وأيد آلية التنمية النظيفة من قبل الكلية الأمريكية للجراحين (ACS) منحة بحثية المقيم. وأيد MSH من معهد كاليفورنيا للطب التجديدي (CIRM) التدريب زميل السريرية منحة TG2-01159. ودعمت MSH، هبل، وMTL من قبل الجمعية الأمريكية لجراحي الوجه والفكين (ASMS) / مؤسسة جراحي الوجه والفكين (أطباء بلا حدود) جائزة منحة بحثية. وأيد هبل من قبل منحة المعاهد الوطنية للصحة R01 GM087609 وهدية من إنغريد لاي وبيل شو تكريما لأنتوني شو. ودعمت هبل وMTL من قبل مختبر Hagey للأطفال الطب التجديدي، ومؤسسة أوك. وأيد MTL من الصندوق غن / أوليفييه.

تمت الموافقة على بروتوكول التالية من قبل لجنة جامعة ستانفورد المؤسسية رعاية الحيوان واستخدام (IACUC) ويتوافق مع جميع المبادئ التوجيهية الأخلاقية المؤسسية فيما يتعلق باستخدام حيوانات التجارب. 1. إنشاء البطن الالتصاقات <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بدء تشغيل الماوس على نظام غذائي طعام المضادات الحيوية قبل أسبوع واحد لهذا الإجراء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعقيم الأدوات الجراحية وقبل دافئ الحل الري بالمياه المالحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير الماوس باستخدام 2٪ الأيزوفلورين استنشاقه. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام المقص الشعر تليها تطبيق سريع (5-10 ثانية) وكيل مزيل الشعر، إزالة الشعر من الغالبية العظمى من سطح البطن. تماما إزالة عامل مزيل الشعر عن طريق المسح برفق مع الشاش الرطب، واختياريا، عن طريق التغميس بعناية النصف السفلي من الفأرة في الماء الدافئ. تجف تماما والحيوان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ضع خطم الحيوان في مخروط الأنف مخدر. أثناء الجراحة بأكملها، ترصد بدقة صمعدل espiratory الحيوان وعاير معدل التدفق مخدر حسب الحاجة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام جهاز الاحتباس الحراري، مثل وسادة التدفئة أو مصباح الاحتباس الحراري، لمنع انخفاض حرارة الجسم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قبل الإستعداد البطن، وتأمين الفأر مع شرائح من الشريط وضعت فوق وتحت البطن لمنع الماوس من التحول أثناء الجراحة. تطهير البطن مع betadine، ثم اتبع مع 70٪ من الإيثانول. تشمل أكبر قدر من مساحة ممكنة في الإعدادية، بما في ذلك الشعر على حواف منطقة حلق. وضع الستارة العقيمة على الماوس. (الشكل 1) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحت الجلد حقن 0.1 ملغم / كغم البوبرينورفين، أو 3 ميكروغرام لمدة 30 ز الماوس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل شق الجلد. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بدءا من خط الوسط أسفل البطن، فهم الجلد بالملقط واجراء خفض الضحلة العمودي في الجلد باستخدام مقص حاد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حمل قطع متفوق إلى سيفي الشكل مع مقص. احرص على إدخال فقط الجلد. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كما أن عضلات البطن هي نآه مرئية تغطي الأحشاء، فهم خط الوسط من العضلات مع ملقط وبعناية فائقة وجعل قطع صغير في ذلك باستخدام مقص حاد. تأكد من عدم قطع طريق الخطأ في جهاز البطن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد دخول الفضاء البريتوني مع قطع صغيرة ورؤية الطبقة العضلية سحب بعيدا عن أعضاء البطن، وتمديد خفض متفوق ودون المستوى عن طريق إدراج مقص في افتتاح وقطع بعناية في كلا الاتجاهين. تمديد شق من سيفي الشكل متفوق إلى فوق المثانة دون المستوى. (الشكل 2) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الآن التي تتعرض الأمعاء، حدد موقع الأعور والداخل للظاهر برفق. تجنب استيعاب الأعور مع ملقط مسنن أو حادة. بدلا من ذلك استخدام ملقط ارضحي مثل أدسون ملقط مسنن. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كشط الأعور مع الصنفرة. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كشط بلطف على كامل سطح جانبي الأعور مع 100 الصنفرة حصى ل30 - 60 ثانية حتى يصبح السطح أقل لامعة ونمشات appear على السطح. إذا كان الجراح هو اليد اليمنى، فإنه يساعد على توجيه الأعور مع طرف تواجه للحق وثنى الأعور على السبابة اليسرى الجراح. (الشكل 3) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أداء الرملي بلطف، لأنه من السهل أن تسبب بطريق الخطأ ثقب في جدار الأعور رقيقة. يجب أن يرى وهناك كمية صغيرة من رمل كما يتم نقل الصنفرة على طول سطح الأعور. إذا شعرت الصنفرة مرارا وتكرارا على التقاط الأعور، وهذا من المرجح أن يؤدي إلى تمزق في جدار الأعور. مشاهدة بعناية للتأكد من أن جزيئات من ورق زجاج لا طرد ويبقى في البطن، لأن هذا قد يسبب الإفراط في رد فعل جسم غريب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في حالة حدوث تمزق في جدار الأعور، إنهاء إجراءات والموت ببطء الحيوان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إذا تم المنفصمة والأوعية الدموية الأعور بواسطة الصنفرة ويسبب النزيف، واجراء الضغط لمدة تصل إلى دقيقتين مع الشاش. ومع ذلك، إذا استمر النزيف بعد هذا الوقت، ضع الرقم ثمانية و7-0 حيدة الخيط حولدرجة النزيف. هذا سيوقف موثوق النزيف في جميع الحالات تقريبا. الحرص على عدم إدراج كمية كبيرة من جدار الأعور إلى خياطة، لأن ذلك المخاطر تسبب نخر من جانب المعنيين من الجدار. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تجرح جدار البطن الصحيح. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام شريط من ورق زجاج لكشط سطح البريتوني لعضلات جدار البطن الصحيح. أن تكون أكثر عدوانية مع الرملي هنا من التركيز على الأعور وتستمر حتى كامل سطح جدار البطن الصحيح يبدو بخشونة. تجنب الرملي من الصعب جدا أن الجلد هو واضح من خلال الفتحات الموجودة في الطبقة العضلية. (الشكل 4) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام برنامج تشغيل إبرة كاسترو فيجو، تضع بين اثنين وأربعة الرقم ثمانية و4-0 غرز الحرير في الطبقة العضلية لجدار البطن الصحيح. ترك ذيول حوالي 5 ملم طويلة. الحرص على عدم قبض بطريق الخطأ جدار الأمعاء في خياطة الجروح. (الشكل 5) </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام حقنة 10 مل شغل ثاستعد إيث المالحة، لري الأمعاء عدة مرات. توجيه تيار من المياه المالحة في تجويف البطن للري الداخل أيضا. إذا كان السطح تحت الماوس يصبح غارقة، حرك الماوس فوق أو استبدال السطح، من أجل تجنب انخفاض حرارة الجسم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام شاش معقم وضعت على الجرح لامتصاص الري الزائد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خذ قليل من النشا ويرشه على سطح جدار البطن اليمنى على كلا الجانبين من الأعور. (الشكل 6) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تأكد من عدم وجود نزيف نشط. إذا كان هناك استخدام اسفنجة الشاش لممارسة الضغط مباشرة على درجة النزيف حتى يتوقف. إذا لم يتوقف النزيف بسهولة، ضع خياطة مرقئ كما هو موضح أعلاه. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام نهاية حادة من الملقط وإصبع، ودفع بلطف الأمعاء مرة أخرى إلى تجويف البطن. ضع الأعور بجانب الغرز في جدار البطن الصحيح من أجل تحقيق أقصى قدر من تشكيل الالتصاق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Cتفقد شق البطن. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام 6-0 امتصاص خياطة مضفر، وضع غرزة الوقوع في الطبقة العضلية في الجزء العلوي من شق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تشغيل خياطة أسفل باتجاه الجزء السفلي من شق، والجمع بين طبقة العضلات. السفر حوالي 3 ملم ويستغرق 3 لدغات ملم مع كل غرزة جديدة. الحرص على عدم اتخاذ قصد لدغة من الأمعاء في حين وضع الغرز. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في الجزء السفلي من شق، وترك حلقة من الخيط من لدغة السابقة، واستخدام هذا لأداة ربط الخيط. قطع الخيط وترك 5 ملم ذيول. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كرر الخطوات الثلاث المذكورة أعلاه مع 6-0 النايلون حيدة خياطة لإغلاق الجلد. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدارة 20 مل / كغ تحت الجلد المالحة بلعة (حوالي 0.5 مل لمدة 30 ز الماوس). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام شاش جافة، يجف تماما الحيوان كله، والفراء ظهري يميل إلى الحصول على الرطب أثناء الري. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فضفاضة التفاف لاصقة خلع الملابس حول البطن لتغطية الجرح. الحرص على عدم تقييد لالساقين نيمال أو الميكانيكا التنفس مع الملابس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ترصد بدقة الحيوان لأنه يتعافى من التخدير. إدارة البوبرينورفين كل 12 ساعة لمدة 2-3 أيام بعد العملية للسيطرة على الألم. </li></ol> 2. حصاد التصاق الأنسجة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الانتظار مدة لا تقل عن سبعة أيام بعد الجراحة الأولية. مرة أخرى، الأوتوكلاف الأدوات الجراحية وتخدير الماوس مع isoflurane. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تعقيم البطن مع betadine تليها الايثانول 70٪. حلاقة ويزيل الشعر الشعر إضافية من الجانب الأيمن من البطن بحيث لن تكون مشمولة في عينة التصاق يحتوي الجلد في الشعر، مما يجعل الأنسجة أكثر صعوبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام شق ناصف اليسار، منذ الأمعاء غالبا ما تمسك شق الأصلي. بدءا من النهاية السفلية من البطن، حوالي 5 ملم إلى اليسار من أسفل شق الأصلي، فهم الجلد بالملقط مسننة الصغيرة وقطع في الجلد مع مقص حاد. تمديد هذا خفض متفوقةلاي إلى القفص الصدري. (الشكل 7) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام مقص، وقطع في الطبقة العضلية وبعد دخول الفضاء البريتوني، تمديد خفض إلى أعلى وأسفل من شق. سيكون هناك أنسجة لاصقة تسبب الأعور والأمعاء الدقيقة على التمسك جدار الأيمن من البطن، وربما أيضا إلى شق الأصلي. (الشكل 8) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام مقص والبدء على حافة الجرح، فوق مستوى الأعور، البدء في قطع في جدار البطن في دائرة حول المنطقة حيث الأمعاء هو ملتصقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بالتناوب فوق وتحت مستوى الأعور، وقطع تدريجيا على طول الطريق نحو الالتصاق وإكمال الدائرة، العائد في &quot;الجزيرة&quot; من الجلد والبطن ملتصقة الجدار إلى الأمعاء. (الشكل 9) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مرة أخرى باستخدام مقص، وقطع في الأمعاء وفصل جزء ملتصقة عن بقية الأمعاء، مما أسفر عن شطيرة من الأنسجة التي تتكون من الجلد وجدار البطنعلى جانب واحد، الأمعاء على الجانب الآخر، والأنسجة لاصقة يربط بين اثنين من بينهما. (الشكل 10) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> اختياريا، واستخدام مقص وأشار إلى فصل حاد في الجلد من العضلات جدار البطن. لالأنسجة النظر في ترك الجلد المرفقة، ولكن للهضم وزنزانة انفرادية الجلد يمكن إزالتها. إذا كان سيتم استخدام الأنسجة لالأنسجة، تأكد من إزالة أكبر قدر ممكن من المواد خياطة ممكن من دون إزعاج بشكل مفرط واجهة لاصقة. للهضم والعزلة خلية من المقبول ترك الغرز في مكان طالما أن الأنسجة التي تمت تصفيتها هضم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد استئصال الأنسجة التصاق، الموت ببطء الماوس باستخدام طريقة إنسانية افقت لجنة استخدام الحيوان المؤسسية الخاص بك. </li></ol>

<ol>
	<li>Ellis, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adhesion-related+hospital+readmissions+after+abdominal+and+pelvic+surgery:+a+retrospective+cohort+study.">Adhesion-related hospital readmissions after abdominal and pelvic surgery: a retrospective cohort study.</a> Lancet. 353 (9163), 1476-1480 (1999).</li><li>Brochhausen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+strategies+and+future+perspectives+for+intraperitoneal+adhesion+prevention.">Current strategies and future perspectives for intraperitoneal adhesion prevention.</a> J Gastrointest Surg. 16 (6), 1256-1274 (2012).</li><li>diZerega, G. S., Campeau, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peritoneal+repair+and+post-surgical+adhesion+formation.">Peritoneal repair and post-surgical adhesion formation.</a> Hum Reprod Update. 7 (6), 547-555 (2001).</li><li>Hellebrekers, B. W., Kooistra, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathogenesis+of+postoperative+adhesion+formation.">Pathogenesis of postoperative adhesion formation.</a> Br J Surg. 98 (11), 1503-1516 (2011).</li><li>Herrick, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+peritoneal+adhesions+are+highly+cellular,+innervated,+and+vascularized.">Human peritoneal adhesions are highly cellular, innervated, and vascularized.</a> J Pathol. 192 (1), 67-72 (2000).</li><li>Beyene, R. T., Kavalukas, S. L., Barbul, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intra-abdominal+adhesions:+Anatomy,+physiology,+pathophysiology,+and+treatment.">Intra-abdominal adhesions: Anatomy, physiology, pathophysiology, and treatment.</a> Curr Probl Surg. 52 (7), 271-319 (2015).</li><li>ten Broek, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Benefits+and+harms+of+adhesion+barriers+for+abdominal+surgery:+a+systematic+review+and+meta-analysis.">Benefits and harms of adhesion barriers for abdominal surgery: a systematic review and meta-analysis.</a> Lancet. 383 (9911), 48-59 (2014).</li><li>Becker, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+postoperative+abdominal+adhesions+by+a+sodium+hyaluronate-based+bioresorbable+membrane:+a+prospective,+randomized,+double-blind+multicenter+study.">Prevention of postoperative abdominal adhesions by a sodium hyaluronate-based bioresorbable membrane: a prospective, randomized, double-blind multicenter study.</a> J Am Coll Surg. 183 (4), 297-306 (1996).</li><li>Cassidy, M. R., Sherburne, A. C., Heydrick, S. J., Stucchi, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combined+intraoperative+administration+of+a+histone+deacetylase+inhibitor+and+a+neurokinin-1+receptor+antagonist+synergistically+reduces+intra-abdominal+adhesion+formation+in+a+rat+model.">Combined intraoperative administration of a histone deacetylase inhibitor and a neurokinin-1 receptor antagonist synergistically reduces intra-abdominal adhesion formation in a rat model.</a> Surgery. 157 (3), 581-589 (2015).</li><li>Thaler, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coincidence+of+connective+tissue+growth+factor+expression+with+fibrosis+and+angiogenesis+in+postoperative+peritoneal+adhesion+formation.">Coincidence of connective tissue growth factor expression with fibrosis and angiogenesis in postoperative peritoneal adhesion formation.</a> Eur Surg Res. 37 (4), 235-241 (2005).</li><li>Hong, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+macrophage-dependent+peroxisome+proliferator-activated+receptor+gamma+signalling+on+adhesion+formation+after+abdominal+surgery+in+an+experimental+model.">Effects of macrophage-dependent peroxisome proliferator-activated receptor gamma signalling on adhesion formation after abdominal surgery in an experimental model.</a> Br J Surg. 102 (12), 1506-1516 (2015).</li><li>Whang, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+search+of+the+best+peritoneal+adhesion+model:+comparison+of+different+techniques+in+a+rat+model.">In search of the best peritoneal adhesion model: comparison of different techniques in a rat model.</a> J Surg Res. 167 (2), 245-250 (2011).</li><li>Buckenmaier, C. C., Pusateri, A. E., Harris, R. A., Hetz, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+antiadhesive+treatments+using+an+objective+rat+model.">Comparison of antiadhesive treatments using an objective rat model.</a> Am Surg. 65 (3), 274-282 (1999).</li><li>Rajab, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+model+for+the+induction+of+experimental+adhesions.">An improved model for the induction of experimental adhesions.</a> J Invest Surg. 23 (1), 35-39 (2010).</li></ol>

الكتاب تعلن أنه ليس لديهم مصالح مالية المتنافسة.

الخطوات الحاسمة في هذا الإجراء هي: الكشط بدقة الأعور دون التسبب في ثقب، وضع خيوط في جدار البطن، وتطبيق كمية مناسبة من النشا. تنطبق إلا الصنفرة لالأعور، أو لجزء معين صغير من الأمعاء. استخدام واسع من الصنفرة على كميات كبيرة من الأمعاء الدقيقة يميل إلى أن يسبب الشلل اللف...

التصاقات في البطن هي شكل من أشكال ندبا التي تشكل في البطن ردا على الالتهابات، عادة بعد الجراحة أو العدوى داخل البطن. الالتصاقات هي سبب رئيسي من آلام في البطن المزمن والعقم، وهي السبب الأكثر شيوعا لانسداد الأمعاء الدقيقة 1. وجود التصاقات يجعل تنفيذ عملية في البطن الثانية أكثر صعوبة ويزيد من احتمال حدوث مضاعفات 2. وعلى الرغم من سنوات من البحث، والآليات الكامنة وراء تشكيل الالتصاقات لا تزال غير مفهومة. ومن المعروف أن إصابة الأولية لسطح البريتوني يؤدي إلى نضح السوائل الليفين الغني، الذي ثم تشكل الجلطة التي تربط أسطح الأمعاء وجدار البطن معا 3. وفي وقت لاحق، الخلايا الليفية والخلايا الأخرى تهاجر في الفضاء لاصقة وتفرز النسيج الضام 4. وعلى مدى أشهر إلى سنوات التصاق ينضج من خلال تطوير الأوعية الدموية والأعصاب <suع&gt; 5. وتوجد العديد من المنتجات التجارية التي تم تصميمها للحد من تشكيل الالتصاقات بعد عملية جراحية في البطن (على سبيل المثال، Seprafilm). جميع هذه المنتجات تعمل كحواجز الميكانيكية ووقف تشكيل التصاق عن طريق منع الاتصال الجسدي بين حلقات من الأمعاء وجدار البطن 6،7. رغم وجود أدلة من المحاكمة للرقابة التي حاجزا التصاق الجراحية يقلل من تشكيل الالتصاقات 8، العديد من الجراحين الروايات المتناقلة قد أصيب بخيبة أمل مع فعالية المنتجات حاجز الميكانيكية. حاليا لا توجد علاجات مضادة للالتصاق القائم على المخدرات، وهو ما يعكس حقيقة أن العمليات الدقيقة التي تدخل في تشكيل التصاق وغير مفهومة. تطوير العلاج الذي يستهدف على وجه التحديد وكلاء الخلوية أو الجزيئية تشارك في تشكيل الالتصاقات سوف تحتاج إلى فهم أفضل للأحداث التي تشارك في تشكيل الالتصاق. عدة مجموعةحددت الصورة المسارات الجزيئية التي قد تكون مهمة لتكوين الالتصاق 9-11. توفر النماذج الحيوانية بيئة رائعة لدراسة تشكيل الالتصاقات. وقد نشرت العديد من الدراسات التي تصف خلق الجراحي من التصاق في العديد من الحيوانات، ولا سيما في الجرذان والفئران 6،12-14. نظرا تجربتنا مع دراسة تليف في الماوس وتوافر واسعة من الفئران المعدلة وراثيا والأجسام المضادة القائمة على الماوس، اخترنا الماوس كما نموذجنا لدراسة التصاقات. هنا، نحن تقرير تقنية أننا قد وضعت لإنشاء بتكاثر وموثوق التصاقات في البطن في الماوس.

<table><tbody><tr><td>Fisherbrand Absorbent Underpads, 20&quot; x 24&quot;</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-206-62</td><td></td></tr><tr><td>Polylined Sterile Field, 18&quot; x 24&quot;</td><td>Busse Hospital Disposables</td><td>696</td><td>Cut a rectangular hole of the appropriate size</td></tr><tr><td>Isothesia isoflurane</td><td>Henry Schein&amp;nbsp;</td><td>050033</td><td></td></tr><tr><td>Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4&quot; x 4&quot;</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-415-469</td><td></td></tr><tr><td>Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube</td><td>Dechra Veterinary Products</td><td>NDC 17033-211-38</td><td></td></tr><tr><td>Nair depilatory cream</td><td>Church &amp;amp; Dwight Co.</td><td>22339-05</td><td></td></tr><tr><td>Buprenex buprenorphine&amp;nbsp; 0.3 mg/ml</td><td>Reckitt Benckiser Pharmaceuticals Inc.</td><td>NDC 12496-0757-5</td><td></td></tr><tr><td>1 cc insulin syringe, 27&amp;nbsp;G</td><td>Becton Dickinson</td><td>329412</td><td></td></tr><tr><td>Povidone Iodine Prep Solution</td><td>Medline</td><td>MDS093944H</td><td></td></tr><tr><td>Webcol alcohol prep swabs</td><td>Covidien</td><td>6818</td><td></td></tr><tr><td>General-Purpose Labarotory Labeling tape</td><td>VWR</td><td>89097-912</td><td></td></tr><tr><td>BioGel PI surgical gloves</td><td>M&amp;ouml;lnlycke Health Care</td><td>ALA42675Z</td><td></td></tr><tr><td>Micro Forceps with teeth</td><td>Roboz</td><td>RS-5150</td><td></td></tr><tr><td>Fine scissors- sharp</td><td>Fine Science Tools</td><td>14060-09</td><td></td></tr><tr><td>Straight serrated forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>Castro-Viejo needle driver</td><td>Fine Science Tools</td><td>12565-14</td><td></td></tr><tr><td>100 grit 1/4 sheet sandpaper</td><td>ACE Hardware</td><td>1010446</td><td>Cut into strips</td></tr><tr><td>4-0 silk suture, 30&quot;, SH needle</td><td>Ethicon</td><td>K831</td><td></td></tr><tr><td>7-0 PDS II absorbable monofilament suture, 30&quot;, BV-1 needle</td><td>Ethicon</td><td>Z135</td><td>Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures.</td></tr><tr><td>Rice starch</td><td>MP Biomedicals</td><td>102955</td><td></td></tr><tr><td>0.9% Sodium Chloride Irrigation</td><td>Baxter</td><td>BHL2F7121</td><td>Warm to 37 &amp;deg;C prior to use</td></tr><tr><td>10 ml syringe</td><td>Becton Dickinson</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Vicryl absorbable braided suture, 18&quot;, RB-1 taper needle</td><td>Ethicon</td><td>J212H</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Ethilon nylon monofilament&amp;nbsp; suture, 18&quot;, P-3 needle,&amp;nbsp;</td><td>Ethicon</td><td>1698G</td><td></td></tr><tr><td>Tegaderm Transparent Film Dressing Frame Style, 6 cm x 7 cm</td><td>3M</td><td>1624W</td><td>Cut in half lengthwise</td></tr></tbody></table>

creation of abdominal adhesions in mice

Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or intraabdominal infection. The precise mechanisms underlying adhesion formation are poorly understood. Many compounds and physical barriers have been tested for their ability to prevent adhesions after surgery with varying levels of success. The mouse and rat are important models for the study of abdominal adhesions. Several different techniques for the creation of adhesions in the mouse and rat exist in the literature. Here we describe a protocol utilizing abrasion of the cecum with sandpaper and sutures placed in the right abdominal sidewall. The mouse is anesthetized and the abdomen is prepped. A midline laparotomy is created and the cecum is identified. Sandpaper is used to gently abrade the surface of the cecum. Next, several figure-of-eight sutures are placed into the peritoneum of the right abdominal sidewall. The abdominal cavity is irrigated, a small amount of starch is applied, and the incision is closed. We have found that this technique produces the most consistent adhesions with the lowest mortality rate.

<html> في سبعة أيام بعد الجراحة، والأعور وربما القولون الصاعد، والكبد، وحلقات من الأمعاء الدقيقة ينبغي أن تكون ملتصقة إلى اليمين من جانب وجدار البطن. (الشكل 8) الأنسجة رفعه يمكن أن تكون جزءا لا يتجزأ ومقطوع وسوف تسفر عن الشرائح النسيجية ممتازة....

Watch this Scientific Journal Video about Creation of Abdominal Adhesions in Mice at JoVE.com

Creation of Abdominal Adhesions in Mice

Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.

إنشاء البطن التصاقات في الفئران

Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or ...

Research

JoVE Journal

Medicine

12.6K Views.  Stanford University School of Medicine. Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.

Video: Creation of Abdominal Adhesions in Mice

Creation of Murine Experimental Abdominal Aortic Aneurysms with Elastase 

Transient intraluminal infusion of porcine pancreatic elastase into the infrarenal segment of the abdominal aorta is the most widely used animal model of abdominal aortic aneurysm (AAA) ever since it was first described in rats by Anidjar and colleagues.1 The rationale for its development was based on the disrupted nature of elastin observed in AAAs. This rat model has been modified to produce AAAs in the infrarenal aortic region of mice.2 The model has the ability to add broad insight into the pathobiology of AAA due to the emergence of numerous transgenic and gene knockout mice. Moreover, it is a viable platform to test potential therapeutic agents for AAA. In this video, we demonstrate the elastase infusion AAA procedure used in our laboratory. 
Mice are anesthetized using 2.5% isoflurane, and a laparotomy is performed under sterile conditions. The abdominal aortais isolated with the assistance of an operating stereomicroscope (Leica). After placing temporary ligatures around the proximal and distal aorta, an aortotomy is created at the bifurcation with the tip of a 30-gauge needle. A heat-tapered segment of PE-10 polyethylene tubing is introduced through the aortotomy and secured. The aortic lumen is subsequently perfused for 5-15 minutes at 100 mm Hg with saline containing type I porcine pancreatic elastase (4.5 U/mL; Sigma Chemical Co.). After removing the perfusion catheter, the aortotomy is repaired without constriction of the lumen.

Creation of Murine Experimental Abdominal Aortic Aneurysms with Elastase

This video shows how to induce abdominal aortic aneurysms (AAA) in mice via transient intraluminal infusion of porcine pancreatic elastase into the infrarenal segment of the abdominal aorta. The model has the ability to add broad insight into the pathobiology of AAA due to the emergence of numerous transgenic and gene knockout mice.

خلق الفئران التجريبية تمدد الأوعية الدموية الأبهري البطني مع إيلاستاز

Transient intraluminal infusion of porcine pancreatic elastase into the infrarenal segment of the abdominal aorta is the most widely used animal model of ...

Biology

Bile Duct Ligation in Mice: Induction of Inflammatory Liver Injury and Fibrosis by Obstructive Cholestasis

In most vertebrates, the liver produces bile that is necessary to emulsify absorbed fats and enable the digestion of lipids in the small intestine as well as to excrete bilirubin and other metabolic products. In the liver, the experimental obstruction of the extrahepatic biliary system initiates a complex cascade of pathological events that leads to cholestasis and inflammation resulting in a strong fibrotic reaction originating from the periportal fields. Therefore, surgical ligation of the common bile duct has become the most commonly used model to induce obstructive cholestatic injury in rodents and to study the molecular and cellular events that underlie these pathophysiological mechanisms induced by inappropriate bile flow. In recent years, different surgical techniques have been described that either allow reconnection or reanastomosis after bile duct ligation (BDL), e.g., partial BDL, or other microsurgical methods for specific research questions. However, the most frequently used model is the complete obstruction of the common bile duct that induces a strong fibrotic response after 21 to 28 days. The mortality rate can be high due to infectious complications or technical inaccuracies. Here we provide a detailed surgical procedure for the BDL model in mice that induce a highly reproducible fibrotic response in accordance to the 3R rule for animal welfare postulated by Russel and Burch in 1959.

Disruption of bile flow results in severe inflammatory cholestatic liver injury with a characteristic time-dependent sequence of morphological alterations. Here we present a protocol for the surgical ligation of the common bile duct in mice that allows to induce a strong fibrotic response after 21 to 28 days.

القناة الصفراوية ربط في الفئران: تحريض التهاب الكبد والتليف الإصابات التي كتبها الانسدادي ركود صفراوي

In most vertebrates, the liver produces bile that is necessary to emulsify absorbed fats and enable the digestion of lipids in the small intestine as well ...

Balloon-based Injury to Induce Myointimal Hyperplasia in the Mouse Abdominal Aorta

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine balloon denudation model, which is comparable with established vessel injury models in large animals. The aorta denudation model with balloon catheters mimics the clinical setting and leads to comparable pathobiological and physiological changes. Briefly, after performing a horizontal incision in the aorta abdominalis, a balloon catheter will be inserted into the vessel, inflated, and introduced retrogradely. Inflation of the balloon will lead to intima injury and overdistension of the vessel. After removing the catheter, the aortic incision will be closed with single stiches. The model shown in this article is reproducible, easy to perform, and can be established quickly and reliably. It is especially suitable for evaluating expensive experimental therapeutic agents, which can be applied in an economical fashion. By using different knockout-mouse strains, the impact of different genes on MH development can be assessed.

This article demonstrates a murine model to study the development of myointimal hyperplasia (MH) after aortic balloon injury.

إصابة القائم على البالون لحمل ميوينتيمال تضخم في الشريان الاورطي البطني الماوس

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine ...

Creation of Colonic Anastomosis in Mice

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of colonic surgeries and can occur in up to 26% of surgical anastomoses, with mortality being up to 39% for patients with such a leak. Currently, there remains a paucity of data detailing the cellular mechanisms of anastomotic healing. Devising preventative strategies and treatment modalities for anastomotic leak could be greatly potentiated by a better understanding of appropriate anastomotic healing.
A murine model is ideal as previous studies have shown that the murine anastomosis is the most clinically similar to the human case as compared with other animal models. We offer an easily reproducible murine model of colonic anastomosis in mice that will allow for further illustration of anastomotic healing.

Anastomotic leak or breakdown after surgery is a major cause of postoperative morbidity and mortality. Our surgery for creating a colonic anastomosis is a reliable and reproducible method for studying the healing mechanisms of anastomoses.

إنشاء ملامسة Colonic في الفئران

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of ...

Murine Appendectomy Model of Chronic Colitis Associated Colorectal Cancer by Precise Localization of Caecal Patch

The human appendix has been recently implicated to play important biological roles in the pathogenesis of various complex diseases, such as colorectal cancer, inflammatory bowel disease, and Parkinson&#8217;s disease. To study the function of the appendix, a gut disease-associated murine appendectomy model has been established and its step-by-step protocol is described here. This report introduces a facile protocol for caecal patch removal in mice followed by the chemical induction of chronic colitis-associated colorectal cancer using a combination of dextran sulfate sodium (DSS) and azoxymethane (AOM). IgA specific cells and IgA concentration were significantly reduced upon removal of the caecal patch in male C57BL/6 mice&#160;compared to those in the sham group. Simultaneously administering 2% DSS and AOM resulted in nearly 80% mice survival in both sham and appendectomy groups without significant body weight loss. Histological results confirmed colonic inflammation and different degrees of adenocarcinoma. This model can be used for the study of the functional role of the appendix in maintaining gut microbiota homeostasis and pathogenesis of gut colitis and malignancies, as well as for the potential development of drug targeting therapies.

The presented protocol describes a facile surgical removal of the appendix (caecal patch) in a mouse followed by the induction of inflammatory bowel disease-associated colorectal cancer. This murine appendectomy model enables investigation of the biological role of the appendix in the pathogenesis of human gastrointestinal disease.

نموذج استئصال الزائدة الدودية Murine من التهاب القولون المزمن المرتبطة سرطان القولون والمستقيم عن طريق توطين دقيق من التصحيح Caecal

The human appendix has been recently implicated to play important biological roles in the pathogenesis of various complex diseases, such as colorectal ...

Establishing In Situ Closed Circuit Perfusion of Lower Abdominal Organs and Hind Limbs in Mice

Ex vivo perfusion is an important physiological tool to study the function of isolated organs (e.g. liver, kidneys). At the same time, due to the small size of mouse organs, ex vivo perfusion of bone, bladder, skin, prostate, and reproductive organs is challenging or not feasible. Here, we report for the first time an in situ lower body perfusion circuit in mice that includes the above tissues, but bypasses the main clearance organs (kidney, liver, and spleen). The circuit is established by cannulating the abdominal aorta and inferior vena cava above the iliac artery and vein and cauterizing peripheral blood vessels. Perfusion is performed via a peristaltic pump with perfusate flow maintained for up to 2 h. In situ staining with fluorescent lectin and Hoechst solution confirmed that the microvasculature was successfully perfused. This mouse model can be a very useful tool for studying pathological processes as well as mechanisms of drug delivery, migration/metastasis of circulating tumor cells into/from the tumor, and interactions of immune system with perfused organs and tissues.

A protocol is described for in situ perfusion of the mouse lower body, including the bladder, the prostate, sex organs, bone, muscle and foot skin.

إنشاء الدائرة المغلقة في الموقع perfusion من أعضاء البطن السفلي وأطراف هند في الفئران

Ex vivo perfusion is an important physiological tool to study the function of isolated organs (e.g. liver, kidneys). At the same time, due to the small ...

<meta charset="utf8"></head><body>نموذج الفئران لدراسة العلوص بعد الجراحة من خلال التلاعب المعوي

Postoperative Ileus Murine Model

Most patients experience postoperative ileus (POI) after surgery, which is associated with increased morbidity, mortality, and hospitalization time. POI is a consequence of mechanical damage during surgery, resulting in disruption of motility in the gastrointestinal tract. The mechanisms of POI are related to aberrant neuronal sensitivity, impaired epithelial barrier function, and increased local inflammation. However, the details remain enigmatic. Therefore, experimental murine models are crucial for elucidating the pathophysiology and mechanism of POI injury and for the development of novel therapies.
Here, we introduce a murine model of POI generated via intestinal manipulation (IM) that is similar to clinical surgery; this is achieved by mechanical damage to the small intestine by massaging the abdomen 1-3 times with a cotton swab. IM delayed gastrointestinal transit 24 h after surgery, as assessed by FITC-dextran gavage and fluorescence detection of the segmental digestive tract. Moreover, tissue swelling of the submucosa and immune cell infiltration were investigated by hematoxylin and eosin staining and flow cytometry. Proper pressure of the IM and a hyperemic effect on the intestine are critical for the procedure. This murine model of POI can be utilized to study the mechanisms of intestinal damage and recovery after abdominal surgery.

<meta charset="utf8"></head><body>نموذج العنقوص بعد الجراحة

We describe a murine model of postoperative ileus generated via intestinal manipulation. Gastrointestinal transit function, pathologic changes, and immune cell activation were assessed 24 h after surgery.

نموذج العنقوص بعد الجراحة

Most patients experience postoperative ileus (POI) after surgery, which is associated with increased morbidity, mortality, and hospitalization time. POI ...

Immunology and Infection

Partial Bile Duct Ligation in the Mouse: A Controlled Model of Localized Obstructive Cholestasis

In rodents, complete bile duct ligation (cBDL) of the common bile duct is an established surgical technique for studying obstructive cholestasis and bile duct proliferation. However, long-term experiments can lead to increased morbidity and mortality. In select mouse strains with underlying liver disease, meaningful comparisons can be made even with ligation of a single lobe of the liver, which can reduce animal losses and expenses. Here, we describe partial bile duct ligation (pBDL) in the mouse, in which only the left hepatic bile duct is ligated, causing biliary obstruction in the left lobe but not the remaining lobes. With careful microsurgical technique, pBDL experiments can be cost-effective, since the unligated lobe serves as an internal control to the ligated lobes, when subjected to the same conditions in the same animal. Unlike cBDL, a separate sham-operated control group is not necessary. pBDL is highly useful to directly compare localized versus systemic effects of cholestasis and other retained bile components. pBDL can also be repurposed as a novel method to investigate mechanisms related to medications and cell migration.

Here, we present partial bile duct ligation as a surgical model of liver injury and regeneration in rodents.

ربط القناة الصفراوية الجزئي في الماوس: نموذج الخاضعة لركود صفراوي معرقلة مترجمة

In rodents, complete bile duct ligation (cBDL) of the common bile duct is an established surgical technique for studying obstructive cholestasis and bile ...

إنشاء البطن التصاقات في الفئران

Summary

Explore More Videos

خلق الفئران التجريبية تمدد الأوعية الدموية الأبهري البطني مع إيلاستاز

القناة الصفراوية ربط في الفئران: تحريض التهاب الكبد والتليف الإصابات التي كتبها الانسدادي ركود صفراوي

إصابة القائم على البالون لحمل ميوينتيمال تضخم في الشريان الاورطي البطني الماوس

إنشاء ملامسة Colonic في الفئران

نموذج استئصال الزائدة الدودية Murine من التهاب القولون المزمن المرتبطة سرطان القولون والمستقيم عن طريق توطين دقيق من التصحيح Caecal

إنشاء الدائرة المغلقة في الموقع perfusion من أعضاء البطن السفلي وأطراف هند في الفئران

نموذج العنقوص بعد الجراحة

نموذج العنقوص بعد الجراحة

نموذج العنقوص بعد الجراحة

ربط القناة الصفراوية الجزئي في الماوس: نموذج الخاضعة لركود صفراوي معرقلة مترجمة