이 작품은 건강 보조금, R01 AG033620 (BG)의 국립 연구소에 의해 로버트 드레이퍼 기술 혁신 자금 (DAW)에 의해 지원되었다.

히트 장치 1. 건설 <ol><li> 두 클램프와 4 개의 나사 (그림 1A)를 사용하여 보드에 스프링을 부착합니다. 보드의 폭을 기준으로 클램프를 중심 보드의 가장자리 외부 클램프 플러시 서로에 대해 그들을 엉덩이. 이전에 클램프를 부착로, 봄을 통해 단단히 맞게 플라이어를 사용하여 구부. 주 : HIT 장치를 구성하는 데 필요한 자료에 대한 설명은 표 1을 참조하십시오. 스프링의 고정 단부는 기판의 가장자리로부터 1/8 인치 (3.2 mm)이어야하고, 자유 단부가 3/4 인치 (19mm)에 의해 기판 ​​위로 연장한다. 이 보드의 길이와 평행하게 놓 이도록 스프링을 조정합니다. </li><li> 벨크로 루프 접착 스트립 한번 주위 스프링의 자유 단부를 감싸. 벨크로의 바깥 쪽 가장자리는 봄의 끝과 접하게한다. 는 CRE에 의해 스프링 바이알을 고정하는 데 사용되기 때문에 중요하다 벨크로꽉 압축 피팅 체제상에서. 벨크로는 또한 많은 바이알 단시간에 처리 할 수​​ 있도록 쉽게 연결하고 튜브의 제거를 허용한다. </li><li> 단단한 나무 보드에 대해, 중심, 거꾸로 얼음 통 덮개를 놓습니다. 긴 쪽이 기판의 폭과 평행이되도​​록 얼음 통 덮개의 융 기부의 방향. 유리 병이 봄에 연결되어있는 경우 스프링 보드에 평평 거짓말을하지 않도록 얼음 통의 발생 지역, 나무 보드에 비해 1/2 인치 (13mm)보다 높은 있음을 유의하십시오. </li><li> 얼음 양동이 커버 보드와 객체 사이에 끼여하고 이동하지 않습니다 그래서, 벽과 같은 고정 된 개체에 대한 전체 장치를 밀어 넣습니다. </li><li> 테이프 판지의 바닥에 종이 각도기는 유리 병 트레이를 비행이 완벽하게 수직 위치로 철수 할 때 90 ° 마크가 봄과 정렬되도록 보드의 길이에 대해 가장자리에 서. </li></ol> 2.히트 장치의 작동 <ol><li> 빈 유리 병에 날아와 꽉 끼는면 공을 사용하여 병을 마개 -anesthetized 1과 60 CO 2 사이에. </li><li> 이 바닥에서 1 인치 (2.5 cm) 때까지 병에 목화 공을 밀어 유리 병의 바닥 1 인치 (2.5 cm)에 파리를 제한 할 것. 그것은 1 인치 (2.5 cm) 시점에서 유리 병에 선을 그어야하는 것이 도움이된다. 유리 병의 더 크거나 작은 지역에 파리를 구속하는 것은 표현형의 정도에 영향을 미칠 수 있습니다. </li><li> 파리는 CO 2에서 이동성을 복구하기 위해 5 분을 기다립니다. 이 5 분을 완전히 CO 2의 효과를 제거 할 수있는 여부를 공지되지 않는다. </li><li> 벨크로의 내부 가장자리가 유리 병 (그림 1B)의 상단과 수평이 될 때까지 유리 병에 봄의 끝을 삽입합니다. 봄이 평평 거짓말을하면, 유리 병의 1 인치 (2.5 cm)는 얼음 양동이 커버의 발생 영역을 중첩한다. 유리 병은 M을 재사용 할 수 있습니다모든 시간. </li><li> 앉아있는 동안, 왼손의 엄지와 집게 손가락을 사용하여 벨크로 지역에서 병을 개최합니다. 오른손을 사용하여 벤치 탑에 보드가 꽉 잡아. 또한, 벤치 탑에 꽉 이사회를 개최 C - 클램프를 사용합니다. </li><li> 완벽하게 직선 다시 원하는 각도에 스프링을 당깁니다. 봄을 놓습니다. 봄이 완전히 정지 할 수 있도록합니다. </li><li> 봄의 병을 제거하고 파리 ≥5 분 동안 복구 할 수 있습니다. 다른 파업으로 파리를 주제 또는 플라이 음식과 함께 유리 병에 파리를 전송합니다. 주 : 검정법의 다양한 HIT 장치로부터 공격의 표현형 효과를 평가할 수있다. 예를 들어, 수명에 영향이 손상 후 항상 생존 파리의 비율을 분석함으로써 결정될 수있다 뇌 형태에 미치는 영향은 헤드의 조직 학적 분석에 의해 측정 될 수 있고, 유전자 발현에 대한 효과는 mRNA 수준의 정량 분석​​에 의해 결정될 수있다 10. </li><li> Determin동일 파업을 실시하지 않는 제어 파리 처리하여 파업으로 인해하지 않은 절차의 전자 효과. 얼음 양동이 커버에 대한 유리 병의 영향이 큰 소음이 발생하기 때문에 청력 보호 착용 할 것. </li></ol>

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</ol>

우리는 공개 관심 없음 충돌이 없습니다.

히트 장치 방법은 TBI (11)을 관통보다는 폐쇄 머리를 유발한다는 사실에 의해 파리에서 외상을 입힐 다른 방법과 구별된다. 또한, HIT 장치 방법은 많은 초파리 TBI를 입힐 적은 시간, 노력과 기술을 걸리므 방법은 대규모의 유전자 스크린에 대한 다른 방법들보다 더 의무이다. 마지막으로, HIT 디바이스에 의해 가해진 프라이 머리 부상에 한정되지 않는다는 사실은 한계와 이점을 모두이다. ?...

An author's name was corrected in the publication of <a href="http://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/video/52905">A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila</a>. The second to last author's was spelled incorrectly. It has been updated from:
Barry Ganetky
to:
Barry Ganetzky

An author's name was corrected in the publication of <a href="http://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/video/52905">A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila</a>.

Erratum: A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila

외상성 뇌 손상 (TBI)가 외부로부터 기계적인 힘 뇌 손상으로서 정의된다. 가장 일반적으로, 같은 무딘 힘과 관성 가속과 뇌가 두개골의 내부를 공격하게 감속 힘으로 닫힌 헤드 세력 TBI 결과. 미국에서, 5 만 개인이 TBI 매년 죽고 2.5-6500000 개인, TBI의 결과와 함께 살고 물리적,인지 쇠약 포함, 1,2- 행동 문제가있는 것으로 추정된다. TBI의 결과로 인해 뇌에 차 기계 부상뿐만 아니라 시간이 3-5에 걸쳐 발생하는 뇌에 보조 세포 및 분자 부상뿐만 아니라 다른 조직에뿐만 아니라입니다. TBI 진단 및 치료 방법의 개발은 TBI는 복잡한 질병 과정이므로 어려운 것으로 입증되었다. 주 부상, 인간 생리학, 환경 요인의 변수 특성은 이기종 보조 나는 결과njuries 및 병리. 근본적인 요인 변수는 개인의 주요 손상의 중증도, 반복적 차 부상 사이의 시간, 및 연령 및 유전자형을 포함한다. 각 변수 요인이 TBI의 결과에 기여하는 방법을 이해하는 것은 진단하고 TBI 6,7 치료 방법의 개발에 도움을 가능성이 높습니다. 여기에서 우리는 TBI의 결과에 변수 요인의 기여를 묘사하는 데 사용할 수있는 초파리 (초파리)에 폐쇄 머리 TBI를 입힌하는 방법을 설명합니다. 방법은 강렬하게 손의 손바닥에 비행 문화 유리 병의 측면을 타격하는 야생형 발생 초기 관찰을 기반으로 일시적, TBI의 가능성이 결과를 무력화되기 위해 파리. 따라서, 우리는 손으로 치는 동작에서 가속 및 감속 힘을 요점을 되풀이하는 높은 충격 외상 (HIT) 장치를 건설했다. 고속 동영상 보여준다에서 단일 스트라이크장치가 원인 HIT는 머리와 몸 8 유리 병 벽을 여러 번 연락을 날아. 어느 정도, 모든 연락처는 총알과 폭포와 자동차 충돌 9 인간에게 발생하는 것과 유사한 머리 캡슐에 대해 변형 플라이 뇌가 발생할 가능성이 있습니다. 따라서, 뇌 10 실조증이어서 임시 무능력 이동성의 점진적인 회복, 헤드에서의 유전자 발현의 변화 및 진행성 신경 퇴행을 포함한 뇌 손상과 일치 HIT 장치 디스플레이 표현형 처리 날아간다. 따라서, HIT 장치는 가능한 실험 도구와 파리 위해 개발 된 기술을 이용하여 엄청난 아스날 TBI를 연구 할 수있다.

<table><tbody><tr><td>Zinc plated compression spring</td><td>The Hillman&amp;nbsp; Group</td><td>540189</td><td>9 7/8 inch (length, 2.2 cm), 15/16 inch (outer diameter, 2.4 cm), 0.12 inch (wire size, 0.3 cm)</td></tr><tr><td>Wooden board</td><td></td><td></td><td>9 inch (length, 22.9 cm), 6.5 inch (width, 16.5 cm), 0.75 inch (height, 1.9 cm)</td></tr><tr><td>Clamps</td><td>Sigma Electrical Manufacturing Corporation</td><td>49822</td><td>3.10 inch (length, 7.9 cm), 0.68 inch (width, 1.7 cm), 1.11 inch (height, 2.8 cm), EMT Two Hole Straps, click on type for 1 inch (2.5 cm) steel EMT conduit</td></tr><tr><td>Loop half of self-adhesive velcro</td><td></td><td></td><td>3 inch (length, 7.6 cm), (3/4 inch width, 1.9 cm)</td></tr><tr><td>Polyurethane ice bucket cover</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-591-45</td><td>9 1/8 inch (length, 23.2 cm), 9 1/8 inch (width, 23.2 cm), 1 1/4 inch (height, 3.2 cm)</td></tr><tr><td>Plastic fly vials</td><td>Applied Scientific</td><td>AS-510</td><td>3 11/16 inch (height, 9.4 cm), 1 1/16 inch (inner diameter, 2.7 cm), 1 1/8 inch (outer diameter, 2.9 cm)</td></tr><tr><td>Large cotton balls</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-456-883</td><td></td></tr><tr><td>Paper protractor</td><td></td><td></td><td>10 inch (diameter, 25.4 cm)</td></tr></tbody></table>

a method to inflict closed head traumatic brain injury in drosophila

외상성 뇌 손상 (TBI)는 물리적,인지 적, 행동 적 기능과 죽음의 손상을 초래, 매년 수백만의 사람에 영향을 미친다. 초파리를 이용한 연구는 신경 학적 과정을 이해에서 중요한 돌파구를 기여했다. 따라서, 인간의 TBI 병리의 세포 및 분자 기초를 이해하는 것을 목표로, 우리는 파리에 폐쇄 머리 외상성 뇌 손상을 입힐 수있는 높은 충격 외상 (HIT) 장치를 개발했다. 파리 임시 무능력 및 신경 퇴화와 같은 진행성 인간 TBI 부합 HIT 장치 디스플레이 표현형을 실시. HIT 장치는 플라이 뇌에 기계적인 손상을 초래, 유리 병의 벽에 파리를 추진하는 스프링 기반 메커니즘을 사용합니다. 장치는 자신의 조작이 간단하고 빠르며, 시공이 저렴하고 용이하며, 또한 재현 가능한 결과를 생성한다. 따라서, HIT 장치는 기존의 실험 도구와 파리는 근본적인 해결하기위한 기술과 결합 될 수있다외상성 뇌 손상에 대한 진단 및 치료의 발전으로 이어질 수 TBI에 대한 질문. 특히, HIT 장치 TBI 병리의 유전 기초를 이해하기 위해 대규모의 유전자 스크린을 수행하는데 사용될 수있다.

우리는 파리가 차 손상 후 곧 죽을 이유를 이해하는 데 관심이 있습니다. 죽음을 정량화하기 위해, 우리는 차 부상의 24 시간 이내에 사망 파리의 비율을 24 시간에서 사망 지수 (MI 24)를 결정했다. 히트 장치에서 파업을 실시 파리는 플라이 식품 유리 병에 25 ℃에서 배양하고, 죽은 파리의 수는 24 시간 후에 계산되었다. 우리는 MI (24)에 영향을 미치는 요소를 식별하기 위해이 방법을...

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A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila

여기에서 우리는 초파리에서 폐쇄 머리 외상성 뇌 손상 (TBI)를 입힐 수있는 방법을 설명합니다. 이 방법은 파리에 사용할 실험 도구와 기술의 광대 한 배열을 사용 TBI 병리의 기초 세포와 분자 메커니즘을 조사하기 위해 게이트웨이를 제공합니다.

폐쇄 머리 외상성 뇌 손상을 입힐 수있는 방법<em&gt; 초파리</em

Traumatic brain injury (TBI) affects millions of people each year, causing impairment of physical, cognitive, and behavioral functions and death. Studies ...

a-method-to-inflict-closed-head-traumatic-brain-injury-in-drosophila

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Neuroscience

A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila

11.5K 조회수.  University of Wisconsin-Madison.  여기에서 우리는 초파리에서 폐쇄 머리 외상성 뇌 손상 (TBI)를 입힐 수있는 방법을 설명합니다. 이 방법은 파리에 사용할 실험 도구와 기술의 광대 한 배열을 사용 TBI 병리의 기초 세포와 분자 메커니즘을 조사하기 위해 게이트웨이를 제공합니다. 

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Using Microfluidics Chips for Live Imaging and Study of Injury Responses in Drosophila Larvae

Live imaging is an important technique for studying cell biological processes, however this can be challenging in live animals. The translucent cuticle of the Drosophila larva makes it an attractive model organism for live imaging studies. However, an important challenge for live imaging techniques is to noninvasively immobilize and position an animal on the microscope. This protocol presents a simple and easy to use method for immobilizing and imaging Drosophila larvae on a polydimethylsiloxane (PDMS) microfluidic device, which we call the 'larva chip'. The larva chip is comprised of a snug-fitting PDMS microchamber that is attached to a thin glass coverslip, which, upon application of a vacuum via a syringe, immobilizes the animal and brings ventral structures such as the nerve cord, segmental nerves, and body wall muscles, within close proximity to the coverslip. This allows for high-resolution imaging, and importantly, avoids the use of anesthetics and chemicals, which facilitates the study of a broad range of physiological processes. Since larvae recover easily from the immobilization, they can be readily subjected to multiple imaging sessions. This allows for longitudinal studies over time courses ranging from hours to days. This protocol describes step-by-step how to prepare the chip and how to utilize the chip for live imaging of neuronal events in 3rd instar larvae. These events include the rapid transport of organelles in axons, calcium responses to injury, and time-lapse studies of the trafficking of photo-convertible proteins over long distances and time scales. Another application of the chip is to study regenerative and degenerative responses to axonal injury, so the second part of this protocol describes a new and simple procedure for injuring axons within peripheral nerves by a segmental nerve crush.

Using Microfluidics Chips for Live Imaging and Study of Injury Responses in Drosophila Larvae

Drosophila larvae are an attractive model system for live imaging due to their translucent cuticle and powerful genetics. This protocol describes how to utilize a single-layer PDMS device, called the &#39;larva chip&#39; for live imaging of cellular processes within neurons of 3rd instar Drosophila larvae.

라이브 이미징 및 상해 응답의 연구에 대한 마이크로 유체 칩을 사용<em&gt; 초파리</em&gt; 애벌레

Live imaging is an important technique for studying cell biological processes, however this can be challenging in live animals. The translucent cuticle of ...

연구

생체공학

A Novel Method to Model Chronic Traumatic Encephalopathy in Drosophila

Chronic Traumatic Encephalopathy (CTE) is an established neurodegenerative disease that is closely associated with exposure to repetitive mild Traumatic Brain Injury (mTBI). The mechanisms responsible for its complex pathological changes remain largely elusive, despite a recent consensus to define the neuropathological criteria. Here, we describe a novel method to develop a model of CTE in Drosophila melanogaster&#160;(Drosophila&#160;)&#160;in an attempt to identify the key genes and pathways that lead to the characteristic hyperphosphorylated tau accumulation and neuronal death in the brain. Adjustable-strength impacts to inflict mild closed injury are delivered directly to the fly head, subjecting the head to rapid acceleration and deceleration. Our method eliminates the potential problems inherent with other Drosophila mTBI models (e.g.,animal death might be induced by damage to other parts of the body or to internal organs). The less labor- and cost-intensive animal care, short life span, and extensive genetic tools make the fruit fly ideal to study CTE pathogenesis and make it possible to perform large-scale, genome-wide forward genetic and pharmacological screens. We anticipate that the ongoing characterization of the model will generate important mechanistic insights on disease prevention and therapeutic approaches.

A Novel Method to Model Chronic Traumatic Encephalopathy in Drosophila

Here, we describe a new approach to inflict closed-head traumatic brain injury in Drosophila melanogaster. Our method has the advantage of directly delivering repetitive impacts with adjustable strength to the head alone. Further exploration of the invertebrate system will help to illuminate the pathogenesis of chronic traumatic encephalopathy.

만성 외상성 뇌증 모델링을위한 새로운 방법<em&gt; Drosophila</em

Chronic Traumatic Encephalopathy (CTE) is an established neurodegenerative disease that is closely associated with exposure to repetitive mild Traumatic ...

신경과학

Monitoring Cell-to-cell Transmission of Prion-like Protein Aggregates in Drosophila Melanogaster

Protein aggregation is a central feature of most neurodegenerative diseases, including Alzheimer&#39;s disease (AD), Parkinson&#39;s disease (PD), Huntington&#39;s disease (HD), and amyotrophic lateral sclerosis (ALS). Protein aggregates are closely associated with neuropathology in these diseases, although the exact mechanism by which aberrant protein aggregation disrupts normal cellular homeostasis is not known. Emerging data provide strong support for the hypothesis that pathogenic aggregates in AD, PD, HD, and ALS have many similarities to prions, which are protein-only infectious agents responsible for the transmissible spongiform encephalopathies. Prions self-replicate by templating the conversion of natively-folded versions of the same protein, causing spread of the aggregation phenotype. How prions and prion-like proteins in AD, PD, HD, and ALS move from one cell to another is currently an area of intense investigation. Here, a Drosophila melanogaster model that permits monitoring of prion-like, cell-to-cell transmission of mutant huntingtin (Htt) aggregates associated with HD is described. This model takes advantage of powerful tools for manipulating transgene expression in many different Drosophila tissues and utilizes a fluorescently-tagged cytoplasmic protein to directly report prion-like transfer of mutant Htt aggregates. Importantly, the approach we describe here can be used to identify novel genes and pathways that mediate spreading of protein aggregates between diverse cell types in vivo. Information gained from these studies will expand the limited understanding of the pathogenic mechanisms that underlie neurodegenerative diseases and reveal new opportunities for therapeutic intervention.

Monitoring Cell-to-cell Transmission of Prion-like Protein Aggregates in Drosophila Melanogaster

Accumulating evidence supports the idea that pathogenic protein aggregates associated with neurodegenerative diseases spread between cells with prion-like properties. Here, we describe a method that enables visualization of cell-to-cell spreading of prion-like aggregates in the model organism, Drosophila melanogaster.

초파리 Melanogaster 에서 프리온과 같은 단백질의 셀 전송 모니터링

Protein aggregation is a central feature of most neurodegenerative diseases, including Alzheimer&#39;s disease (AD), Parkinson&#39;s disease (PD), ...

A Drosophila In Vivo Injury Model for Studying Neuroregeneration in the Peripheral and Central Nervous System

The regrowth capacity of damaged neurons governs neuroregeneration and functional recovery after nervous system trauma. Over the past few decades, various intrinsic and extrinsic inhibitory factors involved in the restriction of axon regeneration have been identified. However, simply removing these inhibitory cues is insufficient for successful regeneration, indicating the existence of additional regulatory machinery. Drosophila melanogaster, the fruit fly, shares evolutionarily conserved genes and signaling pathways with vertebrates, including humans. Combining the powerful genetic toolbox of flies with two-photon laser axotomy/dendriotomy, we describe here the Drosophila sensory neuron &#8211; dendritic arborization (da) neuron injury model as a platform for systematically screening for novel regeneration regulators. Briefly, this paradigm includes a) the preparation of larvae, b) lesion induction to dendrite(s) or axon(s) using a two-photon laser, c) live confocal imaging post-injury and d) data analysis. Our model enables highly reproducible injury of single labeled neurons, axons, and dendrites of well-defined neuronal subtypes, in both the peripheral and central nervous system.

A Drosophila In Vivo Injury Model for Studying Neuroregeneration in the Peripheral and Central Nervous System

Here, we present a protocol using the Drosophila sensory neuron - dendritic arborization (da) neuron injury model, which combines in vivo live imaging, two-photon laser axotomy/dendriotomy, and the powerful fly genetic toolbox, as a platform for screening potential promoters and inhibitors of neuroregeneration.

주변에 Neuroregeneration 중앙 신 경계를 연구 하 고 대 한 Vivo에서 초파리 부상 모델

The regrowth capacity of damaged neurons governs neuroregeneration and functional recovery after nervous system trauma. Over the past few decades, various ...

의학

Stimulating and Analyzing Adult Neurogenesis in the Drosophila Central Brain

The molecular and cellular mechanisms underlying neurogenesis in response to disease or injury are not well understood. However, understanding these mechanisms is crucial for developing neural regenerative therapies. Drosophila melanogaster is a leading model for studies of neural development but historically has not been exploited to investigate adult brain regeneration. This is primarily because the adult brain exhibits very low mitotic activity. Nonetheless, penetrating traumatic brain injury (PTBI) to the adult Drosophila central brain triggers the generation of new neurons and new glia. The powerful genetic tools available in Drosophila combined with the simple but rigorous injury protocol described here now make adult Drosophila brain a robust model for neural regeneration research. Provided here are detailed instructions for (1) penetrating injuries to the adult central brain and (2) dissection, immunohistochemistry, and imaging post-injury. These protocols yield highly reproducible results and will facilitate additional studies to dissect mechanisms underlying neural regeneration.

Stimulating and Analyzing Adult Neurogenesis in the Drosophila Central Brain

This article provides detailed protocols for inflicting Penetrating Traumatic Brain Injury (PTBI) to adult Drosophila and examining the resulting neurogenesis.

Drosophila 중앙 두뇌에 있는 성인 신경 발생을 자극하고 분석합니다

The molecular and cellular mechanisms underlying neurogenesis in response to disease or injury are not well understood. However, understanding these ...

Mechanically Injuring Drosophila Larvae Segmental Nerves to Induce Neurodegeneration

Source: Danella, E. B., et al. <a href="https://appjove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/56128">A Simple Neuronal Mechanical Injury Methodology to Study Drosophila Motor Neuron Degeneration.</a> J. Vis. Exp. (2017).
The video demonstrates inducing neurodegeneration in Drosophila larva segmental nerves via mechanical injury. The ventral cuticle of anesthetized larvae is pinched using forceps to cause injury to the segmental nerves. The injured larvae are maintained with food, allowing the injury to cause degeneration of the motor neurons in the nerves, causing disruption of their neuromuscular junctions (NMJs).

신경퇴행을 유도하기 위해 초파리 유충 분절 신경을 기계적으로 손상시키는 것

1. Preparation of Reagents and Equipment 

	Prepare 1x Dissection Buffer (70 mM NaCl, 5 mM KCl, 0.02 mM CaCl2, 20 mM MgCl2, 10 mM NaHCO3, 115 mM sucrose, ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Neuropathology

Neurodegenerative Diseases

Drosophila Adult Brain Dissection: A Method in Fly Neurobiology

Source: Kelly, S. M., et al. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/video/56174/" target="_blank">Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains</a>. J. Vis. Exp. (2017).
This video describes how to dissect and isolate the adult Drosophila brain&#8211;a procedure necessary for visualizing the organ, which is otherwise obscured by the cuticle, eye, and tracheal tissue. The example protocol shows a detailed demonstration yielding high-quality preparations that can be used for immunostaining and imaging methods in Drosophila neurobiology.

초파리 성인 뇌 해부: 파리 신경생물학의 방법

Source: Kelly, S. M., et al. Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains. ...

생물학

Drosophila melanogaster (fruit fly)

Adult

Inducing Targeted Neuronal Injury Using a High-Power Laser in a Drosophila Larva

Source: Li, D., Li, F., et al. <a href="https://appjove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/57557">A Drosophila in vivo injury model for studying neuroregeneration in the peripheral and central nervous system.</a> J. Vis. Exp. (2018)
This video demonstrates a method for inducing targeted neuronal injury in Drosophila larvae using a high-power laser. After positioning the larva under a microscope, a low-power laser scans for fluorescent neurons, and then the laser power is increased to induce localized damage. The injury is confirmed by increased fluorescence and a crater at the injury site.

Source: Li, D., Li, F., et al. A Drosophila in vivo injury model for studying neuroregeneration in the peripheral and central nervous system. J. Vis. Exp. ...

Trauma

Source: Katzenberger, R. J., et al.,&#160;<a href="https://appjove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/52905">A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila.</a> J. Vis. Exp. (2015).
The video demonstrates the use of a High-Impact Trauma (HIT) device to induce closed-head traumatic brain injury (TBI) in Drosophila. TBI causes mechanical brain trauma affecting neuronal function, which over time leads to neurodegeneration and mortality.

Source: Katzenberger, R. J., et al.,&#160;A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila. J. Vis. Exp. (2015).
The video ...

A Technique to Inflict Closed-Head Traumatic Brain Injury in Drosophila Flies

Source: Sun, M., et al. <a href="https://appjove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/55602">A Novel Method to Model Chronic Traumatic Encephalopathy in Drosophila.</a> J. Vis. Exp. (2017).
This video demonstrates a procedure to inflict a closed-head traumatic injury in anesthetized Drosophila flies using a strike device with a gas-propelled impactor. The injury affects neuronal function and impairs walking ability.

초파리 파리에서 폐쇄성 두부 외상성 뇌 손상을 입히는 기술

1. Assembly of the Strike Device (Figure 1)

	Remove the plunger from a 1 mL tuberculin syringe. Cut the barrel at the 1 mL mark.
	Remove an aerosol ...

폐쇄 머리 외상성 뇌 손상을 입힐 수있는 방법

요약

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