Name: murine corneal transplantation: a model to study the most common form of solid organ transplantation
Uploaded: 2014-11-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 3 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Murine Corneal Transplantation: A Model to Study the Most Common Form of Solid Organ Transplantation at JoVE.com

The authors would like to thank the many individuals who have worked on and perfected this technique and have been responsible for the generation of many manuscripts both in this lab and others. This work was supported by National Institutes of Health Grant EY12707 (PMS) and an unrestricted grant from Research to Prevent Blindness to Department of Ophthalmology.

ملاحظة: يتم التعامل مع جميع الحيوانات المستخدمة في هذا الإجراء وفقا للجمعية للبحوث في الرؤية وبيان العيون لاستخدام الحيوانات في العيون والبحوث الرؤية فضلا عن المبادئ التوجيهية التي وضعتها لجنة الرقابة الحيوان في جامعة سانت لويس. يتم تعقيم جميع الأدوات والحلول الجراحية قبل الجراحة للحد من العدوى الميكروبية للعين: ملاحظة. تجدر الإشارة إلى أنه في حين أن الحيوانات لا تواجه بعض الألم من هذا الإجراء، ونحن لا توظف المسكنات. السبب في ذلك هو لأن جميع المسكنات هي مضادة للالتهابات ومنذ زرع القرنية الردود تنطوي الالتهاب، فإن استخدام العقاقير المضادة للالتهابات بخرق قدرتنا على تحديد ما هي العوامل التي تشارك في فشل الكسب غير المشروع القرنية. 1. التخدير <ol style="margin-left: 40px;;text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع الفئران المانحة والمتلقية تحت التخدير العام عن طريق الحقن IP من الكيتامين (86.98 ملغ / كلغ) وزيلازين (13.04 ملغم / كغم). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الحفاظ على الماوس المتلقي تحت التخدير طوال الإجراء الذي يأخذ عادة 30 دقيقة إلى ساعة. بالتالي، ترصد باستمرار الماوس عن أي دلائل على استعادة وعيه. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبيق مرهم للعين puralube أنه لن يخضع لعملية جراحية بعد تخدير الحيوان لمنع جفاف. </li></ol> 2. مسمار القرنية <ol style="margin-left: 40px;;text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الحصول على زر المانحة القرنية. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة واحدة يتم تخدير الحيوان بالكامل، وتحقيق توسع حدقة العين وافية من قبل إدارة بضع قطرات العين 1٪ و 2.5٪ تروبيكاميد فينيليفرين هيدروكلوريد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع رأس الحيوان المانحة أفقيا على لوحة وضعت على دعم قوي المنقولة. إصلاح الرأس مع شريط من الشريط عبر العنق لضمان أن العين هي في وضع أفقي في جميع أنحاء العملية برمتها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام 2 مم منقب، الذي كان مصبوغ باللون الأزرق الميثيل طرف، خارجيبطن الموقع القرنية الكسب غير المشروع المركزي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مع شفرة حادة، تخترق القرنية وحقن healon في الغرفة الأمامية لتعميق ذلك لتقليل فرصة حدوث ضرر لبطانة المانحة والعدسة الأساسية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استئصال الكسب غير المشروع مع الجهات المانحة vannas مقص ووضعها في طبق يحتوي هانكس &quot;محلول ملحي متوازن حتى الاستخدام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد أن كان الكسب غير المشروع المانحة على إزالتها، الموت ببطء الماوس المانحة عن طريق الاستنشاق CO 2. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد السرير الكسب غير المشروع. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تكرار نفس الخطوات كما هو موضح في 2.1.1 خلال 2.1.2 للمتلقي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام 1.5 مم منقب، الخطوط العريضة للموقع الكسب غير المشروع المستفيدة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مع شفرة حادة، تخترق القرنية وحقن healon في الغرفة الأمامية لتعميق ذلك لتقليل فرصة من الأضرار التي لحقت العدسة الأساسية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة زر القرنية المركزية المذكورة من المستلم باستخدام مقص vannas وتجاهل. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خياطةتطعيم <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع القرنية المانحة على الكسب غير المشروع سرير في القرنية المستلم. مما لا شك فيه أن healon كافية تحت القرنية المانحة لحماية الخلايا البطانية المانحة من التلف عن طريق الاتصال المباشر مع العدسة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام microforceps يميل السوبر غرامة، ومكان اللدغة الأولى من النايلون 11-0 خياطة إلى جانب الجهات المانحة، من خلال الجهات المانحة مع عمق 90٪ من سمك الكامل إلى جانب المستلم، ثم تعادل خارج. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة واحدة يرتكز القرنية في مكانه، نفذ خيوط متقطعة midcardinal بحيث القرنية ديها 8 إلى 10 مجموع الغرز واصطف القرنية المانحة بشكل آمن حتى مع وتعلق على المتلقي السرير الكسب غير المشروع القرنية. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعميق الغرفة الأمامية <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعميق الغرفة الأمامية عن طريق حقن HBSS أو فقاعة الهواء في الغرفة الأمامية وتحقق بلطف على سلامة القرنية الكسب غير المشروع للتسرب مع الاسفنج السليلوز. ملاحظة: إذا كان لا يمكن إصلاحه الغرفة الأمامية ثم هناك احتمال كبير لجataract الأمر الذي سيجعل التقييمات المستقبلية للقرنية المزروعة صعبة للغاية وسوف أيضا أن تؤدي إلى ضعف بطانة القرنية المانحة وبالتالي فشل الكسب غير المشروع. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التقييم النهائي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مراقبة العين لتحديد أن التلميذ هو جولة وعمق الغرفة الأمامية أمر طبيعي. ملاحظة: إذا كان التلميذ ليست جولة هذا يدل على أنه خلال خياطة القزحية تضررت وبالتالي يعتبر الكسب غير المشروع عطل فني. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبيق مرهم مضاد حيوي للعين. اختياري: قم بإغلاق غطاء العين مع خياطة الحرير 7-0. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مراقبة الفئران حتى تكون مستيقظا تماما وبشكل فردي ثم إيوائهم مدة لا تقل عن يومين بعد الجراحة. </li></ol></li></ol> 3. إزالة خياطة <ol style="margin-left: 40px;;text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في تلك الحالات التي يستخدم فيها الغطاء خياطة، تخدير الفئران كما هو موضح أعلاه وإزالة خياطة غطاء في 48 ساعة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الفئران في يوم 7 بعد العمل الجراحي. إزالة suturوفاق تأمين الكسب غير المشروع القرنية. مرة واحدة يتم إزالة الغرز وأيقظت الحيوان تماما، إعادته إلى قفصه. </li></ol> 4. التقييم السريري <ol style="margin-left: 40px;;text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فحص العين للمؤشرات لمضاعفات الإجرائية التي تشمل الساد (تغيم العدسة)، تحدمية (الدم في الغرفة الأمامية)، والغرفة الأمامية ليست على عمق مناسب، أو غموض كبير من القرنية. نظر في تلك التي تثبت هذه المضاعفات مثل &quot;خطر&quot; والموت ببطء لهم عن طريق الاستنشاق CO 2. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء كافة الفحوص التي أجريت على الفئران unanesthetized. عقد الماوس بيد واحدة وبالتالي تقييد الماوس بحيث يمكن من ناحية أخرى proptose العين لتمكين رؤية أفضل للعين. وبمجرد الانتهاء من الملاحظات، يعود الحيوان إلى قفصه. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وقد مراقب غير مألوف مع مجموعات العلاج وتقييم زرع القرنيات من 2 إلى 3 مرات في الأسبوع لعلامات الكسب غير المشروع القرنيةحلقة الرفض أو الفشل الكسب غير المشروع القرنية. استخدام إما المجهر الجراحي أو الأفقي biomicroscope شق مصباح لهذه الملاحظات. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تقييم كل القرنية لالتعتيم باستخدام مقياس من 0 إلى 5. يتم تعريف نطاق كما يلي: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعيين على درجة من 0 إلى تلك القرنيات التي ليس لها علامات التعتيم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعيين على درجة من 1 إلى تلك القرنيات التي تظهر أدنى غموض سطحية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعيين النتيجة من 2 إلى القرنيات التي تعرض غموض خفيف وأعمق ولكن التلميذ وقزحية الكامنة لا تزال ملحوظ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعيين النتيجة من 3 إلى القرنية التي تعرض انسجة التعتيم حيث لا يمكن رؤيتها القزحية بالتفصيل باستثناء هامش التلميذ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعيين النتيجة من 4 إلى القرنية التي تعرض انسجة كثيفة التعتيم وإذا لم الهياكل يمكن عرضها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعيين على درجة من 5 إلى القرنية التي تعرض التعتيم الكامل وانسجة ذمة مكثفة، مع التلميذ وقزحية العين تحجب تماما. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"><html> تقييم أيضا كل القرنية لدرجة تسلل الأوعية الدموية (اتساع الأوعية الدموية) باستخدام مقياس تقييم من 1 إلى 8. ولتحقيق ذلك، عرض القرنية أنها تتكون من 4 الأرباع متساوية وتحديد مقدار الأوعية الدموية في كل من هذه الأرباع مع النتيجة التي سوف تتراوح من 0 (أي السفن) إلى 2 لواسعة من الأوعية الدموية التي رباعي. إضافة عشرات الفردية من كل رباعي لحساب النتيجة النهائية اتساع الأوعية الدموية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تصنيف القرنيات رفضت تماما كما لو كان لديهم على 3 نقاط عن ملاحظتين متتالية للمرة يشير تصل إلى 5 أسابيع. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تصنيف الفئران التي كانت واضحة في 5 أسابيع ولكن القرنيات تطوير عتامة في بعض الأحيان&gt; 45 آخر أيام engraftment، برصيد 3 نقاط زمنية لمدة متتالية، وبعد أن خضع أواخر الأجل رفض المزروع القرنية. استخدام كابلان-ماير منحنيات البقاء على قيد الحياة لتحليل بقاء الكسب غير المشروع. </li></ol></li></ol> 5. التلاعب نموذج في اليسار: 40px؛ &quot;&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد الخلايا واحد من الطحال. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لتحضير الخلايا واحدة، الموت ببطء أولا الماوس المانحة. ثم، وإزالة الطحال. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع الطحال في مصفاة الخلية وتعطيل ذلك مع المكبس من حقنة حقنة 3 مل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> غسل الخلايا وresuspend في 10 مل من محلول الملح المتوازن هانكس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة 10 ميكرولتر من تعليق خلية وإضافة إلى 10 ميكرولتر من 0.4٪ التريبان الأزرق والمزيج. إضافة إلى أن عدادة الكريات وعدد الخلايا في الشبكة المركزية. عدد الخلايا في الأنبوب هو عدد خلايا × 10 4 × 2 (عامل التخفيف باللون الأزرق التريبان) × 10 (وحدة التخزين في الأنبوب). </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الحقن في الغرفة الأمامية. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الفئران كما هو موضح سابقا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء الحقن باستخدام مجهر تشريح. لكل حقن intracameral، استخدم 10 6 خلايا الطحال في حجم 0.005 مل وميكروليتر حقنة 0.25 مل مزودة إبرة 33 G. ملاحظة: التلاعب أخرىالنموذج يمكن أن يقوم بها معالجة الحيوانات مع الكواشف التي تعمل إما الخصوم أو منبهات لتحديد الدور الذي يمكن أن تلعبه عاملا خاصا التالية مثلي جراحة القرنية المزروع. </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Farooq, A. V., Shukla, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Herpes+simplex+epithelial+and+stromal+keratitis:+an+epidemiologic+update.">Herpes simplex epithelial and stromal keratitis: an epidemiologic update.</a> Surv. Ophthalmol. , 448-462 (2012).</li><li>Gipson, I. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Age-related+changes+and+diseases+of+the+ocular+surface+and.">Age-related changes and diseases of the ocular surface and.</a> Invest. Opthlamol. Vis. Sci. 54, 48-53 (2013).</li><li>Edwards, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Indications+for+corneal+transplantation+in+New+Zealand:+1991-1999.">Indications for corneal transplantation in New Zealand: 1991-1999.</a> Cornea. 21, 152-155 (2002).</li><li>Thompson, R. W., Price, M. O., Bowers, P. J., Price, F. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+survival+after+penetrating+keratoplasty.">Long-term survival after penetrating keratoplasty.</a> Ophthalmol. 110, 1396-1402 (2003).</li><li>Williams, K. A., Roder, D., Esterman, A., Muehlberg, S. M., Coster, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Factors+predictive+of+corneal+graft+survival.+Report+form+the+Australian+Corneal+Graft+Registry.">Factors predictive of corneal graft survival. Report form the Australian Corneal Graft Registry.</a> Ophthalmology. 99, 403-414 (1992).</li><li>Larkin, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Corneal+allograft+rejection.">Corneal allograft rejection.</a> Br. J. Ophthalmol. 78, 649-652 (1994).</li><li>Boisjoly, H. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Risk+factors+of+corneal+graft+failure.">Risk factors of corneal graft failure.</a> Ophthalmol. 100, 1728-1735 (1993).</li><li>Sugar, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recipient+Risk+Factors+for+Graft+Failure+in+the+Cornea+Donor+Study.">Recipient Risk Factors for Graft Failure in the Cornea Donor Study.</a> Ophthalmol. 116, 1023-1028 (2009).</li><li>Namba, K., Kitaichi, N., Nishida, T., Taylor, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+regulatory+T+cells+by+the+immunomodulating+cytokines+alpha-melanocyte-stimulating+hormone+and+transforming+growth+factor-beta2.">Induction of regulatory T cells by the immunomodulating cytokines alpha-melanocyte-stimulating hormone and transforming growth factor-beta2.</a> J. Leukoc. Biol. 72, 946-952 (2002).</li><li>Taylor, A. W., Yee, D. G., Streilein, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Suppression+of+nitric+oxide+generated+by+inflammatory+macrophages+by+calcitonin+gene-related+peptide+in+aqueous+humor.">Suppression of nitric oxide generated by inflammatory macrophages by calcitonin gene-related peptide in aqueous humor.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 39, 1372-1378 (1998).</li><li>Wilbanks, G. A., Mammolenti, M., Streilein, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+on+the+induction+of+anterior+chamber-associated+immune+deviation+(ACAID).+III.+Induction+of+ACAID+depends+upon+intraocular+transforming+growth+factor-beta.">Studies on the induction of anterior chamber-associated immune deviation (ACAID). III. Induction of ACAID depends upon intraocular transforming growth factor-beta.</a> Eur. J. Immunol. 22, 165-173 (1992).</li><li>Volpert, O. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inducer-stimulated+Fas+targets+activated+endothelium+for+destruction+by+anti-angiogenic+thrombospondin-1+and+pigment+epithelium-derived+factor.">Inducer-stimulated Fas targets activated endothelium for destruction by anti-angiogenic thrombospondin-1 and pigment epithelium-derived factor.</a> Nat. Med. , 8-349 (2002).</li><li>Apte, R. S., Sinha, D., Mayhew, E., Wistow, G. J., Niederkorn, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cutting+edge:+role+of+macrophage+migration+inhibitory+factor+in+inhibiting+NK+cell+activity+and+preserving+immune+privilege.">Cutting edge: role of macrophage migration inhibitory factor in inhibiting NK cell activity and preserving immune privilege.</a> J. Immunol. 160, 5693-5696 (1998).</li><li>Kennedy, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+production+of+interleukin-1+receptor+antagonist+peptides+in+normal+human+cornea.">Novel production of interleukin-1 receptor antagonist peptides in normal human cornea.</a> J. Clin. Invest. 95, 82-88 (1995).</li><li>Shimmura-Tomita, M., Wang, M., Taniguchi, H., Akiba, H., Yagita, H., Hori, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Galectin-9-mediated+protection+from+allo-specific+T+cells+as+a+mechanism+of+immune+privilege+of+corneal+allografts.">Galectin-9-mediated protection from allo-specific T cells as a mechanism of immune privilege of corneal allografts.</a> PLoS One. 8, (2013).</li><li>Goldberg, M. F., Ferguson, T. A., Pepose, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Detection+of+cellular+adhesion+molecules+in+inflamed+human+corneas.">Detection of cellular adhesion molecules in inflamed human corneas.</a> Ophthalmol. 101, 161-168 (1994).</li><li>Stuart, P. M., Griffith, T. S., Usui, N., Pepose, J. S., Yu, X., Ferguson, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD95+ligand+(FasL)-induced+apoptosis+is+necessary+for+corneal+allograft+survival.">CD95 ligand (FasL)-induced apoptosis is necessary for corneal allograft survival.</a> J Clin Invest. 99, 396-402 (1997).</li><li>Yamagami, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+Fas-Fas+ligand+interactions+in+the+immunorejection+of+allogeneic+mouse+corneal+transplants.">Role of Fas-Fas ligand interactions in the immunorejection of allogeneic mouse corneal transplants.</a> Transplantation. 64, 1107-1111 (1997).</li><li>Stuart, P. M., Pan, F., Plambeck, S., Ferguson, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fas/Fas+ligand+interactions+regulate+neovascularization+in+the+cornea.">Fas/Fas ligand interactions regulate neovascularization in the cornea.</a> Invest. Ophthalmmol. Vis. Sci. 44, 93-98 (2003).</li><li>Stuart, P. M., Yin, X. T., Pan, F., Haskova, Z., Plambeck, S., Ferguson, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inhibitors+of+matrix+metalloproteinases+activity+prolong+corneal+allograft+acceptance+by+increasing+FasL+expression.">Inhibitors of matrix metalloproteinases activity prolong corneal allograft acceptance by increasing FasL expression.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 45, 1169-1173 (2004).</li><li>Joo, C. -. K., Pepose, J. S., Stuart, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=T-cell+mediated+responses+in+a+murine+model+of+orthotopic+corneal+transplantation.">T-cell mediated responses in a murine model of orthotopic corneal transplantation.</a> Invest.Ophthalmol. Vis. Sci. 36, 1530-1540 (1995).</li><li>Sonoda, Y., Sano, Y., Ksander, B., Streilein, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+cell-mediated+immune+responses+elicited+by+orthotopic+corneal+allografts+in+mice.">Characterization of cell-mediated immune responses elicited by orthotopic corneal allografts in mice.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 36, 427-434 (1995).</li><li>Sano, Y., Osawa, H., Sotozono, C., Kinoshita, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytokine+expression+during+orthotopiccorneal+allograft+rejection+in+mice.">Cytokine expression during orthotopiccorneal allograft rejection in mice.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 39, 1953-1957 (1998).</li><li>Haskova, Z., Usui, N., Ferguson, T. A., Pepose, J. S., Stuart, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD4++T+cells+are+critical+in+corneal+but+not+skin+allograft+rejection.">CD4+ T cells are critical in corneal but not skin allograft rejection.</a> Transplantation. 69, 483-488 (2000).</li><li>Tan, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunological+disruption+of+antiangiogenic+signals+by+recruited+allospecific+T+cells+leads+to+corneal+allograft+rejection.">Immunological disruption of antiangiogenic signals by recruited allospecific T cells leads to corneal allograft rejection.</a> J. Immunol. 188, 5962-5969 (2012).</li><li>Dana, M. R., Yamada, J., Streilein, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Topical+interleukin-1+receptor+antagonist+promotes+corneal+transplant+survival.">Topical interleukin-1 receptor antagonist promotes corneal transplant survival.</a> Transplantation. 63, 1501-1507 (1997).</li><li>Cunnusamy, K., Chen, P. W., Niederkorn, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=IL-17A-dependent+CD4+CD25++regulatory+T+cells+promote+immune+privilege+of+corneal+allografts.">IL-17A-dependent CD4+CD25+ regulatory T cells promote immune privilege of corneal allografts.</a> J. Immunol. 186, 6737-6745 (2011).</li><li>Fu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Arginine+depletion+as+a+mechanism+for+the+immune+privilege+of+corneal+allografts.">Arginine depletion as a mechanism for the immune privilege of corneal allografts.</a> Eur. J. Immunol. 41, 2997-3005 (2011).</li><li>Medina, C. A., Rowe, A. M., Yun, H., Knickelbein, J. E., Lathrop, K. L., Hendricks, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Azithromycin+treatment+increases+survival+of+high-risk+corneal+allotransplants.Cornea.">Azithromycin treatment increases survival of high-risk corneal allotransplants.Cornea.</a> , 32-658 (2013).</li><li>Cho, Y. K., Zhang, X., Uehara, H., Young, J. R., Archer, B., Ambati, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascular+Endothelial+Growth+Factor+Receptor+1+morpholino+increases+graft+survival+in+a+murine+penetrating+keratoplasty.">Vascular Endothelial Growth Factor Receptor 1 morpholino increases graft survival in a murine penetrating keratoplasty.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 53, 8458-8471 (2012).</li><li>Kim, H. K., Choi, J. A., Uehara, H., Zhang, X., Ambati, B. K., Cho, Y. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Presurgical+corticosteroid+treatment+improves+corneal+transplant+survival+in+mice.">Presurgical corticosteroid treatment improves corneal transplant survival in mice.</a> Cornea. 32, 1591-1598 (2013).</li><li>Yamazoe, K., Yamazoe, K., Shimazaki-Den, S., Shimazaki, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prognostic+factors+for+corneal+graft+recovery+after+severe+corneal+graft+rejection+following+penetrating+keratoplasty.">Prognostic factors for corneal graft recovery after severe corneal graft rejection following penetrating keratoplasty.</a> BMC Ophthalmol. 13, 5 (2013).</li><li>Panda, A., Vanathi, M., Kumar, A., Dash, Y., Priya, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Corneal+graft+rejection.">Corneal graft rejection.</a> Surv. Ophthalmol. 52, 375-396 (2007).</li><li>Patel, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Graft+survival+and+endothelial+outcomes+in+the+new+era+of+endothelial+keratoplasty.">Graft survival and endothelial outcomes in the new era of endothelial keratoplasty.</a> Exp. Eye Res. 95, 40-47 (2012).</li><li>Anshu, A., Price, M. O., Tan, D. T., Price, F. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelial+keratoplasty:+a+revolution+in+evolution.">Endothelial keratoplasty: a revolution in evolution.</a> Surv. Ophthalmol. 57, 236-252 (2013).</li></ol>

The authors have no competing financial interests.

نموذج الفئران من زرع القرنية هو موضح هنا تمكن الباحث لدراسة المزروع رفض القرنية البشرية في نموذج تنبؤي هو ما هي أفضل عوامل ترتبط مع كل من رفض 15،17،18،20، 26-30 و21-25 القبول من القرنية المغايرة. خلافا لزرع القرنية البشرية، حيث يتم إعطاء المرضى سواء الموضعية أو الجهازي?...

زرع القرنية هو أحد الأنواع الأكثر نجاحا وشيوعا لزرع أجريت في البشر. الأسباب يتم تنفيذ هذه الجراحة هي نتيجة الإصابات والأمراض المعدية 1، أو أشكال أخرى من أمراض القرنية غير المعدية 2. شخصيات من جمعية بنك العيون الأمريكية تشير إلى أن أكثر من 46،000 أجريت في عام 2011 (انظر موقع على شبكة الإنترنت على العنوان التالي: restoresight.org/eye_banks/eye_banks.html). مؤشرا على نجاحها هو أن معدلات الفشل سنة واحدة لترقيع القرنية خيفي تتراوح 10-15٪ وعلى 5 سنوات من النجاح هو ما يزيد على 70٪ 3-8. كما أظهرت العديد من الدراسات أن نجاح المغايرة القرنية يرتبط مباشرة إلى حقيقة أن العين هي موقع متميز مناعيا. العوامل المسؤولة عن وضع القرنيات كموقع امتياز المناعة تشمل عدم وجود كل من الأوعية الدموية والليمفاوية في القرنية، والغياب النسبي للمستضد تقديم الخلايا، والعوامل التي تنتجها القرنية التي قامعليالي funtions المستجيب المناعة 9-15 والتعبير انخفاض MHC المستضدات 16، والتعبير عن FASL 17-20. ومع ذلك، وعلى الرغم من هذه العوامل المهيئة هذه الطعوم للنجاح، وأنها لا تخضع لرفض 3-7. وبالتالي، فهم تلك الآليات التي تتوسط هذا الرفض وكذلك اختبار مختلف العلاجات لمنع الرفض هي ذات أهمية حاسمة. تحقيقا لهذه الغاية، وصفنا هنا نموذج الفئران من زرع القرنية التي تم استخدامها لأكثر من 20 عاما لدراسة زرع القرنية في بيئة تسيطر التجريبية. منذ ردود زرع تشمل العديد من العوامل المختلفة العاملة في الحفل الذي سيكون في نهاية المطاف تحديد ما إذا فشلت أو نجحت الأنسجة المزروعة، فمن غير الممكن أن نفهم أهمية هذه العوامل في أي نموذج في المختبر. وبالتالي، هناك حاجة لدراسات باستخدام حيوانات سليمة لتحديد ما هي عوامل مهمة إما نجاح أو failuإعادة الأنسجة المزروعة. بينما الأنواع الأخرى من الحيوانات التي استخدمت لدراسة زرع القرنية، ونموذج الفئران ديها العديد من المزايا بالمقارنة مع استخدام الأنواع الأخرى. الأول هو وجود العديد من سلالات الفئران التي تعبر عن بعض الجينات المحورة أو تم استهداف الجينات تفتقر إلى التعبير عن عوامل مناعية معينة وظيفتها في زرع يمكن دراستها بشكل أفضل. وبالإضافة إلى ذلك، هناك العديد من الكواشف (عوامل المؤتلف والأجسام المضادة التي تحييد العوامل) التي هي محددة للفئران والتي لا وجود لها بالنسبة لكثير من الأنواع الأخرى من الحيوانات. بسبب وجود هذه العوامل، وقد استخدم هذا النموذج على نطاق واسع لتحديد العوامل ذات الصلة المشاركة في الردود المزروع القرنية الحادة 15، 17،18،20 -29. وعلاوة على ذلك، ومن المعروف أن العديد من العوامل التي تدخل في زرع القرنية أيضا لتكون وظيفية في زرع الأنسجة الأخرى.

<table><tbody><tr><td>Zeiss Surgical Microscope</td><td>Zeiss</td><td>Rebuilt</td><td></td></tr><tr><td>1 ml Syringe</td><td>BD</td><td>305122</td><td></td></tr><tr><td>3 ml Syringe</td><td>BD</td><td>309657</td><td></td></tr><tr><td>10 ml Syringe</td><td>BD</td><td>309602</td><td></td></tr><tr><td>Vannus Scissors</td><td>Stortz</td><td>E-3387</td><td></td></tr><tr><td>11-0 Sutures</td><td>Alcon</td><td>717939M</td><td></td></tr><tr><td>Trephine 2.0 mm</td><td>Katena</td><td>K 2-7520</td><td></td></tr><tr><td>Trephine 1.5 mm</td><td>Katena</td><td>K 2-7510</td><td></td></tr><tr><td>Tricaine Hydrochloride 0.5%</td><td>Alcon</td><td>NDC 0065-0741-12</td><td></td></tr><tr><td>Healon</td><td>Abbott</td><td>Healon OVD</td><td></td></tr><tr><td>Forceps</td><td>FST</td><td>11251-20</td><td></td></tr><tr><td>7-0 Sutures</td><td>Alcon</td><td>8065</td><td></td></tr><tr><td>2.5% Phenylephrine HCl</td><td>Alcon</td><td>NDC 61314-342-02</td><td></td></tr><tr><td>1% Tropicamide</td><td>Bausch &amp;amp; Lomb</td><td>NDC-24208-585-59</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton Syringe</td><td>Hamilton</td><td>7654-01</td><td></td></tr><tr><td>33 gauge needle</td><td>Hamilton</td><td>90033</td><td></td></tr><tr><td>Cell Strainer (100 &amp;mu;m nylon)</td><td>BD Falcon</td><td>352360</td><td></td></tr><tr><td>Hemocytometer</td><td>Cardinal Health</td><td>B3175</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Blue</td><td>Sigma</td><td>T8154</td><td></td></tr></tbody></table>

murine corneal transplantation: a model to study the most common form of solid organ transplantation

Corneal transplantation is the most common form of organ transplantation in the United States with between 45,000 and 55,000 procedures performed each year. While several animal models exist for this procedure and mice are the species that is most commonly used. The reasons for using mice are the relative cost of using this species, the existence of many genetically defined strains that allow for the study of immune responses, and the existence of an extensive array of reagents that can be used to further define responses in this species. This model has been used to define factors in the cornea that are responsible for the relative immune privilege status of this tissue that enables corneal allografts to survive acute rejection in the absence of immunosuppressive therapy. It has also been used to define those factors that are most important in rejection of such allografts. Consequently, much of what we know concerning mechanisms of both corneal allograft acceptance and rejection are due to studies using a murine model of corneal transplantation. In addition to describing a model for acute corneal allograft rejection, we also present for the first time a model of late-term corneal allograft rejection.

تم استخدام نموذج الفئران من زرع القرنية لأكثر من 20 عاما لتوصيف آليات كل من رفض المزروع 19-23 القرنية والقرنية قبول المزروع 13، 15،16،18، 24-27 بنجاح. وقد استخدم هذا النموذج لتحديد أهمية FASL التعبير في قبول المزروع القرنية، في أن الحيوانات التي تفتقر FASL لم تكن قادرة...

Watch this Scientific Journal Video about Murine Corneal Transplantation: A Model to Study the Most Common Form of Solid Organ Transplantation at JoVE.com

Murine Corneal Transplantation: A Model to Study the Most Common Form of Solid Organ Transplantation

Mice have been used as a model for studying many forms of transplantation, including corneal transplantation. We describe in this report a murine model for both acute and late-term corneal transplantation.

الفئران زرع القرنية: نموذج لدراسة الشكل الأكثر شيوعا من الصلبة زراعة الأعضاء

Corneal transplantation is the most common form of organ transplantation in the United States with between 45,000 and 55,000 procedures performed each ...

murine-corneal-transplantation-model-to-study-most-common-form-solid

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Medicine

9.6K Views.  Saint Louis University. Mice have been used as a model for studying many forms of transplantation, including corneal transplantation. We describe in this report a murine model for both acute and late-term corneal transplantation.

Video: Murine Corneal Transplantation: A Model to Study the Most Common Form of Solid Organ Transplantation

Mouse Kidney Transplantation: Models of Allograft Rejection

Rejection of the transplanted kidney in humans is still a major cause of morbidity and mortality. The mouse model of renal transplantation closely replicates both the technical and pathological processes that occur in human renal transplantation. Although mouse models of allogeneic rejection in organs other than the kidney exist, and are more technically feasible, there is evidence that different organs elicit disparate rejection modes and dynamics, for instance the time course of rejection in cardiac and renal allograft differs significantly in certain strain combinations. This model is an attractive tool for many reasons despite its technical challenges. As inbred mouse strain haplotypes are well characterized it is possible to choose donor and recipient combinations to model acute allograft rejection by transplanting across MHC class I and II loci. Conversely by transplanting between strains with similar haplotypes a chronic process can be elicited were the allograft kidney develops interstitial fibrosis and tubular atrophy. We have modified the surgical technique to reduce operating time and improve ease of surgery, however a learning curve still needs to be overcome in order to faithfully replicate the model. This study will provide key points in the surgical procedure and aid the process of establishing this technique.

Here, we present a protocol to study the immunology of rejection. The surgical model presented reports a short operating time and a concise technique. Depending on the donor-recipient strain combination, the transplanted kidney may develop acute cellular rejection or chronic allograft damage, defined by interstitial fibrosis and tubular atrophy.

الماوس زرع الكلى: نماذج من طعم خيفي رفض

Rejection of the transplanted kidney in humans is still a major cause of morbidity and mortality. The mouse model of renal transplantation closely ...

Murine Kidney Transplant Technique

The first mouse kidney transplant technique was published in 19731 by the Russell laboratory. Although it took some years for other labs to become proficient in and utilize this technique, it is now widely used by many laboratories around the world. A significant refinement to the original technique using the donor aorta to form the arterial anastomosis instead of the renal artery was developed and reported in 1993 by Kalina and Mottram 2 with a further advancement coming from the same laboratory in 1999 3. While one can become proficient in this model, a search of the literature reveals that many labs still experience a high proportion of graft loss due to arterial thrombosis. We describe here a technique that was devised in our laboratory that vastly reduces the arterial thrombus reported by others 4,5. This is achieved by forming a heel-and-toe cuff of the donor infra-renal aorta that facilitates a larger anastomosis and straighter blood flow into the kidney.

The goal of this manuscript is to describe the steps required to perform a kidney transplant in a mouse, paying particular attention to the details of the arterial anastomosis.

الكلى الفئران زرع تقنية

The first mouse kidney transplant technique was published in 19731 by the Russell laboratory. Although it took some years for other labs to become ...

Murine Full-thickness Skin Transplantation

Murine full-thickness skin transplantation is a well-established in vivo model to study alloimmune response and graft rejection. Despite its limited application to humans, skin transplantation in mice has been widely employed for transplantation research. The procedure is easy to learn and perform, and it does not require delicate microsurgical techniques nor extensive training. Moreover, graft rejection in this model occurs in a very reproducible immunological reaction and is easily monitored by direct inspection and palpation. In addition, secondary skin transplantation with donor-matched or third-party skin grafts can be performed on more complex transplant models as an alternative and uncomplicated method to assess donor-specific tolerance. The complications are low and are in general limited to anesthesia overdose or respiratory distress after the procedure. Graft failure, on the other hand, occurs commonly as a result of poor preparation of the graft, incorrect positioning in the graft bed, or inappropriate placement of the bandage. In this article, we present a protocol for full-thickness skin transplantation in mice and describe the important steps necessary for a successful procedure.

Murine full-thickness skin transplantation is a well-established model to study rejection in an alloimmune setting. Here, we provide a tutorial of each step involved in performing a BALB/c--&#62;C57BL/6 full-thickness skin transplant.

الفئران كامل سماكة الجلد زراعة

Murine full-thickness skin transplantation is a well-established in vivo model to study alloimmune response and graft rejection. Despite its limited ...

Immunology and Infection

A Novel Microsurgical Model for Heterotopic, En Bloc Chest Wall, Thymus, and Heart Transplantation in Mice

Exploration of novel strategies in organ transplantation to prolong allograft survival and minimizing the need for long-term maintenance immunosuppression must be pursued. Employing vascularized bone marrow transplantation and co-transplantation of the thymus have shown promise in this regard in various animal models.1-11 Vascularized bone marrow transplantation allows for the uninterrupted transfer of donor bone marrow cells within the preserved donor microenvironment, and the incorporation of thymus tissue with vascularized bone marrow transplantation has shown to increase T-cell chimerism ultimately playing a supportive role in the induction of immune regulation. The combination of solid organ and vascularized composite allotransplantation can uniquely combine these strategies in the form of a novel transplant model. Murine models serve as an excellent paradigm to explore the mechanisms of acute and chronic rejection, chimerism, and tolerance induction, thus providing the foundation to propagate superior allograft survival strategies for larger animal models and future clinical application. Herein, we developed a novel heterotopic en bloc chest wall, thymus, and heart transplant model in mice using a cervical non-suture cuff technique. The experience in syngeneic and allogeneic transplant settings is described for future broader immunological investigations via an instructional manuscript and video supplement.

To study combined solid organ and vascularized composite allotransplantation, we describe a novel heterotopic en bloc chest wall, thymus, and heart transplant model in mice using a cervical non-suture cuff technique.

A المجهرية نموذج رواية لمنتبذ، جناح كتلة جدار الصدر، الغدة الصعترية، وزرع القلب في الفئران

Exploration of novel strategies in organ transplantation to prolong allograft survival and minimizing the need for long-term maintenance immunosuppression ...

Orthotopic Hind Limb Transplantation in the Mouse

In vivo animal model systems, and in particular mouse models, have evolved into powerful and versatile scientific tools indispensable to basic and translational research in the field of transplantation medicine. A vast array of reagents is available exclusively in this setting, including mono- and polyclonal antibodies for both diagnostic and interventional applications. In addition, a vast number of genotyped, inbred, transgenic, and knock out strains allow detailed investigation of the individual contributions of humoral and cellular components to the complex interplay of an immune response and make the mouse the gold standard for immunological research. 
Vascularized Composite Allotransplantation (VCA) delineates a novel field of transplantation using allografts to replace "like with like" in patients suffering traumatic or congenital tissue loss. This surgical methodological protocol shows the use of a non-suture cuff technique for super-microvascular anastomosis in an orthotopic mouse hind limb transplantation model. The model specifically allows for comparison between established paradigms in solid organ transplantation with a novel form of transplants consisting of various different tissue components. Uniquely, this model allows for the transplantation of a viable vascularized bone marrow compartment and niche that have the potential to exert a beneficial effect on the balance of immune acceptance and rejection. This technique provides a tool to investigate alloantigen recognition and allograft rejection and acceptance, as well as enables the pursuit of functional nerve regeneration studies to further advance this novel field of transplantation.

This novel model for orthotopic hind limb transplantation in the mouse, applying a non-suture cuff technique for super-microvascular anastomosis, provides a powerful tool for in&#160;vivo mechanistic immunological research related to vascularized composite allotransplantation (VCA).

مثلي هند الاطراف زرع في ماوس

In vivo animal model systems, and in particular mouse models, have evolved into powerful and versatile scientific tools indispensable to basic and ...

Heterotopic Renal Autotransplantation in a Porcine Model: A Step-by-Step Protocol

Kidney transplantation is the treatment of choice for patients suffering from end-stage renal disease. It offers better life expectancy and higher quality of life when compared to dialysis. Although the last few decades have seen major improvements in patient outcomes following kidney transplantation, the increasing shortage of available organs represents a severe problem worldwide. To expand the donor pool, marginal kidney grafts recovered from extended criteria donors (ECD) or donated after circulatory death (DCD) are now accepted for transplantation. To further improve the postoperative outcome of these marginal grafts, research must focus on new therapeutic approaches such as alternative preservation techniques, immunomodulation, gene transfer, and stem cell administration.
Experimental studies in animal models are the final step before newly developed techniques can be translated into clinical practice. Porcine kidney transplantation is an excellent model of human transplantation and allows investigation of novel approaches. The major advantage of the porcine model is its anatomical and physiological similarity to the human body, which facilitates the rapid translation of new findings to clinical trials. This article offers a surgical step-by-step protocol for an autotransplantation model and highlights key factors to ensure experimental success. Adequate pre- and postoperative housing, attentive anesthesia, and consistent surgical techniques result in favorable postoperative outcomes. Resection of the contralateral native kidney provides the opportunity to assess post-transplant graft function. The placement of venous and urinary catheters and the use of metabolic cages allow further detailed evaluation. For long-term follow-up studies and investigation of alternative graft preservation techniques, autotransplantation models are superior to allotransplantation models, as they avoid the confounding bias posed by rejection and immunosuppressive medication.

Porcine models of organ transplantation provide an important platform to study mechanisms of organ preservation. This article describes a heterotopic porcine renal autotransplantation model, which allows investigating new approaches to improve the outcome of transplantation using marginal kidney grafts.

منتبذ الكلوي الزرع الذاتي في لحم الخنزير نموذج: بروتوكول خطوة بخطوة

Kidney transplantation is the treatment of choice for patients suffering from end-stage renal disease. It offers better life expectancy and higher quality ...

A Modified Murine Heterotopic Heart Transplant Protocol Matching Contemporary Standards of Aseptic Technique, Anesthesia, and Analgesia

The development of experimental models of cardiac transplantation in animals has contributed to many advances in the fields of immunology and solid organ transplantation. While the heterotopic vascularized murine cardiac transplantation model was initially utilized in studies of graft rejection using combinations of mismatched inbred mouse strains, access to genetically modified strains and therapeutic modalities can provide powerful new preclinical insights. Fundamentally, the surgical methodology for this technique has not changed since its development, especially with respect to important factors such as aseptic technique, anesthesia, and analgesia, which make material impacts on postsurgical morbidity and mortality. Additionally, improvements in perioperative management are expected to provide improvements in both animal welfare and experimental outcomes. This paper reports upon a protocol developed in collaboration with a subject matter expert in veterinary anesthesia and describes the surgical technique with an emphasis on perioperative management. Additionally, we discuss the implications of these refinements and provide details on troubleshooting critical surgical steps for this procedure.

The present paper describes a modified technique for heterotopic vascularized cardiac transplantation with updated aseptic technique, analgesia, and anesthesia.

بروتوكول معدل لزراعة القلب غير المتجانس للفأر يتوافق مع المعايير المعاصرة لتقنية التعقيم والتخدير وتسكين الألم

The development of experimental models of cardiac transplantation in animals has contributed to many advances in the fields of immunology and solid organ ...

A Porcine Corneal Endothelial Organ Culture Model Using Split Corneal Buttons

Experimental research on corneal endothelial cells is associated with several difficulties. Human donor corneas are scarce and rarely available for experimental investigations as they are normally needed for transplantation. Endothelial cell cultures often do not translate well to in vivo situations. Due to the biostructural characteristics of non-human corneas, stromal swelling during cultivation induces substantial corneal endothelial cell loss, which makes it difficult to perform cultivation for an extended period of time. Deswelling agents such as dextran are used to counteract this response. However, they also cause significant endothelial cell loss. Therefore, an ex vivo organ culture model not requiring deswelling agents was established. Pig eyes from a local slaughterhouse were used to prepare split corneal buttons. After partial corneal trephination, the outer layers of the cornea (epithelium, bowman layer, parts of the stroma) were removed. This significantly reduces corneal endothelial cell loss induced by massive stromal swelling and Descemet&#39;s membrane folding throughout longer cultivation periods and improves general preservation of the endothelial cell layer. Subsequent complete corneal trephination was followed by the removal of the split corneal button from the remaining eye bulb and cultivation. Endothelial cell density was assessed at follow-up times of up to 15 days after preparation (i.e., days 1, 8, 15) using light microscopy. The preparation technique used allows a better preservation of the endothelial cell layer enabled by less stromal tissue swelling, which results in slow and linear decline rates in split corneal buttons comparable to human donor corneas. As this standardized organo-typically cultivated research model for the first time allows a stable cultivation for at least two weeks, it is a valuable alternative to human donor corneas for future investigations of various external factors with regards to their effects on the corneal endothelium.

Here, a step-by-step protocol for the preparation and cultivation of porcine split corneal buttons is presented. As this organo-typically cultivated organ culture model shows cell death rates within 15 days, comparable to human donor corneas, it represents the first model allowing long-term cultivation of non-human corneas without adding toxic dextran.

نموذج ثقافة الجهاز البطانية القرنية الخنازير باستخدام أزرار القرنية الانقسام

Experimental research on corneal endothelial cells is associated with several difficulties. Human donor corneas are scarce and rarely available for ...

Orthotopic Kidney Auto-Transplantation in a Porcine Model Using 24 Hours Organ Preservation And Continuous Telemetry

In the present era of organ transplantation with critical organ shortage, various strategies are employed to expand the pool of available allografts for kidney transplantation (KT). Even though, the use of allografts from extended criteria donors (ECD) could partially ease the shortage of organ donors, ECD organs carry a potentially higher risk for inferior outcomes and postoperative complications. Dynamic organ preservation techniques, modulation of ischemia-reperfusion and preservation injury, and allograft therapies are in the spotlight of scientific interest in an effort to improve allograft utilization and patient outcomes in KT.
Preclinical animal experiments are playing an essential role in translational research, especially in the medical device and drug development. The major advantage of the porcine orthotopic auto-transplantation model over ex vivo or small animal studies lies within the surgical-anatomical and physiological similarities to the clinical setting. This allows the investigation of new therapeutic methods and techniques and ensures a facilitated clinical translation of the findings. This protocol provides a comprehensive and problem-oriented description of the porcine orthotopic kidney auto-transplantation model, using a preservation time of 24 hours and telemetry monitoring. The combination of sophisticated surgical techniques with highly standardized and state-of-the-art methods of anesthesia, animal housing, perioperative follow up, and monitoring ensure the reproducibility and success of this model.

Large animal models play an essential role in preclinical transplantation research. Due to its similarities to the clinical setup, the porcine model of orthotopic kidney auto-transplantation described in this article provides an excellent in vivo setting for the testing of organ preservation techniques and therapeutic interventions.

عملية زرع الكلى التلقائية في نموذج بورسين باستخدام 24 ساعة لحفظ الأعضاء والقياس المستمر عن بعد

In the present era of organ transplantation with critical organ shortage, various strategies are employed to expand the pool of available allografts for ...

A Simplified Model for Heterotopic Heart Valve Transplantation in Rodents

There is an urgent clinical need for heart valve replacements that can grow in children. Heart valve transplantation is proposed as a new type of transplant with the potential to deliver durable heart valves capable of somatic growth with no requirement for anticoagulation. However, the immunobiology of heart valve transplants remains unexplored, highlighting the need for animal models to study this new type of transplant. Previous rat models for heterotopic aortic valve transplantation into the abdominal aorta have been described, though they are technically challenging and costly. For addressing this challenge, a renal subcapsular transplant model was developed in rodents as a practical and more straightforward method for studying heart valve transplant immunobiology. In this model, a single aortic valve leaflet is harvested and inserted into the renal subcapsular space. The kidney is easily accessible, and the transplanted tissue is securely contained in a subcapsular space that is well vascularized and can accommodate a variety of tissue sizes. Furthermore, because a single rat can provide three donor aortic leaflets and a single kidney can provide multiple sites for transplanted tissue, fewer rats are required for a given study. Here, the transplantation technique is described, providing a significant step forward in studying the transplant immunology of heart valve transplantation.

This protocol describes a simple and efficient method for the transplantation of aortic valve leaflets under the renal capsule to allow for the study of alloreactivity of heart valves.