurysm recanalization and re-rupture. Reliable in vivo models are rare but are required for testing new endovascular devices.&#160;We demonstrate the technical aspects of the creation of giant bifurcation aneurysms in New Zealand white rabbits (2.5-5.5 kg). A 25-30 mm long venous pouch is taken from the external jugular vein, and a bifurcation between both carotid arteries is created microsurgically. The pouch is sutured in the bifurcation to mimic a giant aneurysm. This protocol summarizes our previously published standard technique for venous pouch true arterial bifurcation aneurysms and highlights its essential modification steps for giant aneurysms. Using this modified technique, we were able to create an animal model for giant aneurysms with high comparability to humans regarding the hemodynamics and coagulation systems. Furthermore, low morbidity and high aneurysm patency rates were achieved. The proposed giant aneurysm model offers an excellent possibility for testing new endovascular devices.

Here, we describe the technique for the microsurgical creation of giant bifurcation aneurysms in rabbits for the evaluation of endovascular devices.

Endovasküler Cihazların Değerlendirilmesi İçin Tavşanlarda Dev Bifurkasyon Anevrizmalarının Mikrocerrahi Oluşturulması

Giant aneurysms are dangerous lesions requiring endovascular treatment, with high rates of aneurysm recanalization and re-rupture. Reliable in vivo models ...