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Method Article
Um método inovador para a fabricação de dispositivos microfluídicos usando laminação de tereftalato de polietileno (PET) reduz significativamente o custo e a complexidade de capturar e criar imagens de vários embriões vivos de peixe-zebra.
Os embriões de peixe-zebra são transparentes e, portanto, adequados exclusivamente para imagens intravitais não invasivas de processos fundamentais, como cicatrização de feridas e migração de células imunológicas. Dispositivos microfluídicos são usados para aprisionamento para suportar imagens de longo prazo de organismos multicelulares, incluindo peixe-zebra. No entanto, a fabricação desses dispositivos usando litografia suave requer instalações especializadas e competência em impressão 3D, que podem não ser acessíveis a todos os laboratórios. Nossa adaptação de um método de laminação de tereftalato de polietileno de baixo custo desenvolvido anteriormente para a construção de dispositivos microfluídicos aumenta a acessibilidade, permitindo a fabricação e iteração do projeto por uma fração do investimento técnico das técnicas convencionais. Usamos um dispositivo feito com esse método, o Assistente Rotacional para Danio Imaging of Subsequent Healing (RADISH), para acomodar tratamento medicamentoso, ferimento manual e imagens de longo prazo de até quatro embriões no mesmo campo de visão. Com este novo design, capturamos com sucesso as características morfológicas macroscópicas do sinal de cálcio em torno da ablação a laser e feridas de transecção manual para vários embriões nas 2 h imediatamente após a lesão, bem como o recrutamento de neutrófilos para a borda da ferida por 24 h.
A capacidade de responder adequadamente a lesões é fundamental para a sobrevivência de todos os organismos em todas as escalas, desde uma única célula até vários tecidos. Ferimentos e suas respostas associadas, como o recrutamento de fagócitos para áreas danificadas1 são, portanto, tópicos significativos na biologia celular e tecidual. As feridas são detectadas imediatamente após a quebra da barreira tecidual, causando uma resposta de gradiente tecidual envolvendo a contração da ferida 2,3 que coordena a cicatrização da ferida e o subsequente crescimento4. Devido à natureza mecânica dessa contração, as ferramentas usadas durante a experimentação não devem impedir fisicamente o movimento das células próximas ao local da lesão.
Os embriões de peixe-zebra são um excelente modelo para estudar o desenvolvimento e a doença, incluindo a resposta a feridas de vertebrados, devido à sua facilidade de tratamento, tratabilidade genética e transparência óptica 5,6. No entanto, imobilizar todo o organismo por um período prolongado é necessário para estudar o comportamento de longo prazo das células próximas a um local de lesão. A incorporação de embriões em agarose de baixo ponto de fusão é suficiente para imagens de curto prazo de tecido não ferido. No entanto, a matriz de gel circundante restringe a contração e o relaxamento das feridas e impede o crescimento dos embriões em desenvolvimento ao longo do tempo 7,8,9.
Dispositivos microfluídicos podem imobilizar embriões de peixe-zebra em diferentes estágios de desenvolvimento 10,11,12,13,14,15,16, e alguns, como o zWEDGI 7, acomodam ferimentos manuais. No entanto, existem várias desvantagens nos designs de dispositivos disponíveis. Por exemplo, muitos dispositivos impressos diretamente em plástico são incompatíveis com imagens em sistemas de microscópio invertido devido à baixa transparência óptica. Além disso, os canais paralelos permitem imagens multiposicionais10,11, mas o movimento físico da platina do microscópio introduz atraso na aquisição da imagem. A iteração e otimização repetidas para resolver esses problemas são difíceis quando se considera o investimento financeiro e técnico necessário para cada novo projeto, especialmente para os métodos atuais padrão-ouro de fabricação de dispositivos usando litografia suave de polidimetilsiloxano (PDMS). A primeira etapa, a criação de um molde mestre, geralmente requer conhecimento de software de modelagem 3D, acesso a equipamentos de fabricação especializados e (dependendo do material usado) um tratamento antiaderente adicional, como silanização, antes que o molde seja usado. A cura do PDMS, uma vez derramado, leva pelo menos uma hora em altas temperaturas e, geralmente, deve ser feita sob vácuo ou com pinça para obter melhores resultados, geralmente em uma sala limpa 7,17,18. Como na biologia do desenvolvimento, esses custos podem rapidamente se mostrar proibitivos para experimentos que exigem muitos ambientes microfluídicos exclusivos em vários modelos.
Dos materiais de construção alternativos disponíveis, o tereftalato de polietileno (PET) é durável, não tóxico e fácil de manipular. As folhas de PET são bolsas de laminação de plástico amplamente disponíveis na maioria das lojas de material de escritório, com adesivo termicamente ativado pré-aplicado (geralmente acetato de vinil etileno). Ao moldar essas folhas de PET usando cortadores artesanais disponíveis comercialmente (ou seja, plotters de corte controlados por computador projetados para artesãos domésticos) e aderir as camadas umas às outras usando equipamentos de laminação térmica padrão, uma ampla gama de projetos potenciais pode ser gerada e iterada rapidamente. Portanto, adaptamos um método de projeto e construção descrito anteriormente envolvendo PET18 empilhado para criar o assistente Apara Danio Imaging de Subsequent Healing (RADISH) (Figura 1A, B). Um arranjo rotacional de vários canais de contenção em forma de cunha otimiza a proximidade, permitindo espaço para a transecção manual da barbatana caudal, acomodando imagens imediatamente após a lesão e imagens simultâneas de longo prazo de vários embriões de peixe-zebra feridos no mesmo campo de visão. Além disso, esse método de construção reduz drasticamente os custos iniciais de capital e o tempo necessário para a construção do dispositivo, mantendo a reutilização.
Este estudo usou embriões 3 dias após a fertilização (dpf), mas pode ser projetado para usar embriões de 2 a 14 dpf. O experimento do peixe-zebra foi conduzido por padrões internacionalmente aceitos. O Protocolo de Cuidados e Uso de Animais foi aprovado pelo Comitê de Cuidados e Uso de Animais de Purdue (PACUC), aderindo às Diretrizes para o uso de peixe-zebra no Programa de Pesquisa Intramural do NIH (número do protocolo: 1401001018).
1. Montagem do dispositivo microfluídico PET
NOTA: Qualquer parte deste protocolo pode ser pausada a qualquer momento, exceto nas etapas 1.8 e 1.9, que são sensíveis ao tempo de secagem do cianoacrilato.
2. Posicionamento dos embriões dentro do RADISH e preparação para imagem
3. Imagem de transientes de cálcio após ferimento
NOTA: Esta seção e a Seção 4 são opcionais e fornecidas como experimentos de amostra em potencial.
4. Imagem do recrutamento de neutrófilos após ferimento
Para comparação da qualidade da imagem produzida por um confocal de varredura a laser com e sem o auxílio do RADISH, os embriões que expressam o biossensor intensiométrico de cálcio GCaMP6f22,24 na camada epitelial externa foram corados usando MemGlow 560 e fotografados com um confocal de varredura a laser invertido cobrindo toda a espessura da dobra da barbatana caudal em um intervalo de tempo de 1 min por quadro (...
A premissa central do método de laminação PET envolve a redução de custos e a minimização das barreiras técnicas à entrada em comparação com os meios tradicionais de criação de dispositivos microfluídicos, como litografia suave ou moldagem PDMS. Como tal, as únicas etapas críticas neste protocolo são o alinhamento preciso das camadas de PET durante a laminação e a impermeabilização das bordas do dispositivo após a construção. Todas as outras partes do método pode...
Os autores não têm conflitos de interesse a divulgar.
O trabalho foi apoiado por financiamento de pesquisa do National Institutes of Health (R35GM119787 to QD). Este trabalho é baseado em esforços apoiados pelo EMBRIO Institute, contrato NSF # 2120200, um Instituto de Integração de Biologia da National Science Foundation (NSF). A imagem confocal foi realizada no Purdue Imaging Facility. Agradecemos ao Dr. Guangjun Zhang (Purdue University) por fornecer a linha Tg (UAS: GCaMP6f). Agradecemos ao Dr. David Tobin (Duke University) por fornecer a linha (cdh1-tdtomato)xt18.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
25 mm diameter round coverglass #1 thickness | Chemglass Life Sciences | CLS-1760-025 | Base mounting material. Thickness was chosen based on the specifications of the microscope lens. |
Adobe Illustrator v28.5 | Adobe | N/A | Vector editor for designing the device pattern. |
Calcium Chloride Dihydrate | Fisher | C79 | For making E3 medium. |
Design PNG Files (Online Mirror) | N/A | N/A | https://i.ibb.co/QPYj7BL/multipositionalv7-1.png https://i.ibb.co/FDpQYXc/multipositionalv7-2.png https://i.ibb.co/5TG4SB6/multipositionalv7-3.png |
Design Space for Desktop v8.39 | Cricut | N/A | Proprietary software to drive the craft cutter. |
Fusion Plus 7000L | GBC | 1703098 | Thermal laminator. This specific model was selected for quality of life features, such as maximum sheet stack size. |
German Carbide Premium Blade | Cricut | 10396595 | Replacement blade for craft cutter. |
Gray Basic Tool Set | Cricut | 10307854 | Tool set for weeding cuts, cleaning mats, and mounting PET sheets. Optional. |
Magnesium Chloride Hexahydrate | Acros Organic | 223211000 | For making E3 medium. |
Maker 3 | Cricut | 10669040 | Craft cutter. The Cricut Maker 3 was selected over the Silhouette Cameo 4 for software user friendliness, but any craft cutter capable of reading black and white images will work. |
MemGlow 560 | Cytoskeleton | MG02-10 | Red live cell dye for cell membranes. No washing needed. Used in Figure 3. |
No. 22 Carbon Scalpel Blade | Surgical Design | 22-079-697 | Scalpel blade for manual cut adjustments. Any similar craft knife (e.g., X-acto #2 knife) will also work. |
Potassium Chloride | Fisher | BP366 | For making E3 medium. |
Sodium Chloride | Fisher | BP358 | For making E3 medium. |
StandardGrip Adhesive Cutting Mat | Cricut | 10138842 | Mounting mat for craft cutter. The LightGrip cutting mat will also work, but avoid the StrongGrip and FabricGrip cutting mats as the strength of the adhesive may warp the final cut during weeding and removal. Adhesive on mats will eventually wear out with continued use; replace mats as needed. |
Stationery Tape 12 mm | Deli | 30014 | Office tape. Deli brand was chosen via testing for ease of removal after lamination. |
Super glue, liquid | Loctite | 1364076 | Cyanoacrylate glue. Glue used must be liquid. Gel formulations will not sufficiently seal or waterproof device edges. |
PET Thermal Laminating Pouches, 3 mil | Scotch | TP3854 | PET sheets with thermal adhesive. Sheets arrive as sandwiched pairs and should be separated before use. Cut with adhesive side facing down. |
PET Thermal Laminating Pouches, 5 mil | Scotch | TP5854 | PET sheets with thermal adhesive. Sheets arrive as sandwiched pairs and should be separated before use. Cut with adhesive side facing down. |
Tricaine (MS-222) | Syndel | IC10310680 | Fish anaesthetic. |
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