İntramural finansman bu proje için Intramural araştırma bölümü, ulusal kalp, akciğer ve kan Enstitüsü'nde Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından sağlandı. Dr James Hawkins, Dr Robert Hoyt, hayvan hastalıklarıyla ilgili kaynaklar bölümü NIH ve personel NIH de kardiyotorasik cerrahi araştırma programı kabul etmek istiyoruz.

burada açıklanan yordamları Ulusal kalp, akciğer ve kan Enstitüsü hayvan bakım ve kullanım Komitesi, Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından kabul edildi ve halk sağlığı hizmet İlkesi'nde belirtilen ilkelerine uygun İnsana ilişkin bakım ve laboratuvar hayvanları, hayvan hakları yasası ve Bakım Kılavuzu ve Use of Laboratory Animals.
 Not: Bu yordamın amacı, cerrahi klinik hasta şiddetli CAD ile ilgilidir tedavileri geliştirmek için kullanılan kronik miyokardiyal iskemi bir hayvan modeli üretmektir. Bu bir vitro modelini kullanarak başarılı olamaz.
 1. hayvanlar <ol><li>kullanın erkek Yorkshire domuz arasında 12 ve 15 kg ağırlığında</li></ol>
 2. pre-surgical yordamları <ol><li>profilaktik antibiyotik için amoksisilin ve clavulanate potasyum (15 mg/kg) günde iki kez sözlü olarak ameliyat öncesi 24 h başlayan kullanın. 
	Not: Bu oral antibiyotik domuz yutmak emin olmak için ve ayrıca onlar post-operatively ilaç Alerjik bir reaksiyon yok edecektir emin olmak için ameliyattan önce başlatılır.</li>
	<li>Gıda ve domuz ameliyat öncesi 12 h su kesintisi.</li>
	<li>Ameliyat günü, domuz ketamin (33 mg/kg), midazolam (0,5 - 0,75 mg/kg) ve glycopyrrolate (0.01 mg/kg) kas içi (IM) verilen bir kokteyl ile anestezi.</li>
	<li>Bir kulak ven bir 20 G intravenöz (IV) kateter yerleştirin ve 7.0 Fr endotrakeal tüp ile hayvan entübe. 
	Not: IV kateter ve domuz boyutu için uygun endotrakeal tüp boyutunu ayarlamak.</li>
	<li>Göbeğini için omuz ve karın orta hat vertebral sütun için domuz sol tarafında (tıraş) saç kaldırmak.</li>
	<li>Profilaktik antibiyotik yönetmek (piperacillin ve tazobactam: 100 mg/kg IV) ve ağrı ilaç (buprenorfin sürekli yayın: 0.2 mg/kg subkutan (SC) veya bir fentanyl transdermal yama 25-50 µg/h). 
	Not: hayvanlar için ameliyat öncesi 12 h Oruç ve daha önce bahsedilen oral antibiyotik bu süre zarfında almazsınız çünkü IV antibiyotik verilir.</li>
	<li>Domuz ameliyathane için taşıma ve endotrakeal tüp hava yolu gazlar izlemek için bir sidestream sensörüne sahip anestezi makineye bağlayın. Mekanik olarak 10 mL/kg gelgit hacmi bir başlangıç noktası olarak kullanarak domuz havalandırın ve bir hava yolu basıncı 30 cm H 2 O. Set min (bpm) başına 10-20 nefes arasında solunum hızı aşan ve sonunda tidal CO 2 (tutmak için gereken şekilde ayarlayın PetCO 2) düzeyleri arasında 28 ve 35 mm Hg. koru isoflurane (% 1-3) ya da sevoflurane (% 2-5) ile anestezi.</li>
	<li>Domuz sağdaki ameliyat masasında aşağı getirin. Vücut ısısı (BT), Elektrokardiyogram (EKG), Nabız oksimetri (SpO 2) vb. izlemek için tüm gerekli sonda takmak</li> <li>%2 chlorohexidine ve % 70 alkol ile üç alternatif scrubs ile cerrahi site hazırlamak (geçerli bir dairesel hareket Merkezi ile başlayan ve dışa doğru hareket).</li>
	<li>Aseptik teknik 21 kullanarak cerrahi sitesi asmak.</li>
</ol> 3. Cerrahi işlem <ol><li>sol torakotomi kalbine maruz.
	<ol><li>Bir cilt kesi için 4 th paralel yapmak ve 5 inci interkostal alan yaklaşık 8-9 cm uzunluğunda bir No 10 neşter bıçak kullanarak.</li>
		<li>Latissimus dorsi ve serratus bir çift eğri Metzenbaum makas ve Brown Adson forseps kullanarak ventralis kasları kesmiş. Elektrokoter hemostaz gerektiği gibi güncelleştirmek için kullanın.</li>
		<li>Th 4 ve 5 inci kaburga ile 4 inci kaburga ön yönünü boyunca Metzenbaum makas kesim arasında interkostal kaslara aracılığıyla plevral boşluğu girin. Yanlışlıkla akciğer zarar verme olasılığını azaltmak, solunum plevral boşluğu girmeden önce nefes üzerinde devre dışı bırakın. Bir kez plevral boşluğu delindi, solunum yeniden açın.</li>
		<li>Kalp açığa ayrı, kaburga yaymak için küçük bir Finochietto Retraktörü kullanın.</li>
	</ol></li> <li>Kullanım Debakey forseps kavramak ve kalp zarını kaldırın. Potts makas Perikardiyal boşluk bırakmak hava izin kalp zarını küçük bir delik açmak için kullanın. DELİKANLI ve LCX arterler kesişimine Potts makasla kesmeye devam.</li>
	<li>Sol atriyal apendiks geri çekmek için kullanmak Babcock forseps. DeBakey ve küçük dik açı forseps kullanarak, teşrih çevreleyen doku önce veya proksimal LCX arterin 1 st kalın kafalı marjinal şube için.</li>
	<li>İki gemi döngü disseke LCX arter, tek tek her iki ucu altında yerleştirin. Bir boyutu 3.0 mm ameroid yılanı küçük dik açı Forseps ile tutun ve hafifçe yılanı delikten LCX arter yol gemi döngüler kaldırın. Açılış karşı karşıya olduğu bu yüzden yılanı Yavaşça döndürün. Gemi döngüler kaldırın. Bkz: şekil 1. 
	Not: Arter yeterli diseksiyon kırışma önlemek için önemlidir. Uygun ölçekli yılanı bireysel hayvan için seçin. Uygun ölçekli yılanı yakından başlangıçta gemi constricting olmadan gemi çevreler. Yerli domuzlar arasında 12 ve 15 kg ağırlığında ameroid kıskaçlar 2.5-3.5 mm boyutlu gerektirir. Gemide ameroid yılanı konumunu iskemik çevrenin istenen boyutuna bağlıdır.</li>
	<li>Kalp zarını yeniden yaklaşık ve 4-0 polipropilen sütür ile yakın.</li>
	<li>Sonunda dışarı kapatma, genellikle iki interkostal boşluk Torakotomi siteye posterior katmanlar arasında çıkmadan ile plevral boşlukta 12 Fr göğüs tüpü veya eşdeğer ekleyerek negatif torasik basınç yeniden. 
	Not: kaburga kapatmadan önce akciğer atelectasis için gözlemlemek. Eğer belirtisi underinflation gözlenir, el ile en fazla 30 mm Hg baskısı akciğerler tekrar havalanmasını sağladık.</li>
	<li>1 polipropilen sütür kullanarak interkostal katmanı, subkutan katman için polipropilen sütür 2-0 ve 3-0 polipropilen sütür subcuticular katman için serratus ve Fasial katmanı için 0 polipropilen sütür için göğüs kapatın. Zımba veya deri dikiş.</li>
	<li>Üç yollu dur horoz Göğüs tüpünü sonuna eklemek ve negatif bir mühür elde kadar göğüs havada bir 40-60 cc şırınga tahliye edin. Hayvan tüm havayı çıkarma kolaylaştırmak için göğüs kemiği ya tam tersi yan üzerine rulo. Bir kez negatif basınç göğüs tutar, göğüs tüpü çıkarması ve çıkış sitesi dikiş. Eğer hayvanlar tek başına post-operatively yerleştirilmiştir, birkaç gün için belgili tanımlık kesme sargılı.</li>
</ol> 4. Post Operatif <ol><li>her iki taraf boyunca kesi ile % 0.25 bupivacaine Torakotomi sitesinin kapatılması sızmak.</li>
	<li>Hayvan solunum kapalı vazgeçirmek ve anestezi açmak. Hayvan kendi başına nefes alıyor bir kez Endotrakeal tüpü çıkarması ve yutma.</li>
	Bu tamamen iyileşti (uyanık ve sternal) kadar <li>hayvan izlemek. Orada-meli var olmak hiçbir anormallik veya EKG'nin, BT aritmiler 38,7-39.8 ° C olması gerektiğini, SpO %2 95-100 olmalıdır ve solunum hızı 32-58 bpm olmalıdır.</li>
	<li>Yönetici Amiodaron (100 mg, günde iki kez sözlü olarak) ve tromboz ve aritmiler önlemek için Klopidogrel bisulfate (75 mg, sözlü olarak günde bir). Amoksisilin ve clavulanate potasyum (15 mg/kg) ile sözlü olarak iki kere a gün için devam etmek 10 gün sonrası işlemi. Ameliyat sonrası ağrı buprenorfin SR (sürekli yayın) ile kontrollü 0.2 mg/kg. SQ üç günde. Buprenorfin SR carprofen (4,4 mg/kg) ile bir kez takviye ve o zaman (2.2 mg/kg) PO veya IM teklifi.</li>
	<li>Hayvan tüm yatak ve yiyecek malzemeden devam &#39; kesik tamamen iyileşene kadar alan konut s.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Mozaffarian, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Executive+Summary:+Heart+Disease+and+Stroke+Statistics--2016+Update:+A+Report+From+the+American+Heart+Association.">Executive Summary: Heart Disease and Stroke Statistics--2016 Update: A Report From the American Heart Association.</a> Circulation. 133 (4), 447-454 (2016).</li><li>Heron, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deaths:+Leading+causes+for+2014.">Deaths: Leading causes for 2014.</a> National Vital Statistics Reports. 65 (5), (2016).</li><li>Tsang, H. G., Rashdan, N. A., Whitelaw, C. B. A., Corcoran, B. M., Summers, K. M., MacRae, V. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Large+animal+models+of+cardiovascular+disease.">Large animal models of cardiovascular disease.</a> Cell Biochem Funct. 34 (3), 113-132 (2016).</li><li>Lassaletta, A. D., Chu, L. M., Sellke, F. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Therapeutic+neovascularization+for+coronary+disease:+current+state+and+future+prospects.">Therapeutic neovascularization for coronary disease: current state and future prospects.</a> Basic Res Cardiol. 106 (6), 897-909 (2011).</li><li>Tuzun, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Correlation+of+Ischemic+Area+and+Coronary+Flow+With+Ameroid+Size+in+a+Porcine+Model.">Correlation of Ischemic Area and Coronary Flow With Ameroid Size in a Porcine Model.</a> J Surg Res. 164 (1), 38-42 (2010).</li><li>Hughes, G. C., Post, M. J., Simons, M., Annex, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Translational+Physiology:+Porcine+models+of+human+coronary+artery+disease:+implications+for+preclinical+trials+of+therapeutic+angiogenesis.">Translational Physiology: Porcine models of human coronary artery disease: implications for preclinical trials of therapeutic angiogenesis.</a> J Appl Physiol. 94 (5), 689-701 (2003).</li><li>Sabe, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Investigating+the+effects+of+resveratrol+on+chronically+ischemic+myocardium+in+a+swine+model+of+metabolic+syndrome:+a+proteomics+analysis.">Investigating the effects of resveratrol on chronically ischemic myocardium in a swine model of metabolic syndrome: a proteomics analysis.</a> J Med Food. 18 (1), 60-66 (2015).</li><li>Santos, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiovascular+imaging:+what+have+we+learned+from+animal+models?.">Cardiovascular imaging: what have we learned from animal models?.</a> Front Pharmacol. 6, 227 (2015).</li><li>Klocke, R., Tian, W., Kuhlmann, M. T., Nikol, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+animal+models+of+heart+failure+related+to+coronary+heart+disease.">Surgical animal models of heart failure related to coronary heart disease.</a> Cardiovasc Res. 74 (1), 29-38 (2007).</li><li>Tarkia, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+remodeling+in+a+new+pig+model+of+chronic+heart+failure:+Assessment+of+left+ventricular+functional,+metabolic,+and+structural+changes+using+PET,+CT,+and+echocardiography.">Cardiac remodeling in a new pig model of chronic heart failure: Assessment of left ventricular functional, metabolic, and structural changes using PET, CT, and echocardiography.</a> J Nucl Cardiol. 22 (4), 655-665 (2015).</li><li>Caillaud, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Echocardiographic+analysis+with+a+two-dimensional+strain+of+chronic+myocardial+ischemia+induced+with+ameroid+constrictor+in+the+pig.">Echocardiographic analysis with a two-dimensional strain of chronic myocardial ischemia induced with ameroid constrictor in the pig.</a> Interact Cardiovasc Thorac Surg. 10 (5), 689-693 (2010).</li><li>Unger, E. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+evaluation+of+coronary+collateral+development.">Experimental evaluation of coronary collateral development.</a> Cardiovasc Res. 49 (3), 497-506 (2001).</li><li>Giordano, C., Kuraitis, D., Beanlands, R. S., Suuronen, E. J., Ruel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell-based+vasculogenic+studies+in+preclinical+models+of+chronic+myocardial+ischaemia+and+hibernation.">Cell-based vasculogenic studies in preclinical models of chronic myocardial ischaemia and hibernation.</a> Expert Opin Biol Ther. 13 (3), 411-428 (2013).</li><li>St Louis, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+Experimental+Model+of+Chronic+Myocardial+Hibernation.">An Experimental Model of Chronic Myocardial Hibernation.</a> Ann Thorac Surg. 69 (5), 1351-1357 (2000).</li><li>Green, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+X-ray+fluoroscopy+and+interventional+magnetic+resonance+imaging+for+the+assessment+of+coronary+artery+stenoses+in+swine.">Comparison of X-ray fluoroscopy and interventional magnetic resonance imaging for the assessment of coronary artery stenoses in swine.</a> Magn Reson Med. 54 (5), 1094-1099 (2005).</li><li>Qiu, Q., Lin, Y., Xiao, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Time-Course+of+the+Effects+of+QSYQ+in+Promoting+Heart+Function+in+Ameroid+Constrictor-Induced+Myocardial+Ischemia+Pigs.">Time-Course of the Effects of QSYQ in Promoting Heart Function in Ameroid Constrictor-Induced Myocardial Ischemia Pigs.</a> Evid Based Complement Alternat Med. , (2014).</li><li>Zhou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+Injection+of+Autologous+Mesenchymal+Stromal+Cells+Improves+Myocardial+Function.">Direct Injection of Autologous Mesenchymal Stromal Cells Improves Myocardial Function.</a> Biochem Biophys Res Commun. 390 (3), 902-907 (2009).</li><li>Radke, P. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+the+porcine+ameroid+constrictor+model+of+myocardial+ischemia+for+therapeutic+angiogenesis+studies.">Evaluation of the porcine ameroid constrictor model of myocardial ischemia for therapeutic angiogenesis studies.</a> Endothelium. 13 (1), 25-33 (2006).</li><li>Estvold, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Does+laser+type+impact+myocardial+function+following+transmyocardial+laser+revascularization?.">Does laser type impact myocardial function following transmyocardial laser revascularization?.</a> Lasers Surg Med. 42 (10), 746-751 (2010).</li><li>Kumar, A. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intravascular+cell+delivery+device+for+therapeutic+VEGF-induced+angiogenesis+in+chronic+vascular+occlusion.">Intravascular cell delivery device for therapeutic VEGF-induced angiogenesis in chronic vascular occlusion.</a> Biomaterials. 35 (32), 9012-9022 (2014).</li><li>. Essentials of Lab Animal Research: Considerations for Rodent Surgery Available from: <a target="_blank" href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/science-education/10285/considerations-for-rodent-surgery">https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/science-education/10285/considerations-for-rodent-surgery</a> (2017)</li><li>Cao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coronary+artery+vasospasms+in+a+microminipig+occurred+after+placing+an+ameroid+constrictor.">Coronary artery vasospasms in a microminipig occurred after placing an ameroid constrictor.</a> J Vet Med Sci. 78 (7), 1213-1216 (2016).</li><li>Sereda, C. W., Adin, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+of+Gradual+Vascular+Occlusion+and+Their+Applications+in+Treatment+of+Congenital+Portosystemic+Shunts+in+Dogs:+A+Review.">Methods of Gradual Vascular Occlusion and Their Applications in Treatment of Congenital Portosystemic Shunts in Dogs: A Review.</a> Veterinary Surgery. 34, 83-91 (2005).</li><li>Ikonen, T. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ligation+of+ameroid-stenosed+coronary+artery+leads+to+reproducible+myocardial+infarction--a+pilot+study+in+a+porcine+model.">Ligation of ameroid-stenosed coronary artery leads to reproducible myocardial infarction--a pilot study in a porcine model.</a> J Surg Res. 142 (1), 195-201 (2007).</li><li>Adin, C. A., Gregory, C. R., Kyles, A. E., Griffey, S. M., Kendall, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+Petrolatum+Coating+on+the+Rate+of+Occlusion+of+Ameroid+Constrictors+in+the+Peritoneal+Cavity.">Effect of Petrolatum Coating on the Rate of Occlusion of Ameroid Constrictors in the Peritoneal Cavity.</a> Veterinary Surgery. 33, 11-16 (2004).</li><li>Griffin, M. A., Hunt, G. B., Epstein, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavior+of+plastic+and+metal+ameroid+constrictors+during+in+vitro+incubation+in+physiologic+solutions+of+varying+glucose+concentration.">Behavior of plastic and metal ameroid constrictors during in vitro incubation in physiologic solutions of varying glucose concentration.</a> Res Vet Sci. 105, 165-170 (2016).</li></ol>

Yazarlar hiçbir ifşa etmek çıkar çatışması var.

Ameroid kıskaçlar yoğun kronik miyokardiyal iskemi, kronik kalp krizi ve kalp yetmezliği5,6,7,9,10 hayvan modeller oluşturmak için kullanılan , 11 , 12 , 13 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 22. her ne kadar bu modelleri restenoz, hidrolik occluders veya sabit stenoz occluders kullanılarak oluşturulmuş daha doğru bir şekilde işlerini sonuçlarını karşılaştırmak araştırmacılar bilimsel literatürde ameroid kullanımına ilişkin yaygınlık sağlar daha önce yayınlanmamış çalışmalar5,6,7,9,10,11,12,13, 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 22. ameroid yılanı kullanmanın bir diğer avantajı prosedür nispeten basittir ve başarıyla makul cerrahi becerileri olan herkes tarafından gerçekleştirilen ve hiçbir özel araçlar gerektirir alır. Yukarıda belirtilen diğer yöntemleri büyük teknik becerileri gerektirir ve hidrolik occluder söz konusu olduğunda, yoğun ameliyat sonrası nedeniyle externalized aygıt6,13izleme gerektirir.
Ameroid yılanı kullanmanın ana tıkanıklığı9,13hızı değişkenliği kısıtlamadır. Genel olarak, çoğu çalışmalar ameroid yılanı kullanarak tam tıkanıklığı23,24oluşana kadar ilk iki hafta içinde en yüksek ve sonra yavaş yavaş kapalı konik olmak stenoz oranı bulduk. Doğrudan ameroid Lümen kapatma oranını ölçme ex vivo çalışmalar Lümen çapı en büyük azalma ilk iki hafta içinde oluşur ve bundan sonra25,26yavaşlar doğruladı. Ancak, bu aynı çalışmalar da glikoz ve protein konsantrasyonları çevreleyen oranı ve böylece vivo içinde koşulların değişkenliği için büyük olasılıkla sorumlu olduğunu düşündüren ameroid kapatılması completeness etkileyebilir göstermiştir ameroid içinde25,26tıkanıklığı oranları. Diğer araştırmacılar mekanik travma, inflamasyon, fibrozis ve ameroid yerleştirme yordam tarafından neden trombüsü oluşumu bu değişkenliği5,-6,25 katkıda bulunabilir tavsiye ettiler . İkinci senaryo olasılıkla erken ölüm ve kalp bu çalışmada gözlenen başarısızlık nedeni var. Narin, henüz yeterli, arter diseksiyon iki tarafında gemisini kırışma önlemek için ameroid yapmanın yeterince stresli önemini olamaz.
Uygun ameroid yılanı yerleşimini iskemik yüzölçümü de tedavi için büyük kalp geliştirmek için kritik ama değil çok büyük ölümle sonuçlanır. Yorkshire domuzlarda en iyisi için ilk kalın kafalı marjinal şube görüntülenmeden önce ameroid yılanı LCX yerleştirerek. Başka bir yerde bildirildiği gibi bu yaklaşık 25-%306sol ventrikül iskemik yüzölçümü sonuçlandı. Ameroid yerleştirerek herhangi sonuçlandı bu çalışmada araştırılmıştır belirli tedavisi için yetersiz bir iskemik alanda daha düşük.
Cerrahi işlem sırasında meydana gelen aritmiler nadirdir. Sözlü Amiodaron sonrası işlem sonuna kadar çalışma yönetme, ameroid kapalı kapatırken Aritmilere 2-3 hafta sonrası işlemi sırasında engelleyebilir. Ayrıca, kapıcılık ve sağlık personeli herhangi bir pulmoner ödem/kalp yetmezliği erken bir belirtisi olabilir bu süre içinde öksürük belirterek özellikle uyanık olmalıdır.
Yıllar içinde ameroid yılanı tasarım üzerine geliştirilmiş. Ameroids şu anda cerrah tıkandı için gemi çapını eşleşen bir ameroid seçmek izin çeşitli boyutlarda mevcuttur. Ameroid dış halkasındaki paslanmaz çelik, titanyum veya plastik mevcuttur. MRI kullanarak etkilenen kalpler değerlendirirken bu özellikle önemlidir. Tüm metal bir obje Mr görüntülerinde neden olur. Plastik hiçbiri vasıl tüm yapraklar ederken titanyum ameroids paslanmaz çelikten, daha bir obje daha az neden. MRI görüntüleri bir titanyum ameroid ve plastik ameroid arasındaki farkı gösteren Şekil 2 ve şekil 3, sırasıyla gösterilir. Yapının Şekil 2 kalbinde sağ tarafındaki ameroid kapatan titanyum halka tarafından nedeniyle oluşur. Yakın zamana kadar plastik ameroid kapsama halkada bir koroner arter gemi kırışma olmadan yerleştirmek için çok hantal. Bu çalışmada kullanılan ameroid yılanı (bakınız Tablo reçetesi) metal ameroids olarak aynı dış çapı çok daha akıcı bir sürüm olduğunu.

Miyokardiyal iskemi açan koroner arter hastalığı (CAD), önde gelen sakatlık, ölüm ve sağlık maliyetleri dünya4 civarında ve yaklaşık 1 ABD1,2 3 her ölüm için atfedilebilecek nedeni , 3 , 4 , 5 , 6. en çok üçte biri en düşük CAD hastalarda perkütan ve cerrahi tedaviler birçok gelişmeler rağmen yaş, kötü sağlık veya suboptimal anatomi4, nedeniyle bu tedaviler için uygun olmayan 5 , 6 , 7. Tanı görüntüleme veya tedavi yeni yöntemler değerlendirmek için uygun bir hayvan modeli geliştirilmesi önemlidir.
Bir hastalık için bir hayvan modeli geliştirirken, indüklenen bozukluğu yakından insanlar8,9bozuklukta anatomik ve fizyolojik özellikleri öykünüp. Bir kardiyovasküler çalışmalar için en çok kullanılan büyük hayvanların domuz var. Domuz kalbi en yakın boyut, anatomi ve fizyolojisi3,6açısından insan kalbi ROM'una benzer. Benzer şekilde insan kalbi, domuzun kalbi Miyokardiyum bir geniş Kollateral Dolaşım6sahip değil. Bu nedenle, domuz kalbi akut koroner oklüzyon de tahammül etmez ama yavaş yavaş koroner oklüzyon tolere edebilir. Bir Koroner yavaş yavaş tıkandı, o bir model olarak kronik miyokardiyal iskemi, kronik kalp krizi ve kalp yetmezliği5,6,9,10, için kullanılabilir 11 , 12 , 13. kronik miyokardiyal iskemi stent implantasyonu ve hidrolik occluder, sabit stenoz occluder veya bir ameroid yılanı yerleşimini ile indüklenen. Avantajları ve dezavantajları için çeşitli yayınlar6,9,13 ' te ayrıntılı olarak açıklanan tüm bu yöntemler vardır ama ameroid yerleşim5en sık kullanılan yöntemdir, 6,10,11.
Ameroid yılanı kazein malzeme kaplı paslanmaz çelik, plastik veya titanyum yüzük içinde oluşur. Bir kez bir arter (genellikle sol ön inen koroner arter (evlat) veya Sol Sirkumfleks koroner arter (LCX)) yerleştirilir, kazein malzeme yavaş stenoz, taklit eden yavaş yavaş, daraltmak iç Lümen neden çevresindeki sıvı emer bir sonunda, arter ve ortaya çıkan tıkanıklığı9,13,14tam. Bu yordam, tek başına veya diğer yöntemleri sonuçlarını bölge kronik miyokardiyal iskemi ve/veya geliştirmek ve yeni görüntüleme teknikleri8değerlendirmek için yararlı olmuştur kalbin sol ventrikül infarktüsü ile birlikte kullanılan 10,15, tedavi tedaviler7,16,17,18 ve cerrahi işlemler19,20.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="965">
	<tbody>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:323px;">Anesthesia: ketamine</td>
			<td style="width:195px;">Putney, INC</td>
			<td style="width:175px;"></td>
			<td style="width:273px;">Dose: 25mg/kg, IM</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Anesthesia: midazolam</td>
			<td>App Pharmaceuticals</td>
			<td></td>
			<td>Dose: 0.75mg/kg, IM</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Anesthesia: isoflurane</td>
			<td>Baxter</td>
			<td></td>
			<td>Dose: 1-3%, INH</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Antibiotics: amoxicillin and clavulanate potassium</td>
			<td>WG Critical Care</td>
			<td></td>
			<td>Dose: 15mg/kg, IV</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Antibiotics: piperacillin and tazobactam</td>
			<td>Fresenius Kabl</td>
			<td></td>
			<td>Dose: 100mg/kg, PO</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Analgesia: buprenorphine (sustained release)</td>
			<td>Zoo Pharm</td>
			<td></td>
			<td>10mg/ml bottle, Dose: 0.2mg/kg SC</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Analgesia: fentanyl patch</td>
			<td>Mylan</td>
			<td></td>
			<td>Dose: 25-50mcg/hr, TD</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Analgesia: bupivicaine 0.25%</td>
			<td>Hospira</td>
			<td></td>
			<td>Give SC at incision site for analgesia</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Alcohol 70%</td>
			<td>Humco</td>
			<td>NDC 0395-4202-28</td>
			<td>for scrubbing surgical site</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Chlorhexidine scrub 2%</td>
			<td>Vet One</td>
			<td>510083</td>
			<td>for scrubbing surgical site</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Datex-Ohmeda Aestiva /5 anesthesia machine</td>
			<td>GE Healthcare Madison WI.</td>
			<td style="width:175px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Pediatric anesthesia circuit</td>
			<td>Westmed</td>
			<td>7-8901</td>
			<td>www.westmedinc.com</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Water blanket</td>
			<td>Cincinnati Sub Zero</td>
			<td>Blanketrol 2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">EKG</td>
			<td>Medtronics- Physiocontrol</td>
			<td>LifePak 20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Oxygen saturation monitor</td>
			<td>GE Healthcare Madison WI.</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Temperature probe</td>
			<td>GE Healthcare Madison WI.</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Electrical cautery unit</td>
			<td>Valley Labs</td>
			<td>Force 2</td>
			<td>Cut-30 Coag-40</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Endotracheal tube</td>
			<td>Hudson RCI</td>
			<td>HUD510312</td>
			<td>Hudson brand - appropriate size for animal</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Intravenous catheter, size 20 gauge</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology, Inc</td>
			<td>SC-360097</td>
			<td>Fluid and drug administration</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Lactated Ringers Solution</td>
			<td>Hospira</td>
			<td>NDC 0409-7953-03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Macro IV drip set 15 drops/ml</td>
			<td>Hospira</td>
			<td>12672-28</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Surgical gowns</td>
			<td>Kimberly Clark</td>
			<td>90142</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Utility drapes</td>
			<td>Kimberly Clark</td>
			<td>89731</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Adult laparotomy drape</td>
			<td>Medline</td>
			<td>DYNJP3004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Sterile surgical gloves</td>
			<td>Cardinal Health (Allegiance)</td>
			<td>22537-570</td>
			<td>Size 7 - use appropriate size for surgeon</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Needle mat - sterile</td>
			<td>Medline</td>
			<td>NC30MBR</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Cautery pencil</td>
			<td>Medline</td>
			<td>ESPB 2000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Suction tubing</td>
			<td>Medline</td>
			<td>DYND50251</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Suction tip; Yankauer</td>
			<td>Medline</td>
			<td>DYND50130</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Suction cannister</td>
			<td>Cardinal Health (Allegiance)</td>
			<td>65651-220</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Ameroid constrictors sizes 2.5mm -3.5mm</td>
			<td>Research Instruments SW, Inc.</td>
			<td>760-764-9411</td>
			<td>Types: Stainless steel, titanium, or plastic</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">3-way stopcock</td>
			<td>Cardinal Health (Allegiance)</td>
			<td>455991</td>
			<td>For chest tube</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Stomach tube - 18 Fr</td>
			<td>Cardinal Health (Allegiance)</td>
			<td>DC4418</td>
			<td>For chest tube</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">60cc syringe</td>
			<td>Cardinal Health (Allegiance)</td>
			<td>SY35060LL</td>
			<td>For chest tube</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">3cc syringe</td>
			<td>Cardinal Health (Allegiance)</td>
			<td>SY35003LL</td>
			<td>For post-op analgesia injection</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Skin stapler - 35W</td>
			<td>Ethicon&#160; Endo-Surgery</td>
			<td>PMW 35</td>
			<td>skin closure</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Scalpel blade - size #10</td>
			<td>Cardinal Health (Allegiance)</td>
			<td>32295-010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Mini silicone vessel loops&#160; 1 Pak</td>
			<td>Aspen Surgical</td>
			<td>011001PBX</td>
			<td>for elevating circumflex artery to apply ameroid</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">1 (polypropylene) taper</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>BB #8425H</td>
			<td>close ribs</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">2-0 (polypropylene) taper</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>SH #8523</td>
			<td>close muscle layers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">4-0 (polypropylene) taper</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>BB #8581H</td>
			<td>close pericardium</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">20 gauge needle</td>
			<td>Cardinal Health (Allegiance)</td>
			<td>81-200219</td>
			<td>post-op analgesia injection</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">antimicrobial drape</td>
			<td>3M</td>
			<td>6640EZ</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Finochietto rib retractor - infant size</td>
			<td>Codman</td>
			<td>50-8057</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Potts-Smith scissors</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-6043</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Babcock forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-8022</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Pean hemostatic forceps curved</td>
			<td>Codman</td>
			<td>30-4565</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">scalpel handle #7</td>
			<td>Codman</td>
			<td>11-5534</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Brown Adson forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-5231</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Debakey forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-7562</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Mayo scissors</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-6870SC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Metzenbaum dissecting scissors</td>
			<td>Codman</td>
			<td>36-5011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Metzenbaum dissecting scissors</td>
			<td>Codman</td>
			<td>36-5016</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Mayo-Hegar needle holder</td>
			<td>Codman</td>
			<td>36-2017</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Ryder needle holder</td>
			<td>Codman</td>
			<td>36-3012</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Kelly hemostatic forceps</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-7130</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Reynolds hemostatic forcep</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-7211</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Weitlander retractor</td>
			<td>Roboz</td>
			<td>RS-8612</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Yorkshire domestic pigs</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a chronic cardiac ischemia model in swine using an ameroid constrictor

Kalp-damar hastalıkları ölüm Amerika Birleşik Devletleri'nde bir numaralı nedeni kalır. Bu hastalıkların tedavisi için çok sayıda yaklaşım vardır ama yaklaşım ne olursa olsun, bir vivo modeli her tedavi test etmek için gereklidir. Domuz kalp-damar hastalıkları için en çok kullanılan büyük hayvan modellerinden biri. Onun kalp anatomi ve işlevi çok bir insan için benzer. Ameroid yerleştirme tekniği iskemik miyokard infarktüsü eğitim birçok yararlı uygulama olan kalp, yüzölçümü oluşturur. Bu model cerrahi araştırma, ilaç çalışmaları, görüntüleme teknikleri ve hücre tedavileri için kullanılmıştır.
Kalp iskemik bir alanda inducing birkaç yolu vardır. Her birinin avantajları ve dezavantajları vardır, ancak en çok kullanılan teknik bir ameroid yılanı yerleşimini kalır. Ameroid kullanarak ana avantajları mevcut araştırma yaygınlık, onun durumu çeşitli ebat anatomisine uyacak ve dar için gemi boyutunu, nispeten basit bir işlem ve izleme post operatif cerrahidir korumak için harici bir aygıt yok olduğundan, en az düzeydedir. Bu inceleme ameroid yılanı yerleşim için uygun tekniği ayrıntılı bir özetini sağlar.

Ameroid yerleştirme ameliyatları tesisimizde bir iki yıllık süre içinde yapılan elde edilen verileri analiz sonra sağkalım oranı % 80 olmak bulduk. Yordamı 12-15 kg arasında ağırlıklı 25 Yorkshire domuzlar üzerinde gerçekleştirildi. 25 domuzlar 20 izleme yordamı, kaplama ve sonra kısa bir süre kapatma, 2 ağır kalp yetmezliği ve akciğer ödemi için ötenazi ve 1 takip grafisi sırasında anestezik bir ölümdü öldü 2 hayatta kaldı. Nekropsi yordamı 24 saat içinde ölmüş hayvanlar sol ventrikül hazır bir bölümünü ortaya koydu. Bu şüpheli ama ameroid varlığı nedeniyle ameroid Lümen beri müstehcen arter hala açık onaylanamadı. Kalp yetmezliği nedeniyle euthanized hayvanlardan elde edilen ameroids incelenmiş. 18 gün Lümen toplam kapanış oldu.
Hayatta kalan hayvanlar manyetik rezonans görüntüleme (kalp fonksiyonları ve iskemik alanının boyutunu ölçmek için MRG tarafından) 28 gün post-ameroid yerleşim, görüntüsü. Şekil 2 ve şekil 3 titanyum kaplı ameroid bir domuz ve bir plastik encased ameroid bir domuzla sırasıyla elde edilen MRI resimleri göster. Görüntüleme sonra ikinci Torakotomi bir hücre enjeksiyon veya sahte yordam için gerçekleştirildi. Hayvanlar 16 hafta post-ameroid yerleşim olarak uzun bir süre izledi.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56190/56190fig1.jpg"> 
Şekil 1: domuz görüntülerini kalp ameroid yerleştirme işlemi sırasında. (A) delikanlı, LCX ve kalın kafalı marjinal arter (OM) gösteren domuz kalbi görüntüsünü. (B) görüntü disseke LCX arter ameroid yerleşim önce. LCX çevresinde ameroid uygun yerleştirme yukarı veya kalp uzak karşı karşıya ameroid açılması ile (C) görüntüsü. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56190/56190fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56190/56190fig2.jpg"> 
Şekil 2: MRG görüntüsü domuz kalbi bir titanyum ile kaplı ameroid. Dört hafta sonra bir titanyum encased ameroid yılanı LCX arter üzerinde yerleşimini alınan bir domuz kalbi Mr görüntüsü. Titanyum tarafından oluşturulan yapıya ok gösterir. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56190/56190fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56190/56190fig3.jpg"> 
Şekil 3: MRG görüntüsü bir domuz kalbi bir plastik kaplı ameroid. Dört hafta sonra bir plastik encased ameroid yılanı LCX arter üzerinde yerleşimini alınan bir domuz kalbi Mr görüntüsü. Ok ameroid yılanı işaret eder. Hiçbir yapı görülmektedir. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56190/56190fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about A Chronic Cardiac Ischemia Model in Swine Using an Ameroid Constrictor at JoVE.com

A Chronic Cardiac Ischemia Model in Swine Using an Ameroid Constrictor

Bir Ameroid yılanı kullanarak domuz kronik kalp iskemi modelinde

Bu iletişim kuralının amacı bir domuz modelinde bir koroner arter etrafında gecikmeli kısıtlayıcı aygıtı (bir ameroid yılanı) yerleşimini göstermektir. Bu cihaz yeni tanı görüntüleme teknikleri ve yeni tedavi yöntemleri eğitimi için yararlıdır kalp iskemik bir bölümünü oluşturur.

Cardiovascular disease remains the number one cause of mortality in the United States. There are numerous approaches to treating these diseases, but ...

a-chronic-cardiac-ischemia-model-in-swine-using-an-ameroid-constrictor

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Medicine

10.5K Görüntüleme.  National Institutes of Health. Bu iletişim kuralının amacı bir domuz modelinde bir koroner arter etrafında gecikmeli kısıtlayıcı aygıtı (bir ameroid yılanı) yerleşimini göstermektir. Bu cihaz yeni tanı görüntüleme teknikleri ve yeni tedavi yöntemleri eğitimi için yararlıdır kalp iskemik bir bölümünü oluşturur.

Video: A Chronic Cardiac Ischemia Model in Swine Using an Ameroid Constrictor

Normothermic Cardiac Arrest and Cardiopulmonary Resuscitation: A Mouse Model of Ischemia-Reperfusion Injury

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused by whole-body hypoperfusion.5,6 Successful reproduction of whole-body hypoperfusion in rodent models has been fraught with 
difficulty.7-9,9,10 Models which employ focal ischemia have repeatedly demonstrated results which do not translate to the clinical setting, and larger 
animal models which allow for whole body hypoperfusion lack access to the full toolset of genetic manipulation possible in the mouse.11,12 However, in recent 
years a mouse model of cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation has emerged which can be adapted to model AKI.13 This model reliably reproduces 
physiologic, functional, anatomic, and histologic outcomes seen in clinical AKI, is rapidly repeatable, and offers all of the significant advantages of a murine surgical 
model, including access to genetic manipulative techniques, low cost relative to large animals, and ease of use. Our group has developed extensive experience 
with use of this model to assess a number of organ-specific outcomes in AKI.14,15

A powerful model for perioperative and critical care related acute kidney injury is presented. Using whole body hypoperfusion induced by cardiac arrest it is possible to nearly replicate the histologic and functional changes of clinical AKI.

Normotermik Kardiyak Arrest ve Kardiyopulmoner Resusitasyon: İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused ...

Tıp

A Swine Model of Neonatal Asphyxia

Annually more than 1 million neonates die worldwide as related to asphyxia. Asphyxiated neonates commonly have multi-organ failure including hypotension, perfusion deficit, hypoxic-ischemic encephalopathy, pulmonary hypertension, vasculopathic enterocolitis, renal failure and thrombo-embolic complications. Animal models are developed to help us understand the patho-physiology and pharmacology of neonatal asphyxia. In comparison to rodents and newborn lambs, the newborn piglet has been proven to be a valuable model. The newborn piglet has several advantages including similar development as that of 36-38 weeks human fetus with comparable body systems, large body size (&tilde;1.5-2 kg at birth) that allows the instrumentation and monitoring of the animal and controls the confounding variables of hypoxia and hemodynamic derangements.
We here describe an experimental protocol to simulate neonatal asphyxia and allow us to examine the systemic and regional hemodynamic changes during the asphyxiating and reoxygenation process as well as the respective effects of interventions. Further, the model has the advantage of studying multi-organ failure or dysfunction simultaneously and the interaction with various body systems. The experimental model is a non-survival procedure that involves the surgical instrumentation of newborn piglets (1-3 day-old and 1.5-2.5 kg weight, mixed breed) to allow the establishment of mechanical ventilation, vascular (arterial and central venous) access and the placement of catheters and flow probes (Transonic Inc.) for the continuously monitoring of intra-vascular pressure and blood flow across different arteries including main pulmonary, common carotid, superior mesenteric and left renal arteries. Using these surgically instrumented piglets, after stabilization for 30-60 minutes as defined by Z&lt;10% variation in hemodynamic parameters and normal blood gases, we commence an experimental protocol of severe hypoxemia which is induced via normocapnic alveolar hypoxia. The piglet is ventilated with 10-15% oxygen by increasing the inhaled concentration of nitrogen gas for 2h, aiming for arterial oxygen saturations of 30-40%. This degree of hypoxemia will produce clinical asphyxia with severe metabolic acidosis, systemic hypotension and cardiogenic shock with hypoperfusion to vital organs. The hypoxia is followed by reoxygenation with 100% oxygen for 0.5h and then 21% oxygen for 3.5h. Pharmacologic interventions can be introduced in due course and their effects investigated in a blinded, block-randomized fashion.

Large animal models have good translational values in the examination of physiology and pharmacology of neonatal asphyxia. Using newborn piglets, we develop an experimental protocol to simulate neonatal asphyxia which has advantages of studying the systemic and regional hemodynamics, oxygen transport with biochemical and pathologic pathways and correlations.

Yenidoğan Asfiksi Bir Domuz Modeli

Annually more than 1 million neonates die worldwide as related to asphyxia. Asphyxiated neonates commonly have multi-organ failure including hypotension, ...

Using Quantitative Real-time PCR to Determine Donor Cell Engraftment in a Competitive Murine Bone Marrow Transplantation Model

Murine bone marrow transplantation models provide an important tool in measuring hematopoietic stem cell (HSC) functions and determining genes/molecules that regulate HSCs. In these transplant model systems, the function of HSCs is determined by the ability of these cells to engraft and reconstitute lethally irradiated recipient mice. Commonly, the donor cell contribution/engraftment is measured by antibodies to donor- specific cell surface proteins using flow cytometry. However, this method heavily depends on the specificity and the ability of the cell surface marker to differentiate donor-derived cells from recipient-originated cells, which may not be available for all mouse strains. Considering the various backgrounds of genetically modified mouse strains in the market, this cell surface/ flow cytometry-based method has significant limitations especially in mouse strains that lack well-defined surface markers to separate donor cells from congenic recipient cells. Here, we reported a PCR-based technique to determine donor cell engraftment/contribution in transplant recipient mice. We transplanted male donor bone marrow HSCs to lethally irradiated congenic female mice. Peripheral blood samples were collected at different time points post transplantation. Bone marrow samples were obtained at the end of the experiments. Genomic DNA was isolated and the Y chromosome specific gene, Zfy1, was amplified using quantitative Real time PCR. The engraftment of male donor-derived cells in the female recipient mice was calculated against standard curve with known percentage of male vs. female DNAs. Bcl2 was used as a reference gene to normalize the total DNA amount. Our data suggested that this approach reliably determines donor cell engraftment and provides a useful, yet simple method in measuring hematopoietic cell reconstitution in murine bone marrow transplantation models. Our method can be routinely performed in most laboratories because no costly equipment such as flow cytometry is required.

Determining donor cell engraftment presents a challenge in mouse bone marrow transplant models that lack well-defined phenotypical markers. We described a methodology to quantify male donor cell engraftment in female transplant recipient mice. This method can be used in all mouse strains for the study of HSC functions.

Rekabetçi bir mürin Kemik İliği Transplantasyon Modelinde Donör Hücre Aşı belirleme Kantitatif Gerçek-zamanlı PCR kullanarak

Murine bone marrow transplantation models provide an important tool in measuring hematopoietic stem cell (HSC) functions and determining genes/molecules ...

Urinary Bladder Distention Evoked Visceromotor Responses as a Model for Bladder Pain in Mice

Approximately 3-8 million people in the United States suffer from interstitial cystitis/bladder pain syndrome (IC/BPS), a debilitating condition characterized by increased urgency and frequency of urination, as well as nocturia and general pelvic pain, especially upon bladder filling or voiding. Despite years of research, the cause of IC/BPS remains elusive and treatment strategies are unable to provide complete relief to patients. In order to study nervous system contributions to the condition, many animal models have been developed to mimic the pain and symptoms associated with IC/BPS. One such murine model is urinary bladder distension (UBD). In this model, compressed air of a specific pressure is delivered to the bladder of a lightly anesthetized animal over a set period of time. Throughout the procedure, wires in the superior oblique abdominal muscles record electrical activity from the muscle. This activity is known as the visceromotor response (VMR) and is a reliable and reproducible measure of nociception. Here, we describe the steps necessary to perform this technique in mice including surgical manipulations, physiological recording, and data analysis. With the use of this model, the coordination between primary sensory neurons, spinal cord secondary afferents, and higher central nervous system areas involved in bladder pain can be unraveled. This basic science knowledge can then be clinically translated to treat patients suffering from IC/BPS.

Approximately 3-8 million people in the United States suffer from interstitial cystitis/bladder pain syndrome (IC/BPS), a debilitating condition characterized in part by pelvic pain. In order to study nervous system contributions to the condition, a physiological model of urinary bladder pain is used in mice and rats.

Farelerde Mesane Ağrı için bir model olarak Mesane Distansiyonunun Uyarılmış Visceromotor Cevapları

Approximately 3-8 million people in the United States suffer from interstitial cystitis/bladder pain syndrome (IC/BPS), a debilitating condition ...

Tachycardia-Induced Cardiomyopathy As a Chronic Heart Failure Model in Swine

A stable and reliable model of chronic heart failure is required for many experiments to understand hemodynamics or to test effects of new treatment methods. Here, we present such a model by tachycardia-induced cardiomyopathy, which can be produced by rapid cardiac pacing in swine.
A single pacing lead is introduced transvenously into fully anaesthetized healthy swine, to the apex of the right ventricle, and fixated. Its other end is then tunneled dorsally to the paravertebral region. There, it is connected to an in-house modified heart pacemaker unit that is then implanted in a subcutaneous pocket. 
After 4 - 8 weeks of rapid ventricular pacing at rates of 200 - 240 beats/min, physical examination revealed signs of severe heart failure - tachypnea, spontaneous sinus tachycardia, and fatigue. Echocardiography and X-ray showed dilation of all heart chambers, effusions, and severe systolic dysfunction. These findings correspond well to decompensated dilated cardiomyopathy and are also preserved after the cessation of pacing.
This model of tachycardia-induced cardiomyopathy can be used for studying the pathophysiology of progressive chronic heart failure, especially hemodynamic changes caused by new treatment modalities like mechanical circulatory supports. This methodology is easy to perform and the results are robust and reproducible.

Here, we present a protocol to produce tachycardia-induced cardiomyopathy in swine. This model represents a potent way to study the hemodynamics of progressive chronic heart failure and the effects of applied treatment.

Kronik kalp yetmezliği model domuz olarak taşikardi kaynaklı kardiyomiyopati

A stable and reliable model of chronic heart failure is required for many experiments to understand hemodynamics or to test effects of new treatment ...

Surgical Swine Model of Chronic Cardiac Ischemia Treated by Off-Pump Coronary Artery Bypass Graft Surgery

Chronic cardiac ischemia that impairs cardiac function, but does not result in infarct, is termed hibernating myocardium (HM). A large clinical subset of coronary artery disease (CAD) patients have HM, which in addition to causing impaired function, puts them at higher risk for arrhythmia and future cardiac events. The standard treatment for this condition is revascularization, but this has been shown to be an imperfect therapy. The majority of pre-clinical cardiac research focuses on infarct models of cardiac ischemia, leaving this subset of chronic ischemia patients largely underserved. To address this gap in research, we have developed a well-characterized and highly reproducible model of hibernating myocardium in swine, as swine are ideal translational models for human heart disease. In addition to creating this unique disease model, we have optimized a clinically relevant treatment model of coronary artery bypass surgery in swine. This allows us to accurately study the effects of bypass surgery on heart disease, as well as investigate additional or alternate therapies. This model surgically induces single vessel stenosis by implanting a constrictor on the left anterior descending (LAD) artery in a young pig. As the pig grows, the constrictor creates a gradual stenosis, resulting in chronic ischemia with impaired regional function, but preserving tissue viability. Following the establishment of the hibernating myocardium phenotype, we perform off-pump coronary artery bypass graft surgery to revascularize the ischemic region, mimicking the gold-standard treatment for patients in the clinic.

This protocol presents a surgical large animal model of chronic, single vessel ischemia that results in regional abnormalities but does not create infarct, known as hibernating myocardium. Following establishment of chronic ischemia, animals are treated with off-pump LIMA-LAD coronary artery bypass graft surgery to revascularize the ischemic tissue.

Kronik kalp iskemi "Off-Pump" koroner arter Bypass greft cerrahisi ile tedavi cerrahi domuz modeli

Chronic cardiac ischemia that impairs cardiac function, but does not result in infarct, is termed hibernating myocardium (HM). A large clinical subset of ...

Standardized Model of Ventricular Fibrillation and Advanced Cardiac Life Support in Swine

Cardiopulmonary resuscitation after cardiac arrest, independent of its origin, is a regularly encountered medical emergency in hospitals as well as preclinical settings. Prospective randomized trials in human subjects are difficult to design and ethically ambiguous, which results in a lack of evidence-based therapies. The model presented in this report represents one of the most common causes of cardiac arrests, ventricular fibrillation, in a standardized setting in a large animal model. This allows for reproducible observations and various therapeutic interventions under clinically accurate conditions, hence facilitating the generation of better evidence and eventually the potential for improved medical treatment.

Cardiopulmonary resuscitation and defibrillation are the only effective therapeutic options during cardiac arrest caused by ventricular fibrillation. This model presents a standardized regimen to induce, assess, and treat this physiological state in a porcine model, thus providing a clinical approach with various opportunities for data collection and analysis.

Domuzda Standart Ventriküler Fibrilasyon Ve İleri Kardiyak Yaşam Desteği Modeli

Cardiopulmonary resuscitation after cardiac arrest, independent of its origin, is a regularly encountered medical emergency in hospitals as well as ...

An Intact Pericardium Ischemic Rodent Model

This protocol has shown that the pericardium and its contents play an essential anti-fibrotic role in the ischemic rodent model (coronary ligation to induce myocardial injury). The majority of pre-clinical myocardial infarction models require the disruption of pericardial integrity with loss of the homeostatic cellular milieu. However, recently a methodology has been developed by us to induce myocardial infarction, which minimizes pericardial damage and retains the heart&#39;s resident immune cell population. An improved cardiac functional recovery in mice with an intact pericardial space following coronary ligation has been observed. This method provides an opportunity to study inflammatory responses in the pericardial space following myocardial infarction. Further development of the labeling techniques can be combined with this model to understand the fate and function of pericardial immune cells in regulating the inflammatory mechanisms that drive remodeling in the heart, including fibrosis.

This protocol outlines the steps for inducing myocardial infarction in mice while preserving the pericardium and its contents.

Bozulmamış Bir Perikard İskemik Kemirgen Modeli

This protocol has shown that the pericardium and its contents play an essential anti-fibrotic role in the ischemic rodent model (coronary ligation to ...

Translational Rabbit Model of Chronic Cardiac Pacing

Animal models of cardiac pacing are beneficial for testing novel devices, studying the pathophysiology of artificially paced heart rhythms, and studying arrhythmia-induced cardiomyopathies and subsequent heart failure. Currently, only a few such models are available, and they mostly require extensive resources. We report a new experimental cardiac pacing model in small mammals with the potential to study arrhythmia-induced heart failure.
In six New Zealand white rabbits (mean weight: 3.5 kg) under general inhalational anesthesia the jugular region was dissected and a single pacing lead was inserted via the right external jugular vein. Using fluoroscopic guidance, the lead was further advanced to the right ventricular apex, where it was stabilized using passive fixation. A cardiac pacemaker was then connected and buried in a subcutaneous pocket.
The pacemaker implantation was successful with good healing; the rabbit anatomy is favorable for the lead placement. During 6 months of follow-up with intermittent pacing, the mean sensed myocardial potential was 6.3 mV (min: 2.8 mV, max: 12 mV), and the mean lead impedance measured was 744 &#937; (min: 370 &#937;, max: 1014 &#937;). The pacing threshold was initially 0.8 V &#177; 0.2 V and stayed stable during the follow-up.
This present study is the first to present successful transvenous cardiac pacing in a small-mammal model. Despite the size and tissue fragility, human-size instrumentation with adjustments can safely be used for chronic cardiac pacing, and thus, this innovative model is suitable for studying the development of arrhythmia-induced cardiomyopathy and consequent heart failure pathophysiology.

We present a minimally invasive leporine model of long-term cardiac pacing that can be utilized for artificial pacing and heart failure development in preclinical studies.

Kronik Kardiyak Pacing'in Translasyonel Tavşan Modeli

Animal models of cardiac pacing are beneficial for testing novel devices, studying the pathophysiology of artificially paced heart rhythms, and studying ...

Chronic Ovine Model of Right Ventricular Failure and Functional Tricuspid Regurgitation

The pathophysiology of severe functional tricuspid regurgitation (FTR) associated with right ventricular dysfunction is poorly understood, leading to suboptimal clinical results. We set out to establish a chronic ovine model of FTR and right heart failure to investigate the mechanisms of FTR. Twenty adult male sheep (6-12 months old, 62 &#177; 7 kg) underwent a left thoracotomy and baseline echocardiography. A pulmonary artery band (PAB) was placed and cinched around the main pulmonary artery (PA) to at least double the systolic pulmonary artery pressure (SPAP), inducing right ventricular (RV) pressure overload and signs of RV dilatation. PAB acutely increased the SPAP from 21 &#177; 2 mmHg to 62 &#177; 2 mmHg. The animals were followed for 8 weeks, symptoms of heart failure were treated with diuretics, and surveillance echocardiography was used to assess for pleural and abdominal fluid collection. Three animals died during the follow-up period due to stroke, hemorrhage, and acute heart failure. After 2 months, a median sternotomy and epicardial echocardiography were performed. Of the surviving 17 animals, 3 developed mild tricuspid regurgitation, 3 developed moderate tricuspid regurgitation, and 11 developed severe tricuspid regurgitation. Eight weeks of pulmonary artery banding resulted in a stable chronic ovine model of right ventricular dysfunction and significant FTR. This large animal platform can be used to further investigate the structural and molecular basis of RV failure and functional tricuspid regurgitation.

Right ventricular failure and functional tricuspid regurgitation are associated with left-sided heart disease and pulmonary hypertension, which contribute significantly to morbidity and mortality in patients. Establishing a chronic ovine model to study right ventricular failure and functional tricuspid regurgitation will help in understanding their mechanisms, progression, and possible treatments.

Sağ Ventrikül Yetmezliği ve Fonksiyonel Triküspid Yetersizliğinin Kronik Ovine Modeli

The pathophysiology of severe functional tricuspid regurgitation (FTR) associated with right ventricular dysfunction is poorly understood, leading to ...