Name: preparation and respirometric assessment of mitochondria isolated from skeletal muscle tissue obtained by percutaneous needle biopsy
Uploaded: 2015-02-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 27 s
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We would like to thank Dr. Marc Liesa, Boston University School of Medicine, helpful discussions; Ms. Karin Murphy, Ms. Heather Gregory, and Mr. John Stone, all from Wake Forest School of Medicine, for helpful technical assistance in the development of this protocol.

注：医学のウェイクフォレストの学校の治験審査委員会によって承認された記載されたプロトコル。インフォームドコンセントを書面で得られた。すべての参加者は23から35までの範囲のBMIで、男女の健全な高齢者（65-79歳）であった。 1.骨格筋生検<ol><li>前述したように、 図9は、O / N絶食後の早朝にすべての生検を行う。生検の前に一週間出血、血小板、または挫傷に影響を与える可能性がアスピリン、処方店頭非ステロイド性抗炎症薬、または他の化合物を服用を控えるように被験者に依頼。また、生検の前に少なくとも36時間、どんな激しい運動を控えるよう、参加者に依頼する。 注：筋肉が広1％リドカインによる局所麻酔下で経皮針を経皮的針生検技術を使用してヘイケボタルから得られる。医学的合併症ないか、またはOTHERはプロシージャから有害事象は、当社の臨床研究ユニットで発生したと報告した。 </li><li>注：記載の生検手順は、バーグストロム10のそれに適合されている。 <ol><li>簡単に説明すると、ローカルで筋肉に侵入しないように注意しながら1％のリドカインを管理する。十分な麻痺を可能にするために10分間の待機期間でこれに従ってください。 </li><li>筋膜下とmyotendonous地域を避け筋肉（挿入と原点との筋肉の中間領域）の腹から生検を取る。 <ol><li>経皮的針（ウィンドウと内側の切断シリンダの切断面を吸引補助再利用可能なデバイス）を使用し、ガイドとしての筋膜の筋膜「ポップ」または抵抗に従ってください。 </li><li>麻酔針で深さを推定し、その後再び狭いメスの刃でそれを感じ、筋膜を通して4〜5ミリメ​​ートルの切開を作る。それは筋肉の中に挿入されるまで、切開部を通して針を進める。 </li><li>集めるウィンドウを持つ複数のサンプルは、異なる方向に回転。前進と異なる方向に経皮的針に2〜4回の筋肉サンプルを抜き出しながら60ccのシリンジを使用して連続的な吸引を適用する。吸引を中止し、針を取り除く。 注：各パス（挿入と針の除去）が分未満を取る必要があります。 </li><li>アシスタントは止血を確立するために5分間のサイトを穿刺するしっかりと圧力をかけています。吸引チューブから針を外し、慎重に窓やバレルから筋肉のサンプルを削除する。 </li></ol></li><li>より多くの筋肉は、上記の手順を繰り返すことによって必要とされる場合は、2番目のパスを作成します。 </li><li> 、鉗子を用いて、筋肉のサンプルから目に見える血の塊を削除するサンプルの重量を量ると、すぐに氷のように冷たいDPBSを含むチューブ内に配置。 注：この方法を使用して、平均収量は150±20 mgである。 </li></ol></li></ol> 2.ミトコンドリアの単離 &lt;OL&gt; <li>たての実験、またはアリコートの日にチャペル·ペリー（CP）とミトコンドリアアッセイソリューション（MAS）のバッファ（ 表1）を調製し、-20℃で保管してください。 -20℃で2.5 mMの濃度と分量や店舗でジメチルスルホキシド中の化合物を調製した。準備の日から2ヶ月以内に-20℃で保存バッファおよび化合物アリコートを使用してください。 </li><li>鋭いハサミとピンセットを使用してサンプルから見える結合組織を削除する。必要であれば、このステップのために解剖顕微鏡を使用しています。徹底的に血液を除去するために、氷冷DPBS緩衝液で検体を3〜4回​​洗う。生検から45以上の分を超えないように注意しながら、できるだけ早く氷のように冷たいDPBSとプロセス上のサンプルを保管してください。慎重に筋肉のサンプルから任意の腱または脂肪組織を除去するための予防策を取る。 </li><li>すぐにはさみの無菌のペアを使用して細かい破片に筋肉組織を切るとPRを含む1ミリリットルのCPIに500μlの一時停止0.2ミリグラム/ g組織の濃度でoteinase（Nagarse）。 RTで5分間のインキュベーションでこれに従ってくださいしてから氷に移す。 </li><li>自動化されたホモジナイザーを用いてNagarseで処理されたみじん切り組織を均質化する。このプロセスを通して氷上にサンプルを保管してください。 10000回転の速度設定で自動ホモジナイザーを用いて、2秒のパルスに対して各組織試料を4回、毎回ホモジナイズする。組織間の蒸留水に続いて70％エタノールでプローブを洗ってください。 </li><li> CP I（1 mlの500μlの）及びCP IIの2倍の体積（2 mlの1ml）を、等量のホモジナイズした組織を洗浄し、600×gで、4℃で遠心分離用チューブに遠心機でコンテンツを収集10分。濡れたチーズクロスを通して上清を渡し、ろ液を収集し、ペレットを廃棄し、したがって非ミトコンドリア画分の大部分を取り除く。 </li></ol> 3.洗濯ミトコンドリア<ol><li> 10で上記のステップからの上清を遠心、000×gで、10分間、4°C。を10,000×g、10分間、4℃でCP IIバッファし、さらに遠心分離機の4ミリリットル中にペレットを一時停止します。 注：まれに、血液の薄いペレットはミトコンドリアのペレットの下に形成されている。その場合には、CPII緩衝液で穏やかな吸引によってミトコンドリアのペレットを削除します。このステップは、十分に、ステップ2で血液を洗い流すことによって回避することができる。 </li><li> CP Iのバッファの2ミリリットルで得られたペレットを一時停止します。この段階で、タンパク質の推定のために、この懸濁液から少量を使用しています。私は上記のようにバッファリングし、遠心機CPの残りのサンプルを懸濁します。ミトコンドリアアッセイソリューション（MAS）の最小量（200μL）で最終ペレットを一時停止します。 メモ：CP Iバッファは、BSAを持っていないため、サンプルは、後に中断されているMASがそれにBSAを持っているのに対し、タンパク質は、この段階でアッセイされる。 </li></ol> 4.見積もりBCAタンパク質アッセイキットを使用してタンパク質濃度を測定することによるミトコンドリアコンテンツ<pクラス= &quot;jove_content&quot;&gt;注：呼吸計測測定のために、またはウェスタンブロット実験のために24ウェルマイクロプレート上にロードするために使用されるミトコンドリアの量を計算するためにこの濃度を使用してください。タンパク質濃度の計算のために考慮に希釈係数（10）を取る。 ロジャース、GW らによって記載されているように5 XFアッセイを行う。12 NOTE：ピコモルO 2 /分でO 2消費率（OCR）を可視化するか、データ出力中のO 2およびpHの絶対レベル。 <ol><li>化合物を調製するための1x MASを使用する注入される。次のように最終濃度を得たポートのADへの化合物の10倍の濃度を追加します。ポートA、ADP [アデノシン5 &#39;二リン酸、2mMの、50μL];ポートB、オリゴマイシン（2μM、55μL）;ポートC、FCCP [カルボニルシアン化4-（トリフルオロメトキシ）フェニルヒドラゾン、6μM、60μL];とポートD、2μMのアンチマイシンA（65μL）。準備する井戸の必要な数のための化合物の十分なボリューム。 </li><li>滴定によってミトコンドリアの最適量を決定します。たとえば、負荷1.0μgの、2.5μgの、そしてウェルあたりのミトコンドリアの5.0μgの基質を含む氷冷1X MASの50μl容量で。ウェル間のばらつきを最小限に抑えるために、最初に冷たい1X MAS +基板に10倍のミトコンドリアを希釈。次に、（バックグラウンド補正ウェルを除く）を各ウェルにこの懸濁液50μlをお届け。 </li><li>遠心機で4℃で2000×gで、20分でプレート。各ウェルに、遠心分離した後、軽く1XのMAS +コハク酸（10 mM）をし、ロテノン（2μM）（下記参照初期条件）の450μlを添加する。 XFアナライザにプレートを転送をウェルに均質な遵守を確保するために顕微鏡下でミトコンドリアを表示します。 注：使用される初期条件は、呼吸がETC複合体Iまたは複合体IIのどちらかで駆動されているかどうかに依存します。複合体II主導の呼吸のため、SUを使用ccinate（10 mM）を、初期条件としてロテノン（2μM）。ロテノンブロック複合体Iおよびコハク酸は、複合体II（コハク酸デヒドロゲナーゼ）のための燃料を提供しています。複合体Iによって駆動呼吸を研究するために、初期条件として10mMの最終濃度で5mm以上のグルタミン酸とリンゴ酸各の最終濃度でピルビン酸とリンゴ酸、それぞれのいずれかを使用する。後者は、トリカルボン酸サイクルと基板搬送の間で機能不全とを区別するのに役立つことができる。複合体Iおよび複合体IIの両方で駆動呼吸を研究するために、初期条件としてロテノンまたはリンゴ酸なしでピルビン酸およびコハク酸が含まれています。 β酸化の基質としてミトイルカルニチンを使用してください。 </li><li>順次以前に12を説明したように、それをプログラムすることによって呼吸計を使用してリアルタイムでミトコンドリア呼吸を測定する。 表2に設けられた呼吸の設定を使用してください。 注：次のようにさまざまなミトコンドリア呼吸状態の簡単な説明は以下のとおりです。 </li><li&gt;状態2 =基板存在との結合状態。 ADPを飽和の存在下で呼吸をリン酸化状態3 =;オリゴマイシンにより誘導された状態4 O =非リン酸化呼吸。脱共役剤FCCPによって刺激状態3U =最大の脱共役呼吸。アンチマイシン-Aによる複合体III阻害後の残留非ミトコンドリア呼吸=呼吸。また、ミトコンドリアの濃度と組み合わせたOCR測定の長さは、測定期間中に酸素を枯渇させることにより、データに影響を与える可能性があることが指摘されるべきである。 </li></ol> 6.ウエスタンブロット注：最終サンプル中のミトコンドリアの濃縮を確実にするためにウェスタンブロッティングによってミトコンドリアのマーカーCOX IVおよび全組織GAPDHを決定<ol><li> 12％のドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲルによって単離されたミトコンドリアと全体の組織抽出物を分離する。 </li><li>ポリフッ化ビニリデン（PVDF）膜にタンパク質を移す。</li><li>二次抗体 - 結合、西洋ワサビペルオキシダーゼ（HRP）に続く：COX IV抗体（20,000 1）と共にインキュベートする。 GAPDHの決定のために、GAPDHモノクローナル抗体（1：2000 1）とブロットとプローブを取り除く。 注：ER汚染の違いが懸念される場合は、そのような分析においてERp72、カルネキシン、またはカルレティキュリンなどのERマーカーを含む。 </li></ol>

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	<li>Fernandez-Vizarra, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+mitochondria+for+biogenetical+studies:+An+update.">Isolation of mitochondria for biogenetical studies: An update.</a> Mitochondrion. 10, 253-262 (2010).</li><li>Fernandez-Vizarra, E., Lopez-Perez, M. J., Enriquez, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+biogenetically+competent+mitochondria+from+mammalian+tissues+and+cultured+cells.">Isolation of biogenetically competent mitochondria from mammalian tissues and cultured cells.</a> Methods. 26, 292-297 (2002).</li><li>Garcia-Cazarin, M. L., Snider, N. N., Andrade, F. 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S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+functional+mitochondria+from+rat+kidney+and+skeletal+muscle+without+manual+homogenization.">Isolation of functional mitochondria from rat kidney and skeletal muscle without manual homogenization.</a> Analytical Biochemistry. 418, 213-223 (2011).</li><li>Franko, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficient+isolation+of+pure+and+functional+mitochondria+from+mouse+tissues+using+automated+tissue+disruption+and+enrichment+with+anti-TOM22+magnetic+beads.">Efficient isolation of pure and functional mitochondria from mouse tissues using automated tissue disruption and enrichment with anti-TOM22 magnetic beads.</a> PloS One. 8, e82392 (2013).</li><li>Chappell, J. B., Perry, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+respiratory+and+adenosinetriphosphatase+activities+of+skeletal-muscle+mitochondria.">The respiratory and adenosinetriphosphatase activities of skeletal-muscle mitochondria.</a> The Biochemical Journal. 55, 586-595 (1953).</li><li>Tyrrell, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Respirometric+Profiling+of+Muscle+Mitochondria+and+Blood+Cells+Are+Associated+With+Differences+in+Gait+Speed+Among+Community-Dwelling+Older+Adults.">Respirometric Profiling of Muscle Mitochondria and Blood Cells Are Associated With Differences in Gait Speed Among Community-Dwelling Older Adults.</a> J Gerontol A Biol Sci Med Sci. , (2014).</li><li>Nicklas, B. 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W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+throughput+microplate+respiratory+measurements+using+minimal+quantities+of+isolated+mitochondria.">High throughput microplate respiratory measurements using minimal quantities of isolated mitochondria.</a> PloS One. 6, e21746 (2011).</li><li>Picard, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mitochondrial+structure+and+function+are+disrupted+by+standard+isolation+methods.">Mitochondrial structure and function are disrupted by standard isolation methods.</a> PloS One. 6, e18317 (2011).</li></ol>

The author, George Rogers, is an employee of Seahorse Bioscience that produces the instrument used in this article. Open Access fees were supported by Seahorse Biosciences.

単離されたミトコンドリアは、多くの場合、基板搬送とTCAサイクルの機能を含むETC機能の役割を調べる研究、ならびに他のミトコンドリアの活動に利用される。孤立した小器官を使った呼吸アッセイは、酸化的リン酸化の基本的なプロセスや、ETCの固有の特性の直接検査を可能にする全細胞または透過処理筋線維と比較して単離されたミトコンドリアの呼吸計測プロファイリングは、比較的容易なデータ解釈の利点とミトコンドリアの質量/生合成における非ミトコンドリアのプロセスや変更からの「干渉」が存在しないことがあります。データの正規化は、それによって、サンプル間のミトコンドリアの直接的な相互比較を可能にする、ミトコンドリアのタンパク質含有量に基づいている。単離されたミトコンドリアの呼吸計測プロファイリングは、研究の目的は、メカニズムの基礎となる、そのようなETC部品などの特定の標的を同定するかを決定することである好ましい方法であるS /複合体、またはミトコンドリアの輸送メカニズム。 小さな組織試料から筋生検および機能ミトコンドリアの単離のためのプロトコルについて説明する。手がダウンスホモジナイザーを運営に対してこの方法は、自動化されたホモジナイザーの利用にユーザー間の再現性のある結果が得られます。ミトコンドリアの単離は、筋肉組織のわずか20ミリグラムで行うことができる。このサンプルサイズから得ることができる単離されたミトコンドリアの量がさらに分子分析のための他の実験と保存のための余剰ミトコンドリアを残しシーホースプレートベースの呼吸計測を実行するのに十分である。この方法は、ミトコンドリアのより小さな量が（ウェル当たり1〜2μgの）を使用することができるXF 96に変換することができることに留意されたい。 ミトコンドリアを単離するためのいくつかのプロトコルは、初期の組織破壊のためのダウンスホモジナイザーに依存している。この方法の欠点は、実践的な初期組織の性質である均質化。ホモジナイザーで乳棒の力とスピードが事業者6の間に大きく変化することができます。これは、実験間の変動、ならびに実験室対実験室変動をもたらし、実験間のデータを比較することの難しさをもたらすことができる。これは、典型的には、処置前および処置後の、潜在的に複数の部位で、参加者からのデータは別々の時点で採取されたヒトの介入研究で特に懸念される。私たちは、限られた個人対個人の変動をより再現性のある結果が得られ、より一貫性のあるアプローチのための自動化されたホモジナイザーを使用しています。製剤の速度も同時に複数のサンプルを処理するのに適したこのアプローチを行う。典型的には、最大3つの実験を1日で行うことができる。 ここに記載された技術の潜在的な制限は、孤立した小器官の使用とプレートベースのフォーマットを使用することから生じる。例えば、ピカードら 。悪魔を持っている単離されたミトコンドリアは、透過性筋線維における無傷ミトコンドリアのものとは根本的に異なる機能特性を有することがstrated。彼らは、ミトコンドリアの分離技術は、より大きな活性酸素種の生成13を伴って透過性に筋線維と比較して有意に増加したRCRとして、変更された生体エネルギー機能をもたらすことを提案した。透過処理した筋線維と比較して、ミトコンドリアの単離は、長い準備時間を必要としない。また、細胞内容物の損失は、細胞全体、さらには、透過性の繊維内に保持されているものを生理学的関連性を減少させる。記載された技術が許すとプレートベース呼吸計測の使用は、サンプルあたりランを複製する。しかし、ミトコンドリアは、各ウェルの底に接着しなければならない。この構成は、それらの通常の環境とは異なり、機能的特性に影響を及ぼし得る。また、THER、ミトコンドリアの単離のためにこのプロトコルを使用していることに留意すべきである電子は、依然として、ミトコンドリア調製物中の小胞体（ER）からの汚染であってもよい。 ER汚染の違いはミトコンドリアの収率および影響の結果の決定に影響を与え得る。 結論として、この研究は、この手順を使用して組織から単離されたミトコンドリアは、機能的に活性であり、研究/骨格筋サンプルの最小量から高品質の単離されたミトコンドリアを必要とする用途に使用できることを確認するデータを提示する。この方法の利点があることは、i）は、骨格筋の最小量からミトコンドリアを単離することが可能であり、ii）の手順は、iii）のプレートに基づく技術では、同時に複数のサンプルを実行することが可能であり、迅速であるおよびiv）試料保存および他の分子生物学的研究のために生体エネルギーアッセイ後の十分な余剰組織および単離されたミトコンドリアがある。

ミトコンドリアは、細胞内の一次エネルギー生産拠点であり、高齢化に重要な役割だけでなく、心血管疾患、アルツハイマー病、糖尿病、癌、および肥満などの様々な加齢関連疾患を有している。単離されたミトコンドリアの呼吸計測プロファイリングは、電子伝達鎖（ETC）関数の直接分析を提供し、ミトコンドリアの生物学と健康と病気におけるその役割の理解に大きく貢献してきました。単離されたミトコンドリアは、本稿に記載された方法は、ヒト被験体から得られた骨格筋組織生検から単離したミトコンドリアの呼吸計測分析を可能にするために最適化された基板等の輸送、ATPシンターゼ活性、プロトンリークのような生体エネルギー論の様々な側面を研究するために使用される。この原稿に記載されて生検プロトコルは過去12年間、私たちのスタッフが利用されている。当社グループは、様々な年齢の大人に700以上の手順を実行しました90歳までの、および任意の有害な安全性の問題のないさまざまな慢性疾患条件に。このプロトコルの重要な側面は、それが具体的に、それによって臨床調査研究での使用を容易にする、組織の最小量を利用するように設計されていることである。 様々なプロトコルは、ミトコンドリアを単離するために開発されてきた。フェルナンデス- Vizarra ら 1,2は、様々なラット組織ならびに培養細胞からミトコンドリアを単離するための方法を記載した。ガルシア·Cazarin ら 3は、ラットやマウスからの骨格筋からのミトコンドリアを単離する方法を報告している。ラット脳からミトコンドリアを単離するための方法は、イグレシアス、ゴンザレスら 4グロスらによって報告されている。 図5は barocyclerおよび/ ​​またはPCTシュレッダーを使用してミトコンドリアを単離する方法を報告した。最近、フランコら 6抗を使用して、高度に濃縮されたミトコンドリアを単離する方法が報告され-TOM22磁気ビーズ。 これらのプロトコルは、優れた結果をもたらす一方で、組織のサイズ要件は、この原稿に記載された方法に比べて高い。例えば、Gross ら 5は、腓腹筋の1.5〜1.8グラム、および腎臓組織の約2gを使用した。同様に、フランコら 6は、500 mgのマウス肝臓組織を使用する。私たちの経験から、骨格筋の経皮針生検から期待される典型的な収量は、（ 外側広はヘイケボタル ）100〜200 mgの範囲である。ここに記載されたプロトコルを使用して筋肉組織の20〜50 mgのミトコンドリア機能を評価する能力は、生検ごとに複数の評価を実行し、他の分子生物学実験において将来使用するためにサンプルを格納するようにユーザーに許可する。これは臨床研究とサンプルの勤勉な使用を必要とする他の研究で重要な機能です。これは、以前に凍結さミトコンドリアが原因OUTEに結合された呼吸を研究するための良いではないことに留意すべきであるミトコンドリア膜損傷およびチトクロームCの活性の損失をrは。提案手法では、適応とチャペルとペリー7によって発表された方法から変更されている。 この原稿に記載された方法を使用して、我々は最近、ヒト広筋から単離されたミトコンドリアの呼吸計測プロファイルが直接歩行速度8として測定身体能力、と相関するヘイケボタルことを報告している。

<table><tbody><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Homogenizer Bio-Gen PRO200</td><td>BioExpress</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Centrifuge 5804 R</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Deepwell late Rotor&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6 mm University College Hospital Needle</td><td>Cadence</td><td></td><td></td></tr><tr><td>60 cc syringe</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>96-well plate reader</td><td>Tecan (Genios-basic)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Seahorse XF 24-3 analyzer</td><td>Seahorse Biosciences, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Protein gel system</td><td>Life Technologies (Invitrogen)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kodak Gel Logic 112</td><td>Carestream Health, Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kodak camera assembly</td><td>Carestream Health, Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Consumables</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>XF24 V7 Cell Culture Microplate and XF24 sensor cartridge</td><td>Seahorse Bioscience</td><td>100850-001</td><td></td></tr><tr><td>100867-100</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Potassium hydroxide (KOH)</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>221473</td><td></td></tr><tr><td>Hydrochloric acid (HCl)</td><td>Acros</td><td>12421-0010</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco&#039;s Phosphate buffered saline&amp;nbsp;</td><td>Lonza</td><td>17-512F</td><td></td></tr><tr><td>Potassium chloride (KCl)</td><td>Fisher Scientific</td><td>P333</td><td></td></tr><tr><td>MOPS</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP308</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP118</td><td></td></tr><tr><td>Magnesium sulfate (MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>M7506</td><td></td></tr><tr><td>ATP</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>A9187</td><td></td></tr><tr><td>Fatty acid-free BSA</td><td>Calbiochem</td><td>126575</td><td></td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>S0389</td><td></td></tr><tr><td>Bacterial proteinase</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>P-8038</td><td></td></tr><tr><td>D-Mannitol</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>M9546</td><td></td></tr><tr><td>KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Fisher Scientific</td><td>P284</td><td></td></tr><tr><td>Magnesium chloride (MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;)</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>M9272</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>H3784</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>E3889</td><td></td></tr><tr><td>BCA protein assay kit</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>PI23227</td><td></td></tr><tr><td>Succinic Acid*</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>S3674</td><td></td></tr><tr><td>Pyruvic acid*</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>P5280</td><td></td></tr><tr><td>Malic acid*</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>2288</td><td></td></tr><tr><td>ADP(K&lt;sup&gt;+&lt;/sup&gt; salt)*</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>A5285</td><td></td></tr><tr><td>XF Cell mito stress test kit</td><td>Seahorse Biosciences</td><td>101706</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.&amp;nbsp;</td><td>SC-29113</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE 12% Bis-Tris Gel</td><td>Life Technologies (Invitrogen)</td><td>NP0343BOX</td><td></td></tr><tr><td>Immobilin Transfer Membranes (0.45 um)</td><td>Millipore</td><td>IPVH20200</td><td></td></tr><tr><td>MOPS SDS Running Buffer (20X)-500 ml</td><td>Life Technologies (Invitrogen)</td><td>NP0001</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE Transfer Buffer (20X)-1 liter</td><td>Life Technologies (Invitrogen)</td><td>NP0006-1</td><td></td></tr><tr><td>Primary antibodies (mAB to VDAC1/Porin)</td><td>Abcam</td><td>ab14734</td><td></td></tr><tr><td>Primary antibodies (mAB to GAPDH)</td><td>Abcam</td><td>ab9484</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Mouse IgG (Goat), HRP-labeled</td><td>PerkinElmer</td><td>NEF822E001EA</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Rabbit IgG (Goat), HRP-labeled</td><td>PerkinElmer</td><td>NEF812E001EA</td><td></td></tr><tr><td>*ADP, succinic acid, pyruvic acid, and malic acid should be adjusted to pH 7.4 with KOH only&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

preparation and respirometric assessment of mitochondria isolated from skeletal muscle tissue obtained by percutaneous needle biopsy

単離されたミトコンドリアの呼吸計測プロファイリングは、一般に電子伝達鎖の機能を調べるために使用される。我々は、細胞外フラックス（XF）アナライザを使用して、人間の広さヘイケボタルのサンプルを取得する骨格筋組織の最小量からミトコンドリアを単離するための方法、およびプレートベースの呼吸計測プロファイリングを記載する。ミトコンドリアの1.0、2.5および5.0μgのを使用して得られた呼吸プロファイルの比較は、1.0μgの呼吸を測定するのに十分であると5.0μgの標準誤差の比較に基づいて、最も一貫性のある結果を提供することをことを示している。ミトコンドリアマーカーCOX IVおよび非ミトコンドリアの組織マーカーのGAPDHのための単離されたミトコンドリアのウェスタンブロット分析は、このプロトコルを使用して制限された非ミトコンドリアの汚染が存在することを示している。筋肉組織のわずか20 mgのミトコンドリア呼吸計測を研究する能力は、ユーザが、臨床試験で複数のエンドポイントの個々の生検を利用することを可能にする研究プロジェクト。

図1は、全体のプロトコルの詳細なフローチャートを示している。 COX IV / GAPDH（ 図2）のウェスタンブロットプロファイルは、ミトコンドリアタンパク質、COX IV、及び非ミトコンドリアマーカー、GAPDHの発現を示す。 COX IVおよびGAPDHの両方の発現は、全体の筋肉溶解物において明らかである。ミトコンドリアは、このプロトコルに記載された技術を用いて単離された後、GAPDHは、同じ露出で休んでいる間に、COX IVバンドは依然として明らかである。長い曝露は、かすかなGAPDHバンドを公開してもよい。これらのブロットは、単離されたミトコンドリアは、最小限の非ミトコンドリアの汚染を持っていることを示している。さらに、単離されたミトコンドリアにおけるCOX IV発現は、サンプル間の一貫性があります。 図3は 1.0μgの、2.5μgの、及びミトコンドリアの5.0μgのを使用して、複合体II（コハク酸およびロテノン）で駆動される典型的な呼吸計測プロファイルを示す。予想されるように、全体的なOCRはワット増加するi番目のミトコンドリアの高い量。このアッセイのために計算された呼吸調節比（RCR）は、ミトコンドリア調製物が高品質であることを示す、7.95。さらに、状態3uのOCRは、ミトコンドリアの品質を確認し、状態3のそれよりもわずかに高い。 ミトコンドリアの異なる量をプロファイルするとき、結果の一貫性を比較するために、我々は、ANOVA（分散分析）を行い、1.0μgの、2.5μgのを使用して分散の実際の値と二乗和（SS）を計算し、ミトコンドリアの5.0μgのあたりにロードよく（ 図4）。 SSは、状態2、状態3、状態3uに、アンチマイシンA、およびRCRのために提示されている。状態2と状態3の測定のために、一方向ANOVAを（それぞれp &lt;0.01およびp &lt;0.05）、統計的に有意であった。同様に、一方向ANOVAをマイシン及びRCRた（p &lt;0.01およびp &lt;0.0001ための統計的に有意であった、それぞれ有意差は群間状態3uに見られなかった。のThESEの結果は、ウェルあたりのミトコンドリアの5.0μgの他の濃度に比べて最低のSSを与え、参加者の私達の人口はXF 24システムで使用する最適な量であることを示している。 図5は、ミトコンドリアタンパク質が初期筋標本の大きさに基づいて予測することができる量を示すためのガイドとして機能する。予想されるように処理された筋肉量（mg）の量は、最終試料の総ミトコンドリアのタンパク質含有量（mg）との間には強い相関がある。 <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td colspan="2"> チャペル·ペリーバッファI（CPI） </td></tr><tr><td>化学物質</td><td>濃度</td></tr><tr><td>塩化カリウム</td><td> 100 mMの</td></tr><tr><td> MOPS </td><td> 50 mMの</td></tr><tr><td> EDTA </td><td> 1 mMの</td></tr><tr><td> MgSO 4を</td><td> 5 mMの</td></tr><tr><td> ATP </td><td> 1 mMの</td></tr&gt; <tr><td> pHは</td><td> 7.4 </td></tr><tr><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="2"> チャペル·ペリーバッファーII（CPII） </td></tr><tr><td>化学物質</td><td>濃度</td></tr><tr><td>塩化カリウム</td><td> 100 mMの</td></tr><tr><td> MOPS </td><td> 50 mMの</td></tr><tr><td> EDTA </td><td> 1 mMの</td></tr><tr><td> MgSO 4を</td><td> 5 mMの</td></tr><tr><td> ATP </td><td> 0.2 mMの</td></tr><tr><td>脂肪酸フリーのBSA </td><td> 0.50％ </td></tr><tr><td> pHは</td><td> 7.4 </td></tr><tr><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="2"> ミトコンドリアアッセイソリューション（MAS）（2X） </td></tr><tr><td>化学物質</td><td>濃度</td></tr><tr><td>蔗糖</td><td> 35 mMの</td></tr><tr><td>マンニトール</td><td> 110 mMの</td></tr><tr><td> KH 2 PO 4 </td><td> 2.5 mMの</td></tr><tr><td>のMgCl 2 </td><td> 2.5 mMの</td></tr><tr><td> HEPES </td><td> 1.0 mMの</td></tr><tr><td> EGTA </td><td> 0.5 mMの</td></tr><tr><td>脂肪酸フリーのBSA </td><td> 0.10％ </td></tr><tr><td> pHは</td><td> 7.4 </td></tr><tr><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="2"> 複合体II初期条件とミトコンドリアアッセイソリューション（MAS） </td></tr><tr><td>化学物質</td><td>濃度</td></tr><tr><td> 1X MAS </td><td></td></tr><tr><td>コハク酸塩</td><td> 10 mMの</td></tr><tr><td>ロテノン</td><td> 2μM </td></tr><tr><td> pHは</td><td> 7.4 </td></tr><tr><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="2"> 複合体I初期条件とミトコンドリアアッセイソリューション（MAS） </td></tr><tr><td>化学物質</td><td>濃度</td></tr><tr><td> 1X MAS </td><td></td></tr><tr><td>ピルビン酸塩</td><td> 5 mMの</td></tr><tr><td>リンゴ酸塩</td><td> 5 mMの</td></tr><tr><td> pHは</td><td> 7.4 </td></tr><tr><td colspan="2"> *すべてのバッファは、脱イオン水で作られる</td></tr></tbody></table> 表1.液、緩衝レシピ。 <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" fo:keep-together.within-page="always"><tbody><tr><td colspan="2"> プロトコルステップ </td><td></td></tr><tr><td colspan="3"> StartProtocol </td></tr><tr><td> コマンド </td><td> 時間（分） </td><td> ポート </td></tr><tr><td>調整する</td><td> 0.00 </td><td></td></tr><tr><td>待って</td><td> 10.00 </td><td></td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td>待って</td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td>待って</td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 0.50 </td><td></td></tr><tr><td>メジャー</td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td>メジャー</td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 0.50 </td><td></td></tr><tr><td>注入する</td><td></td><td> A </td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td>メジャー</td><td> 6.00 </td><td></td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td>注入する</td><td></td><td> B </td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td>メジャー</td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td>注入する</td><td></td><td> ℃ </td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 1.00 </td><td></td></tr<html> &gt; <tr><td>メジャー</td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td>注入する</td><td></td><td> D </td></tr><tr><td>ミックス</td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td>メジャー</td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td colspan="3"> EndProtocol </td></tr></tbody></table> 表2.ミックス、測定、および呼吸のための周期設定を混在させる。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52350/52350fig1highres.jpg" /> プロトコル全体の図1のフローチャート。 <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/52350/52350fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> /ftp_upload/52350/52350fig2highres.jpg &quot;/&gt; 図2.全骨格筋組織、ならびに単離されたミトコンドリアのための代表的なウエスタンブロット。全組織抽出物、ならびに単離されたミトコンドリアは、非ミトコンドリアの制御のためのミトコンドリアマーカーとGAPDH抗体としてCOX IV抗体で免疫ブロットした。いいえGAPDHバンドは、非ミトコンドリアのソースからほとんど、あるいは全く汚染を示す単離されたミトコンドリアでは観察されなかった。 <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/52350/52350fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/52350/52350fig3highres.jpg" /> 人間広筋から単離されたミトコンドリアの図3.代表呼吸計測プロファイルがヘイケボタル 。単離されたミトコンドリアの3つの濃度を、5.0μgの、2.5μgの、及び1.0μgの我々<html>このアッセイで使用される再。ポート注射後の化合物の最終濃度は2 mMのADP（ポートA）であった。 2μMのオリゴマイシン（ポートB）; 6μMFCCP（ポートC）;と（ポートD）をアンチマイシン2μM。この実行のための計算されたRCRは7.95だった。 <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/52350/52350fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/52350/52350fig4highres.jpg" /> 5.0μgの、2.5μgの、及び1.0μgのミトコンドリアを使用して、異なるミトコンドリア呼吸の状態とRCRのための正方形の図4.二乗の合計合計。 <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/52350/52350fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> ig5highres.jpg &quot;/&gt; 。筋肉の量（mg）および総ミトコンドリアタンパク質の収量（mg）を： 図5は、これは、初期の筋肉試料重量回帰分析に基づいて予測することができるミトコンドリアタンパク質の量を推定するためのガイドとして使用することができる 。予想されるように、筋肉の量および得られた総ミトコンドリアタンパク質との間の直接的な正の相関がある。

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Preparation and Respirometric Assessment of Mitochondria Isolated from Skeletal Muscle Tissue Obtained by Percutaneous Needle Biopsy

広筋のヘイケボタルの生検、精製されたミトコンドリアの準備、および呼吸計測プロファイリングのための方法が記載されている。小さな筋肉量の使用は、臨床研究用途のためにこの技術に適しています。

経皮針生検によって得られた骨格筋組織から単離されたミトコンドリアの調製と呼吸計測評価

Respirometric profiling of isolated mitochondria is commonly used to investigate electron transport chain function. We describe a method for obtaining ...

preparation-respirometric-assessment-mitochondria-isolated-from

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Medicine

19.5K ビュー.  Wake Forest School of Medicine.  広筋のヘイケボタルの生検、精製されたミトコンドリアの準備、および呼吸計測プロファイリングのための方法が記載されている。小さな筋肉量の使用は、臨床研究用途のためにこの技術に適しています。 

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Myo-mechanical Analysis of Isolated Skeletal Muscle

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for the treatment of muscle disease 1,2,3, quantitative methods are needed that measure force generation and fatigability in treated muscle. We describe a detailed approach to evaluating myo-mechanical properties in freshly explanted hindlimb muscle from the mouse. We describe the atraumatic harvest of mouse extensor digitorum longus muscle, mounting the muscle in a muscle strip myograph (Model 820MS; Danish Myo Technology), and the measurement of maximal twitch and tetanic tension, contraction time, and half-relaxation time, using a square pulse stimulator (Model S48; Grass Technologies). Using these measurements, we demonstrate the calculation of specific twitch and tetanic tension normalized to muscle cross-sectional area, the twitch-to-tetanic tension ratio, the force-frequency relationship curve and the low frequency fatigue curve 4. This analysis provides a method for quantitative comparison between therapeutic interventions in mouse models of muscle disease 1,2,3,5, as well as comparison of the effects of genetic modification on muscle function 6,7,8,9.

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for muscle disease, methods are needed to quantitate force generation and fatigability in treated muscle. We detail an approach to evaluating myo-mechanical properties in explanted mouse hindlimb muscle. This analysis provides a robust approach to quantitating the effects of genetic modification on muscle function, as well as comparison of therapies in mouse models of muscle disease.

単離骨格筋のミオ - 機械的分析

To assess the in vivo effects of therapeutic interventions for the treatment of muscle disease 1,2,3, quantitative methods are needed that measure force ...

医学

Using Isolated Mitochondria from Minimal Quantities of Mouse Skeletal Muscle for High throughput Microplate Respiratory Measurements

Skeletal muscle mitochondria play a specific role in many disease pathologies. As such, the measurement of oxygen consumption as an indicator of mitochondrial function in this tissue has become more prevalent. Although many technologies and assays exist that measure mitochondrial respiratory pathways in a variety of cells, tissue and species, there is currently a void in the literature in regards to the compilation of these assays using isolated mitochondria from mouse skeletal muscle for use in microplate based technologies. Importantly, the use of microplate based respirometric assays is growing among mitochondrial biologists as it allows for high throughput measurements using minimal quantities of isolated mitochondria. Therefore, a collection of microplate based respirometric assays were developed that are able to assess mechanistic changes/adaptations in oxygen consumption in a commonly used animal model. The methods presented herein provide step-by-step instructions to perform these assays with an optimal amount of mitochondrial protein and reagents, and high precision as evidenced by the minimal variance across the dynamic range of each assay.

The methods presented provide step-by-step instructions for the performance of a collection of microplate based respirometric assays using isolated mitochondria from minimal quantities of mouse skeletal muscle. These assays are able to measure mechanistic changes/adaptations in mitochondrial oxygen consumption in a commonly used animal model.

ハイスループットマイクロプレート呼吸測定のためのマウス骨格筋の最小量から単離されたミトコンドリアを使用して

Skeletal muscle mitochondria play a specific role in many disease pathologies. As such, the measurement of oxygen consumption as an indicator of ...

発生生物学

Skeletal Muscle Gender Dimorphism from Proteomics

Gross contraction in skeletal muscle is primarily determined by a relatively small number of contractile proteins, however this tissue is also remarkably adaptable to environmental factors1 such as hypertrophy by resistance exercise and atrophy by disuse. It thereby exhibits remodeling and adaptations to stressors (heat, ischemia, heavy metals, etc.)2,3. Damage can occur to muscle by a muscle exerting force while lengthening, the so-called eccentric contraction4. The contractile proteins can be damaged in such exertions and need to be repaired, degraded and/or resynthesized; these functions are not part of the contractile proteins, but of other much less abundant proteins in the cell. To determine what subset of proteins is involved in the amelioration of this type of damage, a global proteome must be established prior to exercise5 and then followed subsequent to the exercise to determine the differential protein expression and thereby highlight candidate proteins in the adaptations to damage and its repair. Furthermore, most studies of skeletal muscle have been conducted on the male of the species and hence may not be representative of female muscle. 
In this article we present a method for extracting proteins reproducibly from male and female muscles, and separating them by two-dimensional gel electrophoresis followed by high resolution digital imaging6. This provides a protocol for spots (and subsequently identified proteins) that show a statistically significant (p &lt; 0.05) two-fold increase or decrease, appear or disappear from the control state. These are then excised, digested with trypsin and separated by high-pressure liquid chromatography coupled to a mass spectrometer (LC/MS) for protein identification (LC/MS/MS)5. This methodology (Figure 1) can be used on many tissues with little to no modification (liver, brain, heart etc.).

A straight-forward set of methods to isolate and determine the identity of the most abundant proteins expressed in skeletal muscle. About 800 spots are discerned on a two-dimensional gel from 10 mg muscle; this allows for the determination of gender-specific protein expression. These methods will give equivalent results in most tissues.

プロテオミクスから骨格筋の性別二型

Gross contraction in skeletal muscle is primarily determined by a relatively small number of contractile proteins, however this tissue is also remarkably ...

Mitochondrial Isolation from Skeletal Muscle

Mitochondria are organelles controlling the life and death of the cell. They participate in key metabolic reactions, synthesize most of the ATP, and regulate a number of signaling cascades2,3. Past and current researchers have isolated mitochondria from rat and mice tissues such as liver, brain and heart4,5. In recent years, many researchers have focused on studying mitochondrial function from skeletal muscles.
Here, we describe a method that we have used successfully for the isolation of mitochondria from skeletal muscles 6. Our procedure requires that all buffers and reagents are made fresh and need about 250-500 mg of skeletal muscle. We studied mitochondria isolated from rat and mouse gastrocnemius and diaphragm, and rat extraocular muscles. Mitochondrial protein concentration is measured with the Bradford assay. It is important that mitochondrial samples be kept ice-cold during preparation and that functional studies be performed within a relatively short time (~1 hr). Mitochondrial respiration is measured using polarography with a Clark-type electrode (Oxygraph system) at 37&deg;C7. Calibration of the oxygen electrode is a key step in this protocol and it must be performed daily. Isolated mitochondria (150 &mu;g) are added to 0.5 ml of experimental buffer (EB). State 2 respiration starts with addition of glutamate (5mM) and malate (2.5 mM). Then, adenosine diphosphate (ADP) (150 &mu;M) is added to start state 3. Oligomycin (1 &mu;M), an ATPase synthase blocker, is used to estimate state 4. Lastly, carbonyl cyanide p-[trifluoromethoxy]-phenyl-hydrazone (FCCP, 0.2 &mu;M) is added to measurestate 5, or uncoupled respiration 6. The respiratory control ratio (RCR), the ratio of state 3 to state 4, is calculated after each experiment. An RCR &ge;4 is considered as evidence of a viable mitochondria preparation.
In summary, we present a method for the isolation of viable mitochondria from skeletal muscles that can be used in biochemical (e.g., enzyme activity, immunodetection, proteomics) and functional studies (mitochondrial respiration).

This protocol describes a procedure to study the respiration of mitochondria isolated from skeletal muscles. This method was adapted from Scorrano et al. (2007). The mitochondrial isolation procedure requires about 2 hours. The mitochondrial respiration can be completed in about 1 hour.

骨格筋からのミトコンドリア単離

Mitochondria are organelles controlling the life and death of the cell. They participate in key metabolic reactions, synthesize most of the ATP, and ...

生物学

Isolation of Mitochondria from Minimal Quantities of Mouse Skeletal Muscle for High Throughput Microplate Respiratory Measurements

Dysfunctional skeletal muscle mitochondria play a role in altered metabolism observed with aging, obesity and Type II diabetes. Mitochondrial respirometric assays from isolated mitochondrial preparations allow for the assessment of mitochondrial function, as well as determination of the mechanism(s) of action of drugs and proteins that modulate metabolism. Current isolation procedures often require large quantities of tissue to yield high quality mitochondria necessary for respirometric assays. The methods presented herein describe how high quality purified mitochondria (~ 450 &#181;g) can be isolated from minimal quantities (~75-100 mg) of mouse skeletal muscle for use in high throughput respiratory measurements. We determined that our isolation method yields 92.5&#177; 2.0% intact mitochondria by measuring citrate synthase activity spectrophotometrically. In addition, Western blot analysis in isolated mitochondria resulted in the faint expression of the cytosolic protein, GAPDH, and the robust expression of the mitochondrial protein, COXIV. The absence of a prominent GAPDH band in the isolated mitochondria is indicative of little contamination from non-mitochondrial sources during the isolation procedure. Most importantly, the measurement of O2 consumption rate with micro-plate based technology and determining the respiratory control ratio (RCR) for coupled respirometric assays shows highly coupled (RCR; &#62;6 for all assays) and functional mitochondria. In conclusion, the addition of a separate mincing step and significantly reducing motor driven homogenization speed of a previously reported method has allowed the isolation of high quality and purified mitochondria from smaller quantities of mouse skeletal muscle that results in highly coupled mitochondria that respire with high function during microplate based respirometirc assays.

Here, we present a modification of a previously reported method that allows for the isolation of high quality and purified mitochondria from smaller quantities of mouse skeletal muscle. This procedure results in highly coupled mitochondria that respire with high function during microplate based respirometirc assays.

ハイスループットマイクロプレート呼吸測定のためのマウスの骨格筋の最小量からミトコンドリアの単離

Dysfunctional skeletal muscle mitochondria play a role in altered metabolism observed with aging, obesity and Type II diabetes. Mitochondrial ...

High-resolution Respirometry to Assess Mitochondrial Function in Permeabilized and Intact Cells

A high-resolution oxygraph is a device for measuring cellular oxygen consumption in a closed-chamber system with very high resolution and sensitivity in biological samples (intact and permeabilized cells, tissues or isolated mitochondria). The high-resolution oxygraph device is equipped with two chambers and uses polarographic oxygen sensors to measure oxygen concentration and calculate oxygen consumption within each chamber. Oxygen consumption rates are calculated using software and expressed as picomoles per second per number of cells. Each high-resolution oxygraph chamber contains a stopper with injection ports, which makes it ideal for substrate-uncoupler-inhibitor titrations or detergent titration protocols for determining effective and optimum concentrations for plasma membrane permeabilization. The technique can be applied to measure respiration in a wide range of cell types and also provides information on mitochondrial quality and integrity, and maximal mitochondrial respiratory electron transport system capacity.

High-resolution respirometry is used to determine mitochondrial oxygen consumption. This is a straightforward technique to determine mitochondrial respiratory chain complexes&#39; (I-IV) respiratory rates, maximal mitochondrial electron transport system capacity, and mitochondrial outer membrane integrity.

透過処理と無傷の細胞でミトコンドリア機能を評価するために高解像度呼吸計測

A high-resolution oxygraph is a device for measuring cellular oxygen consumption in a closed-chamber system with very high resolution and sensitivity in ...

Isolation of Intact Mitochondria from Skeletal Muscle by Differential Centrifugation for High-resolution Respirometry Measurements

Mitochondria are involved in cellular energy metabolism and use oxygen to produce energy in the form of adenosine triphosphate (ATP). Differential centrifugation at low- and high-speed is commonly used to isolate mitochondria from tissues and cultured cells. Crude mitochondrial fractions obtained by differential centrifugation are used for respirometry measurements. The differential centrifugation technique is based on the separation of organelles according to their size and sedimentation velocity. The isolation of mitochondria is performed immediately after tissue harvesting. The tissue is immersed in an ice-cold homogenization medium, minced using scissors and homogenized in a glass homogenizer with a loose-fitting pestle. The differential centrifugation technique is efficient, fast and inexpensive and the mitochondria obtained by differential centrifugation are pure enough for respirometry assays. Some of the limitations and disadvantages of isolated mitochondria, based on differential centrifugation, are that the mitochondria can be damaged during the homogenization and isolation procedure and that large amounts of the tissue biopsy or cultured cells are required for the mitochondrial isolation.

Here, a quadriceps muscle specimen is taken from an anaesthetized pig and mitochondria are isolated by differential centrifugation. Then, the respiratory rates of mitochondrial respiratory chain complexes I, II and IV are determined using high-resolution respirometry.

高解像度の呼吸計測測定のための差動遠心分離することにより骨格筋から無傷ミトコンドリアの単離

Mitochondria are involved in cellular energy metabolism and use oxygen to produce energy in the form of adenosine triphosphate (ATP). Differential ...

Isolation of Mitochondria from Mouse Skeletal Muscle for Respirometric Assays

Most of the cell&#39;s energy is obtained through the degradation of glucose, fatty acids, and amino acids by different pathways that converge on the mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) system, which is regulated in response to cellular demands. The lipid molecule Coenzyme Q (CoQ) is essential in this process by transferring electrons to complex III in the electron transport chain (ETC) through constant oxidation/reduction cycles. Mitochondria status and, ultimately, cellular health can be assessed by measuring ETC oxygen consumption using respirometric assays. These studies are typically performed in established or primary cell lines that have been cultured for several days. In both cases, the respiration parameters obtained may have deviated from normal physiological conditions in&#160;any given organ or tissue.
Additionally, the intrinsic characteristics of cultured single fibers isolated from skeletal muscle impede this type of analysis. This paper presents an updated and detailed protocol for the analysis of respiration in freshly isolated mitochondria from mouse skeletal muscle. We also provide solutions to potential problems that could arise at any step of the process. The method presented here could be applied to compare oxygen consumption rates in diverse transgenic mouse models and study the mitochondrial response to drug treatments or other factors such as aging or sex. This is a feasible method to respond to crucial questions about mitochondrial bioenergetics metabolism and regulation.

Here, we describe a detailed method for mitochondria isolation from mouse skeletal muscle and the subsequent analysis of respiration by Oxygen Consumption Rate (OCR) using microplate-based respirometric assays. This pipeline can be applied to study the effects of multiple environmental or genetic interventions on mitochondrial metabolism.

呼吸法アッセイのためのマウス骨格筋からのミトコンドリアの単離

Most of the cell&#39;s energy is obtained through the degradation of glucose, fatty acids, and amino acids by different pathways that converge on the ...

High-Resolution Fluoro-Respirometry of Equine Skeletal Muscle

Mitochondrial function-oxidative phosphorylation and the generation of reactive oxygen species-is critical in both health and disease. Thus, measuring mitochondrial function is fundamental in biomedical research. Skeletal muscle is a robust source of mitochondria, particularly in animals with a very high aerobic capacity, such as horses, making them ideal subjects for studying mitochondrial physiology. This article demonstrates the use of high-resolution respirometry with concurrent fluorometry, with freshly harvested skeletal muscle mitochondria, to quantify the capacity to oxidize substrates under different mitochondrial states and determine the relative capacities of distinct elements of mitochondrial respiration. Tetramethylrhodamine methylester is used to demonstrate the production of mitochondrial membrane potential resulting from substrate oxidation, including calculation of the relative efficiency of the mitochondria by calculating the relative membrane potential generated per unit of concurrent oxygen flux. The conversion of ADP to ATP results in a change in the concentration of magnesium in the reaction chamber, due to differing affinities of the adenylates for magnesium. Therefore, magnesium green can be used to measure the rate of ATP synthesis, allowing the further calculation of the oxidative phosphorylation efficiency (ratio of phosphorylation to oxidation [P/O]). Finally, the use of Amplex UltraRed, which produces a fluorescent product (resorufin) when combined with hydrogen peroxide, allows the quantification of reactive oxygen species production during mitochondrial respiration, as well as the relationship between ROS production and concurrent respiration. These techniques allow the robust quantification of mitochondrial physiology under a variety of different simulated conditions, thus shedding light on the contribution of this critical cellular component to both health and disease.

Horses have an exceptional aerobic exercise capacity, making equine skeletal muscle an important tissue for both the study of equine exercise physiology as well as mammalian mitochondrial physiology. This article describes techniques for the comprehensive assessment of mitochondrial function in equine skeletal muscle.

ウマ骨格筋の高分解能蛍光呼吸測定

Mitochondrial function-oxidative phosphorylation and the generation of reactive oxygen species-is critical in both health and disease. Thus, measuring ...

<meta charset="utf8"></head><body>筋線維におけるミトコンドリア呼吸のリアルタイム定量化

Measurement of Mitochondrial Respiration in Human and Mouse Skeletal Muscle Fibers by High-Resolution Respirometry

Mitochondrial function, a cornerstone of cellular energy production, is critical for maintaining metabolic homeostasis. Its dysfunction in skeletal muscle is linked to prevalent metabolic disorders (e.g., diabetes and obesity), muscular dystrophies, and sarcopenia. While there are many techniques to evaluate mitochondrial content and morphology, the hallmark method to assess mitochondrial function is the measurement of mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) by respirometry. Quantification of mitochondrial OXPHOS provides insight into the efficiency of mitochondrial oxidative energy production and cellular bioenergetics. A high-resolution respirometer provides highly sensitive, robust measurements of mitochondrial OXPHOS in permeabilized muscle fibers by measuring real-time changes in mitochondrial oxygen consumption rate. The use of permeabilized muscle fibers, as opposed to isolated mitochondria, preserves mitochondrial networks, maintains mitochondrial membrane integrity, and ultimately allows for more physiologically relevant measurements. This system also allows for the measurement of fuel preference and metabolic flexibility - dynamic aspects of muscle energy metabolism. Here, we provide a comprehensive guide for mitochondrial OXPHOS measurements in human and mouse skeletal muscle fibers using a high-resolution respirometer. Skeletal muscle groups are composed of different fiber types that vary in their mitochondrial fuel preference and bioenergetics. Using a high-resolution respirometer, we describe methods for evaluating both aerobic glycolytic and fatty acid substrates to assess fuel preference and metabolic flexibility in a fiber-type-dependent manner. The protocol is versatile and applicable to both human and rodent muscle fibers. The goal is to enhance the reproducibility and accuracy of mitochondrial function assessments, which will improve our understanding of an organelle important to muscle health.

<meta charset="utf8"></head><body>著者スポットライト:代謝性疾患におけるミトコンドリア機能と細胞代謝適応の解明

Here, we describe a comprehensive method for measuring mitochondrial oxidative phosphorylation in fresh permeabilized skeletal muscle fibers from either human or mouse muscle. This method allows for the real-time quantification of mitochondrial respiration and the assessment of fuel preference and metabolic flexibility while preserving existing mitochondrial networks and membrane integrity.

高解像度呼吸測定法によるヒトおよびマウス骨格筋線維のミトコンドリア呼吸の測定

Mitochondrial function, a cornerstone of cellular energy production, is critical for maintaining metabolic homeostasis. Its dysfunction in skeletal muscle ...