Name: experimental demyelination and remyelination of murine spinal cord by focal injection of lysolecithin
Uploaded: 2015-03-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 57 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Experimental Demyelination and Remyelination of Murine Spinal Cord by Focal Injection of Lysolecithin at JoVE.com

This project was funded by a grant from the Multiple Sclerosis Society of Canada and the Alberta Innovates - Health Solutions CRIO Team program. MBK is a recipient of studentships from Alberta Innovates - Health Solutions and the Multiple Sclerosis Society of Canada. SKJ is funded by a graduate student support grant from the Alberta endMS Regional Research and Training Center of the Multiple Sclerosis Society of Canada. The authors wish to acknowledge Dr. Jan van Minnen and the Regeneration Unit in Neurobiology core facility for training and use of equipment.

NOT: Bu prosedürde kullanılan hayvanlar Hayvan Bakımı Kanada Konseyi (CCAC) kurallarına uygun olarak bakım için. Etik Calgary Üniversitesi Hayvan Bakım Komitesi tarafından kabul edildi. 1. Enjeksiyon için Şırınga hazırlayın <ol><li> (PH 7.4 PBS) ve mağaza, küçük kısımlar halinde -20 ° C (75 ul) içeren fosfat tamponlu tuzlu su içinde bir% 1 çözelti ile lisolesitin çözündürülür. RT bir şişe çözülme. Not: lisolesitin, çözünmemiş ise, bir tekdüze çözelti oluşturmak için yaklaşık 30 dakika boyunca ultrasonik bir temizleyici (40 kHz), tüp sonikasyon. </li><li> Hassas ucu zarar vermemek için çok dikkatli önceden çekti cam kapiller Kolu. 10 ul enjekte şırınga somunu sökün ve yüksüklerinin çiftleşme uçları hizalayın ve kılcal konik yüksük (Şekil 1) rahat olmasını sağlamak, 2 yüksükler ardından kılcal düz ucuna üzerine geçirin. Izopropil ile şırınga durulayınil alkol ve pistonu çıkartın. Kuru kez, enjekte şırınga üzerine sıkı iğne düzeneği elini sıkın. </li><li> Astar şırınga metal göbek iğne takın. Pierce iğne ile bir lastik disk ve tabanına aşağı doğru kaydırın. Lizolesitin ile astar şırınga doldurun. Sıvı iğne ucu görünür kadar hafifçe priming şırınga basın. Bu hava kabarcıkları enjekte şırınga içine olmayacak sağlar. </li><li> Enjekte şırınga içine astar şırınga metal göbek iğne takın. Kılcal çözeltisi ile ucu doldurana kadar lastik disk ile bir firma mühür yapma, yavaş yavaş priming şırınga basın. Aynı anda hava kabarcıkları tanıtan olmadan enjekte şırınga varil doldurmak için basarken dikkatli astar şırınga çıkarın. Enjekte şırınga içine pistonu takın ve piston hafifçe basıldığında gibi çözüm kılcal ucundan akar sağlamak. NOT: Herhangi bir hava kabarcıkları kap görünür isenizIllary veya şırınga enjekte şırınga hazırlık başından itibaren tekrar edilmelidir. Enjekte tertibatında sürekli sıvı doğru enjeksiyon hacimlerini sağlamak için çok önemlidir. </li><li> Stereotaktik mikromanipülatör koluna tamamlanmış şırınga enjekte takın. Bu tamamlanmış cihaz doldurulmuş gerek önce 15-20 hayvan enjekte mümkün olacak. </li><li> Astar şırınga kalan lisolesitin atın. Çekiniz ve izopropil alkol birkaç kez basın ve metal göbek iğne ayırın. Tekrar doldurmadan önce buharlaşması hazırlama şırınga kalan izopropil alkol birkaç saat bekleyin. </li></ol> 2. Cerrahi Prosedür için Hayvan hazırlayın NOT: Bu prosedür dişi C57BL / 6 fareleri, yaş 8-10 hafta için bir işlem açıklanmaktadır. <ol><li> Ketamin (200 mg / kg) ve ksilazin (10 mg / kg) ya da kurumsal hayvan bakım düzenlemelerine göre bir intraperitonal enjeksiyon ile hayvan anestezisi. PlanıEnjekte anestezi kullanıyorsanız hayvan yaklaşık 1 saat anestezi altında olmak. </li><li> Hayvan derinden sıkıca ayak kısma anestezi olduğunu test edin. Düzgün anestezi hayvan tutam yanıt vermez. </li><li> Makası kullanarak, kulağına yakın hayvanın, dorsal tarafında 2-3 cm 2 alan tıraş. Kulakları zarar vermemek için dikkatli olun. </li><li> Bir gazlı bez uygulanan% 70 etanol ile temiz alana silin. Tüm kırpılmış saç alanından kaldırıldı emin olun. Iyot ile bölgeyi dezenfekte edin. </li><li> Prosedür boyunca kurumasını önlemek için gözlere vazelin uygulayın. </li><li> Prosedürü başlatmak için hazır olana kadar ısıtılmış bir kurtarma odasında hayvan tutun. </li></ol> 3. Cerrahi Prosedürü gerçekleştirin NOT: prosedürünün tüm adımlar için yeterli aseptik tekniğini emin olun. Bu eldiven, hairnets, maskeler ve perdeler doğru kullanımını içerir. Tüm araçlar temas bilgilerini gelmeden önce sterilize edilmelidirhayvan ile t. <ol><li> Bir stereotaktik çerçeve ile hayvan taşımak, dorsal yüzü yukarı, omurga eğriliği abartmak katlanmış kağıt havlu ile orta bölümünde yüksek. Cerrahi bant ile silah ve kuyruk sabitleyin ve bir diş kelepçe ile baş sabitleyin. Dengeleyici kulak çubukları, bu işlem için gerekli değildir. </li><li> Kulakların hemen altındaki başlayan ve kaudal yönde kesim, 3 cm&#39;lik orta hat kesi yapmak için bir neşter kullanın. </li><li> 2 büyük yağ yapıları arasındaki bölünmeyi bulun ve bu ayrı çekmek için her el ince forseps kullanabilir. Cerrahi alan açmak için Ekartörleri yayıldı. </li><li> Bir cerrahi mikroskop altında, T2 vertebra belirgin sonucudur sürecini bulun (Not: Bu özellik C57BL / 6 fare zorlanma karakteristik). Daha T2 görselleştirmek için üstlerinde kas yoluyla kapalı yaylı makas ile künt diseksiyon gerçekleştirin. Forseps kullanarak, uygun anatomik konumu onaylamak için T3 ve T4 sert yüzeyler için üzülüyorum. </li><li> Yaylı makas kullanarak, T3 ve T4 arasındaki bağ dokusu (2-3 mm derinliğinde) sığ yan keser. Nedeniyle fare omurga kolonunun üst göğüs kısmı da omur arasındaki doğal aralık için, laminektomi omurilik ortaya çıkarmak için gerekli değildir. Çok derin bir kesik delmek ve kablosuna zarar edeceği dikkatli olun. NOT: kanama küçük bir derecede bu aşaması esnasında yaygındır. Bu durum ortaya çıkarsa, kanama Subsidies (30-60 sn) kadar alana bir sünger mızrak tutun. </li><li> Omuriliği gözünüzde canlandırın. Kablosunu teşhir ederken bu meningeal tabaka henüz kesilmiş değil eğer görünür dura kalın bir tabaka ile kaplı olacaktır. Tanınmış bir kan damarı omurilik yaklaşık orta hat boyunca kaudal / rostral çalışır. NOT: Bu damar orta hatta bir işareti olarak kullanılmamalıdır. Bunun yerine, yeterli aydınlatma dorsal sütun yan gri-beyaz cevher sınırlarını açığa çıkarmalıdır ve bu orta hat tahmin için kullanılmalıdır. </li><li> Dura Eğertemizlenene kadar bozulmadan kalır, bir 32 G, metal iğne ile nazik yanal scrapes yapmak. amaç olarak kalın ve görmek zor değildir kalan temel meninksler, kesim olmasa da dura kaldırmaktır. NOT: beyin omurilik sıvısının Yayın araknoid ihlal gösterir ve bu dokuya mekanik zarar vermeden oluşabilir ise, birikmiş beyin omurilik sıvısı daha kord yüzeyini görselleştirmek için bir sünger mızrak ile çıkarılmalıdır. </li><li> Yerinde şırınga enjekte ettirin ve kılcal ucu zar zor orta hat her iki tarafında hemen yan omuriliği dokunana kadar yavaşça indirin. Yerinde kolu kilitleyin. </li><li> Bir temel pozisyon ölçümü yapmak için Z-yönü stereotaktik kol kademeli ölçümleri kullanın. Bu okuma, 1.3 mm çıkarmak. Doku delmek için hızlı ve sığ aşağı hareket kullanın ve yeni ölçüm ulaşılana kadar sonra dikkatlice kılcal indirin. İsteğe bağlı: istenirse,Dorsal sütununda lezyonlar orta hatta aynı delme hareketi ve 0.3 mm (Daha fazla bilgi için tartışmaya bakınız) bir derinliğe göre üretilebilir. NOT: Bu değerler T3 ve T4 arasında enjekte etmek için özeldir. Omurilik herhangi bir başka yerde enjeksiyon yapmak için tercih, bu değerler mevcut herhangi bir fare beyin atlas elde edilmesi gerekmektedir. </li><li> Ventral spinal kord beyaz cevher içine lisolesitin bastırmak için mikromanipülatör kullanın. 0.5 ul nihai hacim içinde elde edilen, 2 dakika boyunca mikromanipülatör 1 rotasyonu, her 5 saniye olun. Çözeltinin geri akmasını önlemek için 2 ek dakika yerinde kılcal bırakın, ve daha sonra dikkatlice kılcal çıkarın. </li><li> Omuriliğe kaplanacağı kas / yağ dokusunda tek sütür kravat. Cildi kapatmak için olmayan bir kesintiye dikiş kullanın. Kesi daha fazla iyot uygulayın. </li><li> O iyileşene kadar, daha sonra kendi kafesine geri ısıtılmış kurtarma odasında hayvan yerleştirin. Analjezikler uygulayın sonrasıAmeliyat kurumsal hayvan bakım düzenlemelerine göre. Hayvanlar kısa sürede anestezi onlar kurtarma tam olarak ayaktan ve kendini besleme ve içme yeteneğine sahip gibi ek post-operatif bakım genellikle gerekli değildir. </li><li> Kalan hayvanlar için prosedürü tekrarlayın. NOT: yeterlilik ile operasyon, özellikle sütür bağlama İkinci bir kişinin yardımıyla, hayvan başına 10-15 dakika içinde tamamlanabilir. ucu künt hale gelir ve değiştirilmesi gerektiğini önce aynı cam kılcal yaklaşık 15-20 ameliyatları için kullanılabilir. Yerine lizolesitin ve omuriliğe PBS enjeksiyonu ile, tarif edildiği gibi kontrol ameliyatları eşit yapılabilir. Biz ileride kullanmak üzere kılcal temizleme tavsiye etmiyoruz. </li></ol> 4. Doku İşleme ve Analiz <ol><li> İstenen zaman noktalarında ketamin (500 mg / kg) ve ksilazin (25 mg / kg) intraperitoneal doz aşımı ile hayvanlar kurban. Lezyonlar genellikle foll içinde gelişmeyenedeniyle şekilde: 1-3 gün, aktif demiyelinizasyon; 3-7 gün, OPC işe; 7-10 gün, oligodendrosit farklılaşması; 10-21 gün aktif remiyelinizasyon 2,10,11. </li><li> Ilk önce PBS içinde 20 ml buz gibi soğuk% 4 paraformaldehid ile ve ardından 20 ml RT PBS ile transcardial perfüzyon 12 yerine, histoloji için doku hazırlanması. Yarı veya ultra ince kesit için reçine gömülü doku hazırlanması için, adım 4.9 bkz. </li><li> Her omurların omurganın servikal sonunda başlayan ve alt torakal seviyesine kadar çalışarak kesmek için kavisli kemik makas kullanarak omurilik çıkarın. 4 ° C&#39;de PBS içinde% 4 paraformaldehid içinde omurilik O / N Düzelt. En az 72 saat için 4 ° C&#39;de PBS içinde% 30 sakaroza kablolarını geçin. </li><li> Omurilik dorsal yüzeyinde bir anormallik olarak enjeksiyon sitesini tanımlamak. (Merkezde enjeksiyon yerinde) ile doku 3 mm parça kesin ve optimal kesim sıcaklığının içeren cryomolds (Ekim) co parçaları hizalayınmpound. Ekim tamamen donmuş kadar 2-metilbütan ve kuru buz içinde soğutulmuş bir karışımı içinde cryomolds alt kısmını süspanse edin. Bölümüne kadar hazır -80 ° C&#39;de saklayın. </li><li> Mikroskop lamı üzerine 20 mikron genişliğinde bölüm kriostat spinal kablolarını ve hava kuru O izin / N -20 ° C&#39;de slaytlar saklamadan önce. </li><li> Miyelin 13 bir eriochrome Siyanin histolojik leke kullanılarak lezyon yerini ve boyutunu algılar. Oda sıcaklığında tüm adımları uygulayın. 30 dakika için Hava kuru slaytlar. 1 dakika her biri için sınıflandırılmış etanol Çözeltilerin rehidrasyondan sonra 1 dakika boyunca (100,% 95,% 90,% 70,% 50,% su) ajan temizleme yeri kayar. <ol><li> Su ile, 1 dakika yıkama ve ardından 15 dakika boyunca eriochrome siyanin çözelti içinde yer kaymaktadır. Su ile, 1 dakika yıkama, ardından 10 saniye boyunca% 0.5 amonyum hidroksit ayırır. Parlak alan mi 1 dakika montaj ortamı, her biri lamel ve görüntü için (yukarıda tarif edildiği gibi ters sırada) dereceli etanol Çözeltilerin kurutmakmikroskop. </li></ol></li><li> Akson ve miyelin görselleştirmek için immunohistokimyasal kullanın. 30 dakika için Hava kuru slaytlar. Oda sıcaklığında 2 dakika her biri için kademeli etanol (su,% 50,% 70,% 90,% 95,% 100) ile kurutmak, daha sonra tekrar su kelimelerinin sırasını tersine çevirebilir. Bu adım, bireysel miyelin halkaları 14 daha fazla çözünürlük ile sonuçlanır. <ol><li> Oda sıcaklığında 60 dakika boyunca PBS içinde% 10 keçi serumu ve% 0.25 Triton X-100 kullanarak, spesifik olmayan antikor etkileşimi bloke eder. PBS ile 4 ° C sıcaklıkta / O slaytlar üzerinde N inkübe birincil antikor (1000: 2000, tavşan anti-MBP 1 fare anti-SMI312 1) ile seyreltilir. </li><li> Oda sıcaklığında PBS ile 5 dakika için 5 kez yıkayın. PBS içinde ve oda sıcaklığında 60 dakika boyunca slaytlar üzerinde inkübe sekonder antikor (500: 500, Alexa 546, anti-fare 1 Alexa 488 anti-tavşan 1) ile seyreltilir. Oda sıcaklığında PBS ile 5 dakika için 5 kez yıkayın. Dağı bir floresan mikroskop GELVATOL ve görüntü kullanılarak lamelleri ile slaytlar. </li></ol></li><li> Oligodendrosit soy hücreleri görselleştirmek için immunohistokimyasal kullanın. St için prosedürü izleyinep 4.7, dehidratasyon / rehidrasyon adım atlama, ve% 10 at serumu yerine keçi serumu kullanarak. Aşağıdaki primer antikor seyreltileri kullanarak: keçi anti-PDGFRα 1: 100, fare anti-CC1 1: 200, tavşan anti-Olig2 1: 200. Alexa 488 anti-keçi 1: 500, Alexa 594 anti-fare 1: 500, Alexa 647 anti-tavşan 1: 500 Aşağıdaki ikincil antikor dilüsyonları kullanın. </li><li> Ilk önce PBS içinde 20 ml buz gibi soğuk% 4 paraformaldehid /% 1 glutaraldehid, ardından 20 mi RT PBS ile transcardial perfüzyon 12 yerine, yarı veya ultra-ince kesit için doku hazırlanması. Adım 4.3&#39;de tarif edildiği gibi omuriliğin çıkarın. 4 ° C&#39;de PBS içinde O / N% 4 paraformaldehid /% 1 glutaraldehit düzeltildi. </li><li> Adım 4.4 açıklandığı gibi enjeksiyon sitesini tanımlamak. Enjeksiyon bölgesi içeren doku, 1 mm&#39;lik bir parça kesin. Arzu edildiği takdirde, lezyonun her iki tarafında ek 1 mm&#39;lik blokları ile hazırlanabilir. </li><li> Bir çeker ocak içinde, buz üzerinde, her blok 10 kat hacim% 1 ozmiyum tetroksit /% 1.5 potasyum ferrosiyanür eklemek60 dakika karıştırıldı. NOT: osmiyum tetroksit son derece zehirli bir maddedir ve aşırı dikkatle ele alınmalıdır. Ozmiyum tetroksit ile temas eden her türlü malzemenin nötrleştirme için mısır yağı (ozmiyum tetroksit çözeltisi olarak iki hacim) yerleştirilmelidir. </li><li> Mısır yağı içinde atarak, oda sıcaklığında 10 dakika boyunca 0.2 M kakodilat kordon 3 kez yıkayın. Dereceli etanol solüsyonları (suda,% 50,% 70,% 90,% 95, 2 kat,% 100 ile 2 kez, propilen oksit ile 2 kez) ile oda sıcaklığında 10 dakika boyunca birlikte dihidrat. </li><li> Üreticinin talimatlarına göre reçine embed kordonlar. </li><li> Bir ultramicrotome blokları kesin ve mikroskop slaytlar üzerinde su damlacıkları üzerine bölümleri monte edin. Kuru kadar sıcak bir plaka (yaklaşık 50 ° C) yerleştirin kayar. </li><li> 50 ° C&#39;de 10-15 saniye boyunca slaytlar üzerine mavi,% 1 toluidin /% 2 boraks solüsyonu ve bir kaç damla eklenerek miyelin görselleştirmek. Montaj medya ile su, kuru, ve lamel ile durulayın. Parlak alan mikroskobu Görüntü bölümleri. </li></ol>

<ol>
	<li>Blakemore, W. F., Eames, R. A., Smith, K. J., McDonald, W. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remyelination+in+the+spinal+cord+of+the+cat+following+intraspinal+injections+of+lysolecithin.">Remyelination in the spinal cord of the cat following intraspinal injections of lysolecithin.</a> J. Neurol. Sci. 33 (1-3), 31-43 (1977).</li><li>Jeffery, N. D., Blakemore, W. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remyelination+of+mouse+spinal+cord+axons+demyelinated+by+local+injection+of+lysolecithin.">Remyelination of mouse spinal cord axons demyelinated by local injection of lysolecithin.</a> J. Neurocytol. 24 (10), 775-781 (1995).</li><li>Blakemore, W. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Invasion+of+Schwann-cells+into+the+spinal-cord+of+rat+following+local+injections+of+lysolecithin.">Invasion of Schwann-cells into the spinal-cord of rat following local injections of lysolecithin.</a> Neuropathol. Appl. Neurobiol. 2 (1), 21-39 (1976).</li><li>Shields, S. A., Gilson, J. M., Blakemore, W. F., Franklin, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remyelination+occurs+as+extensively+but+more+slowly+in+old+rats+compared+to+young+rats+following+gliotoxin-induced+CNS+demyelination.">Remyelination occurs as extensively but more slowly in old rats compared to young rats following gliotoxin-induced CNS demyelination.</a> Glia. 28 (1), 77-83 (1999).</li><li>Patrikios, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remyelination+is+extensive+in+a+subset+of+multiple+sclerosis+patients.">Remyelination is extensive in a subset of multiple sclerosis patients.</a> Brain. 129 (Pt 12), 3165-3172 (2006).</li><li>Keough, M. B., Yong, V. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remyelination+therapy+for+multiple+sclerosis).">Remyelination therapy for multiple sclerosis).</a> Neurotherapeutics. 10 (1), 44-54 (2013).</li><li>Hall, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+injections+of+lysophosphatidyl+choline+into+white+matter+of+the+adult+mouse+spinal+cord.">The effect of injections of lysophosphatidyl choline into white matter of the adult mouse spinal cord.</a> J. Cell Sci. 10 (2), 535-546 (1972).</li><li>Miron, V. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=M2+microglia+and+macrophages+drive+oligodendrocyte+differentiation+during+CNS+remyelination.">M2 microglia and macrophages drive oligodendrocyte differentiation during CNS remyelination.</a> Nat. Neurosci. 16 (9), 1211-1218 (2013).</li><li>Kotter, M. R., Setzu, A., Sim, F. J., Van Rooijen, N., Franklin, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macrophage+depletion+impairs+oligodendrocyte+remyelination+following+lysolecithin-induced+demyelination.">Macrophage depletion impairs oligodendrocyte remyelination following lysolecithin-induced demyelination.</a> Glia. 35 (3), 202-212 (2001).</li><li>Lau, L. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chondroitin+sulfate+proteoglycans+in+demyelinated+lesions+impair+remyelination.">Chondroitin sulfate proteoglycans in demyelinated lesions impair remyelination.</a> Ann. Neurol. 72 (3), 419-432 (2012).</li><li>Fancy, S. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dysregulation+of+the+Wnt+pathway+inhibits+timely+myelination+and+remyelination+in+the+mammalian+CNS.">Dysregulation of the Wnt pathway inhibits timely myelination and remyelination in the mammalian CNS.</a> Genes Dev. 23 (13), 1571-1585 (2009).</li><li>Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Whole+animal+perfusion+fixation+for+rodents.">Whole animal perfusion fixation for rodents.</a> J. Vis. Exp. (65), (2012).</li><li>Skihar, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Promoting+oligodendrogenesis+and+myelin+repair+using+the+multiple+sclerosis+medication+glatiramer+acetate.">Promoting oligodendrogenesis and myelin repair using the multiple sclerosis medication glatiramer acetate.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106 (42), 17992-17997 (2009).</li><li>Plemel, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Platelet-derived+growth+factor-responsive+neural+precursors+give+rise+to+myelinating+oligodendrocytes+after+transplantation+into+the+spinal+cords+of+contused+rats+and+dysmyelinated+mice.">Platelet-derived growth factor-responsive neural precursors give rise to myelinating oligodendrocytes after transplantation into the spinal cords of contused rats and dysmyelinated mice.</a> Glia. 59 (12), 1891-1910 (2011).</li><li>Chong, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurite+outgrowth+inhibitor+Nogo-A+establishes+spatial+segregation+and+extent+of+oligodendrocyte+myelination.">Neurite outgrowth inhibitor Nogo-A establishes spatial segregation and extent of oligodendrocyte myelination.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109 (4), 1299-1304 (2012).</li><li>Sturrock, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myelination+of+the+mouse+corpus+callosum.">Myelination of the mouse corpus callosum.</a> Neuropathol. Appl. Neurobiol. 6 (6), 415-420 (1980).</li><li>Young, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oligodendrocyte+dynamics+in+the+healthy+adult+CNS:+evidence+for+myelin+remodeling.">Oligodendrocyte dynamics in the healthy adult CNS: evidence for myelin remodeling.</a> Neuron. 77 (5), 873-885 (2013).</li><li>Woodruff, R. H., Franklin, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Demyelination+and+remyelination+of+the+caudal+cerebellar+peduncle+of+adult+rats+following+stereotaxic+injections+of+lysolecithin,+ethidium+bromide,+and+complement/anti-galactocerebroside:+a+comparative+study.">Demyelination and remyelination of the caudal cerebellar peduncle of adult rats following stereotaxic injections of lysolecithin, ethidium bromide, and complement/anti-galactocerebroside: a comparative study.</a> Glia. 25 (3), 216-228 (1999).</li><li>Mei, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Micropillar+assays+as+a+high-throughput+screening+platform+for+therapeutics+in+multiple+sclerosis.">Micropillar assays as a high-throughput screening platform for therapeutics in multiple sclerosis.</a> Nat. Med. 20 (8), 954-960 (2014).</li><li>Powers, B. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remyelination+reporter+reveals+prolonged+refinement+of+spontaneously+regenerated+myelin.">Remyelination reporter reveals prolonged refinement of spontaneously regenerated myelin.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110 (10), 4075-4080 (2013).</li><li>Smith, K. J., Blakemore, W. F., McDonald, W. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Central+remyelination+restores+secure+conduction.">Central remyelination restores secure conduction.</a> Nature. 280 (5721), 395-396 (1979).</li><li>Jeffery, N. D., Blakemore, W. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Locomotor+deficits+induced+by+experimental+spinal+cord+demyelination+are+abolished+by+spontaneous+remyelination.">Locomotor deficits induced by experimental spinal cord demyelination are abolished by spontaneous remyelination.</a> Brain. 120 (Pt 1), 27-37 (1997).</li><li>Duncan, I. D., Brower, A., Kondo, Y., Curlee, J. F., Schultz, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extensive+remyelination+of+the+CNS+leads+to+functional+recovery.">Extensive remyelination of the CNS leads to functional recovery.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106 (16), 6832-6836 (2009).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Hayvan modellerinde çok sayıda MS, en tanınabilir deneysel otoimmün ensefalomiyelit (EAE) modeli üzerinde geliştirilmiştir. EAE olarak, kemirgenler, bir miyelin peptid bir parçası aşısı ve artan felç tezahür inflamatuar lezyon gelişimini tabi olan. Yarı veya ultra ince için doku işlerken Öncelikle, inflamatuar lezyonların yeri biraz rastgele ve lezyon yerini: Bu model, bağışıklık MS ilaçların klinik öncesi testler için yararlı olsa da, bu üç ana nedenden dolayı yeniden miyelin oluşumunu incelemek için ideal değildir bölümler zor olabilir. İkinci remiyelinizasyon belirli bir zaman boyunca oluşur ve tek bir EAE lezyonun kesin yaşı sürekli non-invaziv manyetik rezonans görüntüleme olmadan bilinen edilemez olduğunu. Üçüncü remiyelinizasyon ilacın birincil sonucu olmayabilir EAE ilaç tedavisi sonrasında doğal olarak oluşan kemirgenler fenomen ve remiyelinizasyon kanıt olduğunu, amainflamasyonu azaltarak bir ikincil fenomen yerine. Demiyelinasyon üretilmesi için bir başka genel yöntem diyet bakır kenetleyici cuprizone sokulması ile elde edilir. Bu özellikle korpus kallosum olarak, yaygın demiyelinizasyon sonuçlanır. Öncelikle, akson çapları (ve dolayısıyla miyelin kalınlığı) Diğer MSS bölgelere göre daha küçüktür ve bu nedenle ince remyelinated kılıflar demiyelinize asla olduğunu ayırt edilemez olabilir: Aşağıdaki nedenlerden dolayı remiyelinizasyon bir site olarak korpus kallosum okuyan sınırlamalar vardır. Fare korpus kallosum&gt;% 70 miyelinsiz aksonlar 16 içerdiğinden İkincisi, bir remyelinated bölüm 17 normal meydana yetişkin, hasarlı miyelin veya de novo sentezi miyelin gerçek onarım olup olmadığı belirsiz olabilir. Bu yeniden miyelin oluşumunu incelemek için en iyi model toksinlerin direkt enjeksiyon, ya lisolesitin, ethid olduğunu, bizim inanç olduğunukaudal serebral peduncles 18 veya spinal kord beyaz cevher içine iyum bromür, ya da diğerleri. önceki konum sadece hassas 3 boyutlu stereotaktik enjeksiyon ile elde edilir, ve bağlı serebellar pedinküllerin küçük boyutuna göre daha büyük kemirgenlerde (sıçan) ile sınırlıdır. Bu De- ve yeniden miyelin oluşumunu okuyan transgenik farelerin geniş kaynak dışlar. Spinal kord, ancak, kolay erişilebilir cerrahi birçok büyük beyaz cevher yolları içerir. Rostral torakal segmentte omurları arasındaki alanlarda kaudal torakal cerrahi prosedürlerde gerekli bir adımdır bir laminektomi, gerek kalmadan omuriliğin maruz sağlar. Özellikle ventral beyaz maddeyi hedef bir avantajı aksonlar remiyelinizasyon ölçümü yaparak, dorsal beyaz cevher daha eşit daha büyük olduğunu daha az belirsiz görev benzer korpus kallosum ile ilişkili zorluklar. Ayrıca, ventral beyaz madde çok daha büyük bir t yaparenjekte alanı HEDEF; Aynı sapma ventral hala önemli bir demiyelinizan lezyon üretecektir ise yanal sırt bölgesinde birkaç yüz mikron, sütunun dışında kılcal yer olacaktır. Bazı protokoller dorsal ve aynı hayvan 19 ventral sütunlar hem içine enjekte lisolesitin. Bu doğru kılcal yerleştirme olasılığını ve daha az hayvanlarda ölçülebilir lezyonların sayısını hem de artırabilir. Sunulan mevcut veri işlem sırasında 8-10 haftalık hayvanlardan iken, biz de remiyelinizasyon 4 belirgin yavaş olarak açıklanan 8-10 aylık fareler, aynı prosedürü kullanarak başarı vardı. Remiyelinizasyon Niceliklendirilmesi önemsiz bir girişim değildir. Bir santral dogma remyelinated kesimleri sağlıklı muadillerine göre ortalama uzunluğu kısa ve incedir ve kesit yarı o böylece g-oranı hesaplamaları (akson çapı akson + miyelin çapı bölü) olduğunu öne sürenr ince kesitler standart prosedür haline gelmiştir. Ancak, remyelinated segmentler zaman üzerinde 2 kalınlaştırmak ve remiyelinizan oligodendrositlerin bir transgenik muhabiri kullanarak yeni bir çalışma, birçok internod sonunda kontrol 20 ayırt edilemez hale düşündürmektedir bilinmektedir. Lezyon içindeki olgun oligodendrositlerin sayısı belirleme oligodendrositler internod geniş sayıda yapabilen gibi, onarım ölçmek için dolaylı bir yoldur ve remiyelinizasyon-bağlı modeline önemli bir bölümü kullanılmış olabilir Schwann hücrelerinin 3 den oluşur. Remiyelinizasyon saltatory iletim 21 restorasyonu ile bağlantılı olduğu gibi tabii ki, onarım nihai metrik nörolojik defisit fonksiyonel iyileşme olacaktır. Remiyelinizasyon bazı türlerde 22,23 fonksiyonun geri kazanım ile ilişkilendirilmiştir edilmiş olmakla beraber, bu sıçangil lisolesitin çalışmalarda standart bir prosedür olmamıştır. Bu durum, açık Gözlem eksikliğinden dolayı büyük olasılıklaBöyle EAE ve hatta cuprizone olarak daha sağlam demiyelinizasyon modelleri ile karşılaştırıldığında dorsal veya ventral ya lezyonlardan mümkün açıkları. Biz remiyelinizasyon ile enjeksiyon, ve sonraki kurtarma lisolesitin kaynaklanan fonksiyonel açıkları, sadece ince Sensorimotor işleyişi hassas testler kullanılarak gözlemlenebilir olacağına inanıyoruz. Bir kaba metodolojik bir yaklaşım olsa, yukarıda sıralanan hayvan modellerinde iki yanında &quot;remiyelinizasyon&quot; A PubMed arama, EAE (188) ve cuprizone (197) ile karşılaştırıldığında (109) lisolesitin için daha az arama hit gösterir. Demiyelinizasyonu lisolesitin yeniden miyelin oluşumunu incelemek için üstün bir yaklaşım olduğunu, bizim argüman, neden ise en az tartışılan? Belki de bu yöntemi kullanarak bir yakalama cerrahi işlemi gerçekleştirmek teknik zorluk, bir inanç kaynaklanmaktadır. Aslında, bu prosedür tüm, Ticaret malzemeleri gerektiren, hızlı, uygun maliyetli ve hiçbir rutin doku diseksiyonu daha zorolarak mevcut. Bu protokol miyelin onarım heyecanlı ve genişleyen alanı çalışmak için kendi repertuarına bu güçlü modeli eklemek istediğiniz olanlar için yararlıdır kanıtlıyor bizim umudumuz.

Multipl skleroz (MS) bağışıklık hücre infiltrasyonu ve kayıp miyelin, oligodendrositlerin, akson ve nöron içeren plaklar ile karakterize santral sinir sistemi (MSS) kronik demiyelinizan hastalığıdır. Çoğu hasta remisyon dönemleri takip nörolojik semptomlar geniş bir yelpazede eşliğinde inflamatuar nüks oluşan bir hastalık kursu var. Bu hastaların yarısından fazlası sonunda hiçbir belirgin nüks ama sürekli nörolojik düşüş ile ikincil ilerleyici aşamaya geçiş. Bu ilerici bozulma aksonal hasar ve kayıp nedeniyle olduğuna inanılmaktadır, kronik demiyelinizasyon kısmen katkıda bulunmuştur. Kayıp miyelin geri Stratejileri ve böylece hastalığın ilerlemesini geciktirmek ve belki de nörolojik belirtiler tersine çevirmek için umut verici bir tedavi yaklaşımı olarak kabul edilir. Remiyelinizasyon yeni miyelin kılıflar işe oligodendrosit öncü hücreler oluşturulur sayede MSS bir endojen onarım yanıtıMiyelin oluşturucu oligodendrositler ayırt (OPC). Remiyelinizasyon 1-3 Ancak, verimlilik 4 yaş ile birlikte azalan oldukça sağlam olması, hayvan modellerinde gösterilmiştir. MS hastalarında 5 çoğunda eksik olmasına rağmen Gerçekten de, remiyelinizasyon insanlarda görülür. MS için tüm mevcut ilaçlar öncelikle nüksleri azaltmada etkili olurken, belirgin hastalığın ilerlemesini gecikme yok, hastalığın anormal immün bileşenini hedef ve. MS tedavisi için tedavi stratejilerinin gelecek nesil ve tekerrür ilerlemesini 6 hem de önlemek için endojen remiyelinizasyon donanımıyla immünomodülasyonu gelişmeleri entegre edecek. Bir yöntem de- çalışma ve MSS remiyelinizasyon omurilik beyaz cevher 1,3,7 içine deterjan lisofosfatidilkolin (lisolesitin) doğrudan enjeksiyon içerir. Bu prosedür iyi karakterize demyelinat üretiryaralanma esas makrofaj / mikrogliyal infiltrasyonu ve aktivasyonu 8,9, reaktif astrogliyozun, aksonal homeostasis / aksonal yaralanma, ve OPC çoğalması ve göç 10 pertürbasyonuna oluşan ing. lezyon tahmin edilebileceği bir kaç hafta süre içinde geliştikçe ve tam remiyelinizan nihayetinde yeteneğine sahiptir. Bu yöntem de- ve remiyelinizasyon katılan olayların koreografisini eğitim özellikle yararlı olmuştur. Ayrıca, bir demiyelinizan hakaret aşağıdaki onarım hızlandırmak için aday tedavilerinin klinik öncesi testler için bir araç olarak kabul edilmiştir.

<table><tbody><tr><td>spring scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>15004-08</td><td></td></tr><tr><td>forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11254-20</td><td></td></tr><tr><td>retractor</td><td>Fine Science Tools</td><td>17003-03</td><td></td></tr><tr><td>clippers</td><td>Philips</td><td>QG3330</td><td></td></tr><tr><td>heating recovery chamber</td><td>Peco Services</td><td>V1200</td><td></td></tr><tr><td>surgical tape</td><td>3M</td><td>1527-1</td><td></td></tr><tr><td>scalpel handle</td><td>Fine Science Tools</td><td>10003-12</td><td></td></tr><tr><td>scalpel blade</td><td>Feather</td><td>No. 15</td><td></td></tr><tr><td>sponge spear</td><td>Beaver Visitec</td><td>581089</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Vicryl sutures</td><td>Ethicon</td><td>J511G</td><td></td></tr><tr><td>curved ToughCut spring scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>15123-12</td><td></td></tr><tr><td>32 G metal needle</td><td>BD</td><td>305106</td><td></td></tr><tr><td>needle holders</td><td>Fine Science Tools</td><td>12002-14</td><td></td></tr><tr><td>angled forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-35</td><td></td></tr><tr><td>cotton tipped applicator</td><td>Puritan</td><td>806-WC</td><td></td></tr><tr><td>gauze pads</td><td>Safe Cross First Aid</td><td>3763</td><td></td></tr><tr><td>10 &amp;mu;l syringe</td><td>Hamilton</td><td>7635-01</td><td>make sure to purchase the microliter, not gastight syringe</td></tr><tr><td>compression fitting</td><td>Hamilton</td><td>55750-01</td><td>contains the 2 ferrules and removable nut, but the nut that comes with the 10 &amp;mu;l syringe is a tighter fit</td></tr><tr><td>priming kit</td><td>Hamilton</td><td>PRMKIT</td><td>contains the priming syringe, removable hub needle and the rubber discs</td></tr><tr><td>pre-pulled glass capillaries</td><td>WPI</td><td>TIP10TW1 (pack of 10)</td><td>contains capillaries with 10 &amp;mu;m inner diameter. 30 &amp;mu;m inner diameter also work (TIP30TW1)</td></tr><tr><td>stereotactic frame</td><td>David Kopf instruments</td><td>Model 900</td><td></td></tr><tr><td>Ultrasonic cleaner</td><td>Fisher Scientific</td><td>FS-20</td><td></td></tr><tr><td>Tissue-Tek optimal cutting temperature (OCT) compound</td><td>VWR</td><td>25608-930</td><td></td></tr><tr><td>Tissue-Tek intermediate cryomold</td><td>VWR</td><td>25608-924</td><td></td></tr><tr><td>cryostat</td><td>Leica</td><td>CM1900</td><td></td></tr><tr><td>microscope slides</td><td>VWR</td><td>48311-703</td><td></td></tr><tr><td>bright field microscope</td><td>Olympus&amp;nbsp;</td><td>BX51</td><td></td></tr><tr><td>ultramicrotome</td><td>Leica EM UC7</td><td>EM UC7</td><td></td></tr><tr><td>Lysophosphatidylchoine</td><td>Sigma</td><td>L1381</td><td></td></tr><tr><td>2-methylbutane</td><td>Sigma</td><td>M32631</td><td></td></tr><tr><td>Triton x-100</td><td>Sigma</td><td>X-100</td><td></td></tr><tr><td>goat serum</td><td>Sigma</td><td>G9023</td><td></td></tr><tr><td>Mouse anti-SMI312 antibody</td><td>Covance</td><td>SMI-312R</td><td>1:2,000 dilution</td></tr><tr><td>Rabbit anti-MBP antibody</td><td>Abcam</td><td>AB40390</td><td>1:1000 dilution</td></tr><tr><td>Goat anti-PDGFR&amp;alpha; antibody</td><td>R&amp;amp;D Systems</td><td>AF1062</td><td>1:100 dilution</td></tr><tr><td>Rabbit anti-Olig2 antibody</td><td>Millipore</td><td>AB9610</td><td>1:200 dilution</td></tr><tr><td>Mouse anti-CC1 antibody</td><td>Calbiochem</td><td>OP80</td><td>1:200 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit IgG</td><td>Life technologies</td><td>A-11008</td><td>1:500 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 546 goat anti-mouse IgG</td><td>Life technologies</td><td>A-11003</td><td>1:500 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 donkey anti-goat IgG</td><td>Jackson Immuno</td><td>705-546-147</td><td>1:500 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 donkey anti-mouse IgG</td><td>Jackson Immuno</td><td>715-586-151</td><td>1:500 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647 donkey anti-rabbit IgG</td><td>Jackson Immuno</td><td>711-606-152</td><td>1:500 dilution</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Oxoid</td><td>BR0014</td><td></td></tr><tr><td>isopropyl alcohol</td><td>Sigma</td><td>109827</td><td></td></tr><tr><td>ketamine</td><td>CDMV</td><td></td><td></td></tr><tr><td>xylazine</td><td>CDMV</td><td></td><td></td></tr><tr><td>iodine</td><td>West Penetone</td><td>2021</td><td></td></tr><tr><td>Vaseline petroleum jelly</td><td>VWR</td><td>CA05971</td><td></td></tr><tr><td>paraformaldehyde</td><td>Sigma</td><td>P6148</td><td></td></tr><tr><td>sucrose</td><td>Sigma</td><td>S5016</td><td></td></tr><tr><td>Eriochrome Cyanine R</td><td>Sigma</td><td>32752</td><td></td></tr><tr><td>sulfuric acid</td><td>Sigma</td><td>320501</td><td></td></tr><tr><td>iron(III) chloride</td><td>Sigma</td><td>157740</td><td></td></tr><tr><td>ammonium hydroxide</td><td>Sigma</td><td>320145</td><td></td></tr><tr><td>Acrytol</td><td>Leica Biosystems</td><td>3801700</td><td></td></tr><tr><td>Citrisolv</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-143-975</td><td></td></tr><tr><td>horse serum</td><td>Sigma</td><td>H0146</td><td></td></tr><tr><td>glutaraldehyde</td><td>Electron Micrscopy Sciences</td><td>16220</td><td></td></tr><tr><td>osmum tetroxide</td><td>Electron Micrscopy Sciences</td><td>19150</td><td>highly toxic</td></tr><tr><td>potassium hexacyanoferrate (II) trihydrate</td><td>Sigma</td><td>P3289</td><td></td></tr><tr><td>corn oil</td><td>Sigma</td><td>C8267</td><td></td></tr><tr><td>polyvinyl alcohol</td><td>Sigma</td><td>P8136</td><td></td></tr><tr><td>glycerol</td><td>Sigma</td><td>G9012</td><td></td></tr><tr><td>cacodylic acid</td><td>Electron Micrscopy Sciences</td><td>12300</td><td></td></tr><tr><td>propylene oxide</td><td>Electron Micrscopy Sciences</td><td>20401</td><td></td></tr><tr><td>EMBED kit</td><td>Electron Micrscopy Sciences</td><td>14120</td><td></td></tr><tr><td>Toluidine Blue O</td><td>Sigma</td><td>T3260</td><td></td></tr><tr><td>Sodium tetraborate decahydrate</td><td>Sigma</td><td>S9640</td><td></td></tr><tr><td>Recipes</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Eriochrome cyanine solution</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ingredient</td><td></td><td></td><td>Amount to add</td></tr><tr><td>Eriochrome Cyanine R</td><td></td><td></td><td>0.8 g</td></tr><tr><td>sulfuric acid</td><td></td><td></td><td>400 ml 0.5%</td></tr><tr><td>iron(III)chloride</td><td></td><td></td><td>20 ml 10%</td></tr><tr><td>water</td><td></td><td></td><td>80 ml</td></tr><tr><td>*add eriochrome cyanine to sulfuric acid, followed by iron(III) chloride and water. Solution can be kept after use. Make fresh once per year.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gelvatol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ingredient</td><td></td><td></td><td>Amount to add</td></tr><tr><td>PBS</td><td></td><td></td><td>140 mL</td></tr><tr><td>polyvinyl alcohol</td><td></td><td></td><td>20 g</td></tr><tr><td>glycerol</td><td></td><td></td><td>40 g</td></tr><tr><td>*mix well, place at&amp;nbsp; 37 &amp;deg;C O/N, centrifuge at 1,960 x g 30 min, aliquot into 40 tubes</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

experimental demyelination and remyelination of murine spinal cord by focal injection of lysolecithin

Multipl skleroz kayıp oligodendrositlerin, miyelin, aksonlar ve nöron içeren plak oluşumu ile karakterize edilen merkezi sinir sisteminin enflamatuvar demiyeline eden bir hastalıktır. Remiyelinizasyon yeni miyelin miyelin oluşturan oligodentrositlere çoğalması, işe alım ve oligodendrosit öncü hücrelerin farklılaşması sonra üretileceği bir endojen onarım mekanizması, ve daha fazla hasara gelen aksonlar korumak için gereklidir. Şu anda, multipl skleroz tedavisi için tüm terapötik inflamatuar relaps azaltır ama geri dönüşümsüz nörolojik düşüş ilerlemesini engellemez hastalığın anormal bağışıklık bileşeni, hedef. Bu remiyelinizasyon-teşvik stratejileri hastalığın ilerlemesini geciktirmek ve belki de nörolojik belirtiler ters olabilir geliştirilmesi bu nedenle zorunludur. Demiyelinizasyonun Çeşitli hayvan modelleri deneysel otoimmün ensefalomyelit ve curprizone dahil, mevcut; Bununla birlikte, Limi vardıryeniden miyelin oluşumunu çalışmak için bunların kullanımı kabili. Bir daha sağlam bir yaklaşım kemirgenler omurilik beyaz madde içine deterjan lizolesitin dahil merkezi sinir sistemi içine toksin enjeksiyonu fokal vardır. Bu protokol, farelerde ventral beyaz madde içine enjekte lisolesitin dahil cerrahi işlem hızlı, maliyet-etkin ve piyasada mevcut olan daha ek malzeme gerektirir göstermektedir. Bu prosedür, aynı zamanda, aday remiyelinizasyon destekleyici terapötik taranması için bir ön-klinik bir araç olarak sadece remiyelinizasyon sürecinde yer alan, normal olayları incelemek için önemlidir.

Ventral beyaz cevher içine lisolesitin Odak enjeksiyonu yaklaşık 3 mm (Şekil 2) bir mesafe üzerinde saptanabilen bir ayrık demiyelinizan lezyon üretir. Lezyon miyelin için çekirdek (MBP) ve akson (SMI312) immünohistokimyasal boyama 7 gün (Şekil 3) de miyelin elimden edilmiş aksonlar gösterir. 14 gün, birçok aksonlar remiyelinizasyon oluşumunu göstermektedir MBP-pozitif halkalar ile çevrilidir. Oligodendrosit soy (PDGFRα, Olig2, CC1) hücreler için boyama, 7 gün, hem de OPC kıyasla olgun oligodendrosit dağılımı ile karşılaştırıldığında 14 gün hücrelerin toplam sayısı açısından önemli bir artış (Şekil 4) . Buna paralel olarak, toluidin mavisi ile lekelenmiş de yarı ince kesitler, bu i remyelinated belirten nadiren 7 gün sonra (Şekil 5) tespit edilir 14. günlerde ince miyelin kılıflarının varlığını ortaya çıkarmaknternodes. Prosedür hayvanlar arasındaki yüksek tekrarlanabilir. Ağır solunum durağan konumunu değiştirir zaman varyasyon meydana kılcal-bu genellikle yeterli sedasyon ile ilgili bir sorun değil. Akson hasar modeli 1 erken kullanımı beri tarif edilmiştir lezyon, çok merkezi hariç, en az olduğu görülmektedir. Biz PBS kontrolleri enjekte da gözlemlenebilir olduğu gibi bu, cam kapiller gelen mekanik yaralanma olduğuna inanıyorum. Bununla birlikte, değişkenlik, küçük olma eğilimindedir, ve ve benzer bir prosedür kullanılarak, diğerleri grup başına 15 4 kadar az hayvan deney koşulları arasındaki farklar tespit ettik. <img alt="Şekil 1," src="/files/ftp_upload/52679/52679fig1.jpg" /> Enjekte şırınga Şekil 1. Meclis. (A) enjekte şırınga somun t üzerine dişli<html> onların çiftleşme kilidi biter 2 ferüle böyle izledi cam kılcal düz uç. Kılcal sıkıca konik yüksük içinde rahat sonra, montaj sıkı enjekte şırınga ucuna elini vidalanır. (B) astar şırınga bağlı metal göbek iğne ile lastik diskin merkezi Piece ve aşağı doğru kaydırın Baz. (C) emişli şırınga içine çözüm lisolesitin çekin. (D) yavaşça lizolesitin ilk damla iğne ucu görünür kadar. (E) hazırlama şırınga basınız enjekte varil içine astar şırınga yerleştirin kauçuk disk ile bir firma mühür, şırınga. Bu kılcal sonuna kadar bitene kadar yavaşça çözüm basın. Enjekte şırınga içine hava kabarcıkları tanıtan olmadan metal göbek iğneyi çıkarmak için piston üzerindeki baskıyı korurken dikkatlice hazırlama şırınga çekme./ 52.679 / 52679fig1large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;upload&gt; bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için burayı tıklayınız. <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/52679/52679fig2.jpg" /> Eriochrome cyanine ile lekelenmiş lezyon lisolesitin Şekil 2. Örnek. Seri kesitler eriochrome cyanine ile boyanmış 14 gün değerinde bir karakteristik lisolesitin lezyon (400 um aralıklı) miyelin (mavi) görselleştirmek için. Bu demiyelinizasyon ventral beyaz cevher ile sınırlıdır Not ve lezyon rostral / kaudal yönde yaklaşık 3 mm açıklıklı söyledi. Ölçek çubuğu = 1 mm. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/52679/52679fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/52679/52679fig3.jpg" /> Şekil 3. Aksonlar ve miyelin içindelisolesitin modeli. (A) sahte (PBS) 7 gün omuriliği enjekte miyelin halkalarla çevrelenmiş sağlıklı aksonlar göstermektedir. 7 gün lezyon bozulmuş miyelin yanı sıra aksonlar soyulmuş gösterir lisolesitin (B). (C) 14 gün sonra, bir akson (beyaz ok başları ile gösterilen örnekler) oranı miyelin halkaların yeniden ortaya çıkma ile ilişkilidir. Ölçek çubuğu = 10 mikron. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/52679/52679fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/52679/52679fig4.jpg" /> Şekil lisolesitin modelinde 4. oligodendrosit kökenli hücreler. (A, C) 7 gün sonra, CC1 + oligodendrositler (kırmızı çubuklar) için daha büyük bir PDGFRα + OPC gösterimi (beyaz çubuklar) göreli vardır; barlar içinde sayıları yüzdelerini temsil ederler. Olig2 için problanmıştıroligodendrosit soy hücrelerinin boyama teyit etmektedir. (B, C) ​​14 gün sonra, var 7 gün (p &lt;0.05, iki-kuyruklu t-testi ile karşılaştırıldığında oligodendrosit soy hücrelerinin toplam sayısında belirgin bir artış olduğunu, grup başına n = 4 ). 7 gün (p &lt;0.0001, Fisher&#39;in kesin testi) göre 14 gün OPC için oligodendrositlerin dağılımında önemli bir artış vardır. Ölçek çubuğu 10 mikron =. Her alan 60X orijinal büyütme yakalanır. Değerler ortalama ± SD bulunmaktadır. * P &lt;0.05 belirtir. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/52679/52679fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/52679/52679fig5.jpg" /> Lisolesitin modelinde Şekil 5. remiyelinizasyon. (A) hea ventral beyaz cevher bölümüne yarı ince boyanmış bir kesit toluidin mavisilthy fare (B), 7 gün sonra., ilgili miyelin kalınlığında kalibreli, geniş bir aralıkta aksonlar gösterir miyelin kılıflarının eksikliği (sağ alt) bir etkilenmemiş alanına bitişik görülmektedir. 14 gün sonra (C) ince miyelinli kılıflar ( Kırmızı ok uçları ile gösterilir örnekler) remyelinated kesimleri gösteren lezyon boyunca görünür. Ölçek çubuğu = 10 mikron. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/52679/52679fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Experimental Demyelination and Remyelination of Murine Spinal Cord by Focal Injection of Lysolecithin at JoVE.com

Experimental Demyelination and Remyelination of Murine Spinal Cord by Focal Injection of Lysolecithin

Demyelinating diseases can be modeled in animals by focal application of lysolecithin into the CNS. A single injection of lysolecithin into mouse spinal cord produces a lesion that spontaneously repairs over time. The goal is to study factors involved in de- and remyelination, and to test agents for enhancing repair.

Lisolesitin Odak Enjeksiyon Deneysel Demyelizasyon ve Kemirgen Omurilik remiyelinizasyon

Multiple sclerosis is an inflammatory demyelinating disease of the central nervous system characterized by plaque formation containing lost ...

experimental-demyelination-remyelination-murine-spinal-cord-focal

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Neuroscience

26.9K Görüntüleme.  Hotchkiss Brain Institute at University of Calgary. Demyelinating diseases can be modeled in animals by focal application of lysolecithin into the CNS. A single injection of lysolecithin into mouse spinal cord produces a lesion that spontaneously repairs over time. The goal is to study factors involved in de- and remyelination, and to test agents for enhancing repair.

Video: Experimental Demyelination and Remyelination of Murine Spinal Cord by Focal Injection of Lysolecithin

Determining Immune System Suppression versus CNS Protection for Pharmacological Interventions in Autoimmune Demyelination

A major hallmark of the autoimmune demyelinating disease multiple sclerosis (MS) is immune cell infiltration into the brain and spinal cord resulting in myelin destruction, which not only slows conduction of nerve impulses, but causes axonal injury resulting in motor and cognitive decline. Current treatments for MS focus on attenuating immune cell infiltration into the central nervous system (CNS). These treatments decrease the number of relapses, improving quality of life, but do not completely eliminate relapses so long-term disability is not improved. Therefore, therapeutic agents that protect the CNS are warranted. In both animal models as well as human patients with MS, T cell entry into the CNS is generally considered the initiating inflammatory event. In order to assess if a drug protects the CNS, any potential effects on immune cell infiltration or proliferation in the periphery must be ruled out. This protocol describes how to determine whether CNS protection observed after drug intervention is a consequence of attenuating CNS-infiltrating immune cells or blocking death of CNS cells during inflammatory insults. The ability to examine MS treatments that are protective to the CNS during inflammatory insults is highly critical for the advancement of therapeutic strategies since current treatments reduce, but do not completely eliminate, relapses (i.e., immune cell infiltration), leaving the CNS vulnerable to degeneration.

This protocol describes how to determine whether pharmacological treatments for experimental autoimmune encephalomyelitis show CNS protection as a consequence of suppressing immune cell infiltration or are neuroprotective during the onslaught of immune cell infiltration.

Otoimmün demiyelinizasyonun Farmakolojik Müdahaleler için CNS Koruma karşı Belirlenmesi Bağışıklık Sistemi Bastırma

A major hallmark of the autoimmune demyelinating disease multiple sclerosis (MS) is immune cell infiltration into the brain and spinal cord resulting in ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Two-photon Imaging of Cellular Dynamics in the Mouse Spinal Cord

Two-photon (2P) microscopy is utilized to reveal cellular dynamics and interactions deep within living, intact tissues. Here, we present a method for live-cell imaging in the murine spinal cord. This technique is uniquely suited to analyze neural precursor cell (NPC) dynamics following transplantation into spinal cords undergoing neuroinflammatory demyelinating disorders. NPCs migrate to sites of axonal damage, proliferate, differentiate into oligodendrocytes, and participate in direct remyelination. NPCs are thereby a promising therapeutic treatment to ameliorate chronic demyelinating diseases. Because transplanted NPCs migrate to the damaged areas on the ventral side of the spinal cord, traditional intravital 2P imaging is impossible, and only information on static interactions was previously available using histochemical staining approaches. Although this method was generated to image transplanted NPCs in the ventral spinal cord, it can be applied to numerous studies of transplanted and endogenous cells throughout the entire spinal cord. In this article, we demonstrate the preparation and imaging of a spinal cord with enhanced yellow fluorescent protein-expressing axons and enhanced green fluorescent protein-expressing transplanted NPCs.

A new ex vivo preparation for imaging the mouse spinal cord. This protocol allows for two-photon imaging of live cellular interactions throughout the spinal cord.

Fare Omurilik Hücresel Dynamics İki foton Görüntüleme

Two-photon (2P) microscopy is utilized to reveal cellular dynamics and interactions deep within living, intact tissues. Here, we present a method for ...

Nörobilim

Rat Model of Widespread Cerebral Cortical Demyelination Induced by an Intracerebral Injection of Pro-Inflammatory Cytokines

Multiple sclerosis (MS) is the most common immune-mediated disease of the central nervous system (CNS) and progressively leads to physical disability and death, caused by white matter lesions in the spinal cord and cerebellum, as well as by demyelination in grey matter. Whilst conventional models of experimental allergic encephalomyelitis are suitable for the investigation of the cell-mediated inflammation in the spinal and cerebellar white matter, they fail to address grey matter pathologies. Here, we present the experimental protocol for a novel rat model of cortical demyelination allowing the investigation of the pathological and molecular mechanisms leading to cortical lesions. The demyelination is induced by an immunization with low-dose myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG) in an incomplete Freund&#39;s adjuvant followed by a catheter-mediated intracerebral delivery of pro-inflammatory cytokines. The catheter, moreover, enables multiple rounds of demyelination without causing injection-induced trauma, as well as the intracerebral delivery of potential therapeutic drugs undergoing a preclinical investigation. The method is also ethically favorable as animal pain and distress or disability are controlled and relatively minimal. The expected timeframe for the implementation of the entire protocol is around 8 - 10 weeks.

The protocol presented here allows the reproduction of a widespread grey matter demyelination of both cortical hemispheres in adult male Dark Agouti rats. The method comprises of intracerebral implantation of a catheter, subclinical immunization against myelin oligodendrocyte glycoprotein, and intracerebral injection of a pro-inflammatory cytokine mixture through the implanted catheter.

Pro-enflamatuar Sitokinlerin İntraserebral Enjeksiyonu ile İndüklenen Yaygın Serebral Kortikal Demiyelinasyonun Sıçan Modeli

Multiple sclerosis (MS) is the most common immune-mediated disease of the central nervous system (CNS) and progressively leads to physical disability and ...

Ex Vivo Myelination and Remyelination in Cerebellar Slice Cultures as a Quantitative Model for Developmental and Disease-Relevant Manipulations

Studying myelination&#160;in vitro&#160;and&#160;in vivo poses numerous challenges. The differentiation of oligodendrocyte precursor cells (OPCs)&#160;in vitro, although scalable,&#160;does not recapitulate axonal myelination. OPC-neuron cocultures and OPC-fiber cultures allow for the examination of in vitro myelination, but they lack additional cell types that are present in vivo, such as astrocytes and microglia. In vivo&#160;mouse models, however, are less amenable to chemical, environmental, and genetic manipulation and are much more labor intensive. Here, we describe&#160;an&#160;ex vivo mouse cerebellar slice culture (CSC) quantitative system that is useful for: 1) studying developmental myelination, 2) modeling demyelination and remyelination, and 3) conducting translational research. Sagittal sections of the cerebellum and hindbrain are isolated from postnatal day (P) 0&#8211;2 mice, after which they myelinate&#160;ex vivo&#160;for 12 days. During this period, slices can be manipulated in various ways, including the addition of compounds to test for an effect on developmental myelination. In addition, tissue can be fixed for electron microscopy to assess myelin ultrastructure and compaction. To model disease, CSC can be subjected to acute hypoxia to induce hypomyelination. Demyelination in these explants can also be induced by lysolecithin, which allows for the identification of factors that promote remyelination. Aside from chemical and environmental modifications, CSC can be isolated from transgenic mice and are responsive to genetic manipulation induced with Ad-Cre adenoviruses and tamoxifen. Thus, cerebellar slice cultures are a fast, reproducible, and quantifiable model for recapitulating myelination.

<meta charset="utf8"></head><body>Gelişimsel ve Hastalıkla İlgili Manipülasyonlar için Kantitatif Bir Model Olarak Serebellar Dilim Kültürlerinde Ex Vivo Miyelinasyon ve Remiyelinasyon

Presented is a protocol for an ex vivo quantitative model of demyelination and remyelination using mouse cerebellar slice cultures. This method closely recapitulates an in vivo model with its full complement of CNS cell types in intact tissue, while maintaining the chemical, genetic, and environmental amenability of an in vitro system.

Gelişimsel ve Hastalıkla İlgili Manipülasyonlar için Kantitatif Bir Model Olarak Serebellar Dilim Kültürlerinde Ex Vivo Miyelinasyon ve Remiyelinasyon

Studying myelination&#160;in vitro&#160;and&#160;in vivo poses numerous challenges. The differentiation of oligodendrocyte precursor cells (OPCs)&#160;in ...

Osmotic Pump-based Drug-delivery for In Vivo Remyelination Research on the Central Nervous System

Demyelination has been identified in not only multiple sclerosis (MS), but also other central nervous system diseases such as Alzheimer's disease and autism. As evidence suggests that remyelination can effectively ameliorate the disease symptoms, there is an increasing focus on drug development to promote the myelin regeneration process. Thus, a region-selectable and result-reliable drug delivery technique is required to test the efficiency and specificity of these drugs in vivo. This protocol introduces the osmotic pump implant as a new drug delivery approach in the lysolecithin-induced demyelination mouse model. The osmotic pump is a small implantable device that can bypass the blood-brain barrier (BBB) and deliver drugs steadily and directly to specific areas of the mouse brain. It can also effectively improve the bioavailability of drugs such as peptides and proteins with a short half-life. Therefore, this method is of great value to the field of central nervous system myelin regeneration research.

Osmotic Pump-based Drug-delivery for In Vivo Remyelination Research on the Central Nervous System

Demyelination takes place in multiple central nervous system diseases. A reliable in vivo drug delivery technique is necessary for remyelinating drug testing. This protocol describes an osmotic pump-based method that allows long-term drug delivery directly into the brain parenchyma and improves the drug bioavailability, with broad application in remyelination research.

Merkezi Sinir Sistemi Üzerine In Vivo Remiyelinasyon Araştırması için Ozmotik Pompa Bazlı İlaç Dağıtımı

Demyelination has been identified in not only multiple sclerosis (MS), but also other central nervous system diseases such as Alzheimer's disease and ...

A Stably Established Two-Point Injection of Lysophosphatidylcholine-Induced Focal Demyelination Model in Mice

Receptor-mediated lysophospholipid signaling contributes to the pathophysiology of diverse neurological diseases, especially multiple sclerosis (MS). Lysophosphatidylcholine (LPC) is an endogenous lysophospholipid associated with inflammation, and it could induce rapid damage with toxicity to myelin lipids, leading to focal demyelination. Here, a detailed protocol is presented for stereotactic two-point LPC injection that could directly cause severe demyelination and replicate the experimental demyelination injury quickly and stably in mice by surgical procedure. Thus, this model is highly relevant to demyelination diseases, especially MS, and it can contribute to the related advancing clinically-relevant research. Also, immunofluorescence and Luxol fast blue staining methods were used to depict the time course of demyelination in the corpus callosum of mice injected with LPC. In addition, the behavioral method was used to evaluate the cognitive function of mice after modeling. Overall, the two-point injection of lysophosphatidylcholine via a stereotaxic frame is a stable and reproducible method to generate a demyelination model in mice for further study.

The present protocol describes a two-point injection of lysophosphatidylcholine via a stereotaxic frame to generate a stable and reproducible demyelination model in mice.

Farelerde Lizofosfatidilkolin Kaynaklı Fokal Demiyelinasyon Modelinin Stably Olarak Kurulmuş İki Noktalı Enjeksiyonu

Receptor-mediated lysophospholipid signaling contributes to the pathophysiology of diverse neurological diseases, especially multiple sclerosis (MS). ...

Induction and Diverse Assessment Indicators of Experimental Autoimmune Encephalomyelitis

Multiple sclerosis (MS) is a typical autoimmune disease of the central nervous system (CNS) characterized by inflammatory infiltration, demyelination, and axonal damage. Currently, there are no measures to cure MS completely, but multiple disease-modifying therapies (DMT) are available to control and mitigate disease progression. There are significant similarities between the CNS pathological features of experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) and MS patients. EAE has been widely used as a representative model to determine MS drugs' efficacy and explore the development of new therapies for MS disease. Active induction of EAE in mice has a stable and reproducible effect and is particularly suitable for studying the effects of drugs or genes on autoimmune neuroinflammation. The method of immunizing C57BL/6J mice with myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG35-55) and the daily assessment of disease symptoms using a clinical scoring system is mainly shared. Given the complex etiology of MS with diverse clinical manifestations, the existing clinical scoring system can't satisfy the assessment of disease treatment. To avoid the shortcomings of a single intervention, new indicators to assess EAE based on clinical manifestations of anxiety-like moods and osteoporosis in MS patients are created to provide a more comprehensive assessment of MS treatment.

The present protocol describes the induction of experimental autoimmune encephalomyelitis in a mouse model using myelin oligodendrocyte glycoprotein and monitoring the disease process using a clinical scoring system. Experimental autoimmune encephalomyelitis-related symptoms are analyzed using mouse femur micro-computed tomography analysis and open field test to assess the disease process comprehensively.

Deneysel Otoimmün Ensefalomiyelitin İndüksiyonu ve Çeşitli Değerlendirme Göstergeleri

Multiple sclerosis (MS) is a typical autoimmune disease of the central nervous system (CNS) characterized by inflammatory infiltration, demyelination, and ...

Biyoloji

Inducing Local Demyelination in the Optic Nerve Using Lysolecithin

Source: You, Y. et al., <a href="https://appjove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/52934">Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination.</a> J. Vis. Exp. (2015)
This video demonstrates the procedure of surgically accessing the optic nerve in an anesthetized animal and precisely delivering lysolecithin to induce focal demyelination, creating neuropathological conditions for further study.

Lisolesitin kullanılarak optik sinirde lokal demiyelinizasyonun indüklenmesi

All procedures involving animal models have been reviewed by the local institutional animal care committee and the JoVE veterinary review board. ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Neuropathology

Epilepsy and Seizure Disorders

Ultrastructural Analysis of Demyelination in Mouse Spinal Cord Cross-Sections

Obtain chemically-fixed spinal cord tissue from mice induced with autoimmune demyelination at defined time points during disease progression.
The disease triggers autoreactive immune cells to attack myelin proteins, degrading the myelin sheath surrounding neuronal axons.
Oligodendrocyte precursor cells are recruited to the affected site, mature into oligodendrocytes, and reform the myelin sheath.
Rinse the tissue with a buffer to remove excess fixative, then treat it with osmium, which binds to myelin lipids and enhances contrast for imaging.
Apply heavy metal stains that bind to macromolecules and enhance contrast.
Dehydrate the tissue using increasing alcohol concentrations. Take the tissue embedded in resin and obtain ultrathin sections.
Using electron microscopy, measure the myelin sheath thickness to classify axons as demyelinating with a swollen, thicker sheath, demyelinated with no sheath, or remyelinating with a thin sheath.
Identify axonal damage characterized by reduced spacing between neurofilaments and swollen mitochondria or complete degeneration.
Analyze the progression of axonal damage and repair over time to assess disease progression.

Lisolesitin Odak Enjeksiyon Deneysel Demyelizasyon ve Kemirgen Omurilik remiyelinizasyon

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Otoimmün demiyelinizasyonun Farmakolojik Müdahaleler için CNS Koruma karşı Belirlenmesi Bağışıklık Sistemi Bastırma

Fare Omurilik Hücresel Dynamics İki foton Görüntüleme

Pro-enflamatuar Sitokinlerin İntraserebral Enjeksiyonu ile İndüklenen Yaygın Serebral Kortikal Demiyelinasyonun Sıçan Modeli

Gelişimsel ve Hastalıkla İlgili Manipülasyonlar için Kantitatif Bir Model Olarak Serebellar Dilim Kültürlerinde Ex Vivo Miyelinasyon ve Remiyelinasyon

Gelişimsel ve Hastalıkla İlgili Manipülasyonlar için Kantitatif Bir Model Olarak Serebellar Dilim Kültürlerinde Ex Vivo Miyelinasyon ve Remiyelinasyon

Merkezi Sinir Sistemi Üzerine In Vivo Remiyelinasyon Araştırması için Ozmotik Pompa Bazlı İlaç Dağıtımı

Farelerde Lizofosfatidilkolin Kaynaklı Fokal Demiyelinasyon Modelinin Stably Olarak Kurulmuş İki Noktalı Enjeksiyonu

Deneysel Otoimmün Ensefalomiyelitin İndüksiyonu ve Çeşitli Değerlendirme Göstergeleri

Lisolesitin kullanılarak optik sinirde lokal demiyelinizasyonun indüklenmesi

Fare Omurilik Kesitlerinde Demiyelinizasyonun Ultrastrüktürel Analizi