Bu çalışma Eğitim, Gençlik ve Spor (LO1304) Çek Bakanlığı ve Çek Cumhuriyeti Teknolojik Ajansı (TE01020028) hibe tarafından desteklenmiştir. Yazarlar çevresel kapak fotoğraf çekerken Dr. Lakshman Varanasi teşekkür etmek istiyorum.

Agaroz kaplı plakalar hazırlanması 1. <ol><li> düşük erime noktalı agaroz 0.75 g tartılır ve serumsuz ml McCoy&#39;un 5A ortamı (ya da fenol kırmızısı olmadan) 100 ekleyin. Bir mikrodalga çözüm ısıtın ve tamamen agaroz çözmek için her 1-2 dakikada bir girdap. sterilize çözüm Otoklav. </li><li> yaklaşık 70 ° C&#39;ye kadar agaroz otoklava soğutun ve bir laminer akış kutusu, vakumla süzülerek 500 mL, 0.22 um&#39;lik bir filtre üst yoluyla filtre. bir kerede tüm çözüm kullanarak değilse küçük hacimlere% 0.75 filtrelenmiş agaroz çözeltisi (FAS) alikotu. soğuk oda ya da 4 hafta boyunca 4 ° C&#39;de buzdolabında Bu hazır kullanım agaroz çözelti aseptik saklayın. </li><li> bir akış kutusu steril fosfat-tamponlu tuzlu su (PBS) ile daha sonra% 70 etanol (EtOH) ile, bir Combi reaktifi dağıtıcı ve birinci kaset plastikli veya metal uçlu dağıtma kaseti ile küçük bir tüp takın. </li><li> Kullanımdan önce, FAS I depolanmış bir kısım ısı<html> n mikrodalga bunu eritmek için. Başbakan Agaroz çözüm ve ceket 384 gözlü, doku kültürü (TC) ile dağıtım kaset FAS 15 uL mikropleytin &quot;özel&quot; ile tedavi edilen. plaka agaroz hücrelerin ekim önce 15-20 dakika soğumasını bekleyin. Soğuk bir odada ya da 4 ° C&#39;de ve doğrudan ışıktan bir polietilen torbaya sarılmış aseptik agaroz kaplı plakalar, saklayın. Not: Stok solüsyonu agaroz konsantrasyonunda bir değişikliği önlemek için% 0.75 FAS tekrarlanan ısıtma kaçının. Yukarıda sözü edilen koşullar altında depolandığında Agaroz kaplı plakalar 2 haftaya kadar saklanabilir. FAS plakalarının kaplanması esnasında ısıtma gerektirmez. </li><li> kaset ipuçları ve tüplerde kalan agaroz kaldırmak için 70-80 ° C steril su ile macun ile dağıtım kaset temizleyin. </li></ol> 2. Hücre Kültürü ve MCTS oluşumu <ol><li> Kültür, insan kolorektal karsinoma HCT116 hücreleri, daha önce tarif edildiği gibilass = &quot;xref&quot;&gt; 8. </li><li> agaroz kaplı, 384 gözlü, soğuk depolama mikro TC ile muamele edilmiş ve istenen sayıda çıkarın ve 15 dakika süre ile oda sıcaklığında (RT) kadar dengeye getirin. </li><li> % 70 EtOH ve steril PBS ile bir standart tüp dağıtım kaseti emişli hücre tohumlama için Kombi reaktif dağıtıcı hazırlayın. Gerekli mcL tohumlama hacmi ve dağıtıcı manuel ayar düğmelerini kullanarak ortama dağıtım hızını ayarlayın. Not: tüm hücre ekim işlemi, steril koşullar altında, bir laminar akış kutusunda gerçekleştirilmektedir. </li><li> bir rekombinant hücre ayrışma enzim kullanılarak doku kültürü şişesi yapışkan hücreleri ayırmak. Tam büyüme ortamında 50 ul oyuk başına 2.5 x 10 4 hücre / mL&#39;lik bir yoğunlukta, tohum hücreleri ile steril bir beherde bir hücre süspansiyonu stok yapmak. Birden fazla 384 WP tohum zaman, kabın dibine yerleşmesini önlemek için, bir manyetik karıştırıcı kullanılarak hücrelerin karıştırın. </li><li> izin vermekPlakalar oda sıcaklığında 30 dakika dinlendirilir ve daha sonra 4 x g&#39;de 15 dakika boyunca santrifüj. </li><li> Bu arada, bir buharlaştırma düşürücü çevresel kapak alır ve onu kısa kenarlara steril H 8 mL 2, O ya da% 5 dimetil sülfoksit (DMSO) ile doldurun 5 ml pipet (Şekil 1A) ile (sol ve sağ). İlk olarak, yavaş yavaş yukarı ve aşağı pipet süpürülerek sol taraftaki çukur içine sıvı dolum 4 mL dağıtmak. Sağ taraftaki çukur ile bu adımı yineleyin. NOT: Sıvı kapağının merkezinde birleştirme ve gaz değişimi (Şekil 1A) için bir boşluk bırakmaz yan olukları eklenen emin olun. Kapağın dış ve daha sonra 384 gözlü TC levhaları dış kuyu içine H H2O sızma 2 O sonuçlar aşırı miktarda eklenmesi. </li><li> (Şekil 2A, steril H2O ile 384 gözlü TC levhaları sıvı haznesini ve sıvı dolgulu çevresel kapak düzenli levha kapaklar yerine). </li><li> % 95 nem,% 5 CO2 ve% 20 O2 ile 37 ° C, döner bir inkübatörde tabak yerleştirin ve hücreler, 4 gün boyunca MCTSes halinde toplamak için izin verir. aniden düşmesini nem seviyesini önlemek için sonraki günlerde çok uzun süre inkübatör kapıyı açmaktan kaçının. </li></ol> Bir Robotik Sistemi Kullanılarak 3. Orta Değişim <ol><li> MCTS oluşumundan sonra 4. günde, otomatik bir mikro yıkama dağıtıcı kullanılarak göz başına önceden ısıtılmış ortam 30 uL ekleyin. MCTSes ek olarak 3 gün boyunca büyümeye izin verin. onlar deney için istediğiniz boyutu ulaşmak kadar, düzenli olarak her 3 günde bir orta yerine. </li><li> Her bir ortamdaki bir tanımlanan hacmi aspire ampirik yıkama manifoldunun Z -height ayarlayın. Aspire 30 kuyu başına orta ul taze, önceden ısıtılmış orta 30 uL ile değiştirin. NOT: yıkama manifoldu aşağı hareket hangi dağıtım hızı ve hız ayarlamaen düşük oranda kuyuların içine kuyularda türbülans en aza indirmek için. </li></ol> MCTS 4. Yüksek içerik Görüntüleme ve Yarı-otomatik Görüntü Analizi <ol><li> Resim 4X hava objektif kullanarak bir yüksek içeriği otomatik görüntüleme sisteminde MCTS (NA 16). </li><li> Numarası ve aralık z -stacks ve oyuk başına bütün bir MCTS yakalamak için deney için istediğiniz gibi piksel binning ayarlayın 11 ms maruz kalma süresi ve 4 x 4&#39;e binning ayarlayın. </li><li> programlama dilinde yazılmış bir in-house yordamını kullanarak &quot;, benioku&quot; bölümünde açıklandığı gibi, resim kademeli olarak işleyin. NOT: .m kodu ve .txt benioku dosyaları ek kod dosyaları (Şekil 1B) olarak mevcuttur. Rutin tedbirler 2D görüntüleri MCTS alanı, majör ve minör eksenler, çevre ve sağlamlık. </li></ol><img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/55403/55403fig1.jpg" /> Şekil 1:Çevresel kapak hazırlanması ve yarı otomatik rutin bir akış şemasıdır. Doğru (sol) ve fazla miktarda sıvı dolgu (sağ) bir miktarda (burada,% 5 DMSO) ile dolu bir buharlaştırma düşürücü çevresel kapağın (A) görüntü. ok sıvı eklemek için kısa kenar çukur gösterir. Yıldız işareti DMSO doğru hacminin eklenmesinden sonra kapağın ortasında boşluk gösterir. (B) yarı otomatik görüntü analizi rutin yer alan adımları gösteren bir iş akışı. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55403/55403fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

<ol>
	<li>Kimlin, L. C., Casagrande, G., Virador, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+three-dimensional+(3D)+models+in+cancer+research:+An+update.">In vitro three-dimensional (3D) models in cancer research: An update.</a> Mol Carcinog. 52 (3), 167-182 (2013).</li><li>Das, V., Bruzzese, F., Kone&#269;n&#253;, P., Iannelli, F., Budillon, A., Hajd&#250;ch, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathophysiologically+relevant+in+vitro+tumor+models+for+drug+screening.">Pathophysiologically relevant in vitro tumor models for drug screening.</a> Drug Discov. Today. 20 (7), 848-855 (2015).</li><li>Weigelt, B., Ghajar, C. M., Bissell, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+need+for+complex+3D+culture+models+to+unravel+novel+pathways+and+identify+accurate+biomarkers+in+breast+cancer.">The need for complex 3D culture models to unravel novel pathways and identify accurate biomarkers in breast cancer.</a> Adv. Drug Deliv. Rev. , 69-70 (2014).</li><li>Fischbach, C., Kong, H. J., Hsiong, S. X., Evangelista, M. B., Yuen, W., Mooney, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cancer+cell+angiogenic+capability+is+regulated+by+3D+culture+and+integrin+engagement.">Cancer cell angiogenic capability is regulated by 3D culture and integrin engagement.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (2), 399-404 (2009).</li><li>Lao, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+Methods+to+Generate+Spheroid+Cultures+from+Tumor+Cells,+Tumor+Cells+&amp;+Fibroblasts+or+Tumor-Fragments:+Microenvironment,+Microvesicles+and+MiRNA.">Improved Methods to Generate Spheroid Cultures from Tumor Cells, Tumor Cells &amp; Fibroblasts or Tumor-Fragments: Microenvironment, Microvesicles and MiRNA.</a> PLoS ONE. 10 (7), e0133895 (2015).</li><li>Wenzel, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=3D+high-content+screening+for+the+identification+of+compounds+that+target+cells+in+dormant+tumor+spheroid+regions.">3D high-content screening for the identification of compounds that target cells in dormant tumor spheroid regions.</a> Exp. Cell Res. 323 (1), 131-143 (2014).</li><li>Li, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=3D+Models+of+Epithelial-Mesenchymal+Transition+in+Breast+Cancer+Metastasis:+High-Throughput+Screening+Assay+Development,+Validation,+and+Pilot+Screen.">3D Models of Epithelial-Mesenchymal Transition in Breast Cancer Metastasis: High-Throughput Screening Assay Development, Validation, and Pilot Screen.</a> J. Biomol. Screen. 16 (2), 141-154 (2011).</li><li>Das, V., F&#252;rst, T., Gursk&#225;, S., D&#382;ub&#225;k, P., Hajd&#250;ch, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reproducibility+of+Uniform+Spheroid+Formation+in+384-Well+Plates:+The+Effect+of+Medium+Evaporation.">Reproducibility of Uniform Spheroid Formation in 384-Well Plates: The Effect of Medium Evaporation.</a> J. Biomol. Screen. , (2016).</li><li>Celli, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+imaging-based+platform+for+high-content,+quantitative+evaluation+of+therapeutic+response+in+3D+tumour+models.">An imaging-based platform for high-content, quantitative evaluation of therapeutic response in 3D tumour models.</a> Sci. Rep. 17 (4), 3751 (2014).</li><li>Solomon, M. A., Lemera, J., D'Souza, G. G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+an+in+vitro+tumor+spheroid+culture+model+amenable+to+high-throughput+testing+of+potential+anticancer+nanotherapeutics.">Development of an in vitro tumor spheroid culture model amenable to high-throughput testing of potential anticancer nanotherapeutics.</a> J. Liposome Res. 26 (3), 246-260 (2016).</li><li>Costa, E. C., Gaspar, V. M., Coutinho, P., Correia, I. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimization+of+liquid+overlay+technique+to+formulate+heterogenic+3D+co-cultures+models.">Optimization of liquid overlay technique to formulate heterogenic 3D co-cultures models.</a> Biotechnol. Bioeng. 111 (8), 1672-1685 (2014).</li><li>Walzl, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Simple+and+Cost+Efficient+Method+to+Avoid+Unequal+Evaporation+in+Cellular+Screening+Assays,+Which+Restores+Cellular+Metabolic+Activity.">A Simple and Cost Efficient Method to Avoid Unequal Evaporation in Cellular Screening Assays, Which Restores Cellular Metabolic Activity.</a> Int. J. Appl. Sci. Technol. 2 (6), 17-25 (2012).</li><li>Berthier, E., Warrick, J., Yu, H., Beebe, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Managing+evaporation+for+more+robust+microscale+assays.+Part+1.+Volume+loss+in+high+throughput+assays.">Managing evaporation for more robust microscale assays. Part 1. Volume loss in high throughput assays.</a> Lab Chip. 8 (6), 852-859 (2008).</li><li>Zanoni, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=3D+tumor+spheroid+models+for+in+vitro+therapeutic+screening:+a+systematic+approach+to+enhance+the+biological+relevance+of+data+obtained.">3D tumor spheroid models for in vitro therapeutic screening: a systematic approach to enhance the biological relevance of data obtained.</a> Sci. Rep. 6, 19103 (2016).</li><li>Zimmermann, H. F., John, G. T., Trauthwein, H., Dingerdissen, U., Huthmacher, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+Evaluation+of+Oxygen+and+Water+Permeation+through+Microplate+Sealing+Tapes.">Rapid Evaluation of Oxygen and Water Permeation through Microplate Sealing Tapes.</a> Biotechnol. Prog. 19 (3), 1061-1063 (2003).</li><li>Sirenko, O., Mitlo, T., Hesley, J., Luke, S., Owens, W., Cromwell, E. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-Content+Assays+for+Characterizing+the+Viability+and+Morphology+of+3D+Cancer+Spheroid+Cultures.">High-Content Assays for Characterizing the Viability and Morphology of 3D Cancer Spheroid Cultures.</a> Assay Drug Dev. Technol. 13 (7), 402-414 (2015).</li><li>Chen, W., Wong, C., Vosburgh, E., Levine, A. J., Foran, D. J., Xu, E. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+Image+Analysis+of+Tumor+Spheroids:+A+User-friendly+Software+Application+to+Measure+the+Size+of+Spheroids+Automatically.">High-throughput Image Analysis of Tumor Spheroids: A User-friendly Software Application to Measure the Size of Spheroids Automatically.</a> J. Vis. Exp. (89), e51639 (2014).</li></ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Filtreli Agaroz ile 384 Kuyu TC Plakaları Kaplama LOT standart bir uygulama kaplamak için agaroz ve / veya dağıtma birimi gerekir plakaları, agaroz 6 jelleşmenin önlenmesi için ısıtıldı tutulması için% 1-1.5, düşük-erime noktalı agarozda kullanmaktır. çapı 0.2 ila 0.4 mm arasında değişen küçük bir boru delikler sıvı dağıtma kasetleri kullanılarak birden fazla tabak hazırlarken agaroz jel potansiyel bir sorun değildir. Bu dağıtma sıras...

tümörlerde kanser hücreleri fizyolojik hücre dışı matris ve etkileşim hücreleri ile çevrili bir kompleks 3 boyutlu (3D) bir yapı içerisinde düzenlenir. Yaklaşık dokularda bütün hücreler 3 boyutlu bir ortamda bulunan tümör özellikleri taklit nitro tümör modellerinde daha fazla fizyolojik olarak uygun olan ihtiyaç çok 3D kültür teknikleri, 1, 2, 3 geliştirilmesi ile sonuçlanmıştır. Bu modeller artık 3D 2 terapötik metastazı ve hücre yanıtına tümör mikro rolü çalışmak için temel araştırma araçları haline gelmektedir. Ayrıca, 2-boyutlu (2B) hücre kültürleri 4 ile karşılaştırıldığında, 3 boyutlu modeller hücre içi sinyal yollar etkileyen tümör stromanın etkileşimleri, daha iyi anlaşılması için izin verir. kanser hücre hatlarının çok hücreli tümör sferoidler (MCTSes) sık sık 3D cep c kullanılanin vivo tümörlerin göreli yakınlığı nedeniyle ulture modelleri. Kullanılan çeşitli teknikler dışında, agaroz ile kaplanmış plakalar MCTS nesil sıvı katlamalı tekniği (lot) talebi optimizasyonu ve hedef doğrulama 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 için büyük ilgi görmüştür. Bu LOT 6, 7 kullanılarak MCTS kültürlerde bileşik kütüphaneler pilot ekranları çalıştırmak için başarılı başardık son çalışmalar bellidir. Ancak, orta buharlaşma kaynaklı düzensiz kaybına MCTS morfolojisi ve büyüme iyi-to-kuyu değişkenlik mikrotitre levhaları kullanılarak LOT (milletvekilleri) eşlik ortak engelli bulunmaktadır. Sonuç olarak, üniform olmayan MCTSes oluşumu önemini ve alaka ödünFarmakolojik Testler 8, 12, 13 veri. birimleri dağıtma otomatik sıvı kullanırken uyarlık konularına ek olarak, LOT-tabanlı yüksek verimli deneyleri etkileyen başka pratik bir sorun milletvekilleri kaplama agaroz ile. Besleme ünitesi agaroz jelleşmenin önlenmesi için ısıtıldı tutulabilir, ancak tevzi kaset ve boru tıkanma robotik sistemler 6 için potansiyel bir husustur. Bu zorlukların bazılarının üstesinden gelmek için, biz son zamanlarda MCTS kültürü 8 LOT birkaç değişiklik geliştirmişlerdir. Bu modifikasyonlar özellikle yaygın yüksek verimli tarama laboratuvarlarında bulunan araçları kullanarak milletvekilleri gelen düzensiz orta kaybını önlemek için olası yolları dayanmaktadır. 3 arasında muntazam boyutlu ve tekrarlanabilir MCTSes üretilmesi için modifiye edilmiş çok bir ayrıntılı işlem84-kuyu plakaları (İP) sunulmuştur. Eser özellikle, enine kesit alanının ölçümü için net bir şekilde tanımlanmış bir sınır yoktur, kısmen parçalanmış, ilaçla işleme tabi tutulmuş MCTSes olarak, MCTS boyutunun değerlendirilmesi için bir yarı-otomatik rutin sunulur.

<table><tbody><tr><td>Agarose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9414</td><td>Low-melting</td></tr><tr><td>McCOY&#039;s 5A Medium</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M8403</td><td></td></tr><tr><td>&amp;ldquo;rapid&amp;rdquo; Filtermax filter</td><td>TPP</td><td>99505</td><td>0.22 &amp;mu;m, 500 mL</td></tr><tr><td>Multidrop&amp;trade; Combi Reagent Dispenser&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>5840300</td><td></td></tr><tr><td>Small Tube Dispensing cassette&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>24073295</td><td>Metal tip&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>384-well TC plate&amp;nbsp;</td><td>PerkinElmer</td><td>6057308</td><td>Plate type- CellCarrier</td></tr><tr><td>Standard Tube Dispensing Cassette</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>24072670</td><td></td></tr><tr><td>MicroClime Environmental Lid</td><td>Labcyte</td><td>LLS-0310</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>D4540</td><td></td></tr><tr><td>Rotary Incubator (SteriStore )</td><td>HighRes Biosolutions</td><td>23641</td><td>Serial No.: D00384</td></tr><tr><td>Microplate Washer Dispenser&amp;nbsp;</td><td>BioTek</td><td>Unspecified</td><td>Model: EL406&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>High-Content Imaging System (CellVoyager )</td><td>Yokogawa Electric Corporation</td><td>Unspecified</td><td>Model: CV7000</td></tr><tr><td>Orange G</td><td>New England Biolabs</td><td>B7022S</td><td></td></tr><tr><td>TrypLE&amp;trade; Express recombinant cell dissociation reagent</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12604021</td><td>Phenol red free</td></tr></tbody></table>

evaporation-reducing culture condition increases the reproducibility of multicellular spheroid formation in microtiter plates

Yakından in vivo koşullarda taklit Tümör modelleri potansiyel anti-kanser ilaçların taranması için ilaç keşfi ve geliştirilmesi giderek daha popüler hale gelmektedir. Çok hücreli tümör sferoidler (MCTSes) etkili bir talebi optimizasyonu ve hedef doğrulama için in vitro bir model bunları uygun hale getirir, katı tümörlerin fizyolojik koşulları taklit eder. MCTS kültürü için çeşitli tekniklerin dışında, agaroz üzerinde sıvı bindirme yöntemi MCTS üretimi için en ucuz yöntemlerden biridir. Bununla birlikte, yüksek verimli tarama için sıvı kaplama kullanarak MCTS kültürleri güvenilir aktarım agaroz ile mikrotiter plakaları (MAS) kaplanması ve kuyu boyunca tek MCTS formasyonunun irreproducibility dahil kısıtlamaları bir dizi tarafından tehlikeye. Milletvekilleri ilaç için tüm plaka kullanımını engelleyen, plaka dış ortamdaki aşırı buharlaşma sonucu etkileri kenar önemli yatkındırtestleri. Bu el yazması üniforma MCTS formasyonu ölçeklenebilirlik ve tekrarlanabilirlik arttırmak için sıvı bindirme tekniği detaylı teknik geliştirmeler sağlar. ilaç tedavisi sunulmuştur sonra Ayrıca, MCTS değerlendirilmesi için basit, yarı otomatik ve evrensel olarak uygulanabilir yazılım aracı ile ilgili detaylar sunuyor.

Özellikle periferik kuyulardan orta düzensiz kaybı, küçük kültür hacimleri ile milletvekilleri sık karşılaşılan bir sorundur. Bu tür iyi kontrol sıcaklık / nemlendirme sistemleri ve buharlaştırma azaltıcı MP&#39;lerin ve plaka kapaklı kuluçka esas olarak geliştirilmiş kültür koşulları, kuyu 8 boyunca ortam önemli kaybını azaltır. nispi bir buharlaşma ölçmek için, Orange G (RG) eşit hacimleri her bir kuyucuğa ilave edildi ve 3 ...

Watch this Scientific Journal Video about Evaporation-reducing Culture Condition Increases the Reproducibility of Multicellular Spheroid Formation in Microtiter Plates at JoVE.com

Evaporation-reducing Culture Condition Increases the Reproducibility of Multicellular Spheroid Formation in Microtiter Plates

mikrotiter plakaları orta düzensiz kaybı üniforma çok hücreli tümör sfero oluşumu tekrarlanabilirlik etkiler. Kültür şartlarının iyileştirilmesi küremsi oluşumu tekrarlanabilirlik ve sıvı üst tabaka tekniği ile küremsi bazlı deneylerin sonuçları geliştirmek önemli bir orta kaybını azaltmak.

Buharlaşma azaltıcı Kültür Durumu Mikrotiter Tabaklar Multisellüler Sfero Oluşumunun Tekrarlanabilirlik artırır

Tumor models that closely imitate in vivo conditions are becoming increasingly popular in drug discovery and development for the screening of potential ...

evaporation-reducing-culture-condition-increases-reproducibility

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Cancer Research

6.9K Görüntüleme.  Palacky University in Olomouc.  mikrotiter plakaları orta düzensiz kaybı üniforma çok hücreli tümör sfero oluşumu tekrarlanabilirlik etkiler. Kültür şartlarının iyileştirilmesi küremsi oluşumu tekrarlanabilirlik ve sıvı üst tabaka tekniği ile küremsi bazlı deneylerin sonuçları geliştirmek önemli bir orta kaybını azaltmak. 

Video: Evaporation-reducing Culture Condition Increases the Reproducibility of Multicellular Spheroid Formation in Microtiter Plates

Production of Large Numbers of Size-controlled Tumor Spheroids Using Microwell Plates

Tumor spheroids are increasingly recognized as an important in vitro model for the behavior of tumor cells in three dimensions. More physiologically relevant than conventional adherent-sheet cultures, they more accurately recapitulate the complexity and interactions present in real tumors. In order to harness this model to better assess tumor biology, or the efficacy of novel therapeutic agents, it is necessary to be able to generate spheroids reproducibly, in a controlled manner and in significant numbers.
The AggreWell system consists of a high-density array of pyramid-shaped microwells, into which a suspension of single cells is centrifuged. The numbers of cells clustering at the bottom of each microwell, and the number and ratio of distinct cell types involved depend only on the properties of the suspension introduced by the experimenter. Thus, we are able to generate tumor spheroids of arbitrary size and composition without needing to modify the underlying platform technology. The hundreds of microwells per square centimeter of culture surface area in turn ensure that extremely high production levels may be attained via a straightforward, nonlabor-intensive process. We therefore expect that this protocol will be broadly useful to researchers in the tumor spheroid field.

We introduce a protocol for the generation of large numbers (thousands to hundreds of thousands) of uniform size- and composition-controlled tumor spheroids, using commercially available microwell plates.

Microwell Tabaklar kullanma büyüklüğü kontrollü Tümör küremsi Büyük Sayılar üretimi

Tumor spheroids are increasingly recognized as an important in vitro model for the behavior of tumor cells in three dimensions. More physiologically ...

Biyomühendislik

Assessing Cell Viability and Death in 3D Spheroid Cultures of Cancer Cells

Three-dimensional spheroids of cancer cells are important tools for both cancer drug screens and for gaining mechanistic insight into cancer cell biology. The power of this preparation lies in its ability to mimic many aspects of the in vivo conditions of tumors while being fast, cheap, and versatile enough to allow relatively high-throughput screening. The spheroid culture conditions can recapitulate the physico-chemical gradients in a tumor, including the increasing extracellular acidity, increased lactate, and decreasing glucose and oxygen availability, from the spheroid periphery to its core. Also, the mechanical properties and cell-cell interactions of in vivo tumors are in part mimicked by this model. The specific properties and consequently the optimal growth conditions, of 3D spheroids, differ widely between different types of cancer cells. Furthermore, the assessment of cell viability and death in 3D spheroids requires methods that differ in part from those employed for 2D cultures. Here we describe several protocols for preparing 3D spheroids of cancer cells, and for using such cultures to assess cell viability and death in the context of evaluating the efficacy of anticancer drugs.

Here, we present several simple methods for evaluating viability and death in 3D cancer cell spheroids, which mimic the physico-chemical gradients of in vivo tumors much better than the 2D culture. The spheroid model, therefore, allows evaluation of the cancer drug efficacy with improved translation to in vivo conditions.

Hücre viability ve ölüm kanser hücrelerinin 3D Küroid kültürlerde değerlendirilmesi

Three-dimensional spheroids of cancer cells are important tools for both cancer drug screens and for gaining mechanistic insight into cancer cell biology. ...

Kanser Araştırmaları

Exploring Mitochondrial Energy Metabolism of Single 3D Microtissue Spheroids Using Extracellular Flux Analysis

Three-dimensional (3D) cellular aggregates, termed spheroids, have become the forefront of in vitro cell culture in recent years. In contrast to culturing cells as two-dimensional, single-cell monolayers (2D culture), spheroid cell culture promotes, regulates, and supports physiological cellular architecture and characteristics that exist in vivo, including the expression of extracellular matrix proteins, cell signaling, gene expression, protein production, differentiation, and proliferation. The importance of 3D culture has been recognized in many research fields, including oncology, diabetes, stem cell biology, and tissue engineering. Over the last decade, improved methods have been developed to produce spheroids and assess their metabolic function and fate.
Extracellular flux (XF) analyzers have been used to explore mitochondrial function in 3D microtissues such as spheroids using either an XF24 islet capture plate or an XFe96 spheroid microplate. However, distinct protocols and the optimization of probing mitochondrial energy metabolism in spheroids using XF technology have not been described in detail. This paper provides detailed protocols for probing mitochondrial energy metabolism in single 3D spheroids using spheroid microplates with the XFe96 XF analyzer. Using different cancer cell lines, XF technology is demonstrated to be capable of distinguishing between cellular respiration in 3D spheroids of not only different sizes but also different volumes, cell numbers,&#160;DNA content and type.
The optimal mitochondrial effector compound concentrations of oligomycin, BAM15, rotenone, and antimycin A are used to probe specific parameters of mitochondrial energy metabolism in 3D spheroids. This paper also discusses methods to normalize data obtained from spheroids and addresses many considerations that should be considered when exploring spheroid metabolism using XF technology. This protocol will help drive research in advanced in vitro spheroid models.

These protocols will help users probe mitochondrial energy metabolism in 3D cancer cell-line-derived spheroids using Seahorse extracellular flux analysis.

Hücre Dışı Akı Analizi Kullanarak Tek 3D Mikrodoku Sferoidlerinin Mitokondriyal Enerji Metabolizmasını Keşfetmek

Three-dimensional (3D) cellular aggregates, termed spheroids, have become the forefront of in vitro cell culture in recent years. In contrast to culturing ...

Establishing a High Throughput Epidermal Spheroid Culture System to Model Keratinocyte Stem Cell Plasticity

Epithelial dysregulation is a node for a variety of human conditions and ailments, including chronic wounding, inflammation, and over 80% of all human cancers. As a lining tissue, the skin epithelium is often subject to injury and has evolutionarily adapted by acquiring the cellular plasticity necessary to repair damaged tissue. Over the years, several efforts have been made to study epithelial plasticity using in&#160;vitro and ex vivo cell-based models. However, these efforts have been limited in their capacity to recapitulate the various phases of epithelial cell plasticity. We describe here a protocol for generating 3D epidermal spheroids and epidermal spheroid-derived cells from primary neonatal human keratinocytes. This protocol outlines the capacity of epidermal spheroid cultures to functionally model distinct stages of keratinocyte generative plasticity and demonstrates that epidermal spheroid re-plating can enrich heterogenous normal human keratinocytes (NHKc) cultures for integrin&#945;6hi/EGFRlo keratinocyte subpopulations with enhanced stem-like characteristics. Our report describes the development and maintenance of a high throughput system for the study of skin keratinocyte plasticity and epidermal regeneration.

Here we describe a protocol for the systematic cultivation of epidermal spheroids in 3D suspension culture. This protocol has wide-ranging applications for use in a variety of epithelial tissue types and for the modeling of several human diseases and conditions.

Keratinosit Kök Hücre Plastisitesini Modellemek için Yüksek Verimli Epidermal Sferoid Kültür Sistemi Kurulması

Epithelial dysregulation is a node for a variety of human conditions and ailments, including chronic wounding, inflammation, and over 80% of all human ...

Gelişim Biyolojisi

Generation of Tissue Spheroids via a 3D Printed Stamp-Like Device

Advances in 3D cell culture have developed more physiologically relevant in vitro models, such as tissue spheroids. Cells cultivated as spheroids have more realistic biological responses that resemble the in vivo environment. Due to their advantages, tissue spheroids represent an emerging trend toward superior, more reliable, and more predictive study models with a broad range of biotechnological applicability. However, reproducible platforms that can achieve large-scale production of tissue spheroids have become an unmet need in fully exploring and boosting their potential. Herein, the large-scale production of homogeneous tissue spheroids is reported using a low-cost and time-effective methodology. A 3D printed stamp-like device is developed to generate up to 4,716 spheroids per 6-well plate. The device is fabricated by the stereolithography method using a photocurable resin. The final device is composed of cylindrical micropins, with a height of 1.3 mm and a width of 650 &#181;m. This approach allows the fast generation of homogeneous spheroids and co-cultured spheroids with uniform shape and size and &gt;95% cell viability. Moreover, the stamp-like device is tunable for different sizes of well plates and Petri dishes. It is easily sterilized and can be reused for long periods. The efficient large-scale production of homogeneous tissue spheroids is essential to leverage their translation for multiple areas of industry, such as tissue engineering, drug development, disease modeling, and on-demand personalized medicine.

<meta charset="utf8"></head><body>3D baskılı damga benzeri bir cihaz aracılığıyla doku sferoidlerinin üretilmesi

The present protocol describes a technique to produce tissue spheroids on a large scale cost-effectively using a 3D printed stamp-like device.

3D baskılı damga benzeri bir cihaz aracılığıyla doku sferoidlerinin üretilmesi

Advances in 3D cell culture have developed more physiologically relevant in vitro models, such as tissue spheroids. Cells cultivated as spheroids have ...

Biyokimya

Semi-Automated Phenotypic Analysis of Functional 3D Spheroid Cell Cultures

We present a protocol that describes the properties and advantages of using a standalone clinostat incubator for growing, treating, and monitoring 3D cell cultures. The clinostat mimics an environment where cells can assemble as highly reproducible spheroids with low shear forces and active nutrient diffusion. We demonstrate that both cancer and non-cancer hepatocytes (HepG2/C3A and THLE-3 cell lines) require 3 weeks of growth prior to achieving functionalities comparable to liver cells. This protocol highlights the convenience of utilizing incubators for 3D cells with cameras monitoring the cell growth, as snapshots can be taken to count and measure spheroids upon treatment. We describe the comparison of THLE-3 and HepG2/C3A cell lines, showing how non-cancerous cell lines can be grown as well as immortalized cancer cells. We demonstrate and illustrate how proteomics experiments can be conducted from a few spheroids, which can be collected without perturbing cell signaling, i.e., no trypsinization required. We show that proteomics analysis can be used to monitor the typical liver phenotype of respiratory chain metabolism and the production of proteins involved in metal detoxification and describe a semi-automated system to count and measure the spheroid's area. Altogether, the protocol presents a toolbox that comprises a phenotypic characterization via image capture and a proteomics pipeline to experiment on 3D cell culture models.

We present a protocol for growing high-reproducible spheroids and their phenotypic characterization using image capture and proteomics.

Fonksiyonel 3D Küresel Hücre Kültürlerinin Yarı Otomatik Fenotipik Analizi

We present a protocol that describes the properties and advantages of using a standalone clinostat incubator for growing, treating, and monitoring 3D cell ...

FLIM Tabanlı Metabolik ve Hipoksi Analizi için Çok Hücreli Spheroid Oluşumu

Production and Multi-Parameter Live Cell Fluorescence Lifetime Imaging Microscopy (FLIM) of Multicellular Spheroids

Multicellular tumor spheroids are a popular 3D tissue microaggregate&#160;model for reproducing tumor microenvironment, testing and optimizing drug therapies&#160;and using bio- and nanosensors in a 3D context. Their ease of production, predictable size, growth, and observed nutrient and metabolite gradients are important to recapitulate the 3D niche-like&#160;cell microenvironment. However, spheroid heterogeneity and variability of their production methods can influence overall cell metabolism, viability, and drug response. This makes it difficult to choose the most appropriate&#160;methodology, considering the requirements in size, variability, needs of biofabrication, and use as in vitro 3D tissue models in stem and cancer cell biology. In particular, spheroid production can influence their compatibility with quantitative live microscopies, such as optical metabolic imaging, fluorescence lifetime imaging microscopy (FLIM), monitoring of spheroid&#160;hypoxia with nanosensors, or viability. Here, a number of conventional spheroid formation protocols are presented, highlighting their compatibility with the live widefield, confocal, and two-photon microscopies. The follow-up imaging to analysis&#160;pipeline with multiplexed autofluorescence FLIM and, using various types of cancer and stem cell spheroids, is also presented.

Yazar Spotlight: Floresan Ömür Boyu Görüntüleme Mikroskobu Kullanarak Metabolik ve Oksijenasyon Analizi için Küresel Oluşum Yöntemlerinin Standardizasyonu

Here, we describe different multicellular spheroid formation methods to perform follow-up multi-parameter live cell microscopy. Using fluorescence lifetime imaging microscopy (FLIM), cellular autofluorescence, staining dyes, and nanoparticles, the approach for analysis of cell metabolism, hypoxia, and cell death in live three-dimensional (3D) cancer and stem cell-derived spheroids is demonstrated.

Çok Hücreli Sferoidlerin Üretimi ve Çok Parametreli Canlı Hücre Floresan Ömür Boyu Görüntüleme Mikroskobu (FLIM)

Multicellular tumor spheroids are a popular 3D tissue microaggregate&#160;model for reproducing tumor microenvironment, testing and optimizing drug ...

Buharlaşma azaltıcı Kültür Durumu Mikrotiter Tabaklar Multisellüler Sfero Oluşumunun Tekrarlanabilirlik artırır

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Microwell Tabaklar kullanma büyüklüğü kontrollü Tümör küremsi Büyük Sayılar üretimi

Hücre viability ve ölüm kanser hücrelerinin 3D Küroid kültürlerde değerlendirilmesi

Hücre Dışı Akı Analizi Kullanarak Tek 3D Mikrodoku Sferoidlerinin Mitokondriyal Enerji Metabolizmasını Keşfetmek

Keratinosit Kök Hücre Plastisitesini Modellemek için Yüksek Verimli Epidermal Sferoid Kültür Sistemi Kurulması

3D baskılı damga benzeri bir cihaz aracılığıyla doku sferoidlerinin üretilmesi

3D baskılı damga benzeri bir cihaz aracılığıyla doku sferoidlerinin üretilmesi

Fonksiyonel 3D Küresel Hücre Kültürlerinin Yarı Otomatik Fenotipik Analizi

Çok Hücreli Sferoidlerin Üretimi ve Çok Parametreli Canlı Hücre Floresan Ömür Boyu Görüntüleme Mikroskobu (FLIM)

Çok Hücreli Sferoidlerin Üretimi ve Çok Parametreli Canlı Hücre Floresan Ömür Boyu Görüntüleme Mikroskobu (FLIM)

Çok Hücreli Sferoidlerin Üretimi ve Çok Parametreli Canlı Hücre Floresan Ömür Boyu Görüntüleme Mikroskobu (FLIM)