Funding for this project was provided by the National Health and Medical Research Council (NHMRC) 1046203 (BVB, AJV) and Melbourne Neuroscience Institute Fellowship (CTN).

Tüm deney prosedürleri Avustralya&#39;da Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi tarafından belirlenen Bakım ve Bilimsel Amaçlarla Hayvanların Kullanım Uygulama Avustralya Kanunu göre yapılmıştır. Etik boşluk Melbourne Üniversitesi, Fen Fakültesi, Hayvan Etik Komitesi (Onay numarası 0.911.322,1) elde edilmiştir. Kronik VEP Elektrotların 1. Ön-implantasyon Not: eşzamanlı ERG ve VEP sinyallerinin ameliyatla VEP implante edilmesi gereken hayvanların en az 1 hafta koleksiyonu sinyal önce elektrotlar toplanacak edin. <ol><li> klorheksidin (% 70 etanol içinde% 0.5) ile temizlenerek önce deney cerrahi tezgah sterilize edin. Kullanmadan önce tüm cerrahi ekipman Otoklav. steril bir cerrahi örtü ile hayvan örtün. Tüm Deneyciler cerrahi maske, önlük ve sterilize eldiven giymek emin olun. </li><li> 3 L / dakikalık bir akış oranında O2 ile% 3.5 izofluran - 3 anestezi neden. ane korumakameliyat boyunca% 1.5 ve 2 L / dakika sthesia. pençe tutam refleksinin yokluğu ile anestezi yeterli derinlik sağlamak. </li><li> gözlerin kurumasını önlemek için kornea% 1 karboksimetilselüloz sodyum uygulanır. </li><li> Gözleri, alnının üzerine posterior 30 mm x 30 mm alanı Tıraş ve kulaklara ön. </li><li> vücut ısısını korumak ve bir stereotaksik çerçeve ile hayvanların başını stabilize etmek için bir ısı yastığı (37 ˚C) hayvan koyun. </li><li> % 10 povidon-iyot üç kez traş bölgeyi dezenfekte edin. Uygulama Standardı ile uyumlu olmak, gözün yakın bölge için alkol bazlı antiseptik kullanmaktan kaçının Cerrahi Teknologları Derneği tarafından yola çıktı. </li><li> kranial kemik açığa çıkarmak için bir neşter ile ve dermal doku bu tüketim a ~ 20 mm çaplı daire gelen kafasına bir medyan sagital kesi olun. </li><li> kazıma ve koronal ve sagital kafatası sütür ortaya çıkarmak için gazlı bez ile kurutularak yatan periosta çıkarın. </li><li> Bize7 mm kaudal bregma, orta hatta 3 mm yanal: stereotaksik koordinatlar her iki hemisferde üzerinde kafatası yoluyla iki delik (0.7 mm çap, derinlik ~ 1 mm) Trepan, bir matkap bağlı bir diş çapak ing. </li><li> Paslanmaz çelik vida Vida (çap 0.7 mm, klorheksidin sterilize uzunluk 3 mm) yaklaşık 1 mm (maruz vidanın 2 mm) derinliğe kadar, iki önceden hazırlanmış deliklere sıkı demirleme izin vermek. Altta yatan kortikal doku zarar vermeden bu kişiler dura. </li><li> ~ 4 ve 8 saat 0 sütür - gazlı bez ile kranial kemik kurutma ve iki 3 gevşek cilt geri çekilerek diş amalgam cerrahi zemin hazırlayın. </li><li> yerine (adım 1.10 açıklanan paslanmaz çelik vidalar) vida elektrotlar güvenli maruz kafatası üzerinde diş amalgam yayıldı. ~ Vida 1,5 mm kayıt için maruz kalır emin olun. </li><li> Geri çekme dikişlerle çıkarın. </li><li> analjezi ve tuzlu su (sodyum klorür,% 0.9, 1, 0.5,% karprofen deri altından (5 mg / kg) enjektesıvı replasmanı için 0,5 ml) deri altından. </li><li> Hayvan ayrı kafeslerde kurtarmak için izin verin. sternal yatma korumak için yeterli bilinci yerine kadar sahipsiz hayvan bırakmayın. </li><li> tamamen cerrahi (en az 5 gün) kurtarıldı kadar diğer hayvanların şirkete hayvan iade etmeyin. </li><li> 4 gün için% 0.5, günde bir kez analjezi için karprofen deri altından (5 mg / kg) tatbik devam edin. </li><li> Kayıt ERG ve VEP cerrahisi sonrası 1 hafta. </li></ol> 2. ERG ve VEP Kayıt <ol><li> Veri toplama hazırlığı <ol><li> Aynı anda uyaran tetiklemek ve aşağıda tavsiye edilen ayarlara göre verileri 2 elde etmek için bilgisayar yazılımını kullanın. <ol><li> Sinyaller 3 yükseltmek (ERG: 1.000, VEP ×: x10,000) içten izole bir ön amplifikatör ve amplifikatör tarafından belirlenen kazanç ve empedans açısından eşleştirilmiş iki gözü. </li><li> Bir 650 üzerinde 4 kHz ERG için ayarlayın örnekleme oranımsn kayıt penceresi (2560 puan) Bunu yapmak için, &quot;500 ms&quot; Örnekler için &quot;2.560&quot; i seçin ve (isim ve Malzeme yazılım bkz Tablo sürümü için) veri toplama yazılımı &quot;zaman tabanı&quot; sekmesini tıklayın bir süre için 650 msn kayıt penceresi dönecektir hangi. <ol><li> 250 milisaniye çağ boyunca 10 kHz VEP için örnekleme oranını ayarlamak için aynı yöntemi kullanın. hem ERG ve VEP kayıtları için 10 msn öncesi uyaran taban çizgisini izin verin. Bunu yapmak için, &quot;Kur&quot; sekmesine tıklayın; Yeni bir diyalog penceresini açın &quot;Stimülatörü&quot; seçeneğini seçin; Bu pencerede &quot;Mode&quot; için açılır listeden &quot;darbe&quot; seçeneğini seçin; ve &quot;10 ms&quot; için &quot;gecikme&quot; için değerini ayarlayın. </li></ol></li><li> 1000 Hz (- - 3 dB) 0.3 filtreleme Set ERG bant geçiren. Bu veri toplama yazılımı &quot;Bio Amplifikatör&quot; tıklayarak yapılır. Sonra, &quot;0.3Hz&quot; &quot;Yüksek Pass&quot; değeri ve &quot;düşük geçiş&quot; için &quot;1 kHz için değerini ayarlayın&quot;. </li><li> 100 Hz - (- 3 dB) Vizyon (ISCEV) Klinik Elektrofizyoloji Uluslararası Derneği tarafından önerilen insan VEP kayıtları 6 2.1.1.3&#39;de yukarıda belirtilen yöntemi kullanarak, 0.1 ile VEP bant geçiren ayarlarını. </li></ol></li></ol></li><li> elektrot hazırlığı <ol><li> Sırasıyla 2, bir elektrot kurşun gümüş tel ya da bir timsah klibi takarak ERG aktif / pasif ve VEP aktif / pasif elektrotlar özel yapmak. Ticari olarak toprak elektrot edinin. </li><li> 4 ısmarlama elektrotlar için elektrot kurşun uzantısından erkek ucunu kesti. İç tel sağlayan bir neşter bıçak hasarlı olup dış politetrafluoroetilen yalıtım kaplama 1 cm kaldırın. </li><li> Ön moda sıçan göz kuşatmak için çapında bir döngü ~ 8 mm gümüş tel (0.3 mm kalınlığında) bir 70 mm uzunluk kesme ve şekillendirme ile ERG inaktif elektrotlar. 1 ml pipet ucu ile ilgili döngü şekillendirilmesiyle tek tip bir daire hazırlayın. </li><li&gt; gümüş 70 mm uzunluk kesme ve sıçan kesici üzerine kanca uzunluğu-bilge çapında bir elips ~ 8 mm oluşturarak Öncesi moda VEP inaktif elektrotlar. </li><li> Ön moda gümüş tel 30 mm uzunluk kesme ve yavaşça sıçan kornea temas için küçük bir döngü oluşturarak ERG aktif elektrotlar (~ çapı 1-2 mm) </li><li> Güvenli maruz iç tel ile gümüş entwining ile (2 2 ERG inaktif aktif ERG, 1 VEP inaktif) elektrot kurşun elektrotlar ekleyin. </li><li> fotovoltaik eserler azaltmak için maskeleme bandı ile aşırı maruz metal izole. </li><li> ERG inaktif elektrotlar kanca ve halka raptiye küçük bir parça sopa üzerinde (~ 20 mm x 5 mm) maskeleme bandı ile kemirgen boyun askısı kararlı eki sağlamaktır. </li><li> elektrodun iç teline timsah klibi takın VEP aktif elektrotlar yapmak açar. </li><li> Önceki kayıtları, gümüş tellerin açıkta kalan yüzeyleri (yani, inaktif halka ve acti electroplateSinyal iletimi geliştirmek için 20 saniye boyunca bir 9 V DC kaynağı kullanılarak klorür ile ucu) A.Ş.. <ol><li> Bunu yapmak için, normal tuzlu su içinde (birincil hücre anot olarak hareket eden) ERG elektrot teli gümüş ucu bırakın; 9 V pil pozitif terminaline bu elektrot teli diğer ucunu. </li><li> akünün eksi kutbuna başka kabloyu (katot) bağlayın, ve aynı zamanda tuzlu su içine diğer ucunu batırmayın. 20 saniye sonra çıkarın ve beyaz renkte eşit kaplanacak ERG elektrot teli şerit ucunu görüyoruz. Not: klorür kaplama açıklığını sağlamak için (~ kadar 8 saat kadar) Her bir deneysel oturumda için yeni ERG elektrotlar hazırlayın. </li></ol></li></ol></li><li> Hayvan hazırlanması <ol><li> Bir ışık geçirmez bir odaya önceki kayıtları hayvanları gecede (≥ 8 saat) Koyu adapte. , Oda ışıkları kapatarak tüm kapıları ve güneşlikler kapatarak maksimum karanlık adaptasyonu sağlamak. etrafında ışık geçirmez malzemeler koyarak ışık sızıntısını en aza indirmekkalın siyah perdeler dışında kapı / pencere ve yerleştirme bilgisayar ekranları kavşaklar. </li><li> Loş kırmızı ışık yayan diyot yardımıyla karanlık bir odada hayvan hazırlık yapmak (LED, 17.4 cd.m -2, λ max = 600 nm) çubuk hassasiyeti sürdürmek için. </li><li> kas içinden (5 mg / kg 60) ketamin / ksilazin enjeksiyonu ile sıçan anestezisi. Bir pençe tutam refleksinin yokluğu ile anestezi yeterli derinliği onaylayın. </li><li> , Sedasyon muhafaza gerektiğinde 50 dakika sonra anestezi bir başka doz (başlangıç ​​dozunun% 50) idare etmek. </li><li> Ek topikal anestezi için her göze% 0.5 Proxymetacaine bir damla uygulamak ve fazla sıvıyı kapalı yanıp söner. </li><li> öğrenci dilatasyon daha sonra, her bir göze% 0.5 tropikamid bir damla uygulamak aşırı sıvı kapalı kuru. </li></ol></li><li> ERG ve VEP elektrot konumlandırma <ol><li> Faraday kafesi bulunan Ganzfeld kase önünde ERG platformunda hayvan yerleştirin. bu c gibi bir elektrikli ısıtma yastığı kullanmaktan kaçınınBir elektrofizyolojik kayıtlar, elektrik gürültüsü tanıtmak. Not: Platform vücut ısısını korumak için bir devridaim ısıtılmış su platformuna eklenir. </li><li> ense etrafında sıkıca sıkı değil yerleştirilmiş kanca ve halka raptiye bir şerit ile platforma güvenli bir hayvan. </li><li> anestezi sıçan alt kesici etrafında inaktif VEP elektrot kanca. </li><li> Gözün ekvator çevresinde non-invaziv skleral halka çevreleyen ile ERG inaktif elektrotlar yerleştirin. ense civarında kanca ve halka raptiye şeridine elektrotlar takarak bu stabilize. kontralateral göz için tekrarlayın. </li><li> Sabitleyin VEP paslanmaz çelik vidalı kafatası önceden implante için timsah klipleri ekleyerek aktif elektrotlar. </li><li> Sinyal kalitesini artırmak için önce ERG aktif elektrodun yerleştirme kornea üzerinde% 1 karboksimetilselüloz sodyum küçük bir damla yerleştirin. Not: viskon sıvısı ayrıca mini deney boyunca kornea hidrasyon korumak yardımcı olurkemirgenler 7 kuruma tipi katarakt oluşumunu rımızı azamiye. </li><li> VEP inaktif elektrot teması artırmak için alt ön dişlerin% 1 karboksimetilselüloz sodyum küçük bir damla koyun ve böylece kaliteyi işaret etmektedir. </li><li> hafif özel bir dahili stereotaksik kol bağlı bir mikromanipülatör kullanarak santral kornea yüzeyine dokunmak ERG aktif elektrotlar yerleştirin. </li><li> subkutan kuyruk içine toprak iğne elektrot (paslanmaz çelik) 5 mm - 2 yerleştirin. </li><li> Gerekirse alt göz kapağında önceden sinyal kalitesini artırmak için kayıt için herhangi bir aşırı sıvı kurutun. </li><li> yakın hayvanın gözleri, her iki retina bile aydınlatılmasını sağlamak için kase açılması ile uyum sağlanması Ganzfeld kaseye slayt platformu (adım 2.4.1 bakınız). </li><li> dıştan gelen sesleri azaltmak için Faraday kafesi kapatın. </li></ol></li><li> Veri koleksiyonu <ol><li> Elektrot Yerleşi olmadığını değerlendirmek için - (0.52 log cd.sm -2) loş bir test flaş kullanmakent 2 tatmin edicidir. Kontrol koşulları altında, bu ~ 800 uV bir ERG genlik ve 10&#39;dan büyük olmayan,% arası bir göz değişkenlik olmasına neden olur. Gerekli repozisyon elektrotlar edin. </li><li> Test flaş aşağıdaki hayvanların kayıttan önce tam karanlıkta 10 dakika süreyle koyu adapte sağlar. </li><li> ERG ve VEP&#39;in toplarken bir Ganzfeld kase kullanarak ışık uyaranların mevcut yanıp söner ~ 500 msn zaman penceresi üzerinden aynı anda sinyal gönderir. sönük gelen İlerleme belirli dalga formları için yeterli koyu uyumlarını sağlamak amacıyla ışık düzeylerini daha parlak. </li><li> STR, B-dalga ve ERG a / b-dalgası dalga biçimleri ortaya çıkarmak için aydınlık enerjilerin aralığında sinyalleri toplamak. parlak ışıklı enerjilerin (1 tekrar) de kısık ışık seviyelerinde (20 tekrarlar) ve daha az ortalama daha sinyaller. Yavaş yavaş 1 dimmest gelen parlak ışık seviyesine 180 sn arası uyaran aralığı uzatmak. Bir örnek protokolü için Tablo 1&#39;e bakınız. </li><li> iso içinGeç ERG çubuk ve koni yanıtları, bir eşleştirilmiş-flaş paradigma 8 kullanmaktadır. 1.52 log cd.sm dört yanıp başlatmak -2-arasında 500 milisaniye arası uyaran aralığı 2 ile. Dijital varsayılan çubuk yanıtı elde etmek için karışık dalga (1. flaş) için koni dalga formu (3. veya 4. flaş) çıkarın. </li><li> Parlak ışıklı enerjilerde VEP sinyalleri, ortalama 20 tekrarlar kaydetmek için (yani, - 0,52 log cd.sm -2, 5 sn arası uyaran aralığı 1,52). Bu dizideki ilk flaş geleneksel koyu adapte ERG tepki verdiğini unutmayın. </li><li> (20) VEP aydınlık enerjiye bağlı olarak, bir sonraki daha parlak ERG aşamasından önce süpürür sonra yeniden uyarlanması için 3 dakika - 1 izin verin. </li><li> Veri toplama işlemi tamamlandıktan sonra, pentobarbital sodyum (325 mg / ml, 3 mi) intrakardiyak enjeksiyonu ile, anestezi verilen hayvanın euthanize. </li></ol></li></ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-ile-next.within sayfa = &quot;always&quot;&gt; <tbody><tr><td> Dalga şekli </td><td> Uyarıcı ışık enerjisi (cd.sm log -2) </td><td> Tekrar sayısı </td><td> interstimulus aralığı (sn) </td></tr><tr><td> STR </td><td> -6,24 </td><td> 20 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> STR </td><td> -5,93 </td><td> 20 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> STR </td><td> -5.6 </td><td> 20 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> STR </td><td> -5,33 </td><td> 20 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -4,99 </td><td> 10 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -4,55 </td><td> 10 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -4,06 </td><td> 5 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -3,51 </td><td> 5 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -3,03 </td><td> 1 </td><td> 15 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -2.6 </td><td> 1 </td><td> 15 </td></tr><tr><td> Çubuk b-dalgası </td><td> -1,98 </td><td> 1 </td><td> 15 </td></tr><tr><td> Karışık a- / b-dalgası </td><td> -1,38 </td><td> 1 </td><td> 30 </td></tr><tr><td> Karışık a- / b-dalgası </td><td> -0,94 </td><td> 1 </td><td> 30 </td></tr><tr><td rowspan="2"> Flaş 1: 20 Karma a- / b-dalgası Ortalama: VEP </td><td rowspan="2"> -0,52 </td><td rowspan="2"> 20 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> (Bir sonraki önce 90 sn) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Flaş 1: 20 Karma a- / b-dalgası Ortalama: VEP </td><td rowspan="2"> 0.04 </td><td rowspan="2"> 20 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> (Bir sonraki önce 120 sn) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Flaş 1: 20 Karma a- / b-dalgası Ortalama: VEP </td><td rowspan="2"> 0.58 </td><td rowspan="2"> 20 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> (Bir sonraki önce 180 sn) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Flash 1: 20 Karma a- / b-dalgası Ortalama: VEP </td><td rowspan="2"> 1.2 </td><td rowspan="2"> 20 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> (Bir sonraki önce 180 sn) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Flaş 1: 20 Karma a- / b-dalgası Ortalama: VEP </td><td rowspan="2"> 1.52 </td><td rowspan="2"> 20 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> (Bir sonraki önce 180 sn) </td></tr><tr><td> Koni a- / b-dalgası </td><td> 1.52 </td><td> 4 </td><td> 0.5 </td></tr></tbody></table> Stimulus Enerji bir Aralığı Kullanarak Tablo 1. ERG ve VEP Kayıt Protokolü. Yeterli arası uyaran aralığı ile parlak (alt) yanıp söner, loş (üstte) den Uyarıcı sunumları ilerleme karanlık adaptasyonu sağlamak. Protokolün sonunda, kısa aralıklarla dört flaş tekrarlama koni aracılı yanıtı ortaya çıkarmak amacıyla sunulmuştur. ERG Dalga 3. Analizi Not: ERG ve VEP analizi daha önce detaylı bir şekilde tarif edilmiştir 3,9,10.Aşağıdaki bölümlerde kısa bir bakış sağlar. <ol><li> Veri analizi için bir elektronik tablo yazılımı dijital voltaj zaman biçiminde ihracat işaretleri. </li><li> Çubuk photoreceptoral fonksiyonu <ol><li> Gecikmiş bir Gauss (Eşitlik 1) 11 ile dalga PIII ön kenarını Model. PIII (i t) = Rm PIII ∙ [1 - exp (- ı, S (t ∙ - td) 2)] t&gt; T D (Denklem 1) </li><li> İki parlak parlak enerjilerin bir topluluk üzerinde 12,13 (yani, 1.22 ve 1.52 log cd.sm -2) uygun optimize edin. </li><li> A-dalga genliği% 90 Model yukarı sonrası receptoral müdahalelerine 14 önlemek için. Not: Model photoreceptoral yanıt doymuş genliği (Rm PIII, mV), duyarlılık (S m 2 .cd -1 .s -3) ve gecikme (t d, msn) döndürür. </li></ol></li><li> Çubuk bipolar hücre fonksiyonuiyon <ol><li> Dijital örten salınım potansiyelleri ile karışık PII dönmek karışık dalga formlarından PIII modeli (yukarıya bakınız) çıkarın. </li><li> Karışık PII gelen çubuk PII ayıklamak için, dijital karışık PII gelen koni yanıtı (3. ya da 1.52 log cd.sm de 4. flaş -2) çıkarma (1.52 log cd.sm 1 st flaş -2). </li><li> Ardından, salınım potansiyelleri kaldırmak için dalga (46.9 Hz, -3 dB, Blackman pencere) bir low-pass filtre uygulamak. Kalan dalga çubuk PII yanıtı 10&#39;dur. </li><li> Çubuk PII tepe genliği Özü ve 10 (1.52 log cd.sm -2 az -2 log cd.sm -2 ve çubuk izole PII altında) tüm uyaran şiddetleri karşı komplo. </li><li> iç retinal hücre bütünlüğünün bir ölçü sağlayan bir hiperbolik fonksiyonu (Denklem 2) kullanarak bu verileri Model. V (I) &#39;in V max = (i n / (i n+ K n)) (Denklem 2) Not: Bu denklem maksimal PII yanıtı (V max, mV), 1 / duyarlılık döner ve fonksiyonu (n) 15 eğimi (k, cd.sm-2 log). </li></ol></li><li> Koni bipolar hücre fonksiyonu Not: koni yanıtı tek bir yoğunlukta alınır gibi (1.52 log cd.sm -2) genlik ve zamanlama bu ışık seviyesinde döndürülür. <ol><li> Maksimal koni PII yanıtı 2,16 ayıklayın. </li><li> Bu maksimal yanıt 2,16 karşılık gelen örtülü zaman ayıklayın. </li></ol></li><li> Ganglion hücre fonksiyonu <ol><li> STR küçük bir sinyal olarak, yüksek frekans ve hat gürültüsünü ortadan kaldırmak için Dalga formu 50 Hz çentik ile bir alçak geçiren filtre uygulamak (46.9 Hz, -3 dB, Blackman pencere). </li><li> Maksimal pSTR yanıtı 3,17 ayıklayın. </li><li> Bu maksimal yanıt 3,17 karşılık gelen örtülü zaman ayıklayın. </li></ol></li></ol> 4. AnaVEP Dalga lizizi <ol><li> VEP (P1, N1 ve P2) maksimum ve minimum bileşenlerinin ekstre edilmesi. Detay için başvurular 3,6 bakın. </li><li> Onların önceki zirve ya da çukur (P1N1 ve N1P2) 3,6 den oluk-tepe genlikleri olarak Ekspres genlikleri. </li><li> Örtülü zaman (o) Ayıklama hangi bu maksimal yanıt karşılık gelir (P1 o N1 o, P2) 3,6. </li></ol>

<ol>
	<li>Nguyen, C. T. O., Vingrys, A. J., Bui, B. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dietary+omega-3+fatty+acids+and+ganglion+cell+function.">Dietary omega-3 fatty acids and ganglion cell function.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 49, 3586-3594 (2008).</li><li>Weymouth, A. E., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rodent+electroretinography:+methods+for+extraction+and+interpretation+of+rod+and+cone+responses.">Rodent electroretinography: methods for extraction and interpretation of rod and cone responses.</a> Prog Retin Eye Res. 27, 1-44 (2008).</li><li>Tsai, T. I., Bui, B. V., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+acute+intraocular+pressure+challenge+on+rat+retinal+and+cortical+function.">Effect of acute intraocular pressure challenge on rat retinal and cortical function.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 55, 1067-1077 (2014).</li><li>Cowey, A., Franzini, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+retinal+origin+of+uncrossed+optic+nerve+fibres+in+rats+and+their+role+in+visual+discrimination.">The retinal origin of uncrossed optic nerve fibres in rats and their role in visual discrimination.</a> Exp Brain Res. 35, 443-455 (1979).</li><li>Weinstein, G. W., Odom, J. V., Cavender, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visually+evoked+potentials+and+electroretinography+in+neurologic+evaluation.">Visually evoked potentials and electroretinography in neurologic evaluation.</a> Neurol Clin. 9, 225-242 (1991).</li><li>Odom, J. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visual+evoked+potentials+standard+(2004).">Visual evoked potentials standard (2004).</a> Doc Ophthalmol. 108, 115-123 (2004).</li><li>Ridder, W. H., Nusinowitz, S., Heckenlively, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Causes+of+cataract+development+in+anesthetized+mice.">Causes of cataract development in anesthetized mice.</a> Exp Eye Res. 75, 365-370 (2002).</li><li>Nixon, P. J., Bui, B. V., Armitage, J. A., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+contribution+of+cone+responses+to+rat+electroretinograms.">The contribution of cone responses to rat electroretinograms.</a> Clin Experiment Ophthalmol. 29, 193-196 (2001).</li><li>Bui, B. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Using+the+electroretinogram+to+understand+how+intraocular+pressure+elevation+affects+the+rat+retina.">Using the electroretinogram to understand how intraocular pressure elevation affects the rat retina.</a> J Ophthalmol. 2013, 262467 (2013).</li><li>Nguyen, C. T., Vingrys, A. J., Bui, B. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dietary+omega-3+fatty+acids+and+ganglion+cell+function.">Dietary omega-3 fatty acids and ganglion cell function.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 49, 3586-3594 (2008).</li><li>Hood, D. C., Birch, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+quantitative+measure+of+the+electrical+activity+of+human+rod+photoreceptors+using+electroretinography.">A quantitative measure of the electrical activity of human rod photoreceptors using electroretinography.</a> Vis Neurosci. 5, 379-387 (1990).</li><li>Birch, D. G., Hood, D. C., Locke, K. G., Hoffman, D. R., Tzekov, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+electroretinogram+measures+of+phototransduction+in+cone+and+rod+photoreceptors+-+Normal+aging,+progression+with+disease,+and+test-retest+variability.">Quantitative electroretinogram measures of phototransduction in cone and rod photoreceptors - Normal aging, progression with disease, and test-retest variability.</a> Arch Ophthalmol. 120, 1045-1051 (2002).</li><li>Bui, B. V., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+receptoral+responses+in+pigmented+and+albino+guinea-pigs+(Cavia+porcellus).">Development of receptoral responses in pigmented and albino guinea-pigs (Cavia porcellus).</a> Doc Ophthalmol. 99, 151-170 (1999).</li><li>Robson, J. G., Saszik, S. M., Ahmed, J., Frishman, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rod+and+cone+contributions+to+the+a-wave+of+the+electroretinogram+of+the+macaque.">Rod and cone contributions to the a-wave of the electroretinogram of the macaque.</a> J Physiol. 547, 509-530 (2003).</li><li>Severns, M. L., Johnson, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+care+and+fitting+of+Naka-Rushton+functions+to+electroretinographic+intensity-response+data.">The care and fitting of Naka-Rushton functions to electroretinographic intensity-response data.</a> Doc Ophthalmol. 85, 135-150 (1993).</li><li>Bui, B. V., Fortune, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Origin+of+electroretinogram+amplitude+growth+during+light+adaptation+in+pigmented+rats.">Origin of electroretinogram amplitude growth during light adaptation in pigmented rats.</a> Vis Neurosci. 23, 155-167 (2006).</li><li>Bui, B. V., Fortune, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ganglion+cell+contributions+to+the+rat+full-field+electroretinogram.">Ganglion cell contributions to the rat full-field electroretinogram.</a> J Physiol. 555, 153-173 (2004).</li><li>Tremblay, F., Laroche, R. G., Debecker, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Electroretinographic+Diagnosis+of+the+Incomplete+Form+of+Congenital+Stationary+Night+Blindness.">The Electroretinographic Diagnosis of the Incomplete Form of Congenital Stationary Night Blindness.</a> Vision Res. 35, 2383-2393 (1995).</li><li>Bayer, A. U., Keller, O. N., Ferrari, F., Maag, K. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Association+of+glaucoma+with+neurodegenerative+diseases+with+apoptotic+cell+death:+Alzheimer's+disease+and+Parkinson's+disease.">Association of glaucoma with neurodegenerative diseases with apoptotic cell death: Alzheimer's disease and Parkinson's disease.</a> Am J Ophthalmol. 133, 135-137 (2002).</li><li>Wostyn, P., Audenaert, K., De Deyn, P. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+abnormal+high+trans-lamina+cribrosa+pressure+difference:+A+missing+link+between+Alzheimer's+disease+and+glaucoma.">An abnormal high trans-lamina cribrosa pressure difference: A missing link between Alzheimer's disease and glaucoma.</a> Clinical Neurology and Neurosurgery. 110, 753-754 (2008).</li><li>Yucel, Y. H., Zhang, Q. A., Weinreb, R. N., Kaufman, P. L., Gupta, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+retinal+ganglion+cell+loss+on+magno-,+parvo-,+koniocellular+pathways+in+the+lateral+geniculate+nucleus+and+visual+cortex+in+glaucoma.">Effects of retinal ganglion cell loss on magno-, parvo-, koniocellular pathways in the lateral geniculate nucleus and visual cortex in glaucoma.</a> Prog Retin Eye Res. 22, 465-481 (2003).</li><li>Gupta, N., Yucel, Y. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=What+changes+can+we+expect+in+the+brain+of+glaucoma+patients.">What changes can we expect in the brain of glaucoma patients.</a> Survey of Ophthalmology. 52, 122-126 (2007).</li><li>Kong, Y. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+aging+and+diet+restriction+on+retinal+function+during+and+after+acute+intraocular+pressure+injury.">Impact of aging and diet restriction on retinal function during and after acute intraocular pressure injury.</a> Neurobiol Aging. 33, 1115-1125 (2012).</li><li>Bui, B. V., Sinclair, A. J., Vingrys, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electroretinograms+of+albino+and+pigmented+guinea-pigs+(Cavia+porcellus).">Electroretinograms of albino and pigmented guinea-pigs (Cavia porcellus).</a> Aust N Z J Ophthalmol. 26, 98-100 (1998).</li><li>Jobling, A. I., Wan, R., Gentle, A., Bui, B. V., McBrien, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinal+and+choroidal+TGF-beta+in+the+tree+shrew+model+of+myopia:+isoform+expression,+activation+and+effects+on+function.">Retinal and choroidal TGF-beta in the tree shrew model of myopia: isoform expression, activation and effects on function.</a> Exp Eye Res. 88, 458-466 (2009).</li><li>Robson, J. G., Frishman, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dissecting+the+dark-adapted+electroretinogram.">Dissecting the dark-adapted electroretinogram.</a> Doc Ophthalmol. 95, 187-215 (1998).</li><li>Robson, J. G., Frishman, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+rod-driven+a-wave+of+the+dark-adapted+mammalian+electroretinogram.">The rod-driven a-wave of the dark-adapted mammalian electroretinogram.</a> Prog Retin Eye Res. 39, 1-22 (2014).</li><li>Hudnell, H. K., Boyes, W. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+comparability+of+rat+and+human+visual-evoked+potentials.">The comparability of rat and human visual-evoked potentials.</a> Neurosci Biobehav Rev. 15, 159-164 (1991).</li><li>Charng, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conscious+wireless+electroretinogram+and+visual+evoked+potentials+in+rats.">Conscious wireless electroretinogram and visual evoked potentials in rats.</a> PLoS One. 8, e74172 (2013).</li><li>Hetzler, B. E., Berger, L. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ketamine-Induced+Modification+of+Photic+Evoked-Potentials+in+the+Superior+Colliculus+of+Hooded+Rats.">Ketamine-Induced Modification of Photic Evoked-Potentials in the Superior Colliculus of Hooded Rats.</a> Neuropharmacology. 23, 473-476 (1984).</li></ol>

The authors have no disclosures relevant to this work.

ERG ve VEP sırasıyla, retina ve korteks, görsel fonksiyonun objektif önlemlerdir. Eş zamanlı kayıt avantajı tüm görsel yolunun daha kapsamlı bir görünüm elde olmasıdır. Özellikle, onların eş zamanlı değerlendirmesinden tamamlayıcı bilgiler, örneğin optik nöropati birincil serebral atrofi 19 ile birlikte var olabilir, ERG henüz belirgin VEP 18 tezahürleri örtüşen bozukluklar için (görsel yolunda yaralanma bölgesinde daha net bir sınırlandırılmasını <s...

elektroretinogram (ERG) ve görsel uyarılmış potansiyel (VEP) ölçümü görsel yolunun bütünlüğü yararlı kantitatif değerlendirmeler sağlar. VEP aynı ışık olayı aşağıdaki birincil görsel kortekse retinadan görme yolları gelen fonksiyonel bütünlüğünü ölçer ERG, ışık uyarımı retinanın elektrik tepkilerini ölçer. Bu yazıda yaygın olarak kullanılan bir laboratuar modellerinde sıçan kayıt ve ERG ve VEP cevapların analizi için bir protokol açıklamaktadır. ERG bir ışık yanıp sönmeye retinanın brüt elektrik tepkisini miktarının tarafından anahtar retinal hücre sınıfları bir dizi fonksiyonel bütünlüğünün bir dizin sağlar. iyonik akıların koordineli dizi ışık başlangıçlı tarafından başlatılan ve ofset, gözün dışına yerleştirilen yüzey elektrotlar kullanılarak ölçülebilir voltaj saptanabilir değişiklikler üretirler. Elde edilen dalga bir se birleşimini temsilgenlik, zamanlama ve sıklığı farklılık iyi tanımlanmış bileşenlerin Ries. Araştırmanın önemli bir vücut bu bileşenler, nispeten iyi bir çok omurgalı retinae boyunca ve parçaları birbirinden ayrılabilir olduğu korunmuş olduğunu göstermiştir. Mantıklı uyaran (flaş uyarı, arka plan, interstimulus aralık) koşulları seçme ve analiz etmek için kompozit dalga belirli özelliklerini seçerek bir retina hücrelerinin 1,2 belirli bir grubun bir ölçü dönen emin olabilirsiniz. Bu özellikler yarar ve dolayısıyla retina fonksiyonunun bir non-invaziv bir önlem olarak ERG yaygın uygulamaları altında yatan. Bu yazının (pozitif ERG ölçme ve retinada önemli hücre sınıfları, yani fotoreseptör (PIII bileşeni), bipolar hücreleri (PII bileşeni) ve retina ganglion hücrelerinin bazıları hakkında bilgi dönmek için özelliklerini analiz etmek için metodoloji üzerinde duruluyor scotopic eşik yanıt veya pSTR). 3 alan V1 optik sinir, optik sistemi, talamus (lateral genikulat nükleus, LGN) ve optik radyasyon yoluyla seri iletilecektir. Kemirgenlerde, çoğunluk - Her göz decussate 4&#39;ten optik sinir liflerinin (90% 95) ve kontralateral orta beyin innerve. ERG aksine, 5 ve böylece görsel yolu VEP dalga formunu etkileyebilecek herhangi bir yerde birlikte değişir, özel hücre sınıflar için VEP farklı bileşenlerini atfedilmesi henüz mümkün değildir. Bununla birlikte, VEP görsel performans ve görsel yolu bütünlüğü yararlı bir non-invaziv bir ölçüsüdür. VEP, ERG ile bağlantılı olarak kullanıldığında, görme sistemi (örneğin, retina / işitsel yol) daha tam bir değerlendirmesini sağlar. ERG ve VEP kayıtları başvurunun bağlı olarak, tek başına ya da kombinasyon halinde yapılabilirkatyon. Bu yazıda anlatılan metodoloji retina ve kortikal görsel uyarılmış hem gözlerden elektrofizyoloji ve anestezi farelerde her iki yarımkürede aynı anda değerlendirilmesini sağlar. Bu daha kapsamlı retina fonksiyon değişiklikleri görsel uyandırılmış kortikal fonksiyonu olabilir ki retina fonksiyonu ve yukarı etkilerini değerlendirmek için kullanışlı bir yoldur.

<table><tbody><tr><td>Alligator clip</td><td>generic brand</td><td>HM3022</td><td>Stainless steel 26 mm clip for connecting VEP screw electrodes to cables</td></tr><tr><td>Bioamplifier</td><td>ADInstruments</td><td>ML 135</td><td>For amplifying ERG and VEP signals</td></tr><tr><td>Carboxymethylcellulose sodium 1.0%</td><td>Allergan</td><td>CAS 0009000-11-7</td><td>Viscous fluid for improving signal quality of the active ERG electrode</td></tr><tr><td>Carprofen 0.5%</td><td>Pfizer Animal Health Group</td><td>CAS 53716-49-7</td><td>Proprietary name: Rimadyl injectable (50 mg/ml). For post-surgery analgesia, diluted to 0.5% (5 mg/ml) in normal saline</td></tr><tr><td>Chlorhexadine 0.5%</td><td>Orion Laboratories</td><td>27411, 80085</td><td>For disinfecting surgical instruments</td></tr><tr><td>Circulating water bath</td><td>Lauda-K&amp;ouml;nigshoffen</td><td>MGW Lauda</td><td>For maintaining body temperature of the anesthetized animal during surgery and electrophysiological recordings</td></tr><tr><td>Dental amalgam</td><td>DeguDent GmbH</td><td>64020024</td><td>For encasing the electrode-skull assembly to make it more robust</td></tr><tr><td>Dental burr</td><td>Storz Instruments, Bausch and Lomb</td><td>#E0824A</td><td>A miniature drill head of ~ 0.7 mm diameter for making a small hole in the skull over each hemisphere to implant VEP screws</td></tr><tr><td>Drill</td><td>Bosch</td><td>Dremel 300 series</td><td>An automatic drill for trepanning</td></tr><tr><td>Electrode lead</td><td>Grass Telefactor&amp;nbsp;</td><td>F-E2-30</td><td>Platinum cables for connecting silver wire electrodes to the amplifier</td></tr><tr><td>Faraday Cage</td><td>custom-made</td><td></td><td>Ensures light proof to maintain dark adaptation. Encloses the Ganzfeld setup to improve signal to noise ratio</td></tr><tr><td>Gauze swabs</td><td>Multigate Medical Products Pty Ltd</td><td>57-100B</td><td>For drying the surgical incision and exposed skull surface during surgery</td></tr><tr><td>Ganzfeld integrating sphere</td><td>Photometric Solutions International</td><td></td><td>Custom designed light stimulator: 36 mm diameter, 13 cm aperture size</td></tr><tr><td>Velcro</td><td>VELCRO Australia Pty Ltd</td><td>VELCRO Brand Reusable Wrap</td><td>Hook-and-loop fastener to secure the electrodes and the animal on the recording platform</td></tr><tr><td>Isoflurane 99.9%</td><td>Abbott Australasia Pty Ltd</td><td>CAS 26675-46-7</td><td>Proprietary Name: Isoflo(TM) Inhalation anaaesthetic. Pharmaceutical-grade inhalation anesthetic mixed with oxygen gas for VEP electrode implant surgery</td></tr><tr><td>Ketamine&amp;nbsp;</td><td>Troy Laboratories</td><td>Ilium Ketamil</td><td>Proprietary name: Ketamil Injection, Brand: Ilium. Pharmaceutical-grade anesthetic for electrophysiological recording</td></tr><tr><td>Luxeon LEDs</td><td>Phillips Lighting Co.</td><td></td><td>For light stimulation twenty 5 W and one 1 W LEDs.</td></tr><tr><td>Micromanipulator</td><td>Harvard Apparatus</td><td>BS4 50-2625</td><td>Holds the ERG active electrode during recordings</td></tr><tr><td>Needle electrode</td><td>Grass Telefactor&amp;nbsp;</td><td>F-E2-30</td><td>Subcutaneously inserted in the tail to serve as the ground electrode for both the ERG and VEP</td></tr><tr><td>Phenylephrine 2.5% minims&amp;nbsp;</td><td>Bausch and Lomb</td><td>CAS 61-76-7</td><td>Instilled with Tropicamide to achieve maximal dilation for ERG recording</td></tr><tr><td>Povidone iodine 10%</td><td>Sanofi-Aventis</td><td>CAS 25655-41-8</td><td>Proprietory name: Betadine, Antiseptic to prepare the shaved skin for surgery 10%, 500 ml</td></tr><tr><td>Powerlab data acquisition system</td><td>ADInstruments</td><td>ML 785</td><td>Controls the LEDs</td></tr><tr><td>Proxymetacaine 0.5%</td><td>Alcon Laboratories&amp;nbsp;</td><td>CAS 5875-06-9</td><td>For corneal anaesthesia during ERG recordings</td></tr><tr><td>Saline solution</td><td>Gelflex</td><td></td><td>Non-injectable, for electroplating silver wire electrodes</td></tr><tr><td>Scope Software</td><td>ADInstruments</td><td>version 3.7.6</td><td>Simultaneously triggers the stimulus via the Powerlab system and collects data</td></tr><tr><td>Silver (fine round wire)</td><td>A&amp;amp;E metal</td><td>0.3 mm</td><td>Used to make active and inactive ERG electrodes, and the inactive VEP electrode</td></tr><tr><td>Stainless streel screws&amp;nbsp;</td><td>MicroFasterners</td><td></td><td>0.7 mm shaft diameter, 3 mm in length to be implanted over the primary visual cortex and serve as the active VEP electrodes</td></tr><tr><td>Stereotaxic frame</td><td>David Kopf</td><td>Model 900</td><td>A small animal stereotaxic instrument for locating the primary visual cortices according to Paxinos &amp;amp; Watson&#039;s 2007 rat brain atlas coordinates</td></tr><tr><td>Surgical blade</td><td>Swann-Morton Ltd.</td><td>0206</td><td>For incising the area of skin overlaying the primary visual cortex to implant the VEP electrodes</td></tr><tr><td>Suture</td><td>Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co.,Ltd</td><td></td><td>3-0 silk braided suture non-absorbable, for skin retraction during VEP electrode implantation surgery</td></tr><tr><td>Tobramycine eye ointment 0.3%</td><td>Alcon Laboratories&amp;nbsp;</td><td>CAS 32986-56-4</td><td>Proprietary name: Tobrex. Prophylactic antibiotic ointment applied around the skin wound after surgery</td></tr><tr><td>Tropicamide 0.5%</td><td>Alcon Laboratories&amp;nbsp;</td><td>CAS 1508-75-4</td><td>Proprietary name: 0.5% Mydriacyl eye drop, Instilled to achieve mydriasis for ERG recording</td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Troy Laboratories</td><td>Ilium Xylazil-100</td><td>Pharmaceutical-grade anesthetic for electrophysiological recording</td></tr><tr><td>Pipette tip</td><td>Eppendorf Pty Ltd</td><td>0030 073.169</td><td>Eppendorf epTIPS 100 - 5,000 ml, for custom-made electrodes</td></tr><tr><td>Microsoft Office Excel</td><td>Microsoft</td><td>version 2010</td><td>spreadsheet software for data analysis</td></tr><tr><td>Lethabarb Euthanazia Injection</td><td>Virbac (Australia) Pty Ltd</td><td>LETHA450</td><td>325 mg/ml pentobarbital sodium for rapid euthanazia</td></tr></tbody></table>

simultaneous recording of electroretinography and visual evoked potentials in anesthetized rats

The electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are commonly used to assess the integrity of the visual pathway. The ERG measures the electrical responses of the retina to light stimulation, while the VEP measures the corresponding functional integrity of the visual pathways from the retina to the primary visual cortex following the same light event. The ERG waveform can be broken down into components that reflect responses from different retinal neuronal and glial cell classes. The early components of the VEP waveform represent the integrity of the optic nerve and higher cortical centers. These recordings can be conducted in isolation or together, depending on the application. The methodology described in this paper allows simultaneous assessment of retinal and cortical visual evoked electrophysiology from both eyes and both hemispheres. This is a useful way to more comprehensively assess retinal function and the upstream effects that changes in retinal function can have on visual evoked cortical function.

ERG bir dalga (&gt; -1,38 log cd.sm -2), b-dalgaları (&gt; - 4.99 log cd.sm -2) oran otozomal STR&#39;lerle (&lt;- 4.99 log cd.sm -2) ve VEP (&gt; - 0.52 cd.sm log -2) eş zamanlı olarak (Şekil 1 ve kaydedilmiştir 3). Çok loş yanıp söner anda, pozitif STR (pSTR) 110 msn flaş sonra yaklaşık görülen ve yaklaşık 220 ms bir negatif STR (nSTR) (Şekil 1 ve 2). Büyük bir b-dalgası o...

Watch this Scientific Journal Video about Simultaneous Recording of Electroretinography and Visual Evoked Potentials in Anesthetized Rats at JoVE.com

Simultaneous Recording of Electroretinography and Visual Evoked Potentials in Anesthetized Rats

This protocol describes simultaneous measurement of electroretinogram and visual evoked potentials in anesthetized rats.

Elektroretinografi Eşzamanlı Kayıt ve Anestezi Sıçanlar Görsel Uyarılmış Potansiyeller

The electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are commonly used to assess the integrity of the visual pathway. The ERG measures the ...

simultaneous-recording-electroretinography-visual-evoked-potentials

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Neuroscience

12.2K Görüntüleme.  University of Melbourne. This protocol describes simultaneous measurement of electroretinogram and visual evoked potentials in anesthetized rats. 

Video: Simultaneous Recording of Electroretinography and Visual Evoked Potentials in Anesthetized Rats

Implantation and Recording of Wireless Electroretinogram and Visual Evoked Potential in Conscious Rats

The full-field electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are useful tools to assess retinal and visual pathway integrity in both laboratory and clinical settings. Currently, preclinical ERG and VEP measurements are performed with anesthesia to ensure stable electrode placements. However, the very presence of anesthesia has been shown to contaminate normal physiological responses. To overcome these anesthesia confounds, we develop a novel platform to assay ERG and VEP in conscious rats. Electrodes are surgically implanted sub-conjunctivally on the eye to assay the ERG and epidurally over the visual cortex to measure the VEP. A range of amplitude and sensitivity/timing parameters are assayed for both the ERG and VEP at increasing luminous energies. The ERG and VEP signals are shown to be stable and repeatable for at least 4 weeks post surgical implantation. This ability to record ERG and VEP signals without anesthesia confounds in the preclinical setting should provide superior translation to clinical data.

We show surgical implantation and Recording procedures to measure visual electrophysiological signals from the eye (electroretinogram) and brain (visual evoked potential) in conscious rats, which is more analogous to the human condition where recordings are conducted without anesthesia confounds.

Bilinçli Sıçanlarda implantasyon ve Kablosuz Elektroretinogram Recording ve Görsel Uyarılmış Potansiyel

The full-field electroretinogram (ERG) and visual evoked potential (VEP) are useful tools to assess retinal and visual pathway integrity in both ...

Davranış

Using the Electroretinogram to Assess Function in the Rodent Retina and the Protective Effects of Remote Limb Ischemic Preconditioning

The ERG is the sum of all retinal activity. The ERG is usually recorded from the cornea, which acts as an antenna that collects and sums signals from the retina. The ERG is a sensitive measure of changes in retinal function that are pan-retinal, but is less effective for detecting damage confined to a small area of retina. In the present work we describe how to record the &#8216;flash&#8217; ERG, which is the potential generated when the retina is exposed to a brief light flash. We describe methods of anaesthesia, mydriasis and corneal management during recording; how to keep the retina dark adapted; electrode materials and placement; the range and calibration of stimulus energy; recording parameters and the extraction of data. We also describe a method of inducing ischemia in one limb, and how to use the ERG to assess the effects of this remote-from-the-retina ischemia on retinal function after light damage. A two-flash protocol is described which allows isolation of the cone-driven component of the dark-adapted ERG, and thereby the separation of the rod and cone components. Because it can be recorded with techniques that are minimally invasive, the ERG has been widely used in studies of the physiology, pharmacology and toxicology of the retina. We describe one example of this usefulness, in which the ERG is used to assess the function of the light-damaged retina, with and without a neuroprotective intervention; preconditioning by remote ischemia.

The electroretinogram (ERG) is an electrical potential generated by the retina in response to light. This paper describes how to use the ERG to assess retinal function, in dark-adapted rats, and how it can be can be used to assess a neuroprotective intervention, in the present case remote ischemic preconditioning.

Kemirgen Retina ve Uzaktan Ekstremite İskemik Önkoşullamanın Koruyucu Etkileri Fonksiyonu Değerlendirmek Üzere elektroretinogram kullanma

The ERG is the sum of all retinal activity. The ERG is usually recorded from the cornea, which acts as an antenna that collects and sums signals from the ...

Nörobilim

Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination

The visual evoked potential (VEP) recording is widely used in clinical practice to assess the severity of optic neuritis in its acute phase, and to monitor the disease course in the follow-up period. Changes in the VEP parameters closely correlate with pathological damage in the optic nerve. This protocol provides a detailed description about the rodent model of optic nerve microinjection, in which a partial demyelination lesion is produced in the optic nerve. VEP recording techniques are also discussed. Using skull implanted electrodes, we are able to acquire reproducible intra-session and between-session VEP traces. VEPs can be recorded on individual animals over a period of time to assess the functional changes in the optic nerve longitudinally. The optic nerve demyelination model, in conjunction with the VEP recording protocol, provides a tool to investigate the disease processes associated with demyelination and remyelination, and can potentially be employed to evaluate the effects of new remyelinating drugs or neuroprotective therapies.

Focal demyelination is induced in the optic nerve using lysolecithin microinjection. Visual evoked potentials are recorded via skull electrodes implanted over the visual cortex to examine the signal conduction along the visual pathway in vivo. This protocol details the surgical procedures underlying electrode implantation and optic nerve microinjection.

Deneysel Optik Sinir demyelinizasyon bir Rat Modelinde Görsel Uyarılmış Potansiyel Kayıt

The visual evoked potential (VEP) recording is widely used in clinical practice to assess the severity of optic neuritis in its acute phase, and to ...

Concurrent Recording of Co-localized Electroencephalography and Local Field Potential in Rodent

Although electroencephalography (EEG) is widely used as a non-invasive technique for recording neural activities of the brain, our understanding of the neurogenesis of EEG is still very limited. Local field potentials (LFPs) recorded via a multi-laminar microelectrode can provide a more detailed account of simultaneous neural activity across different cortical layers in the neocortex, but the technique is invasive. Combining EEG and LFP measurements in a pre-clinical model can greatly enhance understanding of the neural mechanisms involved in the generation of EEG signals, and facilitate the derivation of a more realistic and biologically accurate mathematical model of EEG. A simple procedure for acquiring concurrent and co-localized EEG and multi-laminar LFP signals in the anesthetized rodent is presented here. We also investigated whether EEG signals were significantly affected by a burr hole drilled in the skull for the insertion of a microelectrode. Our results suggest that the burr hole has a negligible impact on EEG recordings.

This protocol describes a simple method for concurrent recording of co-localized electroencephalography (EEG) and multi-laminar local field potential in an anesthetized rat. A burr hole drilled in the skull for the insertion of a microelectrode is shown to produce negligible distortion of the EEG signal.

Co yerelleştirilmiş elektroansefalografi ve yerel alan potansiyel kemirgen eşzamanlı kayıt

Although electroencephalography (EEG) is widely used as a non-invasive technique for recording neural activities of the brain, our understanding of the ...

Electroretinogram Recording for Infants and Children under Anesthesia to Achieve Optimal Dark Adaptation and International Standards

Electroretinogram (ERG) is the only clinical objective test available to assess retinal function. Full-field ERG (ffERG) measures the panretinal rod and cone photoreceptor function as well as inner retinal function and is an important measure in the diagnosis and management of inherited retinal diseases as well as inflammatory, toxic, and nutritional retinopathies. Adhering to international standards and maintaining retinal dark adaptation are critical to acquire valid and reliable dark-adapted (scotopic) and light-adapted (photopic) ffERG responses. Performing ffERG in infants and children is challenging and often requires general anesthesia in the operating room. However, maintaining retinal dark adaptation in the operating room is becoming increasingly difficult given the numerous light sources from anesthesiology monitoring systems and other equipment. A practical and widely applicable method for ffERG testing is described in the operating room that optimizes retinal dark adaptation. The method reduces operating room time by dark-adapting the patient before general anesthesiology is instituted. The operating room is modified for dark adaptation and any remaining light source in the darkened operating room is minimized with the use of a modified portable foldable darkroom that encloses the patient&#8217;s head and the ERG examiner during ffERG scotopic recordings. The simple method adheres to ffERG international standards and provides valid reliable scotopic and photopic ffERG recordings that are critical to assess objective retinal function in this young age group where subjective assessment of visual function such as visual acuity and visual fields are not possible. Furthermore, the ffERG is the gold standard clinical test in detecting early onset inherited retinal diseases including Leber congenital amaurosis where approved gene therapy has become available. In sedated conditions, very low amplitude ffERG signals can be detected due to minimal orbicularis muscle activity interference, which is particularly relevant in patients after gene therapy to detect improved amplitude responses.

Adhering to international standards and maintaining retinal dark adaptation are critical to acquire valid full-field electroretinogram responses in the diagnosis and management of inherited retinal diseases. A practical protocol using a portable darkroom is provided to obtain full-field&#160;electroretinogram for infants and children under sedation or general anesthesia in the operating room setting.

Optimal Karanlık Adaptasyon ve Uluslararası Standartlara Ulaşmak İçin Anestezi Altındaki Bebekler ve Çocuklar Için Elektroretinogram Kaydı

Electroretinogram (ERG) is the only clinical objective test available to assess retinal function. Full-field ERG (ffERG) measures the panretinal rod and ...

Tıp

Full-Circle Cauterization of Limbal Vascular Plexus for Surgically Induced Glaucoma in Rodents

Glaucoma, the second leading cause of blindness worldwide, is a heterogeneous group of ocular disorders characterized by structural damage to the optic nerve and retinal ganglion cell (RGC) degeneration, resulting in visual dysfunction by interrupting the transmission of visual information from the eye to the brain. Elevated intraocular pressure is the most important risk factor; thus, several models of ocular hypertension have been developed in rodents by either genetic or experimental approaches to investigate the causes and effects of the disease. Among those, some limitations have been reported such as surgical invasiveness, inadequate functional assessment, requirement of extensive training, and highly variable extension of retinal damage. The present work characterizes a simple, low-cost, and efficient method to induce ocular hypertension in rodents, based on low-temperature, full-circle cauterization of the limbal vascular plexus, a major component of aqueous humor drainage. The new model provides a technically easy, noninvasive, and reproducible subacute ocular hypertension, associated with progressive RGC and optic nerve degeneration, and a unique post-operative clinical recovery rate that allows in vivo functional studies by both electrophysiological and behavioral methods.

The goal of this protocol is to characterize a novel model of glaucomatous neurodegeneration based on 360&#176; thermic cauterization of limbal vascular plexus, inducing subacute ocular hypertension.

Kemirgenlerde Cerrahi Olarak İndüklenen Glokom için Limbal Vasküler Pleksusun Tam Daire Koterizasyonu

Glaucoma, the second leading cause of blindness worldwide, is a heterogeneous group of ocular disorders characterized by structural damage to the optic ...

Preparing a Rat Model to Assess Visual Pathway Integrity Using an Electrophysiology Setup

Source: Nguyen, C. T. et al., <a href="https://appjove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/54158">Simultaneous Recording of Electroretinography and Visual Evoked Potentials in Anesthetized Rats.</a>&#160;J. Vis. Exp. (2016)
This video demonstrates the preparation of a rat model to study retinal health and visual pathway integrity. Visual evoked potential and electroretinography reference and active electrodes are connected to the rat, followed by aligning the platform with the rat in front of the Ganzfeld bowl for even retinal illumination and closing the Faraday cage to avoid external interference.

Bir Elektrofizyoloji Kurulumu Kullanarak Görsel Yol Bütünlüğünü Değerlendirmek için Bir Sıçan Modeli Hazırlama

All procedures involving animal models have been reviewed by the local institutional animal care committee and the JoVE veterinary review board.
1. ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Neurophysiology

Electrophysiology Techniques

Direct-Coupled Electroretinogram Recording of the Retinal Pigment Epithelium in a Mouse

Source: Miyagishima, K. J., et al. <a href="https://appjove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/61491">Direct-Coupled Electroretinogram (DC-ERG) for Recording the Light-Evoked Electrical Responses of the Mouse Retinal Pigment Epithelium.</a> J. Vis. Exp. (2020).
This video demonstrates the recording of a direct-coupled electroretinogram (DC-ERG) on a dark-adapted, anesthetized mouse retinal pigment epithelium (RPE). After applying dilating drops, the animal is placed in a recording setup, and the capillary electrode filled with a salt buffer is placed on the cornea. After establishing the baseline, DC-ERG is recorded.

Bir farede retina pigment epitelinin doğrudan bağlı elektroretinogram kaydı

All procedures involving animal models have been reviewed by the local institutional animal care committee and the JoVE veterinary review board.
1. Mouse ...

Imaging and Optical Techniques

Recording of Visual Evoked Potentials via the Skull Electrodes in a Rat Model

Source: You, Y., et al. <a href="https://appjove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/52934">Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination.</a> J. Vis. Exp. (2015).
This video demonstrates the process of measuring visual evoked potentials or VEPs in a dark-adapted, anesthetized rat with pre-implanted skull electrodes, which record the electrical signals from the brain&#39;s visual cortex in response to light stimuli.

Bir Sıçan Modelinde Kafatası Elektrotları aracılığıyla Görsel Uyarılmış Potansiyellerin Kaydedilmesi

All procedures involving animal models have been reviewed by the local institutional animal care committee and the JoVE veterinary review board.
1. VEP ...

Concurrent Electroencephalographic and Local Field Potential Recordings in an Anesthetized Rat

Source: Kang, S., et al. <a href="https://appjove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/56447">Concurrent Recording of Co-localized Electroencephalography and Local Field Potential in Rodent.</a> J. Vis. Exp. (2017).
This video demonstrates the procedure for concurrent recordings of co-localized electroencephalography (EEG) and local field potentials (LFPs) in an anesthetized rat. The process involves preparing the rat and attaching stimulating electrodes to its whisker pads. An EEG spider electrode is placed on the rat&#39;s skull for surface EEG measurements. At the same time, a multi-channel microelectrode is inserted into a specific brain region through a burr hole in the skull to record neural activity from a localized brain area.