眶后静脉注射的新生儿啮齿动物模型

眼眶后注射是一种专门的注射方法，用于将化合物注入静脉循环。动物研究是迈向临床工作的重要一步。作为动物研究的一部分，需要通过不同的途径施用不同类型的化合物。

其中一些途径包括皮下注射、腹膜内注射和静脉注射。静脉注射是新生儿重症监护病房新生儿最常用的途径。然而，在啮齿动物研究中，特别是在成年啮齿动物中，静脉注射通常是在尾静脉进行的。

在新生儿中，成功且可重复地进行尾静脉注射是极其困难的。因此，逆轨路线可以用作更简单的替代方案。首先，我们将演示如何使用染料台盼蓝，以便观众可以清楚地看到染料进入静脉循环。

将新生大鼠置于完全麻醉状态，头部侧卧，放在光源上方，因此眼睛和侧向脉管系统暴露可见。针头插入眼窝前部，相当于内眦。以轻柔、平稳和流畅的运动注入溶液。

为了更好地重现这一过程，了解眼眶静脉解剖结构很重要。在大鼠中，眼睛下方有几条静脉网络，可以轻松直接地进入静脉丛。在新生白化大鼠中，浅表颞静脉和面部静脉也可见。

此过程可以以完全相同的方式执行。在新生小鼠中。使用29至31号的针头，约0.30毫米。

为了获得准确的体积，请从移液体积中抽出要进样的溶液。将动物侧卧放在平坦的表面上。诱导全身异氟醚麻醉。

5%感应，3%维护。使用拉退出反射法检查麻醉深度。头部朝右，向右眶后窦注射。

将针斜面向下插入眼窝前部，相当于中眦，角度约为 40 度。这个角度允许针头指向眼眶的后部。以轻柔、平稳和流畅的动作注射。

等待片刻，然后慢慢抽出针头，以避免回流。为每只动物使用新的无菌注射器以避免污染。将幼崽放在恢复箱中，放在受保护的加热装置上，温度约为 35 至 37 摄氏度。

等待恢复，并在将幼崽送回大坝之前检查是否有任何遇险迹象。该技术用于将示踪剂生物素-葡聚糖施用到经历过生发基质出血的动物的大脑脉管系统中。接受生理盐水注射作为对照的动物显示大脑内脉管系统没有可见的染色。

成功眶后注射生物素-葡聚糖示踪剂，允许在眶后给药后 10 分钟内评估其在脑脉管系统中的存在。然后使用该技术检测示踪剂在GMH受伤动物中单个血管水平的血管渗漏。例如，该结果允许通过量化GMH脑损伤后渗漏的血管量来量化损伤。

此外，该程序也可以在没有光源的情况下进行，使其成为一种简单、直接且可重复的技术，允许将化合物直接施用到新生大鼠和小鼠的静脉循环中。如果执行得当，此程序不应导致任何不良反应。这种给药根允许将抗体、细胞和其他化合物直接注射到新生动物的静脉循环中。

与其他途径（例如腹膜内或皮下注射）相比，该途径具有更大的临床相关性。