Herhangi bir fon ilan etmek.

Açıklandığı gibi iskelet kası prosedür Appalachian State Üniversitesi Kurumsal Değerlendirme Kurulu kuralları takip. NOT: ekibi operatör (Ph.D. veya biyopsi tekniği eğitimli MD), ve en az bir oluşur, ancak ideal, üç veya daha fazla teknisyenleri. Operatör iletken ve iskelet kas biyopsi tüm yönleriyle denetlemekten sorumludur. Bir teknisyen (teknisyeni # 1) kas ekstraksiyon tüm yönleri ile operatöre yardımcı için hemen sorumludur. Bu &quot;steril olmayan eller&quot; olarak steril bir şırınga ile emme uygulanmasını içerir. İkinci bir teknisyene (teknisyeni # 2) deneğin korkusunu en aza indirmek için prosedür sırasında konu ve masajlar öznenin karşısında bacak ile görüşmesinde yürütmektedir. Üçüncü teknisyeni (3 teknisyeni #) kullanımı ve iskelet kası örnek işlemekten sorumludur. Mansap analitik önlemler kaç addit dikteuğratarak teknisyenleri iskelet kası örneği hazırlanması / gelişmesi için gereklidir. 1. Konu Hazırlık <ol><li> , Toplayın hazırlamak ve kas biyopsi (Tablo 1) için belirtilen malzemeleri düzenlemek. Dekontamine ve Bergström iğnesini (dış ve iç kanül trokar) ve standart uygulamalara göre 16 pistonu sterilize edin. </li><li> Konu ile onam formunu inceleyin. Appalachian State Üniversitesi&#39;nde kullanılan formu Katılacak Rıza iskelet kası biyopsisi kısmı çevrimiçi ek 1&#39;de verilmiştir. <ol><li> Prosedürün olası riskler, cilt hazırlığı, anestezi uygulaması, tipik duyumlara odaklanarak kas biyopsi prosedürünün genel yönleri hakkında konuya konuşun. Dikkatli formu katılın ve çalışma tasarımı ve prosedürleri anlaşıldığını onaylamak için onu imzalamak için Rıza okumak için konuyu söyleyin. </li></ol></li><li> S doğrulayınubject alerjik olmayan için &quot;___ Caine&quot; tipi ilaçlar (örneğin lidokain). </li><li> Maruz uyluk ile bir yastıklı masaya sırtüstü yatmak konuyu söyleyin. Kişinin bacak altında plastik altlık ile iki atılabilir emici levhaları tarafından yerleştirin. Böylece kısaltılmış pozisyonda Vastus lateralis yerleştirerek, topuk altında küçük bir havlu rulo gibi diz tamamen genişletilmiş olduğundan (yüksek ~ 1 cm) ile rahat bir şekilde bacak yerleştirin. </li><li> Operatör biyopsi Alanı görselleştirilebilir ve böylece kısa süreli maruz uyluk kas büzülmesi için konusu talimat yazıldı. Not: Vastus sadece fasya lata (illiotibial bant), patella üst ve büyük trokanter 7 arasındaki mesafenin yaklaşık üçte birine anterior olan biyopsi siteyi lateralis. </li><li> Sadece aşağıdaki operatör işareti (~ 0.5 cm) ince bir nokta kalıcı bir kalem ile kesi site var. </li><li> Operatör Pinc tarafından yaklaşık Deri kıvrım kalınlığı belirlemek mıskinfold hing. </li><li> Operatör var ve teknisyenler sabun ve ılık su ile ellerini yıkamak ve tek kullanımlık eldivenler yok. </li><li> Operatör (Clippers yoluyla) biyopsi site çevresinde ~ bir bölgeden 15 cm x 15 cm saç kaldırmak var. Biyopsi sitesinden saç kırpma işlemi sırasında kesi girmesini ve kapanış sırasında saçları önler ve epilasyon bant kapanışları ve cilt (3.4 bakınız) arasında daha iyi temas sağlar: Not. </li><li> Operatör çubukla alan sterilize sahip topikal bir antiseptik ile önceden ıslatılır, (örneğin iyot / kabuklu deniz ürünleri alerjisi konular için povidon-iyot veya klorheksidin glukonat gibi). Merkezinde başlar ve kesik alanının dış kenarına doğru eş merkezli daireler halinde çalışır. En azından, yeni bir ön-batırılmış bez ile iki kez daha her zaman tekrarlayın. </li></ol> 2. Biyopsi Prosedürü <ol><li> Operatör, atılabilir eldivenler kaldırmak sabun ve ılık su ile ellerinizi yıkayın ve steril cerrahi gl don varaseptik teknikle Oves. </li><li> Teknisyen # 1 sunacağım operatöre steril fenestre örtüye sahip. Aseptik teknik kullanılarak, operatör var steril bir alan sağlamak için biyopsi sitesi üzerinden örtüyü yerleştirin. </li><li> Teknisyen 1. mevcut olması, operatör, aseptik teknikle, korurken, bir 21 G iğne ile donatılmış 5 mL&#39;lik bir şırınga. Alkollü bir bezle lidokain şişenin üst temizleyin. <ol><li> Operatör hemen lidokain 5 ml çekilme var. Şırınga, 21 G iğne çıkarın ve bir kavuz kabın içine iğne atın. </li><li> Aseptik teknik korurken teknisyen # 1 sunacağım 1-½ inç 25 G iğne ile operatör var. Operatör yerde şırınga üzerine 1-½ inç iğne ve şırınga hava kabarcıkları tahliye. </li></ol></li><li> Kesi sitede teknisyen 1. sprey etil klorür (~ cilt üzerinde silinmez mürekkep işaretinin üzerinde 0.5 cm) sahip cilt görünene kadar &quot;blanch.&quot; <ol><li> HaOperatör çapında bir &quot;kabarcık&quot; 2-4 mm üretmek için lidokain 100 ~ ile ul sızmak sonra, dermis içine deriye yaklaşık yatay iğneyi iğne aspire, ve A.Ş.. <ol><li> Iğne bir kan damarı yerleştirilmiş olmadığını onaylamak için (biraz şırınga pistonu geri çekme) operatörü aspirat iğne var. Kan şırınga görünüyorsa, iğneyi çekilme kavuz konteyner içinde atmak ve 2.3 tekrar başlar. </li><li> , Operatör unun, deri altı doku içine iğne sahip iğne havalandırın, ve daha sonra bir kabarcık oluşturmak üzere lidokain ~ 1 ml doku infiltrasyonu. Kabarcık yatışmış sonra, fasya yüzeyel durdurma, dikey kesi yeri içine lidokain yüklü şırınga 1-½ inç iğne takın. Not: konu (bir arı sokması benzer) lidokain ilk enjeksiyondan sonra hafif bir anlık batma hissi hissedebilirsiniz. </li></ol></li><li> Operat emin olunBu 17-19 myotoxic olduğu veya lidocoine ile kas etkilemez. </li><li> Operatör aspirat iğne var ve kalçasından iğne geri çekilirken daha sonra yavaş yavaş lidokain kalan 4 ml enjekte edilir. Enjeksiyon sitesi üzerinden steril gazlı bez yerleştirin ve lokal anestezik etkisi sürerken konu dinlenmek için izin verir. </li></ol></li><li> Aseptik teknik korurken 2-3 dakika sonra, operatör neşteri teknisyen 1. hediyem var. <ol><li> Hafifçe alanı anestezi doğrulamak için neşter ucu ile biyopsi siteyi soruşturma operatör var. Gerekirse, kesi yeri içine lidokain başka bir 3-4 ml enjekte 2.4.1.2 bkz. </li></ol></li><li> Operatör femur deri ve derialtı dokularda (~ mürekkep işaretinin üzerinde 2-3 mm) paralel aracılığıyla düz 1 cm kesi yapmak zorunda. <ol><li> Operatör kas içine fasya yoluyla bir kesi yapmak için neşter derin yerleştirin var. Her yönde bir kere yapmanız<html> . Not: konu kas içine neşter bıçak keser eğer derin kesimli bir sancı ya da baskı hissedebilirsiniz. </li><li> Teknisyen 2. sahip konuşma konuyu meşgul ve ters bacak masaj. </li></ol></li><li> Operatör yerde kesi ve biyopsi sitesi üzerinden steril gazlı bez liberal bir miktar var ve kanamayı azaltmak için kesi doğrudan basınç uygulayın. <ol><li> Teknisyen 1. atılabilir 60 ml şırınga ve 30 cm uzatma boru (Şekil 1) 3-yollu metal stopkok bağlamak var. </li><li> Teknisyen 1. uzatma tüpünün serbest ucuna şevli hortum konnektörünün bir ucunu sıkıca arasında ~ 15-18 mm olan bir 200 ul pipet büyük ucuna şevli hortum konnektörünün diğer ucunu yazıldı ucu kesilmiş. </li></ol></li></ol>jpg &quot;width =&quot; 500 &quot;/&gt; Şekil 1. Bergström iğne. (A) Bergström iğne (5 mm), (a) bir dış kanül ve (b) iç trokar oluşan, ilgili bileşenleri (c) piston, (d) 15-18 mm kesim ~ 200 ul bir pipet içermektedir , (e) konik plastik konektör, (f) 3-yollu metal musluk, (g) 30 cm uzatma tüpü, ve (h) tek 60 ml şırınga. (B) Bergström iğne (5 mm) ve ilgili bileşenleri monte. ( C) geri Bergström iğne (5 mm) iç trokar yaklaşık 1 cm dış kanülün penceresi açılır. <ol start="9"><li> Kanama yatışmış sonra, teknisyen 1. sterilize otoklav keseyi açmak ve aseptik teknik korurken operatöre 5 mm biyopsi iğnesi ve iç trokarı (Şekil 1) sunmak var. <ol><li> Operatör iğneyi (dış kanül ve iç trokarı) monte var, uyum ve kayma hareketini kontrol edin. </li> &lt;/ Ol&gt; </li><li> Operatör var sıkıca dönmesini iç trokarı önlemek için iki elinizle iğne düzeneğini (dış kanül ve iç trokar) tutun. Teknisyen 1. sıkıca hafif aşağıya doğru bir döndürme hareketiyle biyopsi iğnesi iç trokar kısmının üstünde içine kesilmiş pipet yerleştirin var. Operatörünüze veya biyopsi iğne, sadece pipet değmeyecek teknisyen 1. olun. </li><li> Operatör kesiden dokuya biyopsi iğne tanıtmak var. Biyopsi iğne ucu ile fasya olarak kesi (kazanılmış bir &quot;hissediyorum&quot;) bulun. İğne, kas içine ilerleyen bir zemine doğru iğne aşağı hemen ardından pano ve açı geçen iğneyi. Not: Konular fasya yoluyla kesi biyopsi iğne ucu ile bulunur ve iğne kas içine ilerletilir gibi bazı hafif rahatsızlık (örneğin, &quot;derin basınç,&quot; ya da hafif kramp hissi) karşılaşabilirsiniz. <ol> &lt;li&gt; &quot;rahat&quot; Kalmak için teknisyen 2. talimat konuyu var ve operatör kas içine iğne ilerleyen iken kendi uyluk kaslarını değil. </li></ol></li><li> Biyopsi iğnesi konuma getirildikten sonra, tek 60 ml şırınga açmak için kullanıcı teknisyen sinyal 1. sahiptir. <ol><li> Teknisyen 1. hızla biyopsi iğnesi içinde emme oluşturmak için 40-50 cc işaretine açık tek 60 ml şırınga çekin var. </li><li> Operatör kas içinde dış trokar konumunu korurken, dış kanül penceresini açmak için dışarı yaklaşık 1 cm iç trokarı çekin var. Operatör hızla (klip) kesilmiş ve kas örnek toplamak için iç trokarı kapatın var. Emme serbest bırakmak için operatör sinyal teknisyen # 1 var. </li><li> Teknisyen 1. emme serbest bırakmak için odasına stopcock açmak mı. </li><li> Operatör var biyopsi iğnesi 90 ° döndürmek ve işlemi tekrarlayın. Gerekirse, operatör repea sahip(4 klip toplam) 3x rotasyon prosedürü t. </li></ol></li><li> Fasya veya cilt yakalamak için dikkatli olmak, uyluk biyopsi iğne çıkarırken operatör steril gazlı bez ile kesi yeri doğrudan karşı baskı uygulamak var. Önemli bir direnç hissedilirse iç trokarın bir kıvırma hareketi uygularken, yeniden kesti. </li><li> Uyluktan biyopsi iğnesinin çıkarılması üzerine görsel doku yeterli miktarda toplanmış, tahmin etmek için dış kanülün lümen incelemek için, operatör arka 1 cm iç trokarı çekmelidir. <ol><li> Operatör elden # 1 tekniklere biyopsi iğne var. Aseptik teknik O teknisyen 1. sağlamak korumak için sadece iğne değil, operatör dokunur. Teknisyen # 1 elden 3. tekniklere biyopsi iğne var. </li></ol></li><li> Teknisyen # 3 sökün biyopsi iğne doku var. <ol><li> Teknisyen 3. kullanacağım pistonu (Şekil 1) ve ince uçlu forseps bir çift vartüm kas dokusu, iç ve dış kanül trokar kaldırılır emin olmak için. </li><li> Teknisyen 3. hızlı kas dokusunun yeterli miktarda toplanmış onaylamak ve bir buz-soğuk diseksiyon blokta örnekleri yer için örnek tartılır yazıldı. </li></ol></li><li> Teknisyen 3. dikkatle kas örneklerinde görünür bağ dokusu ve yağ teşrih var. Teknisyen 3. alt analizlere göre depolama için kas numuneleri hazırlamak var. Örneğin, hemen kriyotüpe içinde örnekleri yer ve sıvı azot içinde dondurma ek, montaj ve RNaz inhibitörü, vb kriyotüpe histoloji, ya da bir yer için dondurmak </li><li> Gerekirse aseptik teknik korurken, ikinci sterilize biyopsi iğnesi ile işlemi tekrarlayın. </li></ol> 3. Kapanış <ol><li> Operatör steril gazlı bez ve 10-15 dakika süreyle bir buz paketi ile biyopsi siteye doğrudan basınç uygulayın var. </li><li> Hemostaz sağlandıktan sonra, operatör kullanımı alkol pr varep pedler kesi etrafındaki alandan kurutulmuş kan kaldırmak için. </li><li> Teknisyen # 1 sunacağım operatöre topikal cerrahi yapıştırıcı ve uygulayıcının bir tüp var. Operatör aplikatör ucu veya borunun üst değmeden cerrahi yapışkan ve aplikatör tüpü monte yazıldı. </li><li> Öte yandan ile kuru kesiğin üst üzerinde cerrahi yapışkan tek bir tabaka uygulanırken, operatörün bir eliyle kesik kapatıldı çekmelidir. Yapıştırıcı tedavileri (~ 90 sn) sonra, kesi bant closuresperpendicular geçerlidir. Alternatif olarak, iki steril 4-0 sütür ile kesiğin kapatılması. </li><li> Operatör kesi yeri 3-4 2 &quot;x 2&quot; non-steril gazlı bez koyarak doğrudan basınç uygulamak ve öz-yapışan yapışkanlı şal ile güvenli var. </li><li> Operatör sözlü konuyu ve uygun yara bakımı, normal ve anormal tepkiler üzerine yazılı talimatlar ve takip eden 1 ila 4 gün boyunca etkinlik ilkelerine uygun (çevrimiçi Herhangi yüzeylerin bakın sağlamasıpplement 2). </li></ol>

<ol>
	<li>Duchene, G. B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recherches+sur+la+paralysie+musculaire+pseudohypertrophique+ou+paralysie+myo-sclerosique.">Recherches sur la paralysie musculaire pseudohypertrophique ou paralysie myo-sclerosique.</a> Arch Gen Med. 11 (30), (1868).</li><li>Bergstrom, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+electrolytes+in+man.+Determined+by+neutron+activation+analysis+on+needle+biopsy+specimens.">Muscle electrolytes in man. Determined by neutron activation analysis on needle biopsy specimens.</a> Scand J Clin Lab Invest (England). 14, (1962).</li><li>Bergstrom, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Percutaneous+needle+biopsy+of+skeletal+muscle+in+physiological+and+clinical+research).">Percutaneous needle biopsy of skeletal muscle in physiological and clinical research).</a> Scand J Clin Lab Invest. 35, 609-616 (1975).</li><li>Bergstrom, J., Hultman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+study+of+the+glycogen+metabolism+during+exercise+in+man.">A study of the glycogen metabolism during exercise in man.</a> Scand J Clin Lab Invest. 19, 218-228 (1967).</li><li>Evans, W. J., Phinney, S. D., Young, V. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Suction+applied+to+a+muscle+biopsy+maximizes+sample+size.">Suction applied to a muscle biopsy maximizes sample size.</a> Med Sci Sports Exerc. 14, 101-102 (1982).</li><li>Hennessey, J. V., Chromiak, J. A., Della Ventura, S., Guertin, J., MacLean, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Increase+in+percutaneous+muscle+biopsy+yield+with+a+suction-enhancement+technique.">Increase in percutaneous muscle biopsy yield with a suction-enhancement technique.</a> J Appl Phys. 82, 1739-1742 (1997).</li><li>Tarnopolsky, M. A., Pearce, E., Smith, K., Lach, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Suction-modified+Bergstrom+muscle+biopsy+technique:+experience+with+13,500+procedures.">Suction-modified Bergstrom muscle biopsy technique: experience with 13,500 procedures.</a> Muscl., &amp; Nerve. 43, 717-725 (2011).</li><li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Carbohydrate+ingestion+influences+skeletal+muscle+cytokine+mRNA+and+plasma+cytokine+levels+after+a+3-h+run.">Carbohydrate ingestion influences skeletal muscle cytokine mRNA and plasma cytokine levels after a 3-h run.</a> J Appl Physiol. 94, 1917-1925 (2003).</li><li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+carbohydrate+ingestion+on+immune+changes+after+2+h+of+intensive+resistance+training.">Influence of carbohydrate ingestion on immune changes after 2 h of intensive resistance training.</a> J Appl Physiol. 96, 1292-1298 (2004).</li><li>Utter, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Carbohydrate+supplementation+and+perceived+exertion+during+prolonged+running.">Carbohydrate supplementation and perceived exertion during prolonged running.</a> Med Sci Sports Exerc. 36, 1036-1041 (2004).</li><li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+cytokine+mRNA+changes+after+2.5+h+of+cycling:+influence+of+carbohydrate.">Muscle cytokine mRNA changes after 2.5 h of cycling: influence of carbohydrate.</a> Med Sci Sports Exerc. 37, 1283-1290 (2005).</li><li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+quercetin+and+EGCG+on+mitochondrial+biogenesis+and+immunity.">Effects of quercetin and EGCG on mitochondrial biogenesis and immunity.</a> Med Sci Sports Exerc. 41, 1467-1475 (2009).</li><li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quercetin's+Influence+on+Exercise+Performance+and+Muscle+Mitochondrial+Biogenesis.">Quercetin's Influence on Exercise Performance and Muscle Mitochondrial Biogenesis.</a> Med Sci Sports Exerc. 42, 338-345 (2010).</li><li>Dumke, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quercetin's+effect+on+cycling+efficiency+and+substrate+utilization.">Quercetin's effect on cycling efficiency and substrate utilization.</a> Appl Physiol Nut Metab. 34, 993-1000 (2009).</li><li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quercetin's+influence+on+exercise-induced+changes+in+plasma+cytokines+and+muscle+and+leukocyte+cytokine+mRNA.">Quercetin's influence on exercise-induced changes in plasma cytokines and muscle and leukocyte cytokine mRNA.</a> J Appl Physiol. 103, 1728-1735 (2007).</li><li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guideline+for+Disinfection+and+Sterilization+in+Healthcare+Facilities.">Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities.</a> http://www.cdc.gov/hicpac/Disinfection_Sterilization/toc.html. , (2008).</li><li>Faria, F. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+onset+and+duration+of+mobilization+affect+the+regeneration+in+the+rat+muscle.">The onset and duration of mobilization affect the regeneration in the rat muscle.</a> Histol Histopath. 23, 565-571 (2008).</li><li>Carlson, B. M., Shepard, B., Komorowski, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+histological+study+of+local+anesthetic-induced+muscle+degeneration+and+regeneration+in+the+monkey.">A histological study of local anesthetic-induced muscle degeneration and regeneration in the monkey.</a> J Ortho Res. 8, 485-494 (1990).</li><li>Yagiela, J. A., Benoit, P. W., Buoncristiani, R. D., Peters, M. P., Fort, N. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+myotoxic+effects+of+lidocaine+with+epinephrine+in+rats+and+humans.">Comparison of myotoxic effects of lidocaine with epinephrine in rats and humans.</a> Anesth Analg. 60, 471-480 (1981).</li><li>Coyle, E. F., Coggan, A. R., Hemmert, M. K., Ivy, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+glycogen+utilization+during+prolonged+strenuous+exercise+when+fed+carbohydrate.">Muscle glycogen utilization during prolonged strenuous exercise when fed carbohydrate.</a> J Appl Physiol. 61, 165-172 (1986).</li><li>Gibala, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brief+intense+interval+exercise+activates+AMPK+and+p38+MAPK+signaling+and+increases+the+expression+of+PGC-1alpha+in+human+skeletal+muscle.">Brief intense interval exercise activates AMPK and p38 MAPK signaling and increases the expression of PGC-1alpha in human skeletal muscle.</a> J Appl Physiol. 106, 929-934 (1985).</li><li>Phillips, S. M., Tipton, K. D., Ferrando, A. A., Wolfe, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Resistance+training+reduces+the+acute+exercise-induced+increase+in+muscle+protein+turnover.">Resistance training reduces the acute exercise-induced increase in muscle protein turnover.</a> Am J Physiol. 276, 118-124 (1999).</li><li>Davis, J. M., Murphy, E. A., Carmichael, M. D., Davis, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quercetin+increases+brain+and+muscle+mitochondrial+biogenesis+and+exercise+tolerance.">Quercetin increases brain and muscle mitochondrial biogenesis and exercise tolerance.</a> Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 296, 1071-1077 (2009).</li><li>Vissing, K., Andersen, J. L., Schjerling, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Are+exercise-induced+genes+induced+by+exercise.">Are exercise-induced genes induced by exercise.</a> FASEB J. 19, 94-96 (2005).</li><li>Lundby, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gene+expression+in+human+skeletal+muscle:+alternative+normalization+method+and+effect+of+repeated+biopsies.">Gene expression in human skeletal muscle: alternative normalization method and effect of repeated biopsies.</a> Eur J Appl Physiol. 95, 351-360 (2005).</li><li>Coyle, E. F., Coggan, A. R., Hemmert, M. K., Ivy, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muscle+glycogen+utilization+during+prolonged+strenuous+exercise+when+fed+carbohydrate.">Muscle glycogen utilization during prolonged strenuous exercise when fed carbohydrate.</a> J Appl Physiol. 61, 165-172 (1985).</li></ol>

The authors have no conflicts of interest.

Bu video ASU İnsan Performansı Laboratuarı kullanılan iskelet kas biyopsi bir adım-adım özetini sağlar. Küçük değişikliklerle bu prosedür, son 13 yılda yaklaşık 1.600 kas biyopsileri toplamak için kullanılır olmuştur. Kas biyopsi örnekleri önemli araştırma bulgularından yola çıkılarak, spor beslenme temelli araştırmalarda önemli veriler sağlamıştır. Modifiye Bergström iskelet kas biyopsi tekniği yaparken farkında olmak çok önemli teknikler vardır. Bi...

Perkütan ya da &#39;yarı-açık&#39; biyopsi tekniği insan hasta ve araştırma konuları iskelet kası doku örneklerinin elde etmek için kullanılır. Duchenne (1806-1875) perkütan biyopsi 1 ile doğanlarda iskelet kası elde etmek için bir trokar ile bir iğne oluşturmak için ilk olarak yatırılmaktadır. 1960 yılında, Bergström Duchenne 2-4 tarif edilene benzer bir perkütan biyopsi iğne tanıttı. Yirmi yıl sonra, Evans ve diğ. Bergström 5 iğnenin kesme trokardan emme uygulanarak değiştirilmiş tekniği. Bu modifikasyon, 5-kat, 6,7 doku 3 verimini arttırmak ve klinik ve araştırma ortamlarında biyomedikal kullanılır. Bu teknik vardır ve miyopatilerin tanı ve iskelet kas yapısı ve fonksiyonu anlayışımızı geliştirmek için devam edecektir. Perkütan kas biyopsi tekniği straightfo olduğunurward. Doğru yapıldığı zaman, aseptik teknikle ödün vermeden, ilişkili riskler minimumdur. Kas biyopsisi araştırma projeleri için bir araştırma aracı olarak kabul edilir. Bazı akademik kurumlar kas biyopsisi almak için, doğrudan hekim gözetimi ile, bir doktora ile fakülte araştırmacılar eğitimli izin ve diğerleri tekniği gerçekleştirmek için bir kurul sertifikalı hekim gerektirir. ASU biyopsi takımı başarıyla son 13 yılda 8-15 sırasında 1.600 kas biyopsileri yürüttü. Bu videonun amacı, insan deneklerin vastus lateralis iskelet kası doku örnekleri elde etmek için modifiye Bergström iğne perkütan kas biyopsi tekniği 5 tanımlamaktır.

<table><tbody><tr><td>Bergstr&amp;ouml;m biopsy needle, 5 x 100 mm</td><td>Stille Surgical Inc.</td><td>119-29187-50</td><td>1 ea</td></tr><tr><td>Durasorb blue pad</td><td>Fisher</td><td>22-031-340</td><td>case of 300</td></tr><tr><td>Prep razor disposable</td><td>Moore Medical</td><td>89760</td><td>1 ea</td></tr><tr><td>Shave cream</td><td>Moore Medical</td><td>92869</td><td>1 can</td></tr><tr><td>Alcohol swab</td><td>Moore Medical</td><td>98721</td><td>box/200</td></tr><tr><td>Povidone-iodine swabsticks (3 pack)</td><td>Moore Medical</td><td>90691</td><td>pack of 50</td></tr><tr><td>Face masks</td><td>Fisher</td><td>19-039-690</td><td>case of 50</td></tr><tr><td>Sterile gloves; sz 6.5</td><td>Moore Medical</td><td>68128</td><td>box of 50 pairs</td></tr><tr><td>Sterile gloves; sz 7.0</td><td>Moore Medical</td><td>68129</td><td>box of 50 pairs</td></tr><tr><td>Sterile gloves; sz 8.5</td><td>Moore Medical</td><td>68132</td><td>box of 50 pairs</td></tr><tr><td>Fenestrated towel drape</td><td>Moore Medical</td><td>92712</td><td>case of 50</td></tr><tr><td>Lidocaine (1% HCl, w/o Epi)</td><td>Dealmed</td><td>427902</td><td>30 cc vial</td></tr><tr><td>Ethyl chloride spray</td><td>Dealmed</td><td>386020</td><td>3.5 fl. Oz. bottle</td></tr><tr><td>5 ml syringe w/ 21 G needle</td><td>Fisher</td><td>14-827-48</td><td>case of 100</td></tr><tr><td>25 G 5/8&quot; needle</td><td>Fisher</td><td>14-826AA</td><td>case of 100</td></tr><tr><td>25 G 1 1/2&quot; needle</td><td>Fisher</td><td>14-826-49</td><td>case of 100</td></tr><tr><td>Single-use scalpels w/ #11 blade</td><td>Fisher</td><td>0-8927-5B</td><td>box of 20</td></tr><tr><td>60 ml Syringe</td><td>Fisher</td><td>13-689-8</td><td>case of 40</td></tr><tr><td>~30 inch extension tubing</td><td>Fisher</td><td>14-169-7A</td><td>roll of 50 ft</td></tr><tr><td>Metal stopcock</td><td>Fisher</td><td>01-290-38</td><td>each</td></tr><tr><td>Polypropylene tubing connector w/ tapered ends, 3.2 to 5.5 mm</td><td>Fisher</td><td>15-315-28A</td><td>case of 100</td></tr><tr><td>Yellow pipette tips (1-200 &amp;micro;l)</td><td>Fisher</td><td>02-681-2</td><td>cut off ~15-18 mm of the tip</td></tr><tr><td>Topical surgical adhesive</td><td>Medline</td><td>MSC091076</td><td>case of 36 tubes</td></tr><tr><td>Topical surgical adhesive</td><td>Medline</td><td>MSC091076Z</td><td>box of 6 tubes</td></tr><tr><td>Butterfly stitches (adhesive strips) 1/2&quot; x 4&quot; (6 per pack)</td><td>Moore Medical</td><td>93050</td><td>box/300</td></tr><tr><td>Bandadge, Strip, 3/4 x 3 in.</td><td>Fisher</td><td>19-027-202</td><td>pack of 100</td></tr><tr><td>Adhesive bandage (5 m rolls)</td><td>Fisher</td><td>19-027-768</td><td>case of 36</td></tr><tr><td>1&quot; paper surgical tape</td><td>Fisher</td><td>19-027-761</td><td>case of 12</td></tr><tr><td>Sutures (4-0 reverse cutting, FS2)</td><td>Moore Medical</td><td>82926</td><td>box of 36</td></tr><tr><td>4 x 4 Sterile gauze pads</td><td>Moore Medical</td><td>66949</td><td>pkg/50</td></tr><tr><td>2 x 2 Non-sterile gauze pads</td><td>Moore Medical</td><td>37336</td><td>pkg/200</td></tr><tr><td>3 x 4 Non-adherent pads</td><td>Moore Medical</td><td>74389</td><td>bx/100</td></tr><tr><td>Autoclave bags 3.5 x 9</td><td>Moore Medical</td><td>40390</td><td>box of 200</td></tr><tr><td>Autoclave bags 5.25 x 10</td><td>Moore Medical</td><td>40391</td><td>box of 200</td></tr><tr><td>Autoclave indicator tape</td><td>Moore Medical</td><td>31608</td><td>box of 250</td></tr><tr><td>Lab coats&amp;mdash;small</td><td>Fisher</td><td>23-900-520A&amp;nbsp;</td><td>10/pk</td></tr><tr><td>Lab coats&amp;mdash;medium</td><td>Fisher</td><td>23-900-520B&amp;nbsp;</td><td>10/pk</td></tr><tr><td>Lab coats&amp;mdash;large</td><td>Fisher</td><td>23-900-520C&amp;nbsp;</td><td>10/pk</td></tr><tr><td>Germicidal Disposable Cloth Wipes</td><td>Moore Medical</td><td>62879</td><td>Can/160</td></tr></tbody></table>

human skeletal muscle biopsy procedures using the modified bergstr&#246;m technique

Perkütan biyopsi tekniği araştırmacılar ve klinisyenler iskelet kas dokusu örnekleri toplamak sağlar. Tekniği, güvenli ve son derece etkilidir. Bu video insan deneklerin vastus lateralis iskelet kası doku örnekleri elde etmek için modifiye edilmiş bir Bergström iğne kullanılarak perkütan biyopsi tekniği açıklar. Bergström iğne uzak ucunda bir kesme bıçağı ile ucun kenarındaki küçük bir açıklık (&quot;pencere &#39;) ve bir iç trokar olan bir dış kanül oluşur. Lokal anestezi ve aseptik koşullar altında, iğne cilt, deri altı dokusu, ve ön panodaki bir kesi ile iskelet kas içine ilerletilir. Daha sonra, emme iç trokar için uygulanır, böylece kesme ya da iskelet kası dokusu örneği tamamlamak dış trokar iskelet kası dokusu emme ile dış kanülün penceresine çekilir, geri çekilir ve iç trokar hızla kapanır . İğne 90 ° döndürülür60 ve bir kesim yapılır. Bu işlem, üç kez daha tekrarlanabilir. Bu, birden çok kesim tekniği, genellikle sağlıklı kişilerde 100-200 mg veya daha fazla bir örneğini üreten sırasında ve hemen öncesinde yapılabilir ve egzersiz veya diğer müdahale nöbetinden sonra. Kesi sitenin biyopsi sonrası soyunma ardından, denekler genellikle hemen günlük yaşam aktivitelerini devam ve tam 48-72 saat içinde şiddetli fiziksel aktiviteye katılabilirsiniz. Konular fasiyalarında kesiden kas herniasyonu riskini azaltmak için 48 saat boyunca ağır direnç egzersiz kaçınmalısınız.

Yukarıda tarif edildiği gibi kas biyopsisi hızlı ve düzenli olarak iskelet kası dokusu örnekleri toplamak için araştırmacı sağlar. Sağlıklı, atletik kişilerde tipik verim 3-4 klipler ile tek geçişte 200 mg veya daha fazladır. Prosedürü kesi için hazırlık harcanan çoğu 15-20 dakika alır. Egzersize dayalı çalışmalarda, kas örnekleri genelde kurtarma sırasında toplanan bir ya da iki numune ile, öncesi ve sonrası egzersiz alınır. Bu tasarım sayesinde, post-egzersiz saç (karşı) uyluk...

Watch this Scientific Journal Video about Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified BergstrÃ¶m Technique at JoVE.com

Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&#246;m Technique

The purpose of this video is to present the modified Bergstr&#246;m skeletal muscle biopsy technique on human subjects.

Modifiye Bergström Tekniği İnsan İskelet Kası Biyopsi Prosedürleri

The percutaneous biopsy technique enables researchers and clinicians to collect skeletal muscle tissue samples. The technique is safe and highly ...

human-skeletal-muscle-biopsy-procedures-using-modified-bergstrm

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Medicine

39.8K Görüntüleme.  Appalacian State University. The purpose of this video is to present the modified Bergström skeletal muscle biopsy technique on human subjects. 

Video: Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergström Technique

Isolation and Quantitative Immunocytochemical Characterization of Primary Myogenic Cells and Fibroblasts from Human Skeletal Muscle

The repair and regeneration of skeletal muscle requires the action of satellite cells, which are the resident muscle stem cells. These can be isolated from human muscle biopsy samples using enzymatic digestion and their myogenic properties studied in culture. Quantitatively, the two main adherent cell types obtained from enzymatic digestion are: (i) the satellite cells (termed myogenic cells or muscle precursor cells), identified initially as CD56+ and later as CD56+/desmin+ cells and (ii) muscle-derived fibroblasts, identified as CD56&#8211; and TE-7+. Fibroblasts proliferate very efficiently in culture and in mixed cell populations these cells may overrun myogenic cells to dominate the culture. The isolation and purification of different cell types from human muscle is thus an important methodological consideration when trying to investigate the innate behavior of either cell type in culture. Here we describe a system of sorting based on the gentle enzymatic digestion of cells using collagenase and dispase followed by magnetic activated cell sorting (MACS) which gives both a high purity (&#62;95% myogenic cells) and good yield (~2.8 x 106 &#177; 8.87 x 105 cells/g tissue after 7 days in vitro) for experiments in culture. This approach is based on incubating the mixed muscle-derived cell population with magnetic microbeads beads conjugated to an antibody against CD56 and then passing cells though a magnetic field. CD56+ cells bound to microbeads are retained by the field whereas CD56&#8211; cells pass unimpeded through the column. Cell suspensions from any stage of the sorting process can be plated and cultured. Following a given intervention, cell morphology, and the expression and localization of proteins including nuclear transcription factors can be quantified using immunofluorescent labeling with specific antibodies and an image processing and analysis package.

The main adherent cell types derived from human muscle are myogenic cells and fibroblasts. Here, cell populations are enriched using magnetic-activated cell sorting based on the CD56 antigen. Subsequent immunolabelling with specific antibodies and use of image analysis techniques allows quantification of cytoplasmic and nuclear characteristics in individual cells.

İnsan İskelet Kası İlköğretim andMyogenic Hücreleri ve Fibroblast İzolasyon ve Kantitatif İmmünositokimyasal Karakterizasyonu

The repair and regeneration of skeletal muscle requires the action of satellite cells, which are the resident muscle stem cells. These can be isolated ...

Gelişim Biyolojisi

X-ray Diffraction of Intact Murine Skeletal Muscle as a Tool for Studying the Structural Basis of Muscle Disease

Transgenic mouse models have been important tools for studying the relationship of genotype to phenotype for human diseases including those of skeletal muscle. Mouse skeletal muscle has been shown to produce high quality X-ray diffraction patterns on third generation synchrotron beamlines providing an opportunity to link changes at the level of the genotype to functional phenotypes in health and disease by determining the structural consequences of genetic changes. We present detailed protocols for preparation of specimens, collecting the X-ray patterns and extracting relevant structural parameters from the X-ray patterns that may help guide experimenters wishing to perform such experiments for themselves.

We present detailed protocols for performing small-angle X-ray diffraction experiments using intact mouse skeletal muscles. With the wide availability of transgenic mouse models for human diseases, this experimental platform can form a useful test bed for elucidating the structural basis of genetic muscle diseases

Kas hastalığının yapısal temelini Incelemek için bir araç olarak bozulmamış Murine Iskelet kasının X-ışını kırması

Transgenic mouse models have been important tools for studying the relationship of genotype to phenotype for human diseases including those of skeletal ...

Isolation, Culture, Characterization, and Differentiation of Human Muscle Progenitor Cells from the Skeletal Muscle Biopsy Procedure

The use of primary human tissue and cells is ideal for the investigation of biological and physiological processes such as the skeletal muscle regenerative process. There are recognized challenges to working with human primary adult stem cells, particularly human muscle progenitor cells (hMPCs) derived from skeletal muscle biopsies, including low cell yield from collected tissue and a large degree of donor heterogeneity of growth and death parameters among cultures. While incorporating heterogeneity into experimental design requires a larger sample size to detect significant effects, it also allows us to identify mechanisms that underlie variability in hMPC&#160;expansion capacity, and thus allows us to better understand heterogeneity in skeletal muscle regeneration. Novel mechanisms that distinguish the expansion capacity of cultures have the potential to lead to the development of therapies to improve skeletal muscle regeneration.

We present techniques for isolating, culturing, characterizing, and differentiating human primary muscle progenitor cells (hMPCs) obtained from skeletal muscle biopsy tissue. hMPCs obtained and characterized through these methods can be used to subsequently address research questions related to human myogenesis and skeletal muscle regeneration.

İskelet Kas Biyopsisi Prosedüründen İnsan Kas Atası Hücrelerinin İzolasyon, Kültür, Karakterizasyonu ve Farklılaşması

The use of primary human tissue and cells is ideal for the investigation of biological and physiological processes such as the skeletal muscle ...

Performing Human Skeletal Muscle Xenografts in Immunodeficient Mice

Treatment effects observed in animal studies often fail to be recapitulated in clinical trials. While this problem is multifaceted, one reason for this failure is the use of inadequate laboratory models. It is challenging to model complex human diseases in traditional laboratory organisms, but this issue can be circumvented through the study of human xenografts. The surgical method we describe here allows for the creation of human skeletal muscle xenografts, which can be used to model muscle disease and to carry out preclinical therapeutic testing. Under an Institutional Review Board (IRB)-approved protocol, skeletal muscle specimens are acquired from patients and then transplanted into NOD-Rag1null IL2r&gamma;null (NRG) host mice. These mice are ideal hosts for transplantation studies due to their inability to make mature lymphocytes and are thus unable to develop cell-mediated and humoral adaptive immune responses. Host mice are anaesthetized with isoflurane, and the mouse tibialis anterior and extensor digitorum longus muscles are removed. A piece of human muscle is then placed in the empty tibial compartment and sutured to the proximal and distal tendons of the peroneus longus muscle. The xenografted muscle is spontaneously vascularized and innervated by the mouse host, resulting in robustly regenerated human muscle that can serve as a model for preclinical studies.

Complex human diseases can be challenging to model in traditional laboratory model systems. Here, we describe a surgical approach to model human muscle disease through the transplantation of human skeletal muscle biopsies into immunodeficient mice.

İmmün eksik farelerde İnsan İskelet Kası Ksenogreftlerinin

Treatment effects observed in animal studies often fail to be recapitulated in clinical trials. While this problem is multifaceted, one reason for this ...

Quantification of Subcellular Glycogen Distribution in Skeletal Muscle Fibers using Transmission Electron Microscopy

With the use of transmission electron microscopy, high-resolution images of fixed samples containing individual muscle fibers can be obtained. This enables quantifications of ultrastructural aspects such as volume fractions, surface area to volume ratios, morphometry, and physical contact sites of different subcellular structures. In the 1970s, a protocol for enhanced staining of glycogen in cells was developed and paved the way for a string of studies on the subcellular localization of glycogen and glycogen particle size using transmission electron microscopy. While most analyses interpret glycogen as if it is homogeneously distributed within the muscle fibers, providing only a single value (e.g., an average concentration), transmission electron microscopy has revealed that glycogen is stored as discrete glycogen particles located in distinct subcellular compartments. Here, the step-by-step protocol from tissue collection to the quantitative determination of the volume fraction and particle diameter of glycogen in the distinct subcellular compartments of individual skeletal muscle fibers is described. Considerations on how to 1) collect and stain tissue specimens, 2) perform image analyses and data handling, 3) evaluate the precision of estimates, 4) discriminate between muscle fiber types, and 5) methodological pitfalls and limitations are included.

A modified post-fixation procedure increases the contrast of glycogen particles in tissue. This paper provides a step-by-step protocol describing how to handle the tissue, conduct the imaging, and use stereological methods to obtain unbiased and quantitative data on fiber type-specific subcellular glycogen distribution in skeletal muscle.

İskelet Kas Liflerinde Subsellüler Glikojen Dağılımının İletim Elektron Mikroskobu Kullanılarak Ölçülmesi

With the use of transmission electron microscopy, high-resolution images of fixed samples containing individual muscle fibers can be obtained. This ...

Biyokimya

Preparation and Respirometric Assessment of Mitochondria Isolated from Skeletal Muscle Tissue Obtained by Percutaneous Needle Biopsy

Respirometric profiling of isolated mitochondria is commonly used to investigate electron transport chain function. We describe a method for obtaining samples of human Vastus lateralis, isolating mitochondria from minimal amounts of skeletal muscle tissue, and plate based respirometric profiling using an extracellular flux (XF) analyzer. Comparison of respirometric profiles obtained using 1.0, 2.5 and 5.0 &#956;g of mitochondria indicate that 1.0 &#956;g is sufficient to measure respiration and that 5.0 &#956;g provides most consistent results based on comparison of standard errors. Western blot analysis of isolated mitochondria for mitochondrial marker COX IV and non-mitochondrial tissue marker GAPDH indicate that there is limited non-mitochondrial contamination using this protocol. The ability to study mitochondrial respirometry in as little as 20 mg of muscle tissue allows users to utilize individual biopsies for multiple study endpoints in clinical research projects.

Methods for biopsy of Vastus lateralis, preparation of purified mitochondria, and respirometric profiling are described. The use of small muscle volume makes this technique suitable for clinical research applications.

Perkütan İğne Biyopsisi ile Elde Edilen İskelet Kası Doku İzole Mitokondri hazırlanması ve Respirometrik Değerlendirmesi

Respirometric profiling of isolated mitochondria is commonly used to investigate electron transport chain function. We describe a method for obtaining ...

Tıp

MyDoBID- Kas Lifi Tiplerini Verimli Bir Şekilde Tanımlamak İçin Yeni Bir Teknik

Fiber Type Identification of Human Skeletal Muscle

The technique described here can be used to identify specific myosin heavy chain (MHC) isoforms in segments of individual muscle fibers using dot blotting, hereafter referred to as Myosin heavy chain detection by Dot Blotting for IDentification of muscle fiber type (MyDoBID). This protocol describes the process of freeze-drying human skeletal muscle and isolating segments of single muscle fibers. Using MyDoBID, type I and II fibers are classified with MHCI- and IIa-specific antibodies, respectively. Classified fibers are then combined into fiber type-specific samples for each biopsy.
The total protein in each sample is determined by Sodium Dodecyl-Sulfate Polyacrylamide Gel Electrophoresis (SDS-PAGE) and UV-activated gel technology. The fiber type of samples is validated using western blotting. The importance of performing protein loading normalization to enhance target protein detection across multiple western blots is also described. The benefits of consolidating classified fibers into fiber type-specific samples compared to single-fiber western blots, include sample versatility, increased sample throughput, shorter time investment, and cost-saving measures, all while retaining valuable fiber type-specific information that is frequently overlooked using homogenized muscle samples. The purpose of the protocol is to achieve accurate and efficient identification of type I and type II fibers isolated from freeze-dried human skeletal muscle samples.
These individual fibers are subsequently combined to create type I and type II fiber type-specific samples. Furthermore, the protocol is extended to include the identification of type IIx fibers, using Actin as a marker for fibers that were negative for MHCI and MHCIIa, which are confirmed as IIx fibers by western blotting. Each fiber type-specific sample is then used to quantify the expression of various target proteins using western blotting techniques.

Yazar Spotlight: MyDoBID Tekniğini Kullanarak İskelet Kası Lifi Tiplerinin Gizemlerini Deşifre Etmek 

This protocol demonstrates single-fiber isolation from freeze-dried human skeletal muscle and fiber-type classification according to Myosin heavy chain (MHC) isoform using the dot blotting technique. Identified MHC I and II fiber samples can then be further analyzed for fiber type-specific differences in protein expression using western blotting.

İnsan İskelet Kasının Lif Tipi Tanımlaması

The technique described here can be used to identify specific myosin heavy chain (MHC) isoforms in segments of individual muscle fibers using dot ...

Human Vastus Lateralis Skeletal Muscle Biopsy Using the Weil-Blakesley Conchotome

Percutaneous muscle biopsy using the Weil-Blakesley conchotome is well established in both clinical and research practice. It is a safe, effective and well tolerated technique. The Weil-Blakesley conchotome has a sharp biting tip with a 4 - 6 mm wide hollow. It is inserted through a 5 - 10 mm skin incision and can be maneuvered for controlled tissue penetration. The tip is opened and closed within the tissue and then rotated through 90 -180&#176; to cut the muscle. The amount of muscle obtained following repeated sampling can vary from 20 mg to 290 mg which can be processed for both histology and molecular studies. The wound needs to be kept dry and vigorous physical activity kept to a minimum for approximately 72 hr although normal levels of activity can restart immediately following the procedure. This procedure is safe and effective when close attention is paid to the selection of subjects, full asepsis and post procedure care. &#160;Both right and left vastus lateralis are suitable for biopsy dependent on participant preference.

Human Vastus Lateralis Skeletal Muscle Biopsy Using the Weil-Blakesley Conchotome

This video demonstrates the technique of percutaneous muscle biopsy of the human vastus lateralis using the Weil-Blakesley conchotome.

İnsan<em&gt; Vastus lateralis</em&gt; Weil-Blakesley Conchotome kullanılması İskelet Kası Biyopsi

Percutaneous muscle biopsy using the Weil-Blakesley conchotome is well established in both clinical and research practice. It is a safe, effective and ...

Modifiye Bergström Tekniği İnsan İskelet Kası Biyopsi Prosedürleri

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

İnsan İskelet Kası İlköğretim andMyogenic Hücreleri ve Fibroblast İzolasyon ve Kantitatif İmmünositokimyasal Karakterizasyonu

Kas hastalığının yapısal temelini Incelemek için bir araç olarak bozulmamış Murine Iskelet kasının X-ışını kırması

İskelet Kas Biyopsisi Prosedüründen İnsan Kas Atası Hücrelerinin İzolasyon, Kültür, Karakterizasyonu ve Farklılaşması

İmmün eksik farelerde İnsan İskelet Kası Ksenogreftlerinin

İskelet Kas Liflerinde Subsellüler Glikojen Dağılımının İletim Elektron Mikroskobu Kullanılarak Ölçülmesi

Perkütan İğne Biyopsisi ile Elde Edilen İskelet Kası Doku İzole Mitokondri hazırlanması ve Respirometrik Değerlendirmesi

İnsan İskelet Kasının Lif Tipi Tanımlaması

İnsan İskelet Kasının Lif Tipi Tanımlaması

İnsan İskelet Kasının Lif Tipi Tanımlaması

İnsan