Gli autori ringraziano il finanziamento del monitoraggio Forest Service Health Protection Evaluation US Forest e programmi di sviluppo della tecnologia speciale che hanno sostenuto lo sviluppo, la modifica e l&#39;applicazione del protocollo descritto qui di identificare gli alberi che sono resistenti e sensibili alla cocciniglia di faggio. Siamo anche grati al Holden Arboretum, Kirtland, OH, per il loro continuo collaborazione e il sostegno del nostro programma di screening resistenza faggio americano.

1 pianta Materiale:. Mature Campo Trees, in vaso piante, in vaso o innesti <ol><li> Per le prove sul campo, selezionare maturi sani faggi americani che mostrano segni di infestazione di scala o di malattia per i test di resistenza possibile. Visibilmente alberi sensibili dovranno anche essere identificati per essere usato come controllo (Figura 1). </li><li> Per testare piantine o innesti in vaso, raccogliere e germinare faggine come descritto nel Koch &amp; Carey, 2004 o rampollo innesto come descritto nella Carey et al, 2013. </li><li> Crescere piantine o innesti in invasatura miscela di suolo modificato con 47 g di micronutrienti, 477 g lenta concime 15N-3.9P-9.9K, 700 g perlite grossolana e 75 g di solfato di alluminio per 2.8 cu. borsa ft. Se necessario più avanti nella stagione di crescita, concimare le piante settimanali con solubile 17N-1.3P-14.1K a 200 ppm di azoto. </li><li> Durante la stagione di crescita, mantenere le piante in una casa all&#39;ombra. Permettono alle piante di andare dormiente fuori in autunno prima di spostarlidi un impianto di stoccaggio a temperatura controllata (~ 4 ° C), da novembre ad aprile. </li></ol> 2. Insieme di Faggio Scala uova <ol><li> In uno stand BBD infestata, ispezionare gli alberi pesantemente infestate (facilmente identificabili dalla loro &quot;imbiancato&quot; apparenza, figura 1A) con una lente di ingrandimento mano per confermare la presenza di uova, in genere abbondanti da metà luglio a metà agosto. </li><li> Utilizzare un pennello per spazzolare delicatamente le macchie cerose bianche di cocciniglie adulti, uova e altri detriti, in un sacchetto di plastica raccolta un gallone sigillabile (Figura 1B). Raccogliere da un minimo di tre alberi differenti almeno 12 m di distanza. </li><li> Se necessario, memorizzare uova nella sacca di raccolta sigillato per due settimane a 4 ° C. Un piccolo pezzo di nastro (2,5 cm quadrati) di inumidita polietilene espanso all&#39;interno del sacchetto per evitare che le uova si secchi. </li><li> Per separare le uova scala (0,15 x 0,25 mm) dagli adulti (0,60 millimetri) e detritis, costruire un setaccio con un corto pezzo di 2 &#39;tubo in PVC ed un giunto a sostenere un pezzo quadrato di 250 micron maglia di nylon (Figura 2). </li><li> Svuotare la miscela di adulti, cera, uova e detriti dalla sacca di raccolta sul setaccio e utilizzare un piccolo pennello per incoraggiare delicatamente le uova di passare attraverso le maglie in una piastra di Petri di vetro sotto. Piatti di plastica Petri dovrebbero essere evitati perché in possesso di elettricità più statica, rendendo difficile per spostare le uova. Uova prima e dopo setacciatura sono mostrati in Figura 3. </li><li> Uova purificati possono essere memorizzati nella capsula di Petri a 4 ° C per almeno una settimana. Per evitare che le uova si asciughi, nastro adesivo un pezzo umido di schiuma al coperchio e sigillare con Parafilm. </li></ol> 3. Egg Viabilità saggi <ol><li> Per valutare la vitalità uovo, utilizzare una siringa da 10 cc di applicare un sottile anello di vaselina intorno alla circonferenza della parte inferiore di una piastra di Petri 60 millimetri di vetro (Figura 4A </strong&gt;). </li><li> Trasferire circa 100 uova al centro del ring, mettere il coperchio sulla piastra di Petri e sigillare con Parafilm. Lasciare la piastra di Petri sigillata rimanga indisturbato a temperatura ambiente per 2 settimane o 3 settimane se uova sono stati conservati a 4 ° C prima di iniziare il test. </li><li> Ninfe tratteggiate saranno bloccati nella vaselina e possono essere facilmente contato, e le uova vuote sono facilmente distinguibili dalle uova non schiuse per il loro colore e la lucentezza (Figura 4B). Calcolo della redditività dividendo il numero di ninfe dalla somma delle uova vuoti più le rimanenti uova completi. Buona redditività dovrebbe essere nel 75% al ​​90% schiusi gamma uova. </li></ol> 4. Resistenza Scala Proiezione del Grande matura Faggi nel campo <ol><li> Per un test quantitativo, contare su 500 uova utilizzando un microscopio da dissezione e utilizzando una piccola spatola delicatamente cospargere attraverso il centro di un predampened, a celle aperte 10 x 15 x 1,3 centimetri rettangolo di polietilene espanso. Asmorzare schiuma, bagnarlo poi spremere quanta più acqua possibile. Per un test qualitativo, 500 uova possono essere contate e collocati in una piccola fiala di vetro e una linea di &quot;riempimento&quot; disegnata che può essere utilizzato per misurare ulteriori batch di circa 500 uova. </li><li> Posizionare il rilievo di gomma piuma sull&#39;albero prova con il lato rivolto verso uovo contro la corteccia. Tenere il pad in luogo con la corda, corda, spago o filo hardware plastificato. Materiale plastico o metallico a base dovrebbero essere utilizzati invece di materiali in fibra naturali che sono più facilmente eliminato dalla fauna selvatica. </li><li> Linea la parte superiore e lati di un cm pezzo di pellicola permeabile al vapore casa impermeabile con base di acetato adesivo siliconico pretagliati 23 x 30 e posizionarlo sopra il pad test di schiuma. Premere i bordi della pellicola fino alla albero per creare una tenuta stagna. Mettere spago di nylon o filo hardware rivestito di plastica intorno all&#39;albero e avvolgere casa, per tenerlo in posizione mentre l&#39;adesivo (Figura 5). </li><li> Posizionare un minimo di duetamponi di test di ciascun albero di test, preferibilmente su lati opposti del bolo. In ogni sito, mettere tamponi di test su almeno 2 alberi sensibili (con evidente infestazione scala naturale) come controllo. Prima di posizionare gli elettrodi di prova su alberi di comando, rimuovere le cocciniglie naturali o uova con una ditta di setole pennello. Nota: pastiglie schiuma con le uova possono anche essere collocati sugli alberi al fine di uova scala allevamento, che possono essere particolarmente utili nelle zone dove il livello di infestazione è basso. </li></ol> 5. Resistenza Scala Proiezione del vaso Piantine o innesti <ol><li> Per il test, selezionare alberi in vaso con un diametro minimo di 1 cm (pinza a 5 cm sopra la linea del suolo) che sono abbastanza alto per avere almeno 2 pastiglie di test separati affidamento su di esse. Potare piccoli rami laterali, se necessario, per fare spazio per le pastiglie di prova. </li><li> Utilizzare un microscopio dissezione a contare 150 uova e spargere sopra un pretagliati e inumidito 2,5 x 7,6 x 1,3 centimetri polietilene a cellule aperterilievo di gomma piuma lene. </li><li> Fissare il pad schiuma piantina con il lato uovo contro la corteccia, con filo plastificato. Avvolgere un piccolo quadrato di avvolgere casa intorno alla piantina appena sopra la schiuma e sigillare con silicone acetato-based (vedere Figura 6A). </li><li> Riportare le famiglie di piantine sensibili o innesti come controlli. </li></ol> 6. Raccolta dati Nota: circa 52-57 settimane dopo l&#39;immissione le spugne e le uova sugli alberi di prova, i dati possono essere raccolti. E &#39;importante che questo non è fatto solo dopo adulti hanno cominciato a deporre le uova in modo che la loro capacità di riprodursi può essere determinato. Su alcuni alberi resistenti non è raro vedere un piccolo numero di adulti stabilire ma si verificano nessuna riproduzione. <ol><li> Rimuovere con attenzione il rilievo di gomma piuma e contare il numero di cocciniglie adulto stabiliti sulla corteccia utilizzando una lente o lente di ingrandimento (10X). </li><li> Quando il tampone di schiuma viene rimosso, non è uNcommon per alcuni adulti e la maggior parte dei cluster di uova di essere tirato fuori della struttura con la schiuma (vedi Figura 7). Utilizzando un microscopio da dissezione, contare i cluster di uova e gli adulti che sono rimasti attaccato al tappetino in gomma. </li></ol>

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	<li>Houston, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+to+artificially+infest+beech+bark+with+the+scale,+Cryptococcus+fagisuga+(Lindinger).">A technique to artificially infest beech bark with the scale, Cryptococcus fagisuga (Lindinger).</a> U.S. Forest Service. , (1982).</li><li>Houston, D. 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A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alternate+year+beechnut+production+and+its+influence+on+bear+and+marten+populations.">Alternate year beechnut production and its influence on bear and marten populations.</a> Beech Bark Disease: Proceedings of the Beech Bark Disease Symposium. , 79-87 (2005).</li><li>Koch, J. L., Carey, D. W., Mason, M. E., Nelson, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+beech+scale+resistance+in+full-+and+half-sib+families.">Assessment of beech scale resistance in full- and half-sib families.</a> Can. J. For. Res. 40, 265-272 (2010).</li><li>Koch, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beech+bark+disease:+The+oldest+&#8220;new&#8221;+threat+to+American+beech+in+the+United+States.">Beech bark disease: The oldest &#8220;new&#8221; threat to American beech in the United States.</a> Outlooks Pest Manag. 21, 64-68 (2010).</li><li>Koch, J. L., Mason, M. E., Carey, D. W., Palmieri, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Screening+for+resistance+to+beech+bark+disease:+improvements+and+results+from+seedlings+and+grafted+field+selections.">Screening for resistance to beech bark disease: improvements and results from seedlings and grafted field selections.</a> Proceedings of the 4th International Workshop on Genetics of Host-Parasite Interactions in Forestry. , (2012).</li><li>Leak, W. 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L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hot+callusing+for+propagation+of+American+beech+by+grafting.">Hot callusing for propagation of American beech by grafting.</a> HortSci. 48, 620-624 (2013).</li><li>Koch, J. L., Carey, W. W., Evans, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+genetics+of+resistance+of+American+beech+to+beech+bark+disease:+knowledge+through+2004.">The genetics of resistance of American beech to beech bark disease: knowledge through 2004.</a> Beech Bark Disease: Proceedings of the Beech Bark Disease Symposium. , 98-105 (2005).</li></ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

I passaggi critici necessari per il successo di questo test includono l&#39;esecuzione di un test di vitalità delle uova e l&#39;impiego di controlli sensibili in ogni sito testato, e con materiali vaso. E &#39;anche importante utilizzare più di un tampone di test per albero o piantina. Abbiamo trovato che sia nel campo e nelle prove più controllati su piante in vaso, una frequente fonte di errore può essere guasto pad. Ad esempio, nel campo, anche con nostra modifica di coprire il tampone di test con l&#39;involucr...

Beech malattia corteccia (BBD) ha avuto un impatto negativo sulla faggio americano in Nord America dopo l&#39;introduzione della cocciniglia faggio invasiva, Cryptococcus fagisuga, nella provincia canadese della Nuova Scozia alla fine del 1890 3. Questo complesso insetto-malattia è iniziata quando la cocciniglia faggio inserisce il suo stiletto di alimentazione nella corteccia creando piccole fessure che prevedono ingresso per l&#39;infezione da uno dei Neonectria specie di funghi (Neonectria ditissima o Neonectria faginata). Mentre i miceli fungini crescono, ampie aree di tessuto può morire, alla fine cingendo completamente l&#39;albero. Il danno dalla malattia indebolisce l&#39;albero, il che rende incline a rompersi in venti forti 4. Livelli di mortalità nella prima ondata della malattia sono stati segnalati per essere alto come il 50% 5. Alberi sopravvissuti sono spesso gravemente deformati come cancri formano ridurre il valore dell&#39;albero come un prodotto di legno.0; Tali alberi hanno una propensione per radice di germinazione che porta alla formazione di macchie &quot;faggio&quot; che impediscono altre specie più desiderabili introduca, riducendo il valore economico ed ecologico del supporto 6. Sebbene la malattia corteccia del faggio non rischia di portare all&#39;estinzione del faggio americano, altera stare composizione e la salute porta ad una diminuzione del cibo e habitat per la fauna selvatica 7,8. In stand affetti da BBD per molti anni, sono stati segnalati alberi che rimangono privi di qualsiasi sintomo della malattia. Prove di inoculazione artificiale hanno dimostrato che questi alberi sono resistenti all&#39;insetto scala 2. Senza infestazione scala, ci sono poche possibilità di infezione Neonectria, minimizzando l&#39;impatto del fungo. Mortalità larga scala in faggio americano a causa di infezione Neonectria in assenza di infestazione scala prima ha maistati segnalati, così resistenza alla scala faggio risultati insetti in resistenza BBD. Recenti ricerche sulla gestione dei BBD è concentrata sull&#39;identificazione, la propagazione, l&#39;allevamento, e il mantenimento di faggi americani con resistenza alla cocciniglia di faggio. Studi genetici hanno dimostrato che la resistenza alla cocciniglia è ereditabile e di un&#39;attenta selezione e l&#39;allevamento di alberi resistenti può portare a un significativo miglioramento in una sola generazione 9. Questa scoperta ha alimentato gli sforzi di stato e forestali nazionali manager negli Stati Uniti per stabilire arboreti da seme regionali di resistenti faggio americano per fornire una fonte di sementi geneticamente diverse BBD resistenti alle piantagioni di restauro 10,11. La ricerca ha anche indicato che la manipolazione selvicolturale della genetica dello stand dalla rimozione di alberi sensibili e conservazione di alberi resistenti può provocare in stand miglioramento 9,12. &lt;/ P&gt; Gestione delle BBD attraverso attività di miglioramento degli alberi o svolgendo prescrizioni selvicolturali richiede la capacità di selezionare e distinguere tra faggi scala resistente e suscettibile. I metodi qui presentati sono stati adattati da un metodo introdotto da Dave Houston per inoculare artificialmente piantine con le uova scala faggio 1. Il metodo può essere usato come strumento di screening per identificare quantitative trait loci (QTL) associati a resistenza o di distinguere tra piantine in vaso resistenti e suscettibili o ramet innestati negli studi genetici. In alternativa, può essere utilizzato per lo screening alberi maturi nel campo per identificare alberi resistenti allo sviluppo frutteto seme, o ritenzione nel campo. Alberi sensibili, possano essere identificati e rimossi per ridurre al minimo l&#39;impatto della malattia.

<table><tbody><tr><td>Nylon Mesh Sheet, 250 micron</td><td><a href="http://www.amazonsupply.com/dp/B000FMWH1S/ref=sp_dp_g2c_asin" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Small Parts</a></td><td>CMN-0250-D</td><td>Mesh opening size: 250 microns square, % of open area: 34, thread diameter: 180 micron, width: 24&amp;rdquo;, Length: 12&amp;rdquo;, Package quantity: 1</td></tr><tr><td>Tyvek Home Wrap</td><td><a href="http://www.lowes.com/pd_14582-2020-D13499991_0__" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> DuPont</a></td><td>D1349991</td><td>9 ft x 150 ft roll, can ask for it to be cut in half.</td></tr><tr><td>Polyethylene foam, &amp;frac12;&amp;rdquo; thick&amp;nbsp;</td><td><a href="http://www.colsfoam.com/apcfp/products.htm" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Columbus Foam Products</a></td><td></td><td>2 ft x 50 ft roll</td></tr><tr><td>MetroMix 510</td><td><a href="http://sungro.com/products_displayProduct.php?product_id=118&amp;amp;brand_id=17" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Sun Gro Horticulture</a></td><td></td><td>2.8 cu. ft. bark, peat moss, vermiculite, bark ash, starter nutrient charge (with Gypsum), slow release nitrogen and&amp;nbsp;dolomitic limestone.</td></tr><tr><td>Osmocote Plus 15-9-12</td><td><a href="http://everris.us.com/product/15-9-12" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Everris</a></td><td>E903206</td><td>Standard 3-4 month release</td></tr><tr><td>Sight Savers 10X</td><td><a href="http://www.amleo.com/Bausch---Lomb-Illuminating-Codington-Magnifier-10x/p/CM10/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Bausch &amp;amp; Lomb</a></td><td>813434</td><td>10X magnification illuminated coddington</td></tr><tr><td>Nikon Mini Field Stereoscope</td><td><a href="http://www.opticsplanet.com/nikon-fieldmicroscope.html" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Nikon</a></td><td>7314</td><td>20X magnification</td></tr><tr><td>Silicone II clear</td><td><a href="http://www.midlandhardware.com/159538.html" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> GE</a></td><td>159538</td><td>2.9 oz clear window &amp;amp; door caulk</td></tr></tbody></table>

a technique to screen american beech for resistance to the beech scale insect (cryptococcus fagisuga lind.)

Faggio corteccia malattia (BBD) si traduce in alti livelli di mortalità iniziale, lasciando dietro gli alberi superstiti che sono notevolmente indeboliti e deformati. La malattia è avviata da attività dell&#39;insetto scala faggio invasiva, Cryptococcus fagisuga, che crea punti di ingresso per l&#39;infezione da una delle specie di funghi Neonectria alimentazione. Senza infestazione scala, ci sono poche possibilità di infezione fungina. Utilizzo di uova scala per infestare artificialmente alberi sani in stand pesantemente colpiti BBD dimostrato che questi alberi erano resistenti alla porzione cocciniglia del complesso malattia 1. Qui vi presentiamo un protocollo che abbiamo sviluppato, basato sulla tecnica infestazione artificiale da Houston 2, che può essere usato per individuare alberi scala resistente nel settore e in piccole piantine in vaso e innesti. L&#39;identificazione degli alberi di scale-resistente è una componente importante della gestione del BBD attraverso alberoprogrammi di miglioramento e la manipolazione selvicolturale.

La Figura 6 mostra una piantina resistente (C) e due piantine sensibili (D, E) esibendo diversi gradi di sensibilità. Un esempio di ciò che un albero maturo suscettibile assomiglia a 57 settimane dopo la prova infestazione artificiale è stato istituito è mostrato in Figura 5B. Quando la schiuma viene staccato dall&#39;albero, non è raro per cocciniglie e loro grappoli d&#39;uovo per rimanere attaccato alla schiuma come mostrato in Figura 7,...

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A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect Cryptococcus fagisuga Lind.

Beech malattia corteccia è iniziata dalle attività della cocciniglia di faggio che creano punti di ingresso fungine nella corteccia di alimentazione. Gli alberi che sono resistenti alla cocciniglia sono anche resistenti alle malattie. Qui vi presentiamo il protocollo che abbiamo sviluppato per lo screening individuali faggi per la resistenza scala di faggio.

Una tecnica a Screen Faggio americano per la Resistenza al Beech cocciniglia (<em&gt; Cryptococcus fagisuga</em&gt; Lind.)

Beech bark disease (BBD) results in high levels of initial mortality, leaving behind survivor trees that are greatly weakened and deformed.&#160;The ...

a-technique-to-screen-american-beech-for-resistance-to-beech-scale

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Environment

A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect (Cryptococcus fagisuga Lind.)

9.5K Views.  US Forest Service.  Beech malattia corteccia è iniziata dalle attività della cocciniglia di faggio che creano punti di ingresso fungine nella corteccia di alimentazione. Gli alberi che sono resistenti alla cocciniglia sono anche resistenti alle malattie. Qui vi presentiamo il protocollo che abbiamo sviluppato per lo screening individuali faggi per la resistenza scala di faggio. 

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Technique for Studying Arthropod and Microbial Communities within Tree Tissues

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms. Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear young, feed, or hide from natural enemies or harsh environmental conditions outside of the tree. Organisms that persist within the phloem habitat are difficult to observe given their location under bark. We provide a technique to preserve intact phloem and prepare it for experimentation with invertebrates and microorganisms. The apparatus is called a &#8216;phloem sandwich&#8217; and allows for the introduction and observation of arthropods, microbes, and other organisms. This technique has resulted in a better understanding of the feeding behaviors, life-history traits, reproduction, development, and interactions of organisms within tree phloem. The strengths of this technique include the use of inexpensive materials, variability in sandwich size, flexibility to re-open the sandwich or introduce multiple organisms through drilled holes, and the preservation and maintenance of phloem integrity. The phloem sandwich is an excellent educational tool for scientific discovery in both K-12 science courses and university research laboratories.

We provide a technique to preserve intact tree phloem and prepare it for observation. We create an apparatus called a phloem sandwich that allows for the introduction and observation of arthropods, microbes, and other organisms that inhabit phloem tissues.

Tecnica per lo Studio artropodi e comunità microbiche all&#39;interno Albero tessuti

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms.  Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear ...

Ricerca

Ambiente

Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer

Emerald ash borer (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), the most destructive forest insect to have invaded North America, has killed hundreds of millions of forest and landscape ash (Fraxinus spp.) trees. Several artificial trap designs to attract and capture EAB beetles have been developed to detect, delineate, and monitor infestations. Double-decker (DD) traps consist of two corrugated plastic prisms, one green and one purple, attached to a 3 m tall polyvinyl chloride (PVC) pipe supported by a t-post. The green prism at the top of the PVC pipe is baited with cis-3-hexenol, a compound produced by ash foliage. Surfaces of both prisms are coated with sticky insect glue to capture adult EAB beetles. Double-decker traps should be placed near ash trees but in open areas, exposed to sun. Double-decker trap construction and placement are presented here, along with a summary of field experiments demonstrating the efficacy of DD traps in capturing EAB beetles. In a recent study in sites with relatively low EAB densities, double-decker traps captured significantly more EAB than green or purple prism traps or green funnel traps, all of which are designed to be suspended from a branch in the canopy of ash trees. A greater percentage of double decker traps were positive, i.e., captured at least one EAB, than the prism traps or funnel traps that were hung in ash tree canopies.

Effective traps to attract and capture the emerald ash borer (EAB) are a key element of detecting and managing this invasive pest. Double-decker traps, placed in full sun near ash trees, incorporate visual and olfactory cues and were more likely to capture EAB than other trap designs in field trials.

Edificio a due piani trappole per individuazione tempestiva di smeraldo cenere Borer

Emerald ash borer (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), the most destructive forest insect to have invaded North America, has killed hundreds of millions ...

The Hawaii Protocol for Scientific Monitoring of Coffee Berry Borer: a Model for Coffee Agroecosystems Worldwide

Coffee berry borer (CBB) is the most devastating insect pest for coffee crops worldwide. We developed a scientific monitoring protocol that is aimed at capturing and quantifying the dynamics and impact of this invasive insect pest as well as the development of its host plant across a heterogeneous landscape. The cornerstone of this comprehensive monitoring system is timely georeferenced data collection on CBB movement, coffee berry infestation, mortality by the fungus Beauveria bassiana, and coffee plant phenology via a mobile electronic data recording application. This electronic data collection system allows field records to be georeferenced through built-in global positioning systems, and is backed by a network of weather stations and records of farm management practices. Comprehensive monitoring of CBB and host plant dynamics is an essential part of an area-wide project in Hawaii to aggregate landscape-level data for research to improve management practices. Coffee agroecosystems in other parts of the world that experience highly variable environmental and socioeconomic factors will also benefit from implementing this protocol, in that it will drive the development of customized integrated pest management (IPM) to manage CBB populations.

Comprehensive monitoring of coffee berry borer and host plant dynamics is essential for aggregating landscape-level data to improve management of this invasive pest. Here, we present a protocol for scientific monitoring of coffee berry borer movement, infestation, mortality, coffee plant phenology, weather, and farm management via a mobile electronic data recording application.

Il protocollo di Hawaii per monitoraggio scientifico di Coffee Berry Borer: un modello per caffè agroecosistemi in tutto il mondo

Coffee berry borer (CBB) is the most devastating insect pest for coffee crops worldwide. We developed a scientific monitoring protocol that is aimed at ...

Evaluating Dryocosmus Kuriphilus-induced Damage on Castanea Sativa

Dryocosmus kuriphilus Yasumatsu has become a major pest for Castaneasativa since its arrival in Europe. Its galling activity results in the formation of different gall types and prevents the development of normal shoots. Repeated and uncontrolled attacks cause, besides the production of galls and the attendant gall-related reduction in leaf area, progressive corruption of the branch architecture, including the death of branch parts, and an increase in dormant bud activation. Thus far, there have been few attempts to quantify branch architecture damage. Further, the different methods for assessing infestation degree (MAID) that have been developed focus only on the galls' presence and abundance.
Using the leaf area to sapwood area relationship as a green biomass indicator, we developed in a previous study a damage composite index (DCI) that takes into account the most important branch architectural features, allowing for realistic damage assessment during the entire epidemic process. 
The aim of this study is to present this novel method and highlight differences in the damage description with respect to other broadly used indices. Results show how the DCI depicts branch damage better, especially during the epidemic peak, compared to MAID, which tend to underestimate it. We conclude by suggesting how to properly evaluate the overall impact of the pest by means of our composite damage index, the infestation degree using classic methods, and crown transparency evaluations.

Evaluating Dryocosmus Kuriphilus-induced Damage on Castanea Sativa

It is common practice to assess the damage caused by Dryocosmus kuriphilus by considering the abundance of galls alone rather than by also taking related branch corruption into consideration. We propose a composite damage index that takes into account the most important branch features, thus enabling more realistic damage assessment.

Valutazione di Dryocosmus Kuriphilus-ha indotto il danno su Castanea Sativa

Dryocosmus kuriphilus Yasumatsu has become a major pest for Castaneasativa since its arrival in Europe. Its galling activity results in the formation of ...

A Method for Quantifying Foliage-Dwelling Arthropods

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density requires a method with high detection probability and a known sampling area. While most described methods provide a qualitative or semi-quantitative estimate adequate for describing species presence, richness, and diversity, few provide an adequately consistent detection probability and known or consistent sampling areas to provide an index or estimate with adequate precision to detect differences in abundance across environmental, spatial, or temporal variables. We describe how to quantify leaf-dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate and quantify them. As we demonstrate, this method can be used at a landscape scale to quantify leaf-dwelling arthropods with adequate precision to test for and describe how spatial, temporal, environmental, and ecological variables influence arthropod richness and abundance. This method allowed us to detect differences in density, richness, and diversity of leaf-dwelling arthropods among 5 genera of trees commonly found in southeastern deciduous forests.

We describe how to quantify leaf dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate for quantification.

Un metodo per quantificare gli artropodi Foliage-Dwelling

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density ...

Methodology to Test Control Agents and Insecticides Against the Coffee Berry Borer Hypothenemus hampei

Prior to recommending insecticides to treat the coffee berry borer (CBB) Hypothenemus hampei, it is valuable to know the mortality and repellency of these insecticides against adult insects or their impact on reproductive output. However, currently available methods assess adult mortality only, limiting the selection of novel insecticides with a different mode of action. In this work, different experimental methods were examined to identify the diverse effects on the CBB under laboratory conditions. For this, green coffee fruits (GFs) were collected and disinfected by immersion in sodium hypochlorite solution followed by UV light irradiation. In parallel, CBB adults from a colony were disinfected by immersion in sodium hypochlorite solution. To assess fruit protection (preinfestation), the fruits were placed in plastic boxes, and the insecticides were applied. Then, the CBB adults were released at a rate of two CBBs per GF. The GFs were left under controlled conditions to evaluate CBB infestation and survival after 1, 7, 15, and 21 days. To evaluate insecticide efficacy after CBB infestation (postinfestation), CBB adults were released to the GFs in a 2:1 ratio for 3 h at 21 &#176;C. Infested fruits showing CBB adults with their abdomens partially exposed were selected and placed in 96-well racks, and the CBBs boring into the fruits were treated directly. After 20 days, the fruits were dissected, and the CBB biological stages inside each fruit were recorded. The GFs served as substrates that mimic natural conditions to evaluate toxic, chemical, and biological insecticides against the CBB.

Methodology to Test Control Agents and Insecticides Against the Coffee Berry Borer Hypothenemus hampei

A method using green coffee fruits (GFs) was developed to test the toxicity of insecticides against the coffee berry borer (CBB). Insecticides or toxic substances were applied to disinfected GFs before or after CBB infestation. Insect mortality, repellency, and reproductive capacity, in addition to other parameters, were evaluated.

Metodologia per testare agenti di controllo e insetticidi contro la bacca di caffè Borer Hypothenemus hampei

Prior to recommending insecticides to treat the coffee berry borer (CBB) Hypothenemus hampei, it is valuable to know the mortality and repellency of these ...

Bioassays for Monitoring Insecticide Resistance

Pest resistance to pesticides is an increasing problem because pesticides are an integral part of high-yielding production agriculture. When few products are labeled for an individual pest within a particular crop system, chemical control options are limited. Therefore, the same product(s) are used repeatedly and continual selection pressure is placed on the target pest. There are both financial and environmental costs associated with the development of resistant populations. The cost of pesticide resistance has been estimated at approximately $ 1.5 billion annually in the United States. This paper will describe protocols, currently used to monitor arthropod (specifically insects) populations for the development of resistance. The adult vial test is used to measure the toxicity to contact insecticides and a modification of this test is used for plant-systemic insecticides. In these bioassays, insects are exposed to technical grade insecticide and responses (mortality) recorded at a specific post-exposure interval. The mortality data are subjected to Log Dose probit analysis to generate estimates of a lethal concentration that provides mortality to 50% (LC50) of the target populations and a series of confidence limits (CL's) as estimates of data variability. When these data are collected for a range of insecticide-susceptible populations, the LC50 can be used as baseline data for future monitoring purposes. After populations have been exposed to products, the results can be compared to a previously determined LC50 using the same methodology.

This manuscript demonstrates and discusses techniques used to survey pesticide susceptibility and detect resistance to contact and systemic pesticides in arthropod pests.

Saggi biologici per la resistenza di monitoraggio Insetticida

Pest resistance to pesticides is an increasing problem because pesticides are an integral part of high-yielding production agriculture. When few products ...

Biologia

Characterizing Herbivore Resistance Mechanisms: Spittlebugs on Brachiaria spp. as an Example

Plants can resist herbivore damage through three broad mechanisms: antixenosis, antibiosis and tolerance1. Antixenosis is the degree to which the plant is avoided when the herbivore is able to select other plants2. Antibiosis is the degree to which the plant affects the fitness of the herbivore feeding on it1.Tolerance is the degree to which the plant can withstand or repair damage caused by the herbivore, without compromising the herbivore's growth and reproduction1. The durability of herbivore resistance in an agricultural setting depends to a great extent on the resistance mechanism favored during crop breeding efforts3.
We demonstrate a no-choice experiment designed to estimate the relative contributions of antibiosis and tolerance to spittlebug resistance in Brachiaria spp. Several species of African grasses of the genus Brachiaria are valuable forage and pasture plants in the Neotropics, but they can be severely challenged by several native species of spittlebugs (Hemiptera: Cercopidae)4.To assess their resistance to spittlebugs, plants are vegetatively-propagated by stem cuttings and allowed to grow for approximately one month, allowing the growth of superficial roots on which spittlebugs can feed. At that point, each test plant is individually challenged with six spittlebug eggs near hatching. Infestations are allowed to progress for one month before evaluating plant damage and insect survival. Scoring plant damage provides an estimate of tolerance while scoring insect survival provides an estimate of antibiosis. This protocol has facilitated our plant breeding objective to enhance spittlebug resistance in commercial brachiariagrases5.

Characterizing Herbivore Resistance Mechanisms: Spittlebugs on Brachiaria spp. as an Example

This video explains mechanisms of host plant resistance to herbivory and demonstrates a no-choice test that estimates the relative contributions of antibiosis and tolerance to spittlebug resistance in Brachiaria spp.

Caratterizzano Erbivoro meccanismi di resistenza: Spittlebugs su Brachiaria Spp. come esempio

Plants can resist herbivore damage through three broad mechanisms: antixenosis, antibiosis and tolerance1. Antixenosis is the degree to which the plant is ...

Isolation and Selection of Entomopathogenic Fungi from Soil Samples and Evaluation of Fungal Virulence against Insect Pests

Entomopathogenic fungi (EPF) are one of the microbial control agents for integrated pest management. To control local or invasive pests, it is important to isolate and select indigenous EPF. Therefore, the soil bait method combined with the insect bait (mealworm, Tenebrio molitor) system was used in this study with some modifications. The isolated EPF were then subjected to the virulence test against the agricultural pest Spodoptera litura. Furthermore, the potential EPF strains were subjected to morphological and molecular identifications. In addition, the conidia production and thermotolerance assay were performed for the promising EPF strains and compared; these data were further substituted into the formula of effective conidia number (ECN) for laboratory ranking. The soil bait-mealworm system and the ECN formula can be improved by replacing insect species and integrating more stress factors for the evaluation of commercialization and field application. This protocol provides a quick and efficient approach for EPF selection and will improve the research on biological control agents.

Here we present a protocol based on the&#160;mealworm (Tenebrio molitor)-bait system that was used for isolating and selecting entomopathogenic fungi (EPF) from soil samples. An effective conidia number (ECN) formula is used to select high stress tolerant EPF based on physiological characteristics for pest microbial control in the field.

Isolamento e selezione di funghi entomopatogeni da campioni di suolo e valutazione della virulenza fungina contro gli insetti nocivi

Entomopathogenic fungi (EPF) are one of the microbial control agents for integrated pest management. To control local or invasive pests, it is important ...

<meta charset="utf8"></head><body>Esplorazione delle risorse di funghi entomopatogeni dai piralidi del legno forestale

Isolation, Behavioral Identification, and Pathogenicity Assessment of Entomopathogenic Fungi from a Forest Wood Borer

Forest wood borers (FWB) cause severe tree damage and economic losses worldwide. The release of entomopathogenic fungi (EPF) during the FWB emergence period is considered an acceptable alternative to chemical control. However, EPF resources have been significantly less explored for FWBs, in contrast to agricultural insect pests. This paper presents a protocol for exploring EPF resources from FWBs using wild Monochamus alternatus populations as an example. In this protocol, the assignment of traps baited with M. alternatus attractants to different populations guaranteed the collection of adequate samples with natural infection symptoms, during the emergence periods of the beetle. Following finely dissecting integuments and placing them onto a selective medium, fungal species were isolated from each part of beetle bodies and identified based on both molecular and morphological traits.
Several fungal species were certified as parasitic EPFs via re-infection of healthy M. alternatus with spore suspensions. Their behavioral phenotypes on M. alternatus were observed using scanning electron microscopy and further compared with those on the Coleopteran model insect Tribolium castaneum. For EPFs that present consistent parasitism phenotypes on both beetle species, evaluation of their activities on T. castaneum provided valuable information on lethality for future study on M. alternatus. This protocol helped the discovery of EPF newly reported on M. alternatus populations in China, which could be applied as an efficient approach to explore more EPF resources from other FWBs.

<meta charset="utf8"></head><body>Autore in primo piano: Valutazione dei funghi entomopatogeni nelle popolazioni selvatiche di Monochamus alternatus per applicazioni di biocontrollo nei pi

Here we present a protocol for obtaining entomopathogenic fungi from a forest wood borer and a substitutive way to evaluate their entomopathogenic activities using a Coleopteran model insect. This method is efficient and convenient for exploring entomopathogenic fungal resources from wood-boring insect pests in natural forests.

Isolamento, identificazione comportamentale e valutazione della patogenicità di funghi entomopatogeni da una piralide forestale

Forest wood borers (FWB) cause severe tree damage and economic losses worldwide. The release of entomopathogenic fungi (EPF) during the FWB emergence ...

Una tecnica a Screen Faggio americano per la Resistenza al Beech cocciniglia (

Riepilogo

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Tecnica per lo Studio artropodi e comunità microbiche all'interno Albero tessuti