Die Autoren danken Mittel aus dem US Forest Service Wald Health Protection Monitoring-und Evaluierungssonder Technology Development Programme, die die Entwicklung, Änderung und Anwendung der hier beschriebenen Bäume, die widerstandsfähig und anfällig für die Buche Schildlaus identifizieren Protokoll unterstützt haben, zu bestätigen. Wir sind auch dankbar, dass der Holden Arboretum, Kirtland, OH, für ihre kontinuierliche Partnerschaft und die Unterstützung unserer amerikanischen Buche Widerstand Screening-Programm.

1 Anlagen Material:. Ältere Bäume Feld, Topf Sämlinge oder Topf Grafts <ol><li> Für Feldprüfungen, wählen reifen gesunden amerikanischen Buche, die keine Anzeichen von Größenbefall oder Krankheit für die Prüfung auf möglichen Widerstand zu zeigen. Sichtlich anfällig Bäume müssen auch identifiziert werden, um als Kontrolle (Abbildung 1) verwendet werden. </li><li> Für die Prüfung vergossen Sämlinge oder Transplantate, sammeln und Bucheckern keimen wie in Koch &amp; Carey, 2004 oder Transplantat Spross wie in Carey et al, 2013 beschrieben wird. </li><li> Sämlinge wachsen oder Transplantate in Blumenerde Mischung geändert mit 47 g Mikronährstoffe, 477 g Langzeitdünger 15N-3.9P-9,9 K, 700 g grob Perlit und 75 g Aluminiumsulfat pro 2.8 cu. ft. Tasche. Wenn später in der Vegetationsperiode benötigt, befruchten Pflanzen wöchentlich mit löslichen 17N-1.3P-14.1K bei 200 ppm Stickstoff. </li><li> Während der Vegetationsperiode, die Pflanzen im Schatten Haus. Lassen Sie Pflanzen nach draußen vor dem Bewegen sie schlafend gehen im Herbstauf eine kontrollierte Temperatur Lagers (~ 4 ° C) von November bis April. </li></ol> 2. Sammlung von Buche Skala Eier <ol><li> In einem BBD-verseuchten Stand, inspizieren stark befallenen Bäume (leicht durch ihre &quot;weißen&quot; Aussehen, 1A gekennzeichnet) mit einer Hand Lupe, um das Vorhandensein von Eiern, in der Regel reichlich von Mitte Juli bis Mitte August zu bestätigen. </li><li> Verwenden Sie einen Pinsel, um Pinsel vorsichtig die weiße, wachsartige Klumpen von Erwachsenen Skala Insekten, Eier und andere Ablagerungen, in eine Plastik verschließbaren 1 Gallone Sammelbeutel (Abbildung 1B). Sammeln von mindestens drei verschiedenen Bäumen mindestens 12 m auseinander. </li><li> Falls erforderlich, zu speichern Eier im abgedichteten Sammelbeutel für bis zu zwei Wochen bei 4 ° C. Band ein kleines Stück (2,5 cm ²) des gedämpften Polyethylenschaum auf der Innenseite des Beutels, um die Eier vor dem Austrocknen zu verhindern. </li><li> Um die Skala Eier (0,15 x 0,25 mm) von den Erwachsenen (0,60 mm) und Fremdkörpergefühl zu trennens, konstruieren ein Sieb mit einem kurzen Stück 2 &quot;PVC-Rohr und eine Kupplung, ein quadratisches Stück von 250 Mikron Nylon-Mesh (Abbildung 2) zu unterstützen. </li><li> Leeren Sie die Mischung aus Erwachsenen-, Wachs-, Eier und Schmutz aus dem Auffangbeutel auf das Sieb und mit einem kleinen Pinsel sanft fördern die Eier durch das Gitter in eine Glaspetrischale unten weiterzugeben. Kunststoff-Petrischalen sollten vermieden werden, weil sie halten mehr statische Elektrizität, so dass es schwierig ist, die Eier zu bewegen. Eier vor und nach dem Sieben werden in Fig. 3 gezeigt. </li><li> Gereinigt Eier in Petrischalen bei 4 º C für mindestens eine Woche gelagert werden. Um die Eier vor dem Austrocknen zu verhindern, kleben Sie ein feuchtes Stück Schaumstoff auf den Deckel und Dichtung mit Parafilm. </li></ol> 3. Egg Lebensfähigkeit Assays <ol><li> Um Ei Lebensfähigkeit zu prüfen, verwenden Sie eine 10-ml-Spritze, um einen dünnen Ring aus Vaseline um den Umfang der den Boden einer 60 mm Glaspetrischale (4A gelten </strong&gt;). </li><li> Übertragen Sie etwa 100 Eier in die Mitte des Rings, legen Sie den Deckel auf die Petrischale und Dichtung mit Parafilm. Den verschlossenen Petrischale ungestört bei Raumtemperatur für 2 Wochen oder 3 Wochen bleibt, wenn Eier wurden bei 4 ° C vor dem Test aufbewahrt. </li><li> Geschlüpften Larven werden stecken in der Vaseline und können leicht gezählt werden, und leere Eier werden einfach von unhatched Eier durch ihre Farbe und Glanz (4B) aus. Berechnen Rentabilität, indem die Zahl der Nymphen durch die Summe der leeren Eier sowie die übrigen voll Eier. Gute Lebensfähigkeit sollte in der 75% bis 90% Eier geschlüpft Bereich liegen. </li></ol> 4. Maßstab Widerstand Screening großer Reife Buche Bäume im Feld <ol><li> Für eine quantitative Test, zählen Sie 500 Eier mit einem Binokular und mit einem kleinen Spatel sanft streuen sie über die Mitte eines predampened, Open-Zelle 10 x 15 x 1,3 cm Rechteck aus Polyethylenschaum. Zudämpfen, Schaum, nass ist es dann Squeeze-out so viel Wasser wie möglich. Für eine qualitative Test kann 500 Eier ausgezählt und in einem kleinen Glasfläschchen und ein &quot;fill&quot; Linie gezeichnet, die verwendet werden können, um zusätzliche Chargen von etwa 500 Eiern messen platziert werden. </li><li> Legen Sie die Schaumstoffunterlage auf den Test Baum mit Blick gegen die Rinde des Eies Seite. Halten Sie das Pad in Position mit Seil, Schnur, Schnur, oder Kunststoff beschichtete Hardware Draht. Kunststoff-oder Metallbasis Material sollte eher als Naturfaserstoffe, die leichter von Wildtieren aufgeräumt sind, verwendet werden. </li><li> Linie die Oberseite und die Seiten eines vorgeschnittenen 23 x 30 cm Stück dampfdurchlässig wasserdicht Haus-Wrap mit Acetat-Silikon-Klebstoff und legen Sie es über den Schaum Testfeld. Drücken Sie die Kanten des Hauses, um den Baum wickeln, um eine wasserdichte Abdichtung zu schaffen. Zeigen Nylon Schnur oder Kunststoff beschichtet Hardware Draht um den Baum und Haus wickeln, um es in Position zu halten, während die Klebesätze (Abbildung 5). </li><li> Setzen Sie ein Minimum von zweiTestflächen auf jedem Testbaum, vorzugsweise auf gegenüberliegenden Seiten des Baumstamm. An jedem Standort platzieren Testflächen auf mindestens 2 anfällig Bäume (mit offensichtlichen natürlichen Maßstab Befall) als Kontrolle. Bevor die Testfelder auf der Steuer Bäume, entfernen Sie alle natürlich vorkommenden Schildläuse oder Eier mit fester Bürste. Hinweis: Schaumstoff-Pads mit Eiern können auch auf Bäume zum Zwecke der Aufzucht Skala Eier, die in Bereichen, in denen der Befall Stand niedrig ist besonders hilfreich sein können gestellt werden. </li></ol> 5. Maßstab Widerstand Screening von Topf Sämlinge oder Transplantate <ol><li> Für die Prüfung, wählen Topfpflanzen mit einem Mindestdurchmesser von 1 cm (Sattel 5 cm über Boden-Linie), die groß genug ist, um mindestens 2 separate Test-Pads an sie gestellt haben. Prune kleine Seitenäste, wenn notwendig, um Platz für die Testfelder zu machen. </li><li> Verwenden Sie ein Binokular zu zählen 150 Eier und streue sie über eine vorgeschnitten und gedämpft 2,5 x 7,6 x 1,3 cm mit offenen Zellen Polyethylene Schaumpolster. </li><li> Befestigen Sie das Schaumstoffpolster, um mit dem Ei Seite gegen die Rinde Sämling, mit Kunststoff-Draht. Wickeln Sie ein kleines Quadrat des Hauses Wrap-around der Sämling gerade über dem Schaum und verschließen Sie diese mit Acetat-Silikon-Basis (siehe Abbildung 6A). </li><li> Beinhalten bekannte anfällig Sämling Familien oder Transplantate als Kontrollen. </li></ol> 6. Data Collection Anmerkung: Etwa 52 bis 57 Wochen nach der Platzierung der Schaumstoff-Pads und Eier auf den Test Bäume können Daten gesammelt werden. Es ist wichtig, dass diese erst nach Erwachsenen haben begonnen, Eier zu legen, so dass ihre Fähigkeit zur Reproduktion bestimmt werden geführt. Auf einigen Bäumen resistent ist es nicht ungewöhnlich, dass eine kleine Anzahl von Erwachsenen zu schaffen, aber mit keine Reproduktion auftreten. <ol><li> Entfernen Sie vorsichtig die Schaumstoffunterlage und zählen Sie die Anzahl der erwachsenen Schildläuse auf der Rinde fest mit einer Lupe oder Lupe (10x). </li><li> Wenn das Schaumkissen entfernt wird, ist es nicht uncommon für einige Erwachsene und die meisten Eier Cluster off des Baumes mit dem Schaum gezogen werden (siehe Abbildung 7). Mit einem Binokular, zählen die Eigelege und Erwachsene, die auf die Schaumstoffunterlage befestigt geblieben. </li></ol>

<ol>
	<li>Houston, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+to+artificially+infest+beech+bark+with+the+scale,+Cryptococcus+fagisuga+(Lindinger).">A technique to artificially infest beech bark with the scale, Cryptococcus fagisuga (Lindinger).</a> U.S. Forest Service. , (1982).</li><li>Houston, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=American+beech+resistance+to+Cryptococcus+fagisuga.">American beech resistance to Cryptococcus fagisuga.</a> Proceeding, IUFRO beech bark disease working party conference. , 38-42 (1983).</li><li>Ehrlich, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+beech+bark+disease:+a+nectria+disease+of+Fagus,+following+Cryptococcus+fagi.">The beech bark disease: a nectria disease of Fagus, following Cryptococcus fagi.</a> 10, 593-692 (1934).</li><li>Papaik, M. J., Canham, C. D., Latty, E. F., Woods, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+an+introduced+pathogen+on+resistance+to+natural+disturbance:+beech+bark+disease+and+withdrow.">Effects of an introduced pathogen on resistance to natural disturbance: beech bark disease and withdrow.</a> 35, 1832-1843 (2005).</li><li>Miller-Weeks, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+status+of+beech+bark+disease+in+New+England+and+New+York.">Current status of beech bark disease in New England and New York.</a> Proceeding, IUFRO beech bark disease working party conference. , 21-23 (1983).</li><li>Houston, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beech+bark+disease:+The+aftermath+forests+are+structured+for+a+new+outbreak.">Beech bark disease: The aftermath forests are structured for a new outbreak.</a> J. For. 73, 660-663 (1975).</li><li>Twery, M. J., Patterson, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Variations+in+beech+bark+disease+and+its+effects+on+species+composition+and+structure+of+northern+hardwood+stands+in+central+New.">Variations in beech bark disease and its effects on species composition and structure of northern hardwood stands in central New.</a> 14, 565-574 (1984).</li><li>Jakubus, W. J., McLaughlin, C. R., Jensen, P. G., McNulty, S. A., Evans, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alternate+year+beechnut+production+and+its+influence+on+bear+and+marten+populations.">Alternate year beechnut production and its influence on bear and marten populations.</a> Beech Bark Disease: Proceedings of the Beech Bark Disease Symposium. , 79-87 (2005).</li><li>Koch, J. L., Carey, D. W., Mason, M. E., Nelson, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+beech+scale+resistance+in+full-+and+half-sib+families.">Assessment of beech scale resistance in full- and half-sib families.</a> Can. J. For. Res. 40, 265-272 (2010).</li><li>Koch, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beech+bark+disease:+The+oldest+&#8220;new&#8221;+threat+to+American+beech+in+the+United+States.">Beech bark disease: The oldest &#8220;new&#8221; threat to American beech in the United States.</a> Outlooks Pest Manag. 21, 64-68 (2010).</li><li>Koch, J. L., Mason, M. E., Carey, D. W., Palmieri, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Screening+for+resistance+to+beech+bark+disease:+improvements+and+results+from+seedlings+and+grafted+field+selections.">Screening for resistance to beech bark disease: improvements and results from seedlings and grafted field selections.</a> Proceedings of the 4th International Workshop on Genetics of Host-Parasite Interactions in Forestry. , (2012).</li><li>Leak, W. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fifty+year+impacts+of+the+beech+bark+disease+in+the+Bartlett+Experimental+Forest,+New+Hampshire.">Fifty year impacts of the beech bark disease in the Bartlett Experimental Forest, New Hampshire.</a> Northern J. Appl. For. 23, 141-143 (2006).</li><li>Koch, J. L., Carey, D. W., Yaussy, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Controlled+cross-pollinations+with+American+beech+trees+that+are+resistant+to+beech+bark+disease.">Controlled cross-pollinations with American beech trees that are resistant to beech bark disease.</a> Proceedings of the 14th Central Hardwood Forest Conference. , 358-364 (2004).</li><li>Carey, D. W., Mason, M. E., Bloese, P., Koch, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hot+callusing+for+propagation+of+American+beech+by+grafting.">Hot callusing for propagation of American beech by grafting.</a> HortSci. 48, 620-624 (2013).</li><li>Koch, J. L., Carey, W. W., Evans, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+genetics+of+resistance+of+American+beech+to+beech+bark+disease:+knowledge+through+2004.">The genetics of resistance of American beech to beech bark disease: knowledge through 2004.</a> Beech Bark Disease: Proceedings of the Beech Bark Disease Symposium. , 98-105 (2005).</li></ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessen konkurrieren.

Die entscheidenden Schritte für den Erfolg dieses Tests erforderlich sind, umfassen Durchführung einer Rentabilitätsprüfung auf die Eier und die Verwendung von empfindlichen Kontrollen an jedem Standort geprüft und mit Topf Materialien. Es ist auch wichtig, um mehr als ein Testfeld pro Baum oder Sämling zu verwenden. Wir haben festgestellt, dass sowohl auf dem Feld und in kontrollierter Tests an Topfpflanzen, eine häufige Fehlerquelle Pad Versagen. Zum Beispiel im Bereich, auch bei unserer Modifikation für den T...

Buchenrinde Krankheit (BBD) hat einen nachteiligen Einfluss auf die amerikanische Buche in Nordamerika seit der Einführung der invasiven Buche Schildlaus, Cryptococcus fagisuga, in der kanadischen Provinz Nova Scotia in den späten 1890er Jahren 3 hatte. Dieses Insekt-Krankheitskomplex wird eingeleitet, wenn die Buche Schildlaus fügt seine Fütterung Stilett in die Rinde der Erstellung kleine Risse, die für eine Infektion Eingangsbereich bieten von einem der Neonectria Pilzarten (Neonectria ditissima oder Neonectria faginata). Da die Pilzmyzelien wachsen können große Bereiche des Gewebes sterben, schließlich vollständig girdling den Baum. Der Schaden an der Krankheit schwächt den Baum, so dass es anfällig für starke Winde Einrasten 4. Mortalitätsraten in der ersten Welle der Krankheit berichtet worden so hoch wie 50% 5 sein. Surviving Bäume werden häufig stark verformt, wie Krebse bilden Reduzierung Wert der Baum als Holzprodukt.0; Solche Bäume haben eine Neigung für root-Keimen, die zur Bildung von &quot;Buchendickicht&quot;, die andere wünschenswerter Arten zu verhindern, Gründung, die Verringerung der wirtschaftlichen und ökologischen Wert der Stand 6 führt. Obwohl Buchenrinde Krankheit ist nicht wahrscheinlich zum Aussterben der amerikanischen Buche führen, verändert sie stehen Zusammensetzung und Gesundheit, die zu einem Rückgang der Nahrung und Lebensraum für die Tierwelt 7,8. In Ständen von BBD seit vielen Jahren betroffen, Bäume, die frei von Symptomen der Krankheit bleiben berichtet worden. Künstliche Inokulation Studien haben gezeigt, dass diese Bäume sind resistent gegen die Schildlaus 2. Ohne Skala Befall, gibt es wenig Gelegenheit für Neonectria Infektion, die Minimierung der Auswirkungen des Pilzes. Groß angelegte Sterblichkeit in der amerikanischen Buche aufgrund Neonectria Infektion in Abwesenheit der Skala vor Befall hat nieberichtet worden, so dass Widerstand gegen die Buche Schildlaus Ergebnisse im Widerstand gegen BBD. Neuere Forschungen über die Verwaltung des BBD hat sich auf die Identifizierung, Vermehrung, Zucht und Aufbewahrung der amerikanischen Buche mit einer Resistenz gegen den Buchen Schildlaus konzentriert. Genetische Studien haben gezeigt, dass Widerstand gegen die Schildlaus vererbbar ist und die sorgfältige Auswahl und Züchtung resistenter Bäume können zu einer signifikanten Verbesserung in einer einzigen Generation 9 führen. Diese Feststellung hat die Bemühungen von staatlichen und nationalen Forstverwalter in den Vereinigten Staaten, regionale Samenplantagen von resistenten amerikanischen Buche zu etablieren, um eine Quelle von genetisch unterschiedlichen BBD-resistente Saatgut für die Wiederherstellung Anpflanzungen 10,11 liefern heizt. Die Forschung hat auch gezeigt, dass waldbauliche Manipulation der Stand der Genetik durch die Entfernung der Bäume anfällig und Retention von resistenten Bäume können im Stand 9,12 Verbesserung führen. &lt;/ P&gt; Verwaltung von BBD durch Baumverbesserungsmaßnahmen oder durch die Durchführung waldbaulicher Vorschriften erfordert die Fähigkeit, für die Auswahl und zwischen Buche Scale-resistenten und anfälligen Bäumen. Die hier vorgestellten Methoden wurden von einer Methode zuerst von Dave Houston eingeführt, um künstlich zu impfen Sämlinge mit Buchen Eier Maßstab 1 angepasst. Das Verfahren kann als Screening-Instrument, um quantitative trait loci (QTL) mit Resistenz oder, um zwischen resistenten und anfälligen Topf Sämlinge oder gepfropfte Rameten in genetischen Studien unterscheiden zu identifizieren verwendet werden. Alternativ kann sie für das Screening von altem Baumbestand im Bereich resistente Bäume für Samenplan Entwicklung oder die Retention auf dem Gebiet zu identifizieren. Anfällige Bäume identifiziert und entfernt, um Krankheitsauswirkungen zu minimieren.

<table><tbody><tr><td>Nylon Mesh Sheet, 250 micron</td><td><a href="http://www.amazonsupply.com/dp/B000FMWH1S/ref=sp_dp_g2c_asin" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Small Parts</a></td><td>CMN-0250-D</td><td>Mesh opening size: 250 microns square, % of open area: 34, thread diameter: 180 micron, width: 24&amp;rdquo;, Length: 12&amp;rdquo;, Package quantity: 1</td></tr><tr><td>Tyvek Home Wrap</td><td><a href="http://www.lowes.com/pd_14582-2020-D13499991_0__" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> DuPont</a></td><td>D1349991</td><td>9 ft x 150 ft roll, can ask for it to be cut in half.</td></tr><tr><td>Polyethylene foam, &amp;frac12;&amp;rdquo; thick&amp;nbsp;</td><td><a href="http://www.colsfoam.com/apcfp/products.htm" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Columbus Foam Products</a></td><td></td><td>2 ft x 50 ft roll</td></tr><tr><td>MetroMix 510</td><td><a href="http://sungro.com/products_displayProduct.php?product_id=118&amp;amp;brand_id=17" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Sun Gro Horticulture</a></td><td></td><td>2.8 cu. ft. bark, peat moss, vermiculite, bark ash, starter nutrient charge (with Gypsum), slow release nitrogen and&amp;nbsp;dolomitic limestone.</td></tr><tr><td>Osmocote Plus 15-9-12</td><td><a href="http://everris.us.com/product/15-9-12" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Everris</a></td><td>E903206</td><td>Standard 3-4 month release</td></tr><tr><td>Sight Savers 10X</td><td><a href="http://www.amleo.com/Bausch---Lomb-Illuminating-Codington-Magnifier-10x/p/CM10/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Bausch &amp;amp; Lomb</a></td><td>813434</td><td>10X magnification illuminated coddington</td></tr><tr><td>Nikon Mini Field Stereoscope</td><td><a href="http://www.opticsplanet.com/nikon-fieldmicroscope.html" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> Nikon</a></td><td>7314</td><td>20X magnification</td></tr><tr><td>Silicone II clear</td><td><a href="http://www.midlandhardware.com/159538.html" target="_blank"><img src="/img/new_window.png" /> GE</a></td><td>159538</td><td>2.9 oz clear window &amp;amp; door caulk</td></tr></tbody></table>

a technique to screen american beech for resistance to the beech scale insect (cryptococcus fagisuga lind.)

Buchenrinde Krankheit (BBD) Ergebnisse in hohe Anfangssterblichkeit, hinterlässt Überlebende, die Bäume sind stark geschwächt und deformiert. Die Krankheit wird durch die Fütterung Aktivitäten der invasiven Buche Schildlaus, Cryptococcus fagisuga, die Ansatzpunkte für die Infektion von einem der Neonectria Pilzarten schafft eingeleitet. Ohne Skala Befall, gibt es wenig Gelegenheit für Pilzinfektion. Mit Skala Eier künstlich befallen gesunde Bäume in stark beeinflusst BBD Ständen gezeigt, dass diese Bäume waren resistent gegen die Schildlaus Teil der Krankheitskomplex ein. Hier stellen wir ein Protokoll, das wir entwickelt haben, auf der Grundlage der Technik, die von künstlichen Befall Houston 2, die verwendet werden können, um für zunderbeständig Bäume auf dem Feld und in kleineren Topfsetzlinge und Transplantaten zu screenen. Die Identifizierung der Skala feste Bäume ist ein wichtiger Bestandteil der Verwaltung von BBD durch BaumVerbesserungsprogramme und forst Manipulation.

Fig. 6 zeigt eine Widerstands Sämling (C) und zwei anfällig Sämlinge (D, E), die unterschiedliche Empfindlichkeitsgrade. Ein Beispiel, was ein Baum anfällig reifen sieht aus wie 57 Wochen nach der künstlichen Befall Test wurde eingerichtet, ist in 5B gezeigt. Wenn der Schaum vom Baum abgezogen, ist es nicht ungewöhnlich, Schildläuse und deren Eigelege zu bleiben, um den Schaum geklebt, wie in Fig. 7 gezeigt ist, weshalb es unerl?...

Watch this Scientific Journal Video about A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect Cryptococcus fagisuga Lind. at JoVE.com

A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect Cryptococcus fagisuga Lind.

Buchenrinde Krankheit wird durch die Fütterung Aktivitäten der Buche Schildlaus, die Pilz-Einstiegspunkte in der Rinde zu erstellen eingeleitet. Bäume, die resistent gegen die Schildlaus sind, sind auch resistent gegen Krankheiten. Hier präsentieren wir das Protokoll die wir entwickelt haben, um einzelne Buche für Buche Skala Widerstand Bildschirm.

Eine Technik, um Amerikanische Buche für Widerstand gegen die Buche Schildlaus (Bildschirm<em&gt; Cryptococcus fagisuga</em&gt; Lind.)

Beech bark disease (BBD) results in high levels of initial mortality, leaving behind survivor trees that are greatly weakened and deformed.&#160;The ...

a-technique-to-screen-american-beech-for-resistance-to-beech-scale

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Environment

A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect (Cryptococcus fagisuga Lind.)

9.5K Aufrufe.  US Forest Service.  Buchenrinde Krankheit wird durch die Fütterung Aktivitäten der Buche Schildlaus, die Pilz-Einstiegspunkte in der Rinde zu erstellen eingeleitet. Bäume, die resistent gegen die Schildlaus sind, sind auch resistent gegen Krankheiten. Hier präsentieren wir das Protokoll die wir entwickelt haben, um einzelne Buche für Buche Skala Widerstand Bildschirm. 

Serie: A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect Cryptococcus fagisuga Lind.

Technique for Studying Arthropod and Microbial Communities within Tree Tissues

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms. Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear young, feed, or hide from natural enemies or harsh environmental conditions outside of the tree. Organisms that persist within the phloem habitat are difficult to observe given their location under bark. We provide a technique to preserve intact phloem and prepare it for experimentation with invertebrates and microorganisms. The apparatus is called a &#8216;phloem sandwich&#8217; and allows for the introduction and observation of arthropods, microbes, and other organisms. This technique has resulted in a better understanding of the feeding behaviors, life-history traits, reproduction, development, and interactions of organisms within tree phloem. The strengths of this technique include the use of inexpensive materials, variability in sandwich size, flexibility to re-open the sandwich or introduce multiple organisms through drilled holes, and the preservation and maintenance of phloem integrity. The phloem sandwich is an excellent educational tool for scientific discovery in both K-12 science courses and university research laboratories.

We provide a technique to preserve intact tree phloem and prepare it for observation. We create an apparatus called a phloem sandwich that allows for the introduction and observation of arthropods, microbes, and other organisms that inhabit phloem tissues.

Technik zur Untersuchung Gliederfüßer und Mikrobielle Gemeinschaften im Baum Tissues

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms.  Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear ...

Forschung

Umwelt

Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer

Emerald ash borer (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), the most destructive forest insect to have invaded North America, has killed hundreds of millions of forest and landscape ash (Fraxinus spp.) trees. Several artificial trap designs to attract and capture EAB beetles have been developed to detect, delineate, and monitor infestations. Double-decker (DD) traps consist of two corrugated plastic prisms, one green and one purple, attached to a 3 m tall polyvinyl chloride (PVC) pipe supported by a t-post. The green prism at the top of the PVC pipe is baited with cis-3-hexenol, a compound produced by ash foliage. Surfaces of both prisms are coated with sticky insect glue to capture adult EAB beetles. Double-decker traps should be placed near ash trees but in open areas, exposed to sun. Double-decker trap construction and placement are presented here, along with a summary of field experiments demonstrating the efficacy of DD traps in capturing EAB beetles. In a recent study in sites with relatively low EAB densities, double-decker traps captured significantly more EAB than green or purple prism traps or green funnel traps, all of which are designed to be suspended from a branch in the canopy of ash trees. A greater percentage of double decker traps were positive, i.e., captured at least one EAB, than the prism traps or funnel traps that were hung in ash tree canopies.

Effective traps to attract and capture the emerald ash borer (EAB) are a key element of detecting and managing this invasive pest. Double-decker traps, placed in full sun near ash trees, incorporate visual and olfactory cues and were more likely to capture EAB than other trap designs in field trials.

Aufbau Doppeldecker fallen zur frühzeitigen Erkennung von Emerald Ash Borer

Emerald ash borer (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), the most destructive forest insect to have invaded North America, has killed hundreds of millions ...

The Hawaii Protocol for Scientific Monitoring of Coffee Berry Borer: a Model for Coffee Agroecosystems Worldwide

Coffee berry borer (CBB) is the most devastating insect pest for coffee crops worldwide. We developed a scientific monitoring protocol that is aimed at capturing and quantifying the dynamics and impact of this invasive insect pest as well as the development of its host plant across a heterogeneous landscape. The cornerstone of this comprehensive monitoring system is timely georeferenced data collection on CBB movement, coffee berry infestation, mortality by the fungus Beauveria bassiana, and coffee plant phenology via a mobile electronic data recording application. This electronic data collection system allows field records to be georeferenced through built-in global positioning systems, and is backed by a network of weather stations and records of farm management practices. Comprehensive monitoring of CBB and host plant dynamics is an essential part of an area-wide project in Hawaii to aggregate landscape-level data for research to improve management practices. Coffee agroecosystems in other parts of the world that experience highly variable environmental and socioeconomic factors will also benefit from implementing this protocol, in that it will drive the development of customized integrated pest management (IPM) to manage CBB populations.

Comprehensive monitoring of coffee berry borer and host plant dynamics is essential for aggregating landscape-level data to improve management of this invasive pest. Here, we present a protocol for scientific monitoring of coffee berry borer movement, infestation, mortality, coffee plant phenology, weather, and farm management via a mobile electronic data recording application.

Das Hawaii-Protokoll für die wissenschaftliche Begleitung des Kaffee Berry Borer: ein Modell für Kaffee Agrarökosystemen weltweit

Coffee berry borer (CBB) is the most devastating insect pest for coffee crops worldwide. We developed a scientific monitoring protocol that is aimed at ...

Evaluating Dryocosmus Kuriphilus-induced Damage on Castanea Sativa

Dryocosmus kuriphilus Yasumatsu has become a major pest for Castaneasativa since its arrival in Europe. Its galling activity results in the formation of different gall types and prevents the development of normal shoots. Repeated and uncontrolled attacks cause, besides the production of galls and the attendant gall-related reduction in leaf area, progressive corruption of the branch architecture, including the death of branch parts, and an increase in dormant bud activation. Thus far, there have been few attempts to quantify branch architecture damage. Further, the different methods for assessing infestation degree (MAID) that have been developed focus only on the galls' presence and abundance.
Using the leaf area to sapwood area relationship as a green biomass indicator, we developed in a previous study a damage composite index (DCI) that takes into account the most important branch architectural features, allowing for realistic damage assessment during the entire epidemic process. 
The aim of this study is to present this novel method and highlight differences in the damage description with respect to other broadly used indices. Results show how the DCI depicts branch damage better, especially during the epidemic peak, compared to MAID, which tend to underestimate it. We conclude by suggesting how to properly evaluate the overall impact of the pest by means of our composite damage index, the infestation degree using classic methods, and crown transparency evaluations.

Evaluating Dryocosmus Kuriphilus-induced Damage on Castanea Sativa

It is common practice to assess the damage caused by Dryocosmus kuriphilus by considering the abundance of galls alone rather than by also taking related branch corruption into consideration. We propose a composite damage index that takes into account the most important branch features, thus enabling more realistic damage assessment.

Bewertung von Dryocosmus Kuriphilus-induzierte Schäden auf Castanea Sativa

Dryocosmus kuriphilus Yasumatsu has become a major pest for Castaneasativa since its arrival in Europe. Its galling activity results in the formation of ...

A Method for Quantifying Foliage-Dwelling Arthropods

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density requires a method with high detection probability and a known sampling area. While most described methods provide a qualitative or semi-quantitative estimate adequate for describing species presence, richness, and diversity, few provide an adequately consistent detection probability and known or consistent sampling areas to provide an index or estimate with adequate precision to detect differences in abundance across environmental, spatial, or temporal variables. We describe how to quantify leaf-dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate and quantify them. As we demonstrate, this method can be used at a landscape scale to quantify leaf-dwelling arthropods with adequate precision to test for and describe how spatial, temporal, environmental, and ecological variables influence arthropod richness and abundance. This method allowed us to detect differences in density, richness, and diversity of leaf-dwelling arthropods among 5 genera of trees commonly found in southeastern deciduous forests.

We describe how to quantify leaf dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate for quantification.

Eine Methode zur Quantifizierung von Laub-Behausungs-Arthropoden

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density ...

Quantifying Corticolous Arthropods Using Sticky Traps

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density requires a method with high detection probability and a consistent sampling area. We used manufactured sticky traps to compare abundance, total length (a surrogate for biomass), richness, and Shannon diversity of corticolous arthropods among the boles of 5 tree species. Efficacy of this method was adequate to detect variation in corticolous arthropods among tree species and provide a standard error of the mean that was &#60;20% of the mean for all estimates with sample sizes from 7 to 15 individual trees of each species. Our results indicate, even with these moderate sample sizes, the level of precision of arthropod community metrics produced with this approach is adequate to address most ecological questions regarding temporal and spatial variation in corticolous arthropods. Results from this method differ from other quantitative approaches such as chemical knockdown, visual inspection, and funnel traps in that they provide an indication of corticolous arthropod activity over a relatively long-term, better including temporary bole residents, flying arthropods that temporarily land on the tree bole and crawling arthropods that use the tree bole as a travel route from the ground to higher forest foliage. Furthermore, we believe that commercially manufactured sticky traps provide more precise estimates and are logistically simpler than the previously described method of directly applying a sticky material to tree bark or applying a sticky material to tape or other type of backing and applying that to the tree bark.

We describe a semi-quantitative approach of measuring characteristics of corticolous (bark-dwelling) arthropod communities. We placed commercially manufactured sticky traps on tree boles to estimate abundance, total length (a surrogate to biomass), richness, and Shannon diversity for comparison among tree species.

Quantifizierung von Corticolous Arthropoden mit Haftfallen

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density ...

Rapid Testing of Resistance of Timber to Biodegradation by Marine Wood-Boring Crustaceans

Wood-boring invertebrates rapidly destroy marine timbers and wooden coastal infrastructure, causing billions of dollars of damage around the globe every year. As treatments of wood with broad spectrum biocides, such as creosote and chromated copper arsenate (CCA), are now restricted in marine use by legislation, naturally durable timber species and novel preservation methods of wood are required. These methods undergo testing in order to meet regulatory standards, such as the European standard for testing wood preservatives against marine borers, EN 275. Initial investigation of durable timbers species or wood preservative treatments can be achieved quickly and inexpensively through laboratory testing, which offers many advantages over marine field trials that are typically costly, long-term endeavours. Many species of Limnoria (gribble) are marine wood-boring crustaceans. Limnoria are ideal for use in laboratory testing of biodegradation of wood by marine wood-borers, due to the practicality of rearing them in aquaria and the ease of measuring their feeding rates on wood. Herein, we outline a standardizable laboratory test for assessing wood biodegradation using gribble.

This protocol presents a method for assessing the feeding rate of the wood-boring crustacean, Limnoria, by measuring faecal pellet production. This method is designed for use in non-specialist labs and has potential for incorporation into standard testing protocols, to evaluate enhanced wood durability under marine conditions.

Schnelle Prüfung der Beständigkeit von Holz gegen den biologischen Abbau durch marine holzbohrende Krebstiere

Wood-boring invertebrates rapidly destroy marine timbers and wooden coastal infrastructure, causing billions of dollars of damage around the globe every ...

Methodology to Test Control Agents and Insecticides Against the Coffee Berry Borer Hypothenemus hampei

Prior to recommending insecticides to treat the coffee berry borer (CBB) Hypothenemus hampei, it is valuable to know the mortality and repellency of these insecticides against adult insects or their impact on reproductive output. However, currently available methods assess adult mortality only, limiting the selection of novel insecticides with a different mode of action. In this work, different experimental methods were examined to identify the diverse effects on the CBB under laboratory conditions. For this, green coffee fruits (GFs) were collected and disinfected by immersion in sodium hypochlorite solution followed by UV light irradiation. In parallel, CBB adults from a colony were disinfected by immersion in sodium hypochlorite solution. To assess fruit protection (preinfestation), the fruits were placed in plastic boxes, and the insecticides were applied. Then, the CBB adults were released at a rate of two CBBs per GF. The GFs were left under controlled conditions to evaluate CBB infestation and survival after 1, 7, 15, and 21 days. To evaluate insecticide efficacy after CBB infestation (postinfestation), CBB adults were released to the GFs in a 2:1 ratio for 3 h at 21 &#176;C. Infested fruits showing CBB adults with their abdomens partially exposed were selected and placed in 96-well racks, and the CBBs boring into the fruits were treated directly. After 20 days, the fruits were dissected, and the CBB biological stages inside each fruit were recorded. The GFs served as substrates that mimic natural conditions to evaluate toxic, chemical, and biological insecticides against the CBB.

Methodology to Test Control Agents and Insecticides Against the Coffee Berry Borer Hypothenemus hampei

A method using green coffee fruits (GFs) was developed to test the toxicity of insecticides against the coffee berry borer (CBB). Insecticides or toxic substances were applied to disinfected GFs before or after CBB infestation. Insect mortality, repellency, and reproductive capacity, in addition to other parameters, were evaluated.

Methodik zum Testen von Kontrollmitteln und Insektiziden gegen den Kaffeebeerenzünsler Hypothenemus hampei

Prior to recommending insecticides to treat the coffee berry borer (CBB) Hypothenemus hampei, it is valuable to know the mortality and repellency of these ...

Bioassays for Monitoring Insecticide Resistance

Pest resistance to pesticides is an increasing problem because pesticides are an integral part of high-yielding production agriculture. When few products are labeled for an individual pest within a particular crop system, chemical control options are limited. Therefore, the same product(s) are used repeatedly and continual selection pressure is placed on the target pest. There are both financial and environmental costs associated with the development of resistant populations. The cost of pesticide resistance has been estimated at approximately $ 1.5 billion annually in the United States. This paper will describe protocols, currently used to monitor arthropod (specifically insects) populations for the development of resistance. The adult vial test is used to measure the toxicity to contact insecticides and a modification of this test is used for plant-systemic insecticides. In these bioassays, insects are exposed to technical grade insecticide and responses (mortality) recorded at a specific post-exposure interval. The mortality data are subjected to Log Dose probit analysis to generate estimates of a lethal concentration that provides mortality to 50% (LC50) of the target populations and a series of confidence limits (CL's) as estimates of data variability. When these data are collected for a range of insecticide-susceptible populations, the LC50 can be used as baseline data for future monitoring purposes. After populations have been exposed to products, the results can be compared to a previously determined LC50 using the same methodology.

This manuscript demonstrates and discusses techniques used to survey pesticide susceptibility and detect resistance to contact and systemic pesticides in arthropod pests.

Bioassays zur Überwachung Insecticide Resistance

Pest resistance to pesticides is an increasing problem because pesticides are an integral part of high-yielding production agriculture. When few products ...

Biologie

Isolation and Selection of Entomopathogenic Fungi from Soil Samples and Evaluation of Fungal Virulence against Insect Pests

Entomopathogenic fungi (EPF) are one of the microbial control agents for integrated pest management. To control local or invasive pests, it is important to isolate and select indigenous EPF. Therefore, the soil bait method combined with the insect bait (mealworm, Tenebrio molitor) system was used in this study with some modifications. The isolated EPF were then subjected to the virulence test against the agricultural pest Spodoptera litura. Furthermore, the potential EPF strains were subjected to morphological and molecular identifications. In addition, the conidia production and thermotolerance assay were performed for the promising EPF strains and compared; these data were further substituted into the formula of effective conidia number (ECN) for laboratory ranking. The soil bait-mealworm system and the ECN formula can be improved by replacing insect species and integrating more stress factors for the evaluation of commercialization and field application. This protocol provides a quick and efficient approach for EPF selection and will improve the research on biological control agents.

Here we present a protocol based on the&#160;mealworm (Tenebrio molitor)-bait system that was used for isolating and selecting entomopathogenic fungi (EPF) from soil samples. An effective conidia number (ECN) formula is used to select high stress tolerant EPF based on physiological characteristics for pest microbial control in the field.

Isolierung und Selektion entomopathogener Pilze aus Bodenproben und Bewertung der Pilzvirulenz gegen Schadinsekten

Entomopathogenic fungi (EPF) are one of the microbial control agents for integrated pest management. To control local or invasive pests, it is important ...

Eine Technik, um Amerikanische Buche für Widerstand gegen die Buche Schildlaus (Bildschirm

Zusammenfassung

Weitere Videos entdecken

Kapitel in diesem Video