Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu protokol, kalp atış hızı, arteriyel kan basıncı, düşük ve üstün vena kava basınçları ve kardiyak ritim dahil olmak üzere hemodinamik verilerin sürekli ve uzun süreli toplanmasını sağlamak için büyük bir hayvan kablosuz telemetri cihazının implante edilmesi için cerrahi metodolojiyi açıklar.

Özet

Fontan prosedürü tek ventriküllü hastalar için yaşam beklentisini önemli ölçüde artırırken, kronik olarak yüksek santral venöz basınçlar ve azalmış kardiyak debinin bir sonucu olarak ortaya çıkan dolaşımın uzun vadede önemli hastalık yüküne neden olduğu iyi bilinmektedir. Kronik Fontan hayvan modelleri, bu işlemle ilişkili geç fizyolojik sonuçları incelemek için değerli bir varlıktır ve Fontan arızasını hafifletmek için tasarlanmış gelecekteki cihazların değerlendirilmesinde gerekli bir araçtır. Bununla birlikte, kronik Fontan modellerinin oluşturulmasına yönelik önceki girişimler, düşük sağkalım oranları nedeniyle engellenmiştir. Ek olarak, etkili hemodinamik veri toplama, serbestçe hareket eden hayvanlarda önemli bir zorluk teşkil etmektedir. Bu amaçla, kablosuz implante edilebilir telemetri sistemlerinin kullanımı, kardiyovasküler verilerin gerçek zamanlı ve uzun vadeli izlenmesi için yeni bir çözüm sunar. Bu protokol, kalp atış hızı, arteriyel kan basıncı ve inferior (IVC) ve superior vena kava'daki (SVC) lokalize basınçlar dahil olmak üzere çeşitli hemodinamik parametrelerin sürekli ve sürekli kaydını kolaylaştıran bir Fontan sağkalım küçükbaş hayvan modelinde bir kablosuz telemetri cihazının cerrahi implantasyonu için metodolojiyi açıklar. Telemetri cihazları, sırasıyla çıkan aort ve SVC veya abdominal aort ve IVC'ye basınç algılayıcı kateterlerin yerleştirilmesi için karotis arter ve internal juguler ven veya femoral arter ve ven kanülasyonu ile implante edildi. Kablosuz telemetri sistemlerinin kullanılması, tek aşamalı bir Fontan operasyonunun ardından ameliyat sonrası yakın izlemeyi mümkün kıldı ve bu da hayvan refahının ve hayatta kalmasının iyileştirilmesine katkıda bulundu.

Giriş

1971'de Fontan prosedürünün geliştirilmesi, tek ventrikülü olan hastalar için sonuçlarda önemli iyileşmelere yol açtı1. Bu ameliyatın amacı, kalbe giden sistemik ve pulmoner venöz dönüşü ayırmak, böylece sistemik oksijenasyonu artırmak ve sistemik ventrikül üzerindeki hacim yükünü hafifletmektir. Piyasaya sürülmesinden bu yana, cerrahi yaklaşımda çok sayıda değişiklik yapılmıştır. Şu anda, sağ kalbin tamamen baypas edilmesi en sık aşamalı rekonstrüksiyon 2,3 ile sağlanmaktadır. Tipik olarak, ilk aşama yaşamın ilk haftasında gerçekleştirilir4. Hastalar daha sonra kan akışını superior vena kava'dan (SVC) pulmoner artere (PA) yönlendirmek için Glenn prosedürü veya hemi-Fontan'dan oluşan ikinci bir aşamaya tabi tutulur5. Bunu, inferior vena kava (IVC) ve PA6 arasında ekstrakardiyak bir kanal veya lateral tünel oluşturulmasını içeren Fontan prosedürü takip eder. Fontan prosedürünün tarihi boyunca yapılanlar gibi cerrahi ilerlemeler, hayvan modelleri kullanılmadan elde edilemezdi7.

Fontan prosedürü tek ventrikül hastaları için yaşam beklentisini büyük ölçüde iyileştirirken, kronik olarak artmış santral venöz basınçlar (SVP) ve azalmış kardiyak debinin bir sonucu olarak subpulmonik pompa olmadan çalışan ortaya çıkan dolaşımın uzun vadede önemli hastalık yüküne neden olduğu iyi bilinmektedir 8,9,10,11,12 . Kronik Fontan hayvan modelleri, bu işlemle ilişkili geç fizyolojik sonuçları incelemek için değerli bir varlıktır13. Postoperatif hemodinamik değişiklikleri yakalamak için CVP, kalp hızı ve diğer yaşamsal belirtiler gibi kardiyovasküler parametrelerin aktif veri toplaması, gelişen patofizyolojinin kapsamlı bir değerlendirmesi için gereklidir. Ayrıca, hayvan modelleri, in vivoFontan dolaşımının hemodinamik eksikliklerini hafifletmek için tasarlanmış yeni ventriküler destek cihazlarının kapasitesini test etmek için gerekli bir araçtır 14,15,16,17,18,19.

Bununla birlikte, etkili veri toplama önemli bir zorluk teşkil etmektedir. İnvaziv kateter bazlı teknikler, geçici doğaları, ilişkili prosedürel riskler ve hayvanın durumunu uzun süreler boyunca izleyememe nedeniyle sınırlıdır. Ayrıca, büyük bir hayvan Fontan modeli yaratmaya yönelik önceki girişimler, muhtemelen normal kalplerin Fontan dolaşımının akut oluşumunauyum sağlayamaması nedeniyle, düşük hayatta kalma oranları nedeniyle engellenmiştir 7,20. Bu amaçla, kablosuz telemetri sistemlerinin kullanımı, serbestçe hareket eden hayvanlarda gerçek zamanlı, uzun vadeli kardiyovasküler verilerin toplanması için yeni bir çözüm sunmaktadır21,22. Bu cihazlar aynı zamanda ameliyat sonrası yakın izlemeyi de mümkün kılabilir, bu da hayvan refahı ve sağkalımının artmasına yol açabilir.

Burada, kronik bir Fontan küçükbaş hayvan modelinde bir kablosuz telemetri sisteminin23 başarılı bir şekilde implantasyonu ve kullanımı için metodolojiyi açıklıyoruz. Bu teknik, venöz basınçların ve diğer önemli fizyolojik parametrelerin incelenmesini mümkün kılan sürekli hemodinamik veri toplama için sağlam ve güvenilir bir araç sağladı. Bu teknolojinin klinik öncesi modellerde uygulanması, Fontan fizyolojisi anlayışımızı ilerletmek ve Fontan hastalarının uzun vadeli sonuçlarını iyileştirmeyi amaçlayan yeni terapötik stratejilerin geliştirilmesi için kritik öneme sahiptir.

Protokol

Bu deneysel protokol, Ülke Çapında Çocuk Hastanesi Abigail Wexner Araştırma Enstitüsü Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (AR20-00121) tarafından onaylanmıştır. Tüm prosedürler, Ulusal Sağlık Enstitüsü'nün Laboratuvar Hayvanlarının Kullanımı ve Bakımı Kılavuzu'nda belirtilen yönergelere uygun kalmıştır. Bu araştırma, Hayvan Araştırmaları: In Vivo Deneylerin Raporlanması yönergelerini takip etti. Ağırlık aralığı 23-38 kg ve yaş aralığı 2-12 ay olan Dorset koyunları, ameliyattan önce en az 1 hafta boyunca yiyecek ve suya ücretsiz erişimi olan patojen içermeyen özel bir ortamda barındırıldı. Çalışmada kullanılan ekipman ve reaktifler Malzeme Tablosunda listelenmiştir.

1. Hayvan hazırlama

  1. Güvenli bir şekilde anestezi alabilmelerini sağlamak için koyunların ameliyattan 1 hafta önce veteriner ekibi tarafından değerlendirilmesini sağlayın. Hızlı sağlıklı koyun ve cerrahi işlemden önce 12 saat sudan mahrum bırakın.
  2. Bir iç juguler (IJ) ven yoluyla enjekte edilen ketamin (4 mg / kg) ve diazepam (0.5 mg / kg) kombinasyonu ile sedat.
  3. Koyunları planlanan prosedüre göre (aşağıda ayrıntılı olarak açıklanmıştır) ve elektrokoter topraklama pedi yerleştirme için uyluğun üzerinden tıraş edin. Ameliyat bölgelerini alkolle temizleyin.
  4. Trakeaya 8-9 mm'lik tek lümenli bir endotrakeal tüp yerleştirin.
  5. Mide ve rumenin dekompresyonu için bir orogastrik tüp yerleştirin.
  6. Sürekli sıvı uygulaması, sürekli propofol hızı infüzyonu (CRI) ve gerektiğinde ilaç enjeksiyonu için sağ juguler ven veya lateral safen ven içine tek lümenli bir venöz kateter (16-18 G) yerleştirin.
  7. Sürekli kan basıncı izleme için bir kulak arterine bir arteriyel hat (22-24 G) yerleştirin.
  8. Non-invaziv kan basıncı ölçümü için sağ ön uzuvda bir kan basıncı manşonu, oksijen satürasyonunu izlemek için kulak veya dil üzerine bir klips ve dört uzuvda da elektrokardiyogram (EKG) uçları yerleştirin.
  9. İşlem sırasında,% 100 O2 ve / veya propofol CRI (20-45 mg / kg / s) ile inhale izofluran% 1 -% 3 kullanarak anesteziyi sürdürün.
  10. Klorheksidin bazlı bir preparat kullanarak cerrahi bölgeleri aseptik olarak temizleyin ve standart steril tarzda örtün.
  11. İnsizyondan önce antibiyotik profilaksisi için sefazolin (25 mg / kg) uygulayın ve gerektiğinde operasyon sırasında her 4 saatte bir tekrar dozlayın.
  12. İnsizyondan önce planlanan tüm insizyon bölgelerine bupivakain% 0.25 gibi deri altı lokal anestezik enjeksiyonu uygulayın.

2. Telemetri cihazı hazırlığı

  1. Telemetri yazılım programını açın ve telemetri cihazını, orijinal ambalajında hala kapalıyken mıknatıs anahtarını kullanarak açın.
  2. Yazılım programı içinde, üst çubukta bulunan Donanım'a tıklayın ve telemetri ünitesini bir iletişim bağlantı denetleyicisine ( CLC) atamak için PhysioTel Digital (CLC) Yapılandırmasını Düzenle'yi seçin.
  3. Bir CLC seçildikten sonra, CLC Ayrıntıları sayfası açılır. Bu sayfada, yakınlarda açık olan implant cihazları için bir arama başlatacak olan İmplant Ara'ya tıklayın.
  4. Telemetri birimini Seçilen İmplantlar listesine eklemek için Ekle'ye tıklayın. Cihaz şimdi CLC Ayrıntıları sayfasındaki Yapılandırılmış İmplantlar listesi altında görünecektir. Kaydet ve Çık'ı tıklayın.
  5. Örnekleme Kontrolü sekmesinde telemetri biriminin adının yanındaki Oynat düğmesine basarak veri alımını başlatın. Canlı veri alımını gösteren grafik otomatik olarak açılacaktır.
  6. Cihazı dış ambalajından çıkarın ve steril iç ambalajına ameliyat masasına aktarın.
  7. Cihazı iç ambalajında kalırken sıfırlayın. Cihazdan alınan ölçümler 30 saniye boyunca sabit kalana kadar bekleyin ve ofset olarak stabilize edilmiş titreşimsiz ortalama (NPMN) basınç değerlerini kullanın.
  8. Konu Ayarları'nda, sıfırlanan parametrenin yanındaki ayarlar simgesini seçin ve Uzaklıklar sekmesini açın. NPMN ölçümlerinden elde edilen uzaklık değerini metin kutusuna girin.
  9. Ofseti girdikten sonra, NPMN okumalarının 0 ± 0.1 mmHg olup olmadığını kontrol edin. Değilse, değerler istenen aralığa gelene kadar adım 2.7'yi tekrarlayın.
  10. Her iki basınç kanalı için 2.7-2.9 adımlarını gerçekleştirin.
  11. Basınç algılayıcı kateterleri bir kan damarına yerleştirmeden önce, karşılık gelen kanalı belirlemek için uca hafifçe vurun. Dalga formu çıkışında musluklar görünür hale gelecektir.
  12. Arteriyel basınç ölçümü için sol ventrikül basıncı (LVP) kanalına ve venöz basınç ölçümü için kan basıncı (BP) kanalına karşılık gelen kateteri kullanın.
  13. Kan Basıncı Analizi Özellikleri iletişim kutusunun Standart Özellikler sekmesinde, kan basıncı kanalı için minimum nabız yüksekliğini 1 mmHg olarak ayarlayın.

3. Yöntem 1: Femoral arter ve ven kanülasyonu

  1. Koyunları sağ kasık çevresinde ve karın ve göğsün üzerinde geniş bir çevrede tıraş edin.
  2. Koyunları, ön uzuvları esnek bir bez kemer kullanılarak fleksiyonla sabitlenecek ve kasıklara erişim sağlamak için kayar bir düğüm bağı kullanılarak arka bacakları uzatmada sabitlenecek şekilde ameliyat masasına sırtüstü yatırın (Şekil 1A).
  3. Sağ kasık bölgesinde, palpabl femoral arter üzerinde merkezlenmiş, kasık kıvrımının yaklaşık 1 cm altında 5 cm'lik enine bir kesi yapın.
  4. Elektrokoter ve künt diseksiyonun bir kombinasyonunu kullanarak, deri altı dokusundan femoral üçgene diseksiyon yapın. Arteriyel nabız için palpe ederek femoral damarları bulun.
  5. Femoral damarları ortaya çıkarmak için kas liflerinin yönü boyunca sartorius ve adduktor longus kası arasında bölün (Şekil 1B).
  6. Künt ve keskin diseksiyonun bir kombinasyonunu kullanarak, bağ dokusunu femoral damarlardan çevresel olarak temizleyin.
  7. Geçici damar ligasyonu için kanülasyon bölgesine proksimal ve distal her iki damarın etrafına çift ilmekli 2-0 ipek bir bağ geçirin.
  8. Sağ alt karın bölgesinde, kasık kıvrımının yaklaşık 3 cm yukarısında, deriden 6 cm'lik enine bir kesi yapın.
  9. Elektrokoter ve künt diseksiyonun bir kombinasyonunu kullanarak, dış oblikeye yüzeysel 6 cm x 4 cm'lik bir cep oluşturmak için deri altı yağ ve bağ dokusunu inceleyin.
  10. Telemetri cihazını deri altı cebe yerleştirin ve 2-0 ipek sütür kullanarak yerine sabitleyin (Şekil 1C).
  11. Telemetri cihazı antenini deri altı dokusunun altına tünelleyin ve 2-0 ipek sütür kullanarak yerine sabitleyin.
  12. Biyopotansiyel (EKG) derilerinin yerleştirilmesi için, orta ve alt karın bölgesinin yanı sıra alt ve üst göğüs üzerinde ciltte 1 cm'lik karşı kesiler yapın. Bu kesileri cihaz gövdesi cebine bağlamak için deri altından tünel açın ve EKG uçlarını istenen konuma yönlendirin.
  13. Pozitif elektrodu alt sternumun solundaki deri altı dokusuna yerleştirin. Alttaki çelik telin ucunu ortaya çıkarmak için silikon borunun çıkarıldığından emin olun.
  14. Negatif elektrodu üst sternumun sağındaki deri altı dokusuna yerleştirin.
  15. Her iki uç için fazla kablo, 2-0 ipek sütür kullanılarak deri altı bölgeye sarılabilir ve sabitlenebilir.
  16. Alt karın cihazı cebinden kasık insizyonuna kadar bir deri altı tüneli oluşturun ve iki basınç kateterini geçirin.
  17. Hem femoral arterin hem de venin kanülasyon bölgesine 6-0 polipropilen sütür kullanarak plastik bir turnike kullanılarak sabitlenebilen bir çanta dikişi yerleştirin.
  18. Kateter uçlarının içinde pıhtılaşmayı önlemek için kateter jel uçlarını sıkıştırılamayan, yüksek viskoziteli jel ile doldurun ve hava kabarcığı olmamasını sağlayın.
  19. Kanülasyondan 3 dakika önce bir doz intravenöz heparin (100 birim / kg) uygulayın.
  20. Femoral arter etrafındaki proksimal ve distal 2-0 ipek turnikeleri sıkın. # 11 bıçaklı bir neşter kullanarak çanta ipi dikişinin ortasındaki damarı dikkatlice kesin ve kavisli bir kanama durdurucunun ucuyla hafifçe genişletin.
  21. LVP kanalına karşılık gelen basınç kateterini yerleştirin ve kateterin geçişine izin vermek için proksimal ipek turnikeyi gevşeterek abdominal aort içine ilerletin. Çanta ipi sütürünü sıkın ve kateterin etrafına bağlayın.
  22. Femoral ven kanülasyonu için 3.20 ve 3.21 adımlarını tekrarlayın ve BP kanalına karşılık gelen basınç kateterini kullanın ve abdominal IVC'ye ilerletin (Şekil 1D).
  23. Floroskopi kullanarak kateter uçlarının IVC ve aortta uygun şekilde yerleştirildiğini onaylayın.
  24. 2-0 emilebilir bir sütür kullanarak sartorius kasını yeniden yaklaştırın.
  25. Sırasıyla 3-0 ve 4-0 emilebilir dikişler kullanılarak derin dermal ve subkutiküler dikişlerle cildi kapatın.

4. Yöntem 2: Karotis arter ve internal juguler ven kanülasyonu

  1. Koyunları sol boynun etrafında ve göğsün üzerinde geniş bir çevrede tıraş edin.
  2. Koyunu, göğsü ortaya çıkarmak için bir kayma bağı kullanılarak fleksiyonla sabitlenmiş durumda, sol ön bacak fleksiyonla sabitlenecek şekilde ameliyat masasına sağ lateral dekübit pozisyonunda yerleştirin (Şekil 2A).
  3. Sol karotis arter ve IJ ven üzerinde, torasik girişe yaklaşık 7 cm kraniyal olmak üzere 5 cm'lik uzunlamasına bir cilt kesisi yapın.
  4. Elektrokoter kullanarak, boyun damarlarını ortaya çıkarmak için deri altı yağı, bağ dokusunu ve platizmayı inceleyin (Şekil 2B).
  5. Künt ve keskin diseksiyonun bir kombinasyonunu kullanarak, sol karotis arter ve IJ venindeki bağ dokusunu çevresel olarak temizleyin.
  6. Geçici damar ligasyonu için kanülasyon bölgesine proksimal ve distal her iki damarın etrafına çift ilmekli 2-0 ipek bir bağ geçirin.
  7. Sol boynun tabanında kürek kemiği ile servikal omurga arasında 6 cm'lik uzunlamasına bir kesi yapın.
  8. Elektrokoter ve künt diseksiyonun bir kombinasyonunu kullanarak, omurgaya doğru uzanan 6 cm x 4 cm'lik bir cep oluşturmak için deri altı yağ ve bağ dokusunu inceleyin.
  9. Telemetri cihazını deri altı cebe yerleştirin ve 2-0 ipek sütür kullanarak yerine sabitleyin.
  10. Telemetri cihazı antenini deri altı dokusunun altına tünelleyin ve 2-0 ipek sütür kullanarak yerine sabitleyin.
  11. EKG kablolarının yerleştirilmesi için boynun tabanında, ayrıca sol alt ve sağ üst göğüste 1 cm'lik karşı cilt kesileri yapın. Bu kesileri cihaz gövde cebine bağlamak için deri altından tünel açın ve EKG uçlarını istenen konuma yönlendirin (Şekil 2C).
  12. EKG kablolarını femoral implant prosedürü için yukarıda açıklanan adımlara benzer şekilde yerleştirin (bölüm 3).
  13. Lateral cihaz cebinden medial boyun insizyonuna kadar deri altı bir tünel oluşturun ve iki basınç kateterini geçirin. Femoral implant prosedüründe ayrıntılı olarak açıklandığı gibi, kanülasyondan önce bu basınç kateterlerini jel kullanarak hazırlayın.
  14. 6-0 polipropilen sütür kullanarak, her iki damardaki kanülasyon bölgesinin etrafına bir çanta dikişi yerleştirin ve plastik bir turnike ile sabitleyin.
  15. Kanülasyondan 3 dakika önce bir doz intravenöz heparin (100 birim / kg) uygulayın.
  16. Karotis arter etrafındaki proksimal ve distal 2-0 ipek turnikeleri sıkın. # 11 bıçaklı bir neşter kullanarak çanta ipi dikişinin ortasındaki damarı dikkatlice kesin ve kavisli bir kanama durdurucunun ucuyla hafifçe genişletin.
  17. LVP kanalına karşılık gelen basınç kateterini yerleştirin ve kateterin geçişine izin vermek için proksimal ipek turnikeyi gevşeterek torasik çıkan aort içine ilerletin. Çanta ipi sütürünü sıkın ve kateterin etrafına bağlayın.
  18. BP kanalına karşılık gelen basınç kateterini kullanarak sol IJ veninin kanülasyonu için 4.16 ve 4.17 adımlarını tekrarlayın ve torasik SVC'ye ilerletin.
  19. Floroskopi kullanarak torasik SVC ve çıkan aorttaki kateter uçlarının uygun yerini onaylayın (Şekil 2D).
  20. 2-0 emilebilir bir sütür kullanarak platisma kasını yeniden yaklaştırın.
  21. Sırasıyla 3-0 ve 4-0 emilebilir dikişler kullanılarak derin dermal ve subkutiküler dikişlerle cildi kapatın.

5. Kurtarma

  1. Anestezikleri bırakın. Orogastrik tüpü çıkarın ve koyun ventilatörden yardım almadan nefes alırken ekstübe edin. Bu tipik olarak koyun uyarılma belirtileri gösterdikten sonra ortaya çıkar (hareket, göz kırpma, ağrılı uyaranlara tepki, çene tonusu, çiğneme).
  2. Arteriyel çizgiyi çıkarın.
    NOT: Basınç kateterlerinden biri aort içine yerleştirilmişse, telemetri cihazı tarafından sürekli kan basıncı izleme sağlanabilir.
  3. Koyunları kurtarma için izole bir barınma birimine aktarın. Koyunların sternal yaslanmada kalmasına ve sonunda ayakta durmasına yardımcı olun.
  4. Postoperatif ağrı için intravenöz banamin (2.2 mg / kg) ve deri altı buprenorfin SR (0.03 mg / kg) uygulayın.

Sonuçlar

Cerrahi sonuçlar
Toplam 13 koyuna, hem SVC hem de IVC'nin sağ atriyumdan ayrılması, SVC'nin PA'ya doğrudan uçtan yana anastomozu ve IVC ile PA arasına ekstrakardiyak bir kanal yerleştirilmesi ile toplam kavopulmoner bağlantıyı içeren tek aşamalı Fontan cerrahisi uygulandı. Koyunlara bu işlem ortalama 13,3 ± 7,6 aylıkken uygulandı. Bunlardan 3 koyuna abdominal aort ve IVC içine basınç algılayıcı kateterlerin yerleştirilmesi ile kablosuz teleme...

Tartışmalar

Kablosuz telemetri cihazının bir küçükbaş hayvan modeline implantasyonu için iki cerrahi yöntem geliştirdik. Cihaz, kalp atış hızı, arteriyel kan basıncı ve abdominal IVC ve torasik SVC'den gelen lokalize venöz basınçlar dahil olmak üzere çeşitli kardiyovasküler parametrelerin sürekli, uzun süreli izlenmesini ve kaydedilmesini sağlamak için 5 koyuna başarıyla implante edildi. Tüm koyunlar, cihaz implantasyonu ameliyatından herhangi bir önemli komplikasyon o...

Açıklamalar

Bu proje, Palo Alto, California'daki Additional Ventures Cures Collaborative tarafından finanse edildi.

Teşekkürler

Animal Research Core'daki kendini işine adamış veteriner personelini takdir ediyoruz. Ayrıca, çalışma boyunca paha biçilmez uzmanlığı ve özenli bakımı için Mary Walker, DVM, MS'e minnettarlığımızı ifade etmek istiyoruz.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
0.9% Sodium Chloride solutionBaxter Healthcare CorporationPharmacyIntraoperative fluid resuscitation and wound rinse
16 G intravenous catheterBD382259For fluid and drug administration
22 G intravascular catheterBD381423For arterial  blood pressure monitoring
70% isopropyl alcoholAspen Vet11795782Topical cleaning solution
ACT cartridgeAbbot Diagnostics03P86-25Activated clotting time
Backhaus towel clampMedlineMDS1411111To affix sterile drape 
BanamineHospira PharmaceuticalsPharmacyPostoperative pain control: concentration 50 mg/mL, dose 2.2 mg/kg
Blood pressure cuffRoyal Philips9.89803E+11Non-invasive blood pressure monitoring
Bupivacaine hydrochlorideHospira PharmaceuticalsPharmacyLocal anesthetic: concentration 2.5 mg/mL, dose 2.5 mg/kg
BuprenorphineHospira PharmaceuticalsPharmacyPostoperative pain control: concentration 0.3 mg/mL, dose 0.03 mg/kg
Castroviejo needle holderMedlineMDS0750386Needle holder when suturing blood vessels
Cautery cleaner padCardinal Health300-2SSTo clean cautery pencil tip
Cautery pencilMedlineESRK3002LFor dissection using electrocautery
CefazolinHospira PharmaceuticalsPharmacyAntibiotic prophylaxis
CetacaineCetylite220Topical anesthetic spray for intubation
ChloraprepBD930825Topical antiseptic
Debakey atraumatic forcepsMedlineMDS1130630FFor tissue handling
DiazepamHospira PharmaceuticalsPharmacySedative: concentration 5 mg/mL, dose 0.5 mg/kg
ECG leads3M2570ECG monitoring
Endotracheal tube, size 8-9Covidien86452, 86114, or 86454To secure airway
Hartmann hemostatic forcepsMedlineMDS1221109To clamp blood vessels and hold small sutures
HeparinHospira PharmaceuticalsPharmacyAnticoagulant: 1,000 USP units/mL
Pressure transducer kitEdwards LifesciencesVSYPX12NFor arterial  blood pressure monitoring
Pulse oximeter lingual clipNellcorPO736For pulse oximetry
IsofluraneBaxter Healthcare CorporationPharmacyAnesthetic: dose 1-3%
Kantrowitz forcep (right angle)MedlineMDS1243528For blunt dissection around blood vessels
KetamineHospira PharmaceuticalsPharmacySedative: concentration 100 mg/mL, dose 4 mg/kg
Laparotomy drapeMedlineDYNJP3008Sterile drape
Lubricating jellyMedlineMDS0322273ZEndotracheal tube lubricant
Mayo Hegar needle holderMedlineMDS2418420FNeedle holder when suturing soft tissue
Mayo scissorsMedlineMDS0816121To cut suture
Metzenbaum curved scissorsMedlineMDS3223226For sharp dissection
Needles and syringesCardinal Health309604For intravenous and subcutaneous drug administration 
OptixcareAventixOPX-4252Corneal lubricant
Perma-Hand silk sutureEthiconC016DFor blood vessel ligation and attachment of the telemetry device subcutaneously
PhysioTel Digital wireless telemetry deviceData Sciences InternationalL21 modelWireless telemetry device implant
Pierce microforcepsMedlineMDG384908Small needle handling 
Plastic tourniquet and suture snareMedtronic 79013To facilitate hemostasis during vessel cannulation
Pressure bagCarefusion64-10029For arterial blood pressure monitoring
Prolene 6-0 sutureEthicon8307HPurse string stitch for vessel cannulation
PropofolFresenius KabiPharmacyAnesthetic: concentration 10 mg/mL, dose 20-45 mg/kg/h
Scalpel #10 bladeMedlineMDS15310For skin incisions
Scalpel #11 bladeMedlineCISION11CSFor incision into blood vessels
Schnidt tonsil forcepsMedlineMDS5018719For blunt dissection through subcutaneous tissue
SoftCarry stretcherFour Flags Over AspenSSTR-4For animal transportation
Sterile disposable OR towelMedlineMDT2168201Sterile drape
Sterile bowlLSL Industries5232To hold saline solution
Sterile cotton X-ray detectable gauze spongeMedlineNON21430LFFluid absorption
Orogastric tubeJorgensen Lab, Inc.J0348RFor stomach and rumen decompression
T-portMedlineDYNDTN0001Intravenous catheter tubing connector
Urine drainage bagCovidien3512Connects to orogastric tube to collect gastric fluids
Veterinary trocar with styletBraintree Scientific, Inc.TRO-STY 7B-12To guide telemetry wires through subcutaneous tissue
Vicryl 2-0 sutureEthiconVCPB269HClosure of subcutaneous soft tissue
Vicryl 3-0 sutureEthiconVCPB416HClosure of deep dermal layer
Vicryl 4-0 sutureEthiconJ494HCloser of subcuticular layer
Warming blanketJorgensen Lab, Inc.J1034BTo maintain animal's body temperature
Weitlander retractorTeleflex Medical165358For wound retraction
Yankauer bulb tip suctionMedlineDYND50138Sterile waste management

Referanslar

  1. Fontan, F. Baudet, E. Surgical repair of tricuspid atresia. Thorax. 26 (3), 240-248 (1971).
  2. Attanavanich, S., Limsuwan, A., Vanichkul, S., Lertsithichai, P., Ngodngamthaweesuk, M. Single-stage versus two-stage modified fontan procedure. Asian Cardiovasc Thorac Ann. 15 (4), 327-331 (2007).
  3. Bove, E. L. Lloyd, T. R. Staged reconstruction for hypoplastic left heart syndrome. Contemporary results. Ann Surg. 224 (3), 387-394; discussion 394-385 (1996).
  4. Iskander, C. et al. Comparison of morbidity and mortality outcomes between hybrid palliation and norwood palliation procedures for hypoplastic left heart syndrome: Meta-analysis and systematic review. J Clin Med. 13 (14), 4244 (2024).
  5. Salik, I., Mehta, B., Ambati, S. Bidirectional Glenn Procedure or Hemi-Fontan. Statpearls, Treasure Island, FL (2024).
  6. Daley, M. D'udekem, Y. The optimal Fontan operation: Lateral tunnel or extracardiac conduit? J Thorac Cardiovasc Surg. 162 (6), 1825-1834 (2021).
  7. Jalal, Z. et al. Role and applications of experimental animal models of Fontan circulation. J Clin Med. 13 (9), 2601 (2024).
  8. Al Balushi, A. Mackie, A. S. Protein-losing enteropathy following Fontan palliation. Can J Cardiol. 35 (12), 1857-1860 (2019).
  9. Emamaullee, J. et al. Fontan-associated liver disease: Screening, management, and transplant considerations. Circulation. 142 (6), 591-604 (2020).
  10. Mazza, G. A., Gribaudo, E., Agnoletti, G. The pathophysiology and complications of Fontan circulation. Acta Biomed. 92 (5), e2021260 (2021).
  11. Schwartz, I., Mccracken, C. E., Petit, C. J., Sachdeva, R. Late outcomes after the Fontan procedure in patients with single ventricle: A meta-analysis. Heart. 104 (18), 1508-1514 (2018).
  12. Zafar, F. et al. Long-term kidney function after the Fontan operation: Jacc review topic of the week. J Am Coll Cardiol. 76 (3), 334-341 (2020).
  13. Van Puyvelde, J. et al. Creation of the Fontan circulation in sheep: A survival model. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 29 (1), 15-21 (2019).
  14. Cysyk, J. et al. Chronic in vivo test of a right heart replacement blood pump for failed Fontan circulation. ASAIO J. 65 (6), 593-600 (2019).
  15. Cysyk, J. P. et al. Miniaturized Fontan circulation assist device: Chronic in vivo evaluation. ASAIO J. 67 (11), 1240--1249 (2021).
  16. D'udekem, Y. et al. Validating the concept of mechanical circulatory support with a rotary blood pump in the inferior vena cava in an ovine Fontan model. Bioengineering (Basel). 11 (6), 594 (2024).
  17. Granegger, M. et al. Feasibility of an animal model for cavopulmonary support with a double-outflow pump. ASAIO J. 69 (7), 673-680 (2023).
  18. Wei, X. et al. Mechanical circulatory support of a univentricular Fontan circulation with a continuous axial-flow pump in a piglet model. ASAIO J. 61 (2), 196-201 (2015).
  19. Zhu, J. et al. Cavopulmonary support with a microaxial pump for the failing Fontan physiology. ASAIO J. 61 (1), 49-54 (2015).
  20. Kelly, J. M. et al. Investigation of a chronic single-stage sheep Fontan model. JTCVS Open. 21, 268-278 (2024).
  21. Anderson, N. H. et al. Telemetry for cardiovascular monitoring in a pharmacological study: New approaches to data analysis. Hypertension. 33 (1 Pt 2), 248-255 (1999).
  22. Kearney, K., Appleby, C., Kieper, J., Atterson, P. Comparative analysis of data sciences international PhysioTel™ D70 and PhysioTel™ digital telemetry platforms. J Pharmacol Toxicol Methods. 81, 364-365 (2016).
  23. Physiotel digital l series. At <https://www.datasci.com/products/implantable-telemetry/large-animal/physiotel-digital-l > (2024).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

JoVE de Bu AySay 219

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır