This work was supported by the Terry Fox Program of the National Cancer Institute of Canada.

NOT: Bu çalışmada gerçekleştirilen deneysel prosedürler Hayvan Bakım Sunnybrook Araştırma Enstitüsü Komitesi (Toronto, Ontario, Kanada) tarafından onaylanmıştır. Hayvanların insancıl için prosedürler her zaman dikkat edilmelidir. Bu araştırmacı bir ultrason görüntüleme sisteminin temel operasyonda eğitimli olduğu varsayılır. Bu protokol, iki kişi ile iyi çalışır. 1. Hayvan Modelleri <ol><li> Mate CD-1 erkek ve dişi Mus musculus perfüzyon çalışmaları için vahşi tip embriyolar elde etmek. </li><li> Bourdeau ve ark. 14 tarafından tarif edildiği gibi moleküler görüntüleme çalışmaları için, 129 / Ola kökenli embriyonik kök hücreleri kullanılarak, homolog birleştirme yoluyla, Eng +/- fareleri üretmek. <ol><li> Geri çaprazlama B6- Eng +/- fareler, nazik, CD-1 arka Dr. Michelle Letarte elde. Kullanım Eng +/- CD-1 çaprazlanmış embriyoları, aynı zamanda bunların İng + / + yavru kontrols. Sahnelenen embriyolar üretmek için fareler Mate. </li></ol></li></ol> 2. Deneysel hazırlanması <ol><li> Farelerin çiftleşme başlatın ve günlük fişlerini kontrol edin. Embriyonik gün 0.5 vajinal fiş görülmektedir günün öğleden olarak tanımlanır. </li><li> 500 fetal sığır serumu, 50 ml, 5, 1 M HEPES ml Penisilin-Streptomisin ve 5 ml (10.000 birim penisilin, 10,000 ug streptomisin) eklenerek embriyo ortamı hazırlamak mi Dulbecco tadil edilmiş Eagle ortamı, yüksek glikoz (DMEM) (4,500 mg / L). Folyo şişe sarın ve 4 ° C&#39;de soğutulmuş tutmak. </li><li> 20 dakika için 140 xg&#39;de 50 ml konik tüpler santrifüj net ultrason jeli. 30 ml&#39;lik şırınga içine jel çizin. Fosfat tamponlu tuz (PBS) ve bir kenara ek (işaretli) 30 mi şırınga doldurun. Embriyoların biri çöp genellikle ultrason jeli 2-3 şırınga ve PBS 4 şırınga arasında gerektirecektir. </li><li> Yaklaşık 30 cam iğneler çekin ve hamuru bir şerit bağlamak hafifçe100 x 20 mm hücre kültür kaplarına. Bu iğneler ayrıldı ve kullanım sırasında güvenli olmasını sağlar. Isıtıcı 77, Alt mıknatıs 55, Ana mıknatıs 70: cam çektirmenin kullanarak, filamanın 1 x 90 mm cam kılcal aşağıdaki ayarları kullanın. </li><li> Baz için sertleştirici 8 hacim oranı: 1 kullanılarak, (kendi çanak alacak bir çöp içinde her embriyo sağlamak için yeterli) 10-12 diseksiyon tabak hazırlayın. 50 ml&#39;lik bir konik tüp içine baz 40 ml dökün. 5-6 ml kür ajanı ekleyin ve tahta sopa ile karıştırın. <ol><li> Yaklaşık yarısına her bir doldurma, 60 x 15 mm kültür çanakları içine dökün. Stand O / N ayarlamak için izin ver. </li></ol></li><li> (: 0.79 mm iç çap) polivinil klorür (PVC) boru 400 mm uzunluğunda parçalara kadın dişlerde takın. boru rahatça ultrason aşamasına şırınga pompası ulaşmak gerekir. </li></ol> 3. Deney Seti-up <ol><li> 3B motor ve doğrusal dizi 21 MH cerrahi mikroskop altında görüntü platformu düzenlemekz dönüştürücü. <ol><li> Orient platformu ray monte böylece mikroskop altında doğrudan konumlandırılmış Evre, sol açık. </li><li> Platformun uzanan kolunun topu eklem 3D motoru takın. Ileriye dönük, motorun monte hızlı sürümde dönüştürücü kelepçe hızlı bırakma sonrası Vida ve mandalı tespit, kelepçe dönüştürücü kafa yerleştirin. </li><li> Arabanın ön panelindeki etkin limanda dönüştürücü konektörü sabitleyin. Makineyi açın. </li></ol></li><li> Moleküler görüntüleme çalışmaları için &#39;kardiyoloji&#39; ayarı seçerek, 21 MHz ultrason dönüştürücüyü başlatın ve perfüzyon çalışmaları için &#39;genel&#39;. Tam orta pozisyona her zaman kazanç-tazminat sürgü Shift. Sıklığı: &#39;Kontrast Modu&#39; için, aşağıdaki parametreler ayarlanmalıdır 18 MHz, güç iletimi: 30 dB, Foci:% 4, (0.39 Mpa), Kazanç Kontrast Doğrusal Olmayan, Burst zamanı: 6 &amp; 10 mm, Mod Kontrast 100% 0,1sn, Işın genişliği: Geniş. </li><li> Kısım 40 mi embriyo ortam dört adet 50 ml konik tüp içine, her. Buz üzerine yerleştirin. </li><li> Sıcak bir plaka üzerinde, bir 2 L&#39;lik bir kap içinde su 1 L ısıtın. 45 ° C&#39;de muhafaza edin. Ön ısıtmak için bir deney şişesine ultrason jel ve PBS, bir şırınga ekleyin. Her zaman bir termometre ile takip ederek bu sıcaklığı korur. </li><li> Oniki 1 ml şırınga ve kabarcıkların enjeksiyonu için on 21 oniki G iğne kenara on ayarlayın. </li></ol> 4. Cerrahi Prosedür NOT: Cerrah cerrahi prosedür başlar iken bir asistan kabarcıklar (evre 5) hazırlamak var. Burada açıklanan protokol Whiteley ve ark adapte edilmiştir. 15 <ol><li> Servikal dislokasyon aşağıdaki hamile bir dişi fareden E16.5 veya E17.5 embriyolar toplayın. NOT: embriyoların anestezi etkileri henüz detaylı 16 incelenmemiştir. Dekapitasyon içeren ek yöntemler, uygun op olabilirHamile farelerin kurban ları. <ol><li> Rahim ve embriyoların ortaya çıkarmak için karın açmak kesin. Dikkatle ve hızlı bir şekilde (yumurtalık ve rahim damarlarının koparılması) uterus boynuzları ucunda kesme ve vajina ve mesane de kesilmesinin rahim kaldırmak. </li><li> Kıymık forseps kullanarak, embriyo zarar vermeden mümkün olduğunca çabuk buz soğuk embriyo medya 40 ml tüp rahim aktarın. Fare karkas atın. </li></ol></li><li> Mikroskop ve sahneye taşınmaya. 100 x 20 mm hücre kültürü çanak içine rahim yatırın. 50 mi taze embriyo ortamı ile doldurulmuş yeni bir çanak içine rahim aktarın. </li><li> Yavaşça gözyaşı ve bir ucunda başlayan rahim dış membranlar uzak çekin, sterilize (% 70 etanol sprey) ince forseps kullanarak. Plasental desidua, parietal sarısı kesesi ve ayırmak ve altta yatan visseral yolk kesesi kaldırmak için Reichert membran Açığa. </li><li> Visseral y tutarak, tek tek embriyolar parçalara ayırolk keseler sağlam ve yavaşça mümkün olduğu plasenta 17 taşıma. Embriyolar hemen dışarı pop gibi yumurta sarısının rüptürü önlemek için dikkat edin. <ol><li> Taze embriyo medya ile buz üzerinde muhafaza başka yemeğe embriyolar taşımak için delikli kaşık kullanın. Ihtiyaç kadar soğutulmuş embriyolar tutun. Embriyo çanak her 1-1.5 saat ortamı değiştirin. Bu koşullar ile embriyolar diseksiyon sonra 4 saat boyunca yaşayabilir. </li></ol></li></ol> 5. kabarcık Hazırlık NOT: Her iki hedefli ve hedefsiz mikrokabarcıkları kullanarak ultrason ile moleküler görüntüleme gerçekleştirin. I) antikor hedeflenen mikro-kabarcıklar, ii) Kontrol izotip antikor hedeflenen microbubbles ve iii) hedefsiz microbubbles: Tek deney gibi birçok 3 olarak mikro kabarcık ayrı şişeleri gerektirebilir. Kontrast madde, bir kuru-dondurma bir toz halinde gelen ve enjeksiyondan önce serum fizyolojik ile yeniden gerekir. Her hedefsiz microb içinde ~ 2 x 10 9 mikro kabarcıklar vardırubble şişe ve • hedef hazır şişelerde 8.8 x 10 8 mikrokabarcıklar. mikro-kabarcıklar yeniden sonra 3 saat boyunca stabildir. <ol><li> Hedef Hazır Şişelerinin Sulandırma NOT: Hedef hazır preparatların örnekleri: endoglin hedeflenen mikro kabarcıklar (fare endoglin için biyotinile sıçan MJ 7/18 antikoru ile MB E; ev hibridoma tesis); vasküler endotelyal büyüme faktörü reseptörü 2 (VEGFR2) hedeflenen mikro-kabarcıklar (MB V, biyotin, anti-fare CD309 ile birlikte); Sıçan izotip IgG 2 kontrol antikoru hedeflenen mikro kabarcıklar (MB C, biyotin sıçan isotip IgG 2 kontrol fare IgG2a hedefleme). <ol><li> Tuz 1 ml antikor çözeltisi (20 ug) (nihai hacim) seyreltin. Buz üzerinde tutun. </li><li> Tüm hava kabarcıkları kaldırarak, 1 ml serum fizyolojik ile şırınga doldurun. 21 G iğne takma, kabarcık şişenin içine yavaş yavaş çözüm enjekte. </li><li> Yavaşça hava 1 ml kaldırarak, piston çekilme ve iğneyi çıkartın. Nazikçeçalkalayın. Buz üzerinde 5 dakika bekletin. NOT: Ultrason mikro kabarcıklar yüksek basınçlı ortamlarda altında tahrip olabilir. </li><li> Zamanın geçmesinden sonra, antikor seyreltme ile yeni bir şırınga doldurun ve uygun bir şişeye ekleyin. Yavaşça çalkalayın. Karışım (şimdi 2 mi), 10 dakika boyunca bekletilir. Buz üzerinde tutun. Tam yüzey konjugasyon varsayarsak, mikro kabarcık için bağlı ligand ortalama sayısı yaklaşık 18 7,600 ligandlar / um 2. </li></ol></li><li> Hedefsiz Şişelerinin Sulandırma <ol><li> Tüm hava kabarcıkları kaldırarak, 1 ml serum fizyolojik ile şırınga doldurun. 21 G iğne takma, kabarcık şişenin içine yavaş yavaş çözüm enjekte. </li><li> Yavaşça hava 1 ml kaldırarak, piston çekilme ve iğneyi çıkartın. Yavaşça çalkalayın. 5 dakika bekletin. Yukarıda tarif edildiği gibi, ilave bir 1 mL tuzlu su ekleyin. Yavaşça ajitasyon ve buz üzerinde 10 dakika bekletin. </li></ol></li><li> Coulter Sayma <ol><li> Yavaşça ~ istenen kabarcık flakon ajitasyon ve beraberlik21 G iğne kullanılarak bir 1 ml şırınga içinde çözelti 50 ul. Boş 2 ml mikrosantrifüj tüp içine mikrokabarcıkları enjekte edilir. </li><li> Seyreltici 10 ml mikro-kabarcık stok çözeltisi, 10 ul örnek Pipet. </li><li> Hafifçe karıştırdıktan sonra, ekim sayım (Malzeme listesi bakınız) kullanarak kabarcık nüfus yoğunluğu ve boyutu dağılımları değerlendirmek. 30 mikron diyafram kullanarak (flakon örnek başına) üç 50 ul ölçümleri en az Kont. </li></ol></li><li> Enjeksiyon için hazırlanıyor mikro- NOT: &#39;&#39; Embriyolar içine Mikrokabarcıkların Enjeksiyon &#39;zaman asistanı bu adımı gerçekleştirir (adım 6) başlatılır. Her embriyo her enjeksiyon için seçilen mikro-tipi rastgele mikro-her türlü eşit işlem boyunca dağıtılan ancak rastgele bir sırayla verilmiştir şekilde asistan tarafından seçilecek olan, bir kez enjekte edilir. Kabarcık türü enjekte ediliyor cerrah kör olduğundan emin olun. <ol><li> Th belirleyin400 ul bir hacim içinde, 1 x 10 8 MB ​​/ ml&#39;lik bir son konsantrasyon üretmek (5.3.3 ölçülen stok konsantrasyonları kullanılarak hacmi hesaplamak) için gerekli olan hazır kabarcık çözeltisi E hacmi. Boş mikrosantrifüj tüpü içine tuz karşılık gelen hacmi alikosu. </li><li> Yavaşça seçilen kabarcık flakon ajitasyon ve 21 G iğne kullanılarak 1 ml şırınganın içine çözeltinin (yukarıda hesaplanan daha 50 ul büyük ~) aşırı hacmi çizin. Boş bir mikrosantrifüj tüpe mikrokabarcıkları enjekte edilir. </li><li> Kabarcık stok solüsyonu gerekli hacmi Pipet ve tuzlu kana ekleyin. Pipet ucu ile hafifçe karıştırılmıştır karıştırın. </li><li> 21 G iğne kullanarak temiz bir şırınga içine seyreltilmiş kabarcık çözüm çizin. İğneyi Çıkarma, şırınga hava kabarcıklarını ortadan kaldırmak ve dişin ve tüp takın. Yavaş yavaş hava kabarcıklarını oluşturmak için emin boru yapma sonuna kadar çözüm itin. </li><li> Enjektörler i takın20 ul bir toplam hacim için 20 ul / dakikalık bir oranda mikro-kabarcıkları dağıtmak için bir şırınga infüzyon pompası, GE. Hortumun ucuna bir çekti cam iğne takın. Enjeksiyon aşamasına yakın pompa taşıyın. </li></ol></li></ol> Embriyolar içine Mikrokabarcıkların 6. Enjeksiyon <ol><li> Rasgele seçmek ve soğutulmuş medya çanak (delikli kaşık ile) bir embriyo çıkarın. Stereoskop altında ultrason sahnede bulunan diseksiyon çanak yerleştirin ve en az vaskülarize görünen tarafı (antimesometrial tarafı) yırtılma / kesme, ince forseps ile yumurta sarısı kesesi ve amniyotik membranlar çıkarın. Bu en kolay baş bölgesine bitişik bir alana delinmesi ile elde edilir. <ol><li> Içinde embriyo kaldırmak için yeterli, ama artık kesin. Hamuru küçük parçalar kullanılarak diseksiyon yemekleri stabilize. </li></ol></li><li> Yavaşça embriyo yerinden kese manevra. Plasenta ile, yan embriyo yerleştirin veönünde göbek gemiler. Yumurta sarısı kesesi aşağı pin, böcek işaretçilerine Kullanma (4 pim önerilir) ve gerekli plasenta kenarları yerine sabitlemek için. Büyük damarları kaçının. </li><li> Embriyo canlandırıyor kadar önceden ısıtılmış 45 ° C PBS ile embriyo yıkayın. Göbek ven ve ilişkili vasküler ağı belirleyin. Enjeksiyon rahatça yapılabilir, böylece çanak yerleştirin. NOT: ısındı sonra, embriyo kan gözle umbilikal arterde pompalama, akmaya başlayacak. Akış ilk başladığında, damarlar hem gemiler hızla aynı görünen kanla, parlak kırmızı olacaktır. Göbek ven kaynaklanan dalları genellikle plasenta yüzey üzerinde göbek arter gelenler kaplaması. </li><li> Embriyo canlandırdı sonra, ince embriyo etrafında (ince forseps kullanarak) herhangi bir hava kabarcıklarını çıkarmak için emin olmak, önceden ısıtılmış ABD jeli ile (ancak plasenta) kapsamaktadır. Önceden ısıtılmış PBS ile çanak doldurun. NOT: soluti düzeyinde bir göz atıngerektiği gibi ve PBS ve jel şırıngalar ısıtma beher yedekleme şırınga ekleyin. </li><li> Diseksiyon çanak kenarında hamuru büyük bir topa cam iğne takın ve PBS içine iğne ucunu. Kadar ana dal, makul plasental diskin koryonik yüzeyinde damar seçimi, makas kullanılarak boyutuna ucu kırpın. Ucu hafif bir açıyla kesilmiş ise Enjeksiyon kolay olduğunu. Yaylı makas kenarını kullanarak cam herhangi tırtıklı kenarları çıkarın. </li><li> Tüm hava iğne ucundan dışarı atılır ve mikro-kabarcıklar PBS içine serbestçe akmasına görülebilir kadar şırınga pompası kullanılarak, yavaş yavaş cam iğne içine 20 ul / dk&#39;da mikro-kabarcık solüsyonu enjekte edilir. Pompayı durdurun ve 20 ul bir enjeksiyon hacmi için sıfırlayın. Hava enjeksiyonu sırasında embriyonun damar sistemine girmesine izin vermeyin. </li><li> Plasenta yavaşça damarların birine cam iğne ucu yerleştirin ve hareketsiz olduğundan emin olun. Stere savurOscope baş ve pozisyon embriyo üzerinde dönüştürücü. Görüntüleme başlatın. </li></ol> 7. Ultrason Moleküler Görüntüleme NOT: Daha önce ayarlanmış kontrast doğrusal olmayan görüntüleme koşulları kullanarak, embriyo 6 ve 10 mm odaklar arasında eşit bulunmaktadır böylece dönüştürücüyü yerleştirin. Bir kez yerleştirilmiş, kabarcıkların bolus enjeksiyonu başlar. Enjeksiyon tamamlandığında, zaman ölçeri başlat. <ol><li> Perfüzyon Görüntüleme <ol><li> Doğrusal olmayan kontrast modu için kare sayısı &#39;çalışma yönetimi&#39; düğmesine basarak ve çalışma Tarayıcınızın üst kısmındaki &#39;Prefs&#39; sekmesini tıklayarak seçili olduğundan emin olun. &#39;Tercihler&#39; penceresinde uygun kutuyu işaretleyin. </li><li> Doğrusal olmayan görüntüleme başlatarak görüntüleme ayarlarını yapın. Kontrol panelinde &#39;kontrast modunu&#39; düğmesine basın. &#39;Kazanç &amp; # ayarlayarak 2B kazanç daraltın8217; 30 dB dial &#39;güç&#39; dial kullanarak% 4 güç azaltmak, &#39;frekans&#39; çevirmek ve geniş rulo top / fare kullanarak ışın genişliği (sol alt köşe) set kullanarak 1 Hz frekans azaltmak. NOT: Tüm kontroller ultrason sisteminin kontrol panelinde yer almaktadır. </li><li> 1 Hz kare hızında bir 20 dakika sine döngü kaydederek kabarcık bolus tüm yıkama-in ve dağılımı yakalayın. Basın tarama / donma veri toplama başlatmak için. </li><li> Görüntülerin tam sırası yakalanan edildikten sonra, sistem tampon görüntülerin sırasını kaydetmek için kontrol panelinde bulunan &#39;sine mağazası&#39; düğmesine basın. Sistem edinilen doğrusal olmayan kontrast modeli veri tarih damgalı sine döngü oluşturur. </li></ol></li><li> Hedeflenen kabarcık Görüntüleme <ol><li> &#39;Prefs&#39; altında, 0.1 sn patlama saati ayarlayın. Denetimleri des kullanarak uygun görüntüleme parametrelerini ayarlayınyukarıda açıklanan şekilde (7.1.2.). </li><li> Kontrol panelinde &#39;kontrast modunu&#39; düğmesine basarak doğrusal olmayan kontrast görüntüleme başlatın. Embriyo düzgün transdüser altında ve embriyo ile kabarcık kontrast madde akışı doğrusal olmayan kontrast modunu görüntüde görünür olduğunu almaktadır olun. </li><li> Embriyonik moleküler görüntüleme sırasında bağlayıcı hedefe Kabarcığa değerlendirmek için, mikro-kabarcıkların 3 dakika enjeksiyonundan sonraki 40 saniye boyunca rahatsız edilmeden dolaşmasına izin verir. Bu kez dolaşımdaki mikro-kabarcık tutma sağlamaktır. Basın &#39;tarama / dondurma&#39; Bu süre içinde görüntüleme durdurmak için. </li><li> 3 dakika ve 40 saniyede, özgeçmiş görüntüleme embriyo yeterince PBS ile kaplıdır, hala görünür olduğunu doğrulamak için, ve mikro kabarcıklar dolaşmaya devam ettiğini. Basın &#39;tarama / dondurma&#39; görüntüleme başlatmak için. </li><li> Bir &#39;ön-destruc kaydederek 3 dk 50 sn sonrası enjeksiyon de bozulma / ikmal dizisi Edinme29 Hz yon &#39;akustik tepki dizisi. Basın &#39;tarama / dondurma&#39; veri toplama başlatmak için. 4 dakika sonrası enjeksiyon 18,19 itibariyle, 0.1 sn yüksek frekanslı akustik patlaması başlatmak. Bir patlama uygulamak için &#39;patlama&#39; düğmesine basın. </li><li> (Tampon hattı dolana kadar) dizisinin geri kalanı için çerçeveler kayıt ve &#39;sine mağaza&#39; tuşuna basarak sine döngü kurtarmak için devam edin. </li><li> Mikrokabarcıkları dolaşan bir ek cine döngü toplayın. Bu, sonraki post-yıkım &#39;görüntüleme dizisi ışınını doldurulan yalnızca dolaşan kabarcık sinyallerini içeren varsayılır. Basın &#39;tarama / dondurma&#39; görüntüleri toplamak için görüntüleme ve &#39;sine mağaza&#39; başlatmak için. </li><li> Her embriyo görüntüleme sonra cine döngüler etiketleyin. Basın &#39;Çalışma yönetimi&#39;, rulo topu kullanarak dosyayı vurgulayın ve uygun düğmesine basın &#39;görüntü etiketi&#39; ve adını &#39;&#39; seçin. </li></ol></li&gt; </ol> Enjeksiyon sonrası Embriyolar 8. Taşıma <ol><li> Mesaj görüntüleme, istediğiniz gibi (başları kesilerek, servikal dislokasyon, karbon dioksit boğulma, ya da hızlı dondurma veya tespit takiben anestezi ile), dönüştürücüyü hareket embriyo sabitlemesini kaldırın ve euthanize. </li><li> Sonraki her embriyo enjeksiyon için yeni bir diseksiyon çanak, iğne, şırınga ve tüp segmenti diseksiyonu ve canlanma sırasında kabarcık enjeksiyon çözümü alma yeri sonraki toplu hazırlanması, kullanılması gerekir. </li><li> Ek analizler için doku örnekleri (örneğin, kuyruk, beyin) Kaydet (örneğin, izole kuyruk DNA, lacZ boyama, ya da batı blot 21 kullanılarak biyomarker ifade yarı-kantitatif tedbirler PCR analizi ile belirlenir genotiplemesi). </li></ol>

<ol>
	<li>Voigt, J. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrasound+molecular+imaging.">Ultrasound molecular imaging.</a> Methods. 48 (2), 92-97 (2009).</li><li>Klibanov, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+targeted+microbubbles:+Ultrasound+contrast+agents+for+molecular+imaging.">Preparation of targeted microbubbles: Ultrasound contrast agents for molecular imaging.</a> Medical Biological Engineering Computing. 47 (8), 875-882 (2009).</li><li>Cosgrove, D., Lassau, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Imaging+of+perfusion+using+ultrasound.">Imaging of perfusion using ultrasound.</a> European Journal Of Nuclear Medicine And Molecular Imaging. 37 (S1), 65 (2010).</li><li>Williams, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+microbubble+contrast-enhanced+US+to+measure+tumor+response+to+targeted+therapy:+A+proposed+clinical+protocol+with+results+from+renal+cell+carcinoma+patients+receiving+antiangiogenic+therapy.">Dynamic microbubble contrast-enhanced US to measure tumor response to targeted therapy: A proposed clinical protocol with results from renal cell carcinoma patients receiving antiangiogenic therapy.</a> Radiology. 260 (2), 581 (2011).</li><li>Burns, P. N., Wilson, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Focal+liver+masses:+Enhancement+patterns+on+contrast-enhanced+Images+-+Concordance+of+US+scans+with+CT+scans+and+MR+images.">Focal liver masses: Enhancement patterns on contrast-enhanced Images - Concordance of US scans with CT scans and MR images.</a> Radiology. 242 (1), 162 (2006).</li><li>Phoon, C. K. L., Aristizabal, O., Turnbull, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=40+MHz+doppler+characterization+of+umbilical+and+dorsal+aortic+Blood+flow+in+the+early+mouse+embryo.+Ultrasound.">40 MHz doppler characterization of umbilical and dorsal aortic Blood flow in the early mouse embryo. Ultrasound.</a> In Medicine And Biology. 26 (8), 1275-1283 (2000).</li><li>Phoon, C. K. L., Aristizabal, O., Turnbull, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatial+velocity+profile+in+mouse+embryonic+aorta+and+doppler-derived+volumetric+flow:+A+preliminary+model.">Spatial velocity profile in mouse embryonic aorta and doppler-derived volumetric flow: A preliminary model.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 283, H908-H916 (2002).</li><li>Aristizábal, O., Williamson, R., Turnbull, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> 12A-4 in vivo 3D contrast-enhanced imaging of the embryonic mouse vasculature. Paper presented at Ultrasonics Symposium. , (2007).</li><li>Bartelle, B. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+genetic+approach+for+in+vivo+vascular+imaging+in+mice.">Novel genetic approach for in vivo vascular imaging in mice.</a> Circ.Res. 110 (7), 938-947 (2012).</li><li>Endoh, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fetal+gene+transfer+by+intrauterine+injection+with+microbubble-enhanced+ultrasound.">Fetal gene transfer by intrauterine injection with microbubble-enhanced ultrasound.</a> Molecular Therapy. 5 (5), 501-508 (2002).</li><li>Yamada, M., Hatta, T., Otani, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+exo+utero+development+system:+Protocol+and+troubleshooting.">Mouse exo utero development system: Protocol and troubleshooting.</a> Congenital Anomalies. 48 (4), 183-187 (2008).</li><li>Denbeigh, J. M., Nixon, B. A., Hudson, J. M., Purin, M. C., Foster, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=VEGFR2-targeted+molecular+imaging+in+the+mouse+embryo:+An+alternative+to+the+tumor+model.">VEGFR2-targeted molecular imaging in the mouse embryo: An alternative to the tumor model.</a> Ultrasound in medicine and biology. 40 (2), 389-399 (2014).</li><li>Paauwe, M., Dijke, t. e. n., P, L. J. A. C., Hawinkels, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endoglin+for+tumor+imaging+and+targeted+cancer+therapy.">Endoglin for tumor imaging and targeted cancer therapy.</a> Expert Opinion On Therapeutic Targets. 17 (4), 421-435 (2013).</li><li>Bourdeau, A., Faughnan, M. E., Letarte, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endoglin-deficient+mice,+a+unique+model+to+study+hereditary+hemorrhagic+telangiectasia.">Endoglin-deficient mice, a unique model to study hereditary hemorrhagic telangiectasia.</a> Trends Cardiovasc. Med. 10 (7), 279-285 (2000).</li><li>Whiteley, K. J., Adamson, S. L., Pfarrer, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vascular+corrosion+casting+of+the+uteroplacental+and+fetoplacental+vasculature+in+mice.">Vascular corrosion casting of the uteroplacental and fetoplacental vasculature in mice.</a> Placenta And Trophoblast: Methods And Protocols. 121 (121), 371-392 (2006).</li><li>Kulandavelu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Embryonic+and+neonatal+phenotyping+of+genetically+engineered+mice.">Embryonic and neonatal phenotyping of genetically engineered mice.</a> ILAR Journal. 47 (2), 103-10 (2006).</li><li>Kalaskar, V. K., Lauderdale, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+embryonic+development+in+a+serum-free+whole+embryo+culture+system.">Mouse embryonic development in a serum-free whole embryo culture system.</a> Journal of Visualized Experiments. 85, (2014).</li><li>Willmann, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeted+contrast-enhanced+ultrasound+imaging+of+tumor+angiogenesis+with+contrast+microbubbles+conjugated+to+integrin-binding+knottin+peptides.">Targeted contrast-enhanced ultrasound imaging of tumor angiogenesis with contrast microbubbles conjugated to integrin-binding knottin peptides.</a> The Journal of Nuclear Medicine. 51 (3), 433-440 (2010).</li><li>Deshpande, N., Ren, Y., Foygel, K., Rosenberg, J., Willmann, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tumor+angiogenic+marker+expression+levels+during+tumor+growth:+Longitudinal+assessment+with+molecularly+targeted+microbubbles+and+US+imaging.">Tumor angiogenic marker expression levels during tumor growth: Longitudinal assessment with molecularly targeted microbubbles and US imaging.</a> Radiology. 258 (3), 804-811 (2011).</li><li>Lyshchik, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+imaging+of+vascular+endothelial+growth+factor+receptor+2+expression+using+targeted+contrast-enhanced+high-frequency+ultrasonography.">Molecular imaging of vascular endothelial growth factor receptor 2 expression using targeted contrast-enhanced high-frequency ultrasonography.</a> Journal Of Ultrasound In Medicine. 26 (11), 1575-1586 (2007).</li><li>Jerkic, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endoglin+regulates+nitric+oxide-dependent+vasodilatation.">Endoglin regulates nitric oxide-dependent vasodilatation.</a> The FASEB Journal. 18 (3), 609-611 (2004).</li><li>Denbeigh, J. M., Nixon, B. A., Lee, J. J. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Contrast-Enhanced Molecular Ultrasound Differentiates Endoglin Genotypes in Mouse Embryos. , (2014).</li><li>Adamson, S. L., Lu, Y., Whiteley, K. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interactions+between+trophoblast+cells+and+the+maternal+and+fetal+circulation+in+the+mouse+placenta.">Interactions between trophoblast cells and the maternal and fetal circulation in the mouse placenta.</a> Dev Biol. 250, 358-35 (2002).</li><li>Needles, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nonlinear+contrast+imaging+with+an+array-based+micro-ultrasound+system.+Ultrasound.">Nonlinear contrast imaging with an array-based micro-ultrasound system. Ultrasound.</a> Medicine Biology. 36 (12), 2097 (2010).</li><li>Watson, E. D., Cross, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+structures+and+transport+functions+in+the+mouse+placenta.">Development of structures and transport functions in the mouse placenta.</a> Physiology. 20 (3), 180-193 (2005).</li><li>Shalaby, F., Rossant, J., Yamaguchi, T. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Failure+of+blood-island+formation+and+vasculogenesis+in+Flk-1-deficient+mice.">Failure of blood-island formation and vasculogenesis in Flk-1-deficient mice.</a> Nature. 376, 62-66 (1995).</li><li>Kwee, L., Baldwin, H. S., Shen, H. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Defective+development+of+the+embryonic+and+extraembryonic+circulatory+systems+in+vascular+cell+adhesion+molecule+(VCAM-1)+deficient+mice.">Defective development of the embryonic and extraembryonic circulatory systems in vascular cell adhesion molecule (VCAM-1) deficient mice.</a> Development. 121, (1995).</li><li>Mercurio, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lessons+from+the+&#945;2+integrin+knockout+mouse.">Lessons from the &#945;2 integrin knockout mouse.</a> The American journal of pathology. , 161-163 (2002).</li><li>Hodivala-Dilke, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=&#945;v&#946;3+integrin+and+angiogenesis:+a+moody+integrin+in+a+changing+environment.">&#945;v&#946;3 integrin and angiogenesis: a moody integrin in a changing environment.</a> Curr Opin Cell Biol. 20, 514-519 (2008).</li><li>Pysz, M. A., Gambhir, S. S., Willmann, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+imaging:+current+status+and+emerging+strategies.">Molecular imaging: current status and emerging strategies.</a> Clinical radiology. 65, 500-516 (2010).</li><li>Cybulsky, M. I., Iiyama, K., Li, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+major+role+for+VCAM-1,+but+not+ICAM-1,+in+early+atherosclerosis.">A major role for VCAM-1, but not ICAM-1, in early atherosclerosis.</a> J Clin Invest. 107, 1255-1262 (2001).</li><li>Xu, H., Gonzalo, J. A., St Pierre, ., Y, , et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Leukocytosis+and+resistance+to+septic+shock+in+intercellular+adhesion+molecule+1-deficient+mice.">Leukocytosis and resistance to septic shock in intercellular adhesion molecule 1-deficient mice.</a> J Exp Med. 180, 95-109 (1994).</li><li>Gerwin, N., Gonzalo, J. A., Lloyd, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prolonged+eosinophil+accumulation+in+allergic+lung+interstitium+of+ICAM-2-deficient+mice+results+in+extended+hyperresponsiveness.">Prolonged eosinophil accumulation in allergic lung interstitium of ICAM-2-deficient mice results in extended hyperresponsiveness.</a> Immunity. 10, 9-19 (1999).</li><li>Johnson, R. C., Mayadas, T. N., Frenette, P. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+cell+dynamics+in+P-selectin-deficient+mice.">Blood cell dynamics in P-selectin-deficient mice.</a> Blood. 86, 1106-1114 (1995).</li><li>Corrigan, N., Brazil, D., McAuliffe, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-frequency+ultrasound+assessment+of+the+murine+heart+from+embryo+through+to+juvenile.">High-frequency ultrasound assessment of the murine heart from embryo through to juvenile.</a> Reproductive Sciences. 17 (2), 147-14 (2010).</li><li>Turnbull, D. H., Bloomfield, T. S., Baldwin, H. S., Foster, F. S., Joyner, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrasound+backscatter+microscope+analysis+of+early+mouse+embryonic+brain+development.">Ultrasound backscatter microscope analysis of early mouse embryonic brain development.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 92, 2239-2243 (1995).</li><li>Greco, A., Mancini, M. L., Gargiulo, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrasound+Biomicroscopy+in+Small+Animal+Research:+Applications+in+Molecular+and+Preclinical+Imaging.">Ultrasound Biomicroscopy in Small Animal Research: Applications in Molecular and Preclinical Imaging.</a> Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, (2012).</li><li>Pysz, M. A., Guracar, I., Foygel, K., Tian, L., Willmann, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+assessment+of+tumor+angiogenesis+using+real-time+motion-compensated+contrast-enhanced+ultrasound+imaging.">Quantitative assessment of tumor angiogenesis using real-time motion-compensated contrast-enhanced ultrasound imaging.</a> Angiogenesis. 15, 433-442 (2012).</li><li>Larina, I. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Live+imaging+of+blood+flow+in+mammalian+embryos+using+doppler+swept-source+optical+coherence+tomography.">Live imaging of blood flow in mammalian embryos using doppler swept-source optical coherence tomography.</a> J.Biomed.Opt. 13 (6), 060506-06 (2008).</li><li>Garcia, M. D., Udan, R. S., Hadjantonakis, A. K., Dickinson, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Live imaging of mouse embryos. 4 (4), 104-10 (2011).</li><li>Teichert, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelial+nitric+oxide+synthase+gene+expression+during+murine+embryogenesis.+Commencement+of+expression+in+the+embryo+occurs+with+the+establishment+of+a+unidirectional+circulatory+system.">Endothelial nitric oxide synthase gene expression during murine embryogenesis. Commencement of expression in the embryo occurs with the establishment of a unidirectional circulatory system.</a> Circulation Research. 103 (1), 24-33 (2008).</li><li>Walls, J. R., Coultas, L., Rossant, J., Henkelman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three-dimensional+analysis+of+vascular+development+in+the+mouse+embryo.">Three-dimensional analysis of vascular development in the mouse embryo.</a> PLoS One. 3 (8), (2008).</li></ol>

F.S. Foster acknowledges his role as consultant to VisualSonics Inc.

Ultrason kontrast ajanlar geç evre gebelik fare embriyoları ve doğrusal olmayan kontrast görüntüleri enjekte edildi perfüzyon parametreleri ölçmek için edinilen ve bağlayıcı Kabarcığa hedef alındı. Embriyonik damar sistemi içerisinde mikro-kabarcıkların başarılı görüntüleme bir dizi faktöre, ilk olarak embriyo canlılığı bağımlıydı. Tüm ekipman ve cihaz enjeksiyonun başlangıcında rahim embriyoların izolasyonu için gerekli olan zamanı en aza indirmek için önceden hazırlanmışt...

Kontrastlı ultrason görüntüleme görselleştirmek ve damar ortamı karakterize etmek kabarcık kontrast maddelerin kullanımını kolaylaştırır. Bu ajanlar mikrosirkülasyon, damarlanma ve kardiyovasküler fonksiyonu noninvaziv değerlendirmesini sağlar. Buna ek olarak, baloncuk yüzeyinin modifikasyonu mümkün vasküler olay moleküler ultrason görüntüleme yapmak anjiyojenez, ateroskleroz ve inflamasyon 1,2 klinik öncesi uygulamalarda gösterildiği gibi, endotelyal biyolojik bağlanma hedeflenen mikro-sonuçlanabilir. Kontrastlı ultrason nedenle de sağlıklı ve hastalıklı damar durumları 3-5 etkileyen karmaşık ve çeşitli ortamlar belirlemek için kullanılabilir. Yıl geçmiş sayıda, kabarcık görüntüleme programı ilgi yönlü fare embriyo modeli genişletmiştir. Memeli bir gelişme modeli olarak, embriyonik damar içine kabarcıkların giriş fizyolojik artırırGelişmekte olan dolaşım sistemi (örneğin, kan akımı, kardiyak output) ve transgenik durumlarda ve kalp hastalığı 6,7 hedeflenen mutant fare modellerinde, çalışma kardiyovasküler fonksiyonu nasıl değiştirdiğini genetik faktörler anlayışlar verebilir. Aslında, nicel ve nitel 2D embriyonik beyin damar analizleri zaten 8 elde edilmiştir. Bundan başka, fare embriyosu canlı dokuda vasküler belirteçlerle hedeflenen mikro-kabarcıklar bağlanmasının incelenmesi için mükemmel bir model olarak sunulur. Bartelle ve diğ. 9, örneğin, Biotag-BirA transgenik embriyo bağlanma ve damar anatomisinin incelemek hedeflenen değerlendirir embriyo kalp ventriküllere, avidin mikro-kabarcıkları getirmiştir. kliniğe Bu teknik çeviri önemli bir kriter - heterozigot ve homozigot fare modelleri üretimi de moleküler ultrason kantitatif tabiatının belirlemek amacıyla yapılan tümör modeli araştırmaları için bir vekil olarak kullanılabilir edilebilir. 8-10 aracılığıyla maruz tek embriyo içi kardiyak enjeksiyonlar aracılığıyla embriyonik dolaşıma tanıtıldı. utero enjeksiyonları Ancak, bir takım zorluklarla karşı karşıya. Bu enjeksiyon rehberlik, anne ve batın embriyo hareketi karşı ihtiyacını, anne hemodinamik canlılığının bakım ve 11 kanama nedeniyle anestezi ve komplikasyon uzun vadeli etkileri ele batın embriyolar içerir. Bu nedenle, soruşturmanın amacı izole yaşayan geç evre embriyoların 12 içine mikrokabarcıkları enjekte için bir teknik geliştirmek oldu. Bu seçenek, enjeksiyon kontrol ve konumlandırma, tıkanma olmadan görüntüleme uçağın tekrarlanabilirlik ve basitleştirilmiş görüntü analizi ve ölçümü açısından daha fazla özgürlük sunuyor. Bu çalışmada, biz fo yaşayan kemirgen embriyolara kabarcıkların enjeksiyon için yeni bir prosedür anahatr kabarcık kinetik davranışları okuyan ve amaçları endojen endotel yüzey belirteçleri bağlayıcı Kabarcığa hedeflenen Derslerinizi. Lineer olmayan bir kontrast özel ultrason görüntüleme tepe geliştirilmesinde uygulanmıştır (PE), yıkama-oranı ve süresi izole E17.5 embriyolar (TTP) tepe dahil olmak üzere temel perfüzyon bir dizi parametre ölçülmesi için kullanılır. Bu, aynı zamanda, aktif bir anjiyojenez 13 bölgelerinde damar endotel hücrelerinde yüksek ifade için endoglin klinik olarak anlamlı bir hedef işlev transjenik fare modeli, bir embriyonik endoglin kaybına moleküler ultrason kantitatif tabiatının değerlendirmek için embriyo modelinin geçerliliğini göstermek . endoglin hedefli (MB E) fare izotip IgG2 kontrol (MB C) ve hedefsiz (MB U) mikro-kabarcıkların yapışma heterozigot endoglin (İngilizce +/-) ve homozigoz endoglin (İngilizce + / +) sentezleyen embriyolar değerlendirilir. Hedeflenen bindinin analizing moleküler ultrason endoglin genotipleri arasında ayırt ve ölçülebilir moleküler ultrason seviyelerine reseptör yoğunlukları ilgili yeteneğine sahip olduğunu ortaya koymaktadır.

<table><tbody><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Reagents&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Antibodies&lt;/strong&gt; (biotinylated, eBioscience) &amp;#8212; Antibody choice depends on the experiment</td></tr><tr><td>&lt;ul style=&quot;padding:0px;margin:0px&quot;&gt;&lt;li&gt;rat isotype IgG&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; control&lt;/li&gt;&lt;/ul&gt;</td><td>eBioscience</td><td>13-4321-85</td><td>This antibody/microbubble combination is often required as experimental control&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>&lt;ul style=&quot;padding:0px;margin:0px&quot;&gt;&lt;li&gt;biotin anti-mouse CD309&lt;/li&gt;&lt;/ul&gt;</td><td>eBioscience</td><td>13-5821-85</td><td></td></tr><tr><td>Biotinylated rat MJ 7/18 antibody to mouse endoglin</td><td>In house hybridoma</td><td></td><td>Outside antibodies may also be appropriate: we&amp;nbsp; have used eBioscience (13-1051-85 ) in the past</td></tr><tr><td>Distilled water</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Embryo media&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;ul style=&quot;padding:0px;margin:0px&quot;&gt;&lt;li&gt;500 ml Dulbecco&amp;rsquo;s Modified Eagle&amp;rsquo;s Medium with high glucose&lt;/li&gt;&lt;/ul&gt;</td><td>Sigma</td><td>D5796</td><td></td></tr><tr><td>&lt;ul style=&quot;padding:0px;margin:0px&quot;&gt;&lt;li&gt;50 ml Fetal Bovine Serum&lt;/li&gt;&lt;/ul&gt;</td><td>ATCC</td><td>30-2020</td><td>lot # 7592456</td></tr><tr><td>&lt;ul style=&quot;padding:0px;margin:0px&quot;&gt;&lt;li&gt;Hepes&lt;/li&gt;&lt;/ul&gt;</td><td>Gibco</td><td>15630</td><td>5 ml, 1 M</td></tr><tr><td>&lt;ul style=&quot;padding:0px;margin:0px&quot;&gt;&lt;li&gt;Penicillin-Streptomycin&lt;/li&gt;&lt;/ul&gt;</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td>5 ml, 10,000 units Pen., 10,000 &amp;#956;g Strep</td></tr><tr><td>Ethanol, 70%</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ice</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyde</td><td>Sigma</td><td>76240</td><td>4%</td></tr><tr><td>Phosphate Buffered Saline [1x]&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>D8537</td><td>1x, w/o calcium chloride &amp;amp; magnesium chloride</td></tr><tr><td>Pregnant mouse, CD-1</td><td>Charles River Laboratories Inc.&amp;nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.9% sodium chloride (saline)</td><td>Hospira</td><td>0409-7984-11</td><td></td></tr><tr><td>Ultrasound contrast agent, target ready and untargeted</td><td>MicroMarker; VisualSonics Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ultrasound gel (Aquasonic 100, colourless)</td><td>CSP Medical</td><td>133-1009</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Equipment&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>Cell culture plates (4) :&amp;nbsp; 100&amp;nbsp;x&amp;nbsp;20&amp;nbsp;mm</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-772-22</td><td></td></tr><tr><td>Cell culture plates (12) : 60&amp;nbsp;x&amp;nbsp;15&amp;nbsp;mm</td><td>Sigma</td><td>D8054</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>Sorvall Legend RT centrifuge&amp;nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Conical tubes, 50 ml BD Falcon</td><td>VWR</td><td>21008-938</td><td></td></tr><tr><td>Diluent</td><td>Beckman Coulter</td><td>Isoton II Diluent, 8448011</td><td></td></tr><tr><td>Dissection scissors (Wagner)</td><td>Fine Science Tools</td><td>Wagner 14068-12</td><td></td></tr><tr><td>Forceps (2), Dumont SS (0.10 x 0.06 mm)</td><td>Fine Science Tools</td><td>11200-33</td><td></td></tr><tr><td>Forceps, splinter</td><td>VWR</td><td>25601-134</td><td></td></tr><tr><td>Glass beaker, 2 L (Griffin Beaker)</td><td>VWR</td><td>89000-216</td><td></td></tr><tr><td>Glass capillaries, 1 x 90&amp;nbsp;mm GD-1 with filament</td><td>Narishige</td><td>GD-1</td><td></td></tr><tr><td>Glass needle puller</td><td>Narishige</td><td>PN-30</td><td></td></tr><tr><td>Gloves</td><td>Ansell</td><td>4002</td><td></td></tr><tr><td>Gross anatomy probe</td><td>Fine Science Tools</td><td>10088-15</td><td></td></tr><tr><td>Hot plate</td><td>VWR</td><td>89090-994</td><td></td></tr><tr><td>Ice bucket</td><td>Cole Parmer</td><td>RK 06274-01</td><td></td></tr><tr><td>Imaging Platform</td><td>VisualSonics Inc.</td><td>Integrated Rail System</td><td></td></tr><tr><td>Light source, fiber-optic</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-562-36</td><td>Ideally has adjustable arms</td></tr><tr><td>Luers (12), polypropylene barbed female &amp;frac14;-28 UNF thread</td><td>Cole Parmer</td><td>45500-30</td><td></td></tr><tr><td>Micro-ultrasound system, high-frequency</td><td>VisualSonics Inc.</td><td>Vevo2100</td><td></td></tr><tr><td>Needles, 21 gauge&amp;nbsp; (1&amp;rdquo;)</td><td>VWR</td><td>305165</td><td></td></tr><tr><td>Particle size analyzer</td><td>Beckman Coulter</td><td>Multisizer 3 Coulter Counter</td><td></td></tr><tr><td>Perforated spoon (Moria)</td><td>Fine Science Tools</td><td>MC 17 10373-17</td><td></td></tr><tr><td>Pins (6), black anodized minutien 0.15 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-15</td><td></td></tr><tr><td>Pipettors [2-20 &amp;#956;l, 20-200 &amp;#956;l, 100-1,000 &amp;#956;l]</td><td>Eppendorf</td><td>Research Plus&amp;nbsp; adjustable 3120000038;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp; 3120000054;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp; 3120000062</td><td></td></tr><tr><td>Pipettor tips [2-200&amp;nbsp;&amp;#956;l, 50-1,000&amp;nbsp;&amp;#956;l]</td><td>Eppendorf</td><td>epT.I.P.S.&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp; 22491334;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp; 022491351</td><td></td></tr><tr><td>Scissors</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit</td><td>Dow Corning</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubing, Tygon laboratory 1/32&amp;rdquo; x 3/32&amp;rdquo;</td><td>VWR</td><td>63010-007</td><td></td></tr><tr><td>Wooden applicator stick (swab, cotton head)</td><td>VWR</td><td>CA89031-270</td><td></td></tr><tr><td>Surgical microscope 5-8X magnification</td><td>Fisher Scientific</td><td>Steromaster</td><td></td></tr><tr><td>Syringes, 1 ml Normject</td><td>Fisher</td><td>14-817-25</td><td></td></tr><tr><td>Syringes (10), 30 ml</td><td>VWR</td><td>CA64000-041</td><td></td></tr><tr><td>Syringe infusion pump&amp;nbsp;</td><td>Bio-lynx&amp;nbsp;</td><td>NE-1000</td><td></td></tr><tr><td>Thermometer, -20-110&amp;nbsp;&amp;#176;C</td><td>VWR</td><td>89095-598</td><td></td></tr><tr><td>Timer</td><td>VWR</td><td>33501-418</td><td></td></tr><tr><td>Tubes, Eppendorf</td><td>VWR</td><td>20170-577</td><td></td></tr><tr><td>Tube racks (3)</td><td>VWR</td><td>82024-462</td><td></td></tr><tr><td>Ultrasound transducer, 20 MHz</td><td>VisualSonics Inc.</td><td>MS250</td><td></td></tr><tr><td>Vannas-Tubingen, angled up</td><td>Fine Science Tools</td><td>15005-08</td><td></td></tr></tbody></table>

contrast imaging in mouse embryos using high-frequency ultrasound

Ultrasound contrast-enhanced imaging can convey essential quantitative information regarding tissue vascularity and perfusion and, in targeted applications, facilitate the detection and measure of vascular biomarkers at the molecular level. Within the mouse embryo, this noninvasive technique may be used to uncover basic mechanisms underlying vascular development in the early mouse circulatory system and in genetic models of cardiovascular disease. The mouse embryo also presents as an excellent model for studying the adhesion of microbubbles to angiogenic targets (including vascular endothelial growth factor receptor 2 (VEGFR2) or &#945;v&#946;3) and for assessing the quantitative nature of molecular ultrasound. We therefore developed a method to introduce ultrasound contrast agents into the vasculature of living, isolated embryos. This allows freedom in terms of injection control and positioning, reproducibility of the imaging plane without obstruction and motion, and simplified image analysis and quantification. Late gestational stage (embryonic day (E)16.6 and E17.5) murine embryos were isolated from the uterus, gently exteriorized from the yolk sac and microbubble contrast agents were injected into veins accessible on the chorionic surface of the placental disc. Nonlinear contrast ultrasound imaging was then employed to collect a number of basic perfusion parameters (peak enhancement, wash-in rate and time to peak) and quantify targeted microbubble binding in an endoglin mouse model. We show the successful circulation of microbubbles within living embryos and the utility of this approach in characterizing embryonic vasculature and microbubble behavior.

Eski in utero fare embriyoları ultrason kontrast ajanlarının enjekte enjeksiyonu ve ilgili ultrason görüntüleme boyunca rahim ve canlılığının korunması ile ilgili oturma, geç gebelik aşamasında embriyoların başarılı bir şekilde izole bağlıdır. Embriyo batın ve Şekil 1 &#39;de gösterildiği gibi, konumlandıktan sonra, embriyonik damar içine kontrast maddenin dikkatli bir enjeksiyon mümkündür. Bir E17.5 fare embriyo tipik bir B-kipi ultrason görüntüsü Ş...

Watch this Scientific Journal Video about Contrast Imaging in Mouse Embryos Using High-frequency Ultrasound at JoVE.com

Contrast Imaging in Mouse Embryos Using High-frequency Ultrasound

Burada, biz yaşam içine ultrason mikrokabarcık kontrast maddeler, izole geç gebelik sahne kemirgen embriyolar enjekte etmek için bir protokol mevcut. Bu yöntem perfüzyon parametrelerinin ve kontrastlı yüksek frekanslı ultrason görüntüleme kullanılarak embriyo içinde vasküler moleküler belirteçlerin çalışma sağlar.

Yüksek frekanslı Ultrason Kullanımı Fare Embriyolar Kontrast Görüntüleme

Ultrasound contrast-enhanced imaging can convey essential quantitative information regarding tissue vascularity and perfusion and, in targeted ...

contrast-imaging-in-mouse-embryos-using-high-frequency-ultrasound

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

15.3K Görüntüleme.  University of Toronto.  Burada, biz yaşam içine ultrason mikrokabarcık kontrast maddeler, izole geç gebelik sahne kemirgen embriyolar enjekte etmek için bir protokol mevcut. Bu yöntem perfüzyon parametrelerinin ve kontrastlı yüksek frekanslı ultrason görüntüleme kullanılarak embriyo içinde vasküler moleküler belirteçlerin çalışma sağlar. 

Video: Contrast Imaging in Mouse Embryos Using High-frequency Ultrasound

Ultrasound-Guided Microinjection into the Mouse Forebrain In Utero at E9.5

In utero survival surgery in mice permits the molecular manipulation of gene expression during development. However, because the uterine wall is opaque during early embryogenesis, the ability to target specific parts of the embryo for microinjection is greatly limited. Fortunately, high-frequency ultrasound imaging permits the generation of images that can be used in real time to guide a microinjection needle into the embryonic region of interest. Here we describe the use of such imaging to guide the injection of retroviral vectors into the ventricular system of the mouse forebrain at embryonic day (E) 9.5. This method uses a laparotomy to permit access to the uterine horns, and a specially designed plate that permits host embryos to be bathed in saline while they are imaged and injected. Successful surgeries often result in most or all of the injected embryos surviving to any subsequent time point of interest (embryonically or postnatally). The principles described here can be used with slight modifications to perform injections into the amnionic fluid of E8.5 embryos (thereby permitting infection along the anterior posterior extent of the neural tube, which has not yet closed), or into the ventricular system of the brain at E10.5/11.5. Furthermore, at mid-neurogenic ages (~E13.5), ultrasound imaging can be used direct injection into specific brain regions for viral infection or cell transplantation. The use of ultrasound imaging to guide in utero injections in mice is a very powerful technique that permits the molecular and cellular manipulation of mouse embryos in ways that would otherwise be exceptionally difficult if not impossible.

Ultrasound-Guided Microinjection into the Mouse Forebrain In Utero at E9.5

In utero survival surgery in mice permits the molecular manipulation of gene expression during development. Here we describe the use of high-frequency ultrasound imaging to guide the injection of retroviral vectors into the mouse brain at embryonic day (E) 9.5.

Fare önbeyin içine Ultrason Rehberliğinde Mikroenjeksiyon In Utero E9.5 az

In utero survival surgery in mice permits the molecular manipulation of gene expression during development.  However, because the uterine wall is opaque ...

Nörobilim

Murine Fetal Echocardiography

Transgenic mice displaying abnormalities in cardiac development and function represent a powerful tool for the understanding the molecular mechanisms underlying both normal cardiovascular function and the pathophysiological basis of human cardiovascular disease. Fetal and perinatal death is a common feature when studying genetic alterations affecting cardiac development 1-3. In order to study the role of genetic or pharmacologic alterations in the early development of cardiac function, ultrasound imaging of the live fetus has become an important tool for early recognition of abnormalities and longitudinal follow-up. Noninvasive ultrasound imaging is an ideal method for detecting and studying congenital malformations and the impact on cardiac function prior to death 4. It allows early recognition of abnormalities in the living fetus and the progression of disease can be followed in utero with longitudinal studies 5,6. Until recently, imaging of fetal mouse hearts frequently involved invasive methods. The fetus had to be sacrificed to perform magnetic resonance microscopy and electron microscopy or surgically delivered for transillumination microscopy. An application of high-frequency probes with conventional 2-D and pulsed-wave Doppler imaging has been shown to provide measurements of cardiac contraction and heart rates during embryonic development with databases of normal developmental changes now available 6-10. M-mode imaging further provides important functional data, although, the proper imaging planes are often difficult to obtain. High-frequency ultrasound imaging of the fetus has improved 2-D resolution and can provide excellent information on the early development of cardiac structures 11.

Fetal and perinatal death is a common feature when studying genetic alterations affecting cardiac development. High-frequency ultrasound imaging has improved 2-D resolution and can provide excellent information on early cardiac development and is an ideal method to detect the impact on cardiac structure and function prior to death.

Mürin Fetal Ekokardiyografi

Transgenic mice displaying abnormalities in  cardiac development and function represent a powerful tool for the understanding  the molecular mechanisms ...

Tıp

A Novel Use of Three-dimensional High-frequency Ultrasonography for Early Pregnancy Characterization in the Mouse

High-frequency ultrasonography (HFUS) is a common method to non-invasively monitor the real-time development of the human fetus in utero. The mouse is routinely used as an in vivo model to study embryo implantation and pregnancy progression. Unfortunately, such murine studies require pregnancy interruption to enable follow-up phenotypic analysis. To address this issue, we used three-dimensional (3-D) reconstruction of HFUS imaging data for early detection and characterization of murine embryo implantation sites and their individual developmental progression in utero. Combining HFUS imaging with 3-D reconstruction and modeling, we were able to accurately quantify embryo implantation site number as well as monitor developmental progression in pregnant C57BL6J/129S mice from 5.5 days post coitus (d.p.c.) through to 9.5 d.p.c. with the use of a transducer. Measurements included: number, location, and volume of implantation sites as well as inter-implantation site spacing; embryo viability was assessed by cardiac activity monitoring. In the immediate post-implantation period (5.5 to 8.5 d.p.c.), 3-D reconstruction of the gravid uterus in both mesh and solid overlay format enabled visual representation of the developing pregnancies within each uterine horn. As genetically engineered mice continue to be used to characterize female reproductive phenotypes derived from uterine dysfunction, this method offers a new approach to detect, quantify, and characterize early implantation events in vivo. This novel use of 3-D HFUS imaging demonstrates the ability to successfully detect, visualize, and characterize embryo-implantation sites during early murine pregnancy in a non-invasive manner. The technology offers a significant improvement over current methods, which rely on the interruption of pregnancies for gross tissue and histopathologic characterization. Here we use a video and text format to describe how to successfully perform ultrasounds of early murine pregnancy to generate reliable and reproducible data with reconstruction of the uterine form in mesh and solid 3-D images.

Mice are widely used to study gestational biology. However, pregnancy termination is required for such studies which precludes longitudinal investigations and necessitates the use of large numbers of animals. Therefore, we describe a non-invasive technique of high-frequency ultrasonography for early detection and monitoring of post-implantation events in the pregnant mouse.

Üç boyutlu yüksek frekanslı Ultrasonografi romanı kullanımı için fare erken gebelik karakterizasyonu

High-frequency ultrasonography (HFUS) is a common method to non-invasively monitor the real-time development of the human fetus in utero. The mouse is ...

Gelişim Biyolojisi

Fetal Mouse Cardiovascular Imaging Using a High-frequency Ultrasound (30/45MHZ) System

Congenital heart defects (CHDs) are the most common cause of childhood morbidity and early mortality. Prenatal detection&#160;of the underlying molecular mechanisms of CHDs is&#160;crucial for inventing new preventive and therapeutic strategies. Mutant mouse models are powerful tools to discover new&#160;mechanisms&#160;and environmental stress modifiers that drive cardiac development and their potential&#160;alteration in CHDs. However, efforts to establish the causality of these putative contributors have been limited to histological&#160;and molecular studies&#160;in non-survival animal experiments, in which&#160;monitoring the key physiological and hemodynamic parameters is&#160;often absent. Live imaging technology has become an essential tool to establish the&#160;etiology of CHDs. In particular,&#160;ultrasound imaging can be used prenatally without surgically exposing the fetuses,&#160;allowing maintaining&#160;their baseline physiology while monitoring the impact of environmental stress&#160;on the hemodynamic and structural aspects of cardiac chamber development. Herein, we use the High-Frequency Ultrasound (30/45)&#160;system to examine the cardiovascular system in fetal mice at E18.5 in utero at the baseline and in response to prenatal hypoxia exposure. We demonstrate the feasibility of the system to measure cardiac chamber size, morphology, ventricular function, fetal heart rate, and umbilical artery flow indices, and their alterations in fetal mice exposed to systemic chronic hypoxia in utero in real time.

Fetal Mouse Cardiovascular Imaging Using a High-frequency Ultrasound 30/45MHZ System

High-frequency ultrasound imaging of the fetal mouse has improved imaging resolution and can provide precise non-invasive characterization of cardiac development and structural defects. The protocol outlined herein is designed to perform real-time fetal mice echocardiography in vivo.

Fetal fare bir yüksek frekans ultrason (30/45 MHZ) sistemi kullanarak Imaging kardiyovasküler

Congenital heart defects (CHDs) are the most common cause of childhood morbidity and early mortality. Prenatal detection&#160;of the underlying molecular ...

In utero Measurement of Heart Rate in Mouse by Noninvasive M-mode Echocardiography

Congenital heart disease (CHD) is the most frequent noninfectious cause of death at birth. The incidence of CHD ranges from 4 to 50/1,000 births (Disease and injury regional estimates, World Health Organization, 2004). Surgeries that often compromise the quality of life are required to correct heart defects, reminding us of the importance of finding the causes of CHD. Mutant mouse models and live imaging technology have become essential tools to study the etiology of this disease. Although advanced methods allow live imaging of abnormal hearts in embryos, the physiological and hemodynamic states of the latter are often compromised due to surgical and/or lengthy procedures. Noninvasive ultrasound imaging, however, can be used without surgically exposing the embryos, thereby maintaining their physiology. Herein, we use simple M-mode ultrasound to assess heart rates of embryos at E18.5 in utero. The detection of abnormal heart rates is indeed a good indicator of dysfunction of the heart and thus constitutes a first step in the identification of developmental defects that may lead to heart failure.

In utero Measurement of Heart Rate in Mouse by Noninvasive M-mode Echocardiography

Ultra-high frequency ultrasound is a powerful live imaging tool to examine cardiac abnormalities in small animals. Its noninvasiveness allows maintaining the physiologic state of embryos. Herein, we show the use of M-mode ultrasound to measure the heart rates of embryos at E18.5 in utero.

Noninvaziv M-mod ekokardiyografi ile Fare Kalp Puan utero Ölçümünde

Congenital heart disease (CHD) is the most frequent noninfectious cause of death at birth. The incidence of CHD ranges from 4 to 50/1,000 births (Disease ...

High Frequency Ultrasound for the Analysis of Fetal and Placental Development In Vivo

Ultrasound imaging is a widespread method used to detect organ anomalies and tumors in human and animal tissues. The method is non-invasive, harmless, and painless, and the application is easy, fast, and can be done anywhere, even with mobile devices. During pregnancy, ultrasound imaging is standardly used to closely monitor fetal development. The technique is important to assess intrauterine growth restriction (IUGR), a pregnancy complication with short- and long-term health consequences for both the mother and fetus. Understanding the process of IUGR is indispensable for developing effective therapeutic strategies. 
The ultrasound system used in this manuscript is an ultrasound device produced for the analysis of small animals and can be used in various research fields, including pregnancy research. Here we describe the usage of the system for in vivo analysis of fetuses from natural killer (NK) cell/mast cell (MC)-deficient mothers that give birth to growth-restricted pups. The protocol includes preparation of the system, handling of the mice before and during measurements, and the usage of the B-mode, color doppler mode, and pulse-wave doppler mode. Fetal size, placental size, and blood supply to the fetus were analyzed. We found reduced implantation sizes and smaller placentas in NK/MC-deficient mice from mid-gestation onwards. In addition, MC/NK-deficiency was associated with absent and reversed end diastolic flow in the fetal Arteria umbilicalis(UmA) and an elevated resistance index. The methods described in the protocol can easily be used for related and non-related research topics.

High Frequency Ultrasound for the Analysis of Fetal and Placental Development In Vivo

Here we describe the technique of high frequency ultrasound for in vivo analysis of fetuses in mice. This method allows the follow-up of fetuses and the analysis of placental parameters as well as maternal and fetal blood flow throughout pregnancy.

Yüksek frekans ultrason Fetal ve plasental geliştirme Vivo içinde analizi için

Ultrasound imaging is a widespread method used to detect organ anomalies and tumors in human and animal tissues. The method is non-invasive, harmless, and ...

Non-Invasive Ultrasound Assessment of Endometrial Cancer Progression in Pax8-Directed Deletion of the Tumor Suppressors Arid1a and Pten in Mice

Uterine cancers can be studied in mice due to the ease of handling and genetic manipulation in these models. However, these studies are often limited to assessing pathology post-mortem in animals euthanized at multiple time points in different cohorts, which increases the number of mice needed for a study. Imaging mice in longitudinal studies can track the progression of disease in individual animals, reducing the number of mice needed. Advances in ultrasound technology have allowed for the detection of micrometer-level changes in tissues. Ultrasound has been used to study follicle maturation in ovaries and xenograft growth but has not been applied to morphological changes in the mouse uterus. This protocol examines the juxtaposition of pathology with in vivo imaging comparisons in an induced endometrial cancer mouse model. The features observed by ultrasound were consistent with the degree of change seen by gross pathology and histology. Ultrasound was found to be highly predictive of the observed pathology, supporting the incorporation of ultrasonography into longitudinal studies of uterine diseases such as cancer in mice.

Non-Invasive Ultrasound Assessment of Endometrial Cancer Progression in Pax8-Directed Deletion of the Tumor Suppressors Arid1a and Pten in Mice

This protocol describes a method for monitoring the progression of morphological changes over time in the uterus in an inducible mouse model of endometrial cancer using ultrasound imaging with correlation to gross and histological changes.

Farelerde Tümör Baskılayıcıları Arid1a ve Pten'in Pax8'e Yönelik Delesyonunda Endometriyal Kanser Progresyonunun Non-İnvaziv Ultrason Değerlendirmesi

Uterine cancers can be studied in mice due to the ease of handling and genetic manipulation in these models. However, these studies are often limited to ...

Kanser Araştırmaları

The Preparation of Chicken Ex Ovo Embryos and Chorioallantoic Membrane Vessels as In Vivo Model for Contrast-Enhanced Ultrasound Imaging and Microbubble-Mediated Drug Delivery Studies

The chicken embryo and the blood-vessel rich chorioallantoic membrane (CAM) is a valuable in vivo model to investigate biomedical processes, new ultrasound pulsing schemes, or novel transducers for contrast-enhanced ultrasound imaging and microbubble-mediated drug delivery. The reasons for this are the accessibility of the embryo and vessel network of the CAM as well as the low costs of the model. An important step to get access to the embryo and CAM vessels is to take the egg content out of the eggshell. In this protocol, three methods for taking the content out of the eggshell between day 5 and&#160;8 of incubation are described thus allowing the embryos to develop inside the eggshell up to these days. The described methods only require simple tools and equipment and yield a higher survival success rate of 90% for 5-day, 75% for 6-day, 50% for 7-day, and 60% for 8-day old incubated eggs in comparison to ex ovo cultured embryos (~50%). The protocol also describes how to inject cavitation nuclei, such as microbubbles, into the CAM vascular system, how to separate the membrane containing the embryo and CAM from the rest of the egg content for optically transparent studies, and how to use the chicken embryo and CAM in a variety of short-term ultrasound experiments. The in vivo&#160;chicken embryo and CAM model is extremely relevant to investigate novel imaging protocols, ultrasound contrast agents, and ultrasound pulsing schemes for contrast-enhanced ultrasound imaging, and to unravel the mechanisms of ultrasound-mediated drug delivery.

This protocol describes three methods on how to obtain and use 5 to 8-day old chicken embryos and their chorioallantoic membrane (CAM) as an in vivo&#160;model to study contrast-enhanced ultrasound imaging and microbubble-mediated drug delivery.

Kontrastlı Ultrason Görüntüleme ve Mikrokabarcık Aracılı İlaç Dağıtım Çalışmaları için Tavuk Ex Ovo Embriyolarının ve Korioallantoik Membran Damarlarının In Vivo Model Olarak Hazırlanması

The chicken embryo and the blood-vessel rich chorioallantoic membrane (CAM) is a valuable in vivo model to investigate biomedical processes, new ...

Biyomühendislik

High-frequency Ultrasound Imaging of the Abdominal Aorta

Source: Amelia R. Adelsperger, Evan H. Phillips, and <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/author/Craig+J._Goergen">Craig J. Goergen</a>, Weldon School of Biomedical Engineering, Purdue University, West Lafayette, Indiana
High-frequency ultrasound systems are used to acquire high resolution images. Here, the use of a state-of-the-art system will be demonstrated to image the morphology and hemodynamics of small pulsatile arteries and veins found in mice and rats. Ultrasound is a relatively inexpensive, portable, and versatile method for the noninvasive assessment of vessels in humans as well as large and small animals. These are several key advantages that ultraound offers compared to other techniques, such as computed tomography (CT), magnetic resonance imaging (MRI), and near-infrared fluorescence tomography (NIRF). CT requires ionizing radiation and MRI can be prohibitively expensive and even impractical in some scenarios. NIRF, on the other hand, is limited by the penetration depth of light required to excite the fluorescent contrast agents.
Ultrasound has limitations in terms of imaging depth; however, this may be overcome by sacrificing resolution and using a lower frequency transducer. Abdominal gas and excess body weight can severely diminish image quality. In the first case, the propagation of sound waves is limited, while in the latter case, they are attenuated by overlying tissues, such as fat and connective tissue. As a result, no contrast or faint contrast may be observed. Finally, ultrasound is a highly user-dependent technique, requiring the sonographer to be familiar with anatomy and to be able to work around issues, such as the appearance of imaging artifacts or acoustic interference.

High-frequency Ultrasound Imaging and Image Acquisition

Source: Amelia R. Adelsperger, Evan H. Phillips, and Craig J. Goergen, Weldon School of Biomedical Engineering, Purdue University, West Lafayette, 
...

Education

JoVE Science Education

Mühendislik

Biyomedikal Mühendisliği

Injection of Microbubbles into Isolated Mouse Embryos: A Technique to Deliver Microbubble Contrast Agents into the Vasculature of Living Murine Embryos

Source: Denbeigh, J. M. et al. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/video/52520" target="_blank">Contrast Imaging in Mouse Embryos Using High-frequency Ultrasound</a>. J. Vis. Exp. (2015)
This video demonstrates a procedure to inject microbubble contrast agents into an isolated late gestation stage mouse embryo. The microbubble contrast agent-based ultrasound imaging helps visualize and characterize the vascular environment of the embryo.

İzole Fare Embriyolarına Mikro Kabarcıkların Enjeksiyonu: Mikro Kabarcık Kontrast Maddelerini Canlı Murin Embriyolarının Damar Sistemine Verme Tekniği

Source: Denbeigh, J. M. et al. Contrast Imaging in Mouse Embryos Using High-frequency Ultrasound. J. Vis. Exp. (2015)
This video demonstrates a procedure ...