Name: endotracheal intubation of rabbits using a polypropylene guide catheter
Uploaded: 2017-11-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 46 s
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저자는 그 직원과이 삽 관 법 기술을 학습 하는 동안 자신의 의견에 대 한 토끼 처리 및 마 취 교육 세션에 참여 하는 연구 요원 인정 하고자 합니다.

아래에 설명 된 삽 관 법 절차는 메이 요 클리닉 기관 동물 관리 및 사용 위원회에 의해 승인 되었다.
 1. 준비 ( 그림 1) <ol><li>5 프랑스 폴 리 프로필 렌 테 고 그래서 총 길이 8-10 인치 비 둥근 끝을 잘라. 어떤 최종 한다 명확 하 게 나타내기 위해 튜브의 컷된 끝을 표시 하지 기도 (화살표, 그림 1)를 삽입할 수.</li>
	<li>크기 0 또는 1 밀러 후 두 경 블레이드는 후 두 경에 놓고 빛 작동 하는지 확인 합니다.</li>
	<li>1 mL 주사기로 2 %lidocaine 0.25 mL 그릴.</li>
	<li>는 적절 한 크기의 uncuffed endotracheal 튜브 (일반적으로 2.5-4.0 m m ID) 끝에 살 균 윤활제를 적용.</li>
	<li>일단 장소에서 endotracheal 튜브를 고정 삽입 (예:, 탯 줄 테이프) 공급 준비.</li>
	<li>성공적인 삽 관 법 (#5, 그림 1)을 확인 하는 절차의 끝에 공기 흐름을 감지 하는 장치를 얻을. 이것은 선택 사항입니다.</li>
</ol> 2. 마 취 35 mg/kg 케 타 민 및 5 mg/kg xylazine 피하는 대략 4 달 오래 된, 3.0-3.5 k g, 뉴질랜드 화이트의 뒷 다리의 허벅지 근육 근육에 25 게이지 바늘 3 mL 주사기를 사용 하 여 같은 <ol><li>관리 주사 마 취 토끼. 
	참고:이 마 취 처방은 젊고, 건강 하 고, 특정 병원 체 자유로운 연구 토끼에 주사 조합이 일반적으로 사용된 하지만 임상 상태 및 실험 목적에 따라, 다른 프로토콜 보다 적절 한 수 있습니다.</li>
	<li>토끼 마 취 후 각 막 직물을 보존 하기 위해 눈에 불 임 안과 윤 활 유를 적용.</li>
</ol> 3. Endotracheal 삽 관 법 endotracheal 튜브의 삽입에 대 한 적절 한 길이 확인 하려면 <ol><li>측정은 흉부에 앞 니에서 endotracheal 튜브 입구. 흉부 입구의 수준에서 튜브의 끝의 배치 보장 튜브 오프닝은 하지만 tracheal 분기점에 두개골 후 두 과거.</li>
	<li>머리 약간 테이블 ( 그림 2)의 확장을 준비 테이블에 sternally 토끼 위치. 토끼를 위치 해야 머리와 척 추가 똑바로 정렬에 광장.</li>
	<li>거 즈 패드는 토끼를 사용 하 여, 머리를 드는 &#39; 토끼에 s 혀 측면 &#39; s 오른쪽 하단 앞 니 (diastema)에 앞 니에서 외상을 방지 하도록.</li>
	<li>후 두 경 블레이드를 오른손으로 파악 하 고 앞 니, 토끼에서 입력 뒤에 입 장소 &#39; 왼쪽 s.</li>
	<li>꼬리 방향으로 블레이드 팁과 입의 지붕 부드러운 입맛 표시 될 때까지 따릅니다.</li>
	<li>, 오른손으로는 후 두 경 앞으로 (아래쪽으로 후 두 경 들고 손목 벤드) 팁 토끼를 확장 하는 동안 &#39; 열려있는 기도 유지 하 고 ( 그림 3 후 두 볼을 앞으로 다시 s 머리와 목 A). 의무 코 breathers 있는 후두개는 종종 연구개, 위에 및이 메서드를 사용 하 여 압축 하는 후두개 전치 고는 glottis 혀의 기지. 산소 산소 포화도 방지 하기 위해, 그것은 목 삽 관 법 중 열려있는 기도 유지 하는 설명 된 대로 확장 유지 하는 것이 중요.</li>
	<li>혀 놓고 가이드 카 테 테 르의 배치를 위해 오른손을 왼손에 후 두 경 블레이드 스위치.</li>
	<li>는 후 두 경 누른 glottis ( 그림 3 B)의 보기를 유지 진행 후 두 ( 그림 4 과거 오프닝을 통해 가이드 카 테 터의 둥근된 팁 하는 동안 ). 테 tracheal 분기점에서 자연 정지에 올 것 이다.</li>
	<li>가이드 카 테 터의 유지 하면서 endotracheal 튜브를 파악 하 고 카 테 터, endotracheal 튜브 커넥터에 그것을 잡기로 테에 힘을 적용 하지 않도록 주의 복용 통해 스레드. 성 대 ( 그림 5)에서 저항 때까지 튜브를 사전.</li>
	<li>Endotracheal 관의 개통으로 2 %lidocaine 0.25 mL을 주는. lidocaine endotracheal 튜브 로컬로 laryngospasm 22 ( 그림 6)를 방지 하는 성 대 anesthetize를 여행 합니다.</li>
	<li>적용, 부드럽게 endotracheal 튜브, 성 대 ( 그림 7)을 통해 발전을 왜곡 하 여 진행 하는 국 소 마 취에 대 한 약 2 분 수 있습니다. 튜브가 통과 되 면 성 대, 후 두 경 잎 및 카 테 터, 튜브를 꺼내 려 하지 않도록 주의 복용 제거.</li>
	<li>확인 공기 흐름을 관찰 하 여 endotracheal 튜브의 배치. 조직이 나 공기, 튜브의 안개 또는 튜브의 끝에 유리/거울의 안개와 공기 흐름에 대 한 수신 대기를 찾고 감지 하 튜브의 끝에 모피의 배치를 포함 하 여,이 달성 하기 위해 여러 가지가 있습니다. 공기 23 또는 호흡을 감지 하도록 설계 된 장치 수도 있습니다 ( 그림 8)을 사용 하는 삽 관 법 성공 (참조 자료 테이블 옵션에 대 한)이 었. Endotracheal 튜브 튜브와 머리 주위에 묶인 탯 줄 테이프 등 선호 하는 방법을 사용 하 여 보호 합니다. 마 취 회로 및 auscult을 양쪽 폐의 환기를 보장 하기 위해서 호흡을 주는 동안 가슴의 양쪽 연결.</li>
</ol>

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여기 우리는 토끼에 대 한 자세한 설명을 어떤 임상 설정에서 쉽게 마스터 수 삽 관 법 기술을 제공 합니다. 이 기술은 이전에 게시 직접 시각화 기법10,15,20,25 uncuffed 3.5 m m endotracheal 튜브의 사용을 포함 하 여 몇 가지 추가 수정 비슷합니다 그리고 5 우리의 선택 가이드는 삭감 되 고 잘라 끝에 영구 표시와 함께 표시로 오 줌 카 테 테 르 프랑스. 토끼 기관 쉽게 부상 하는 경향이 이며 따라서 uncuffed endotracheal 튜브를 사용 하 여 일반적으로 권장 때 토끼를 intubating 팔목의 압력에서 tracheal 점 막 손상을 방지 합니다. 26 5 프랑스 오 줌 카 테 테 르 우리 선택 가이드 보컬 폴드 후 두의 직접 시각화 하는 동안 보기를 방해 하지 않고 쉽게 통과 하기 위하여 충분히 작은으로. 작은 동안,이 카 테 테이 르 장소에에서 남아 있는 endotracheal 튜브에 대 한 가이드로 충분히 뻣 뻣 한입니다. 카 테 터의 원심 끝 분기점에 도달 하면 충격을 줄일 수 있도록 반올림 됩니다. 근 위 카 테 터 끝 테 (지나치게 긴) 실행할 수 있는 길이 고 주사기에 첨부 파일에 대 한 확대 끝을 제거 하 되도록 잘라입니다. 잘라 끝 영구 마커 tracheal 점 막에 손상을 줄 수 있는 기관에이 삽입 하지를 시각적 표시기로 표시 됩니다.
이 기술의 주요 한계, 후 두 경 블레이드를 사용 하 여, 필요 하지 않을 수 있습니다 매우 젊은 토끼 또는 작은 입 크기로 인해 매우 작은 품종에 대 한 가능한 이다. 또한, 일부 시설이이 크기의 후 두 경 블레이드 쉽게 사용할 수 없을 수도 있습니다. 작가 기관에서이 방법은 뉴질랜드 화이트 (≥6 주)와 성인 네덜란드 불어 토끼 사용 됩니다 하지만 우리 젊은 동물 또는 작은 품종이이 방법을 시도 하지. 상황에서 토끼 환자, 또는 작은 밀러 블레이드와 후 두 경, 사용할 수 없는 경우 대체 옵션 휴대용 otoscope 보다는 후 두 경 사용 하는. 15 , 20 를 사용 하 여 한 otoscope #5 귀 검으로 후 두를 시각화, 가이드 테 직접 시각화에 의해 배치 고는 검 경 위에서 설명한 대로 동일한 단계 진행 하기 전에 제거 됩니다.
그것은 가이드 카 테 터와 카 테 터의 끝 기도로 전달 tracheal 분기 접촉 외상 또는 bronchospasm 발생의 가능성을 피하기 위해 배치 하는 때 주의 사용 해야 합니다. 이러한 합병증의 위험을 감소 하거나 매우 부드러운 움직임과 함께 테 먹이, 마자 저항, 중지 하 고 일단 테 장소에 머리와 목의 움직임을 방지 하 여 피할 수 있습니다. 또한, endotracheal 튜브 카 테 터를 통해 진행, endotracheal 튜브 커넥터에 잡으려고 카 테 터에 대 한 가능성이 있다. 따라서, 테 없이; 커넥터를 통해 슬라이드 다는 것을 확인 하는 것이 중요 하다 커넥터를 제거 하 고 보안은 endotracheal 때 대체 수 또는 관 또는 마 취 회로에 연결.
삽 관 법의 방법, 합병증과 부작용에 대 한 가능성이 있다. 후 두 경으로 직접 시각화 방법을 사용 하 여, 후 두 경 블레이드 또는 공격적 배치 endotracheal 튜브의 부적 절 한 삽입 하거나 치아 부상 후 두, 혀, 귀 착될 수 있습니다. 동물의 올바른 위치는 후 두의 시각화 중 외상을 최소화에 첫 번째 중요 한 단계입니다. 척추는 척추; 직접 정렬에 머리 똑 발라야 한다 동물은 직선, 또는 목 왼쪽 이나 오른쪽으로 트위스트이 후 두의 시각화를 더 어렵게 만들 것입니다 고 후 두 경 블레이드와 과도 한 외상에 발생할 수 있습니다. 또 다른 중요 한 성공의 열쇠를이 기술을 사용 하 여 후 두를 향해 입의 지붕에 따라 부드러운 미각 시각 일단 이동 블레이드를 적절 한 위치에 손목에 여 하입니다. 이렇게 하면 머리, 장소에 있는 성 대의 최적의 볼 위치에 잎의 끝을 이동 하는 동안 토끼20,24에 꽤 복 부.
우리는 위의 개요 정확한 기술을 따르지 않으면 후 두의 직접적인 시각화는 까다로울 수 있다, 때문에 후 두의 시각화를 필요로 하지 않는 대체 삽 관 법 전략 사용 매력적 될 수 있습니다. 예를 들어 맹인 기술은 요구 하지 않는 가능한 옵션 사용 후 두 경16,17,,1819,20의 하나입니다. 그러나,이 기술의 사용 튜브의 배치를 직접 하려면 endotracheal 튜브를 통해 공기 흐름을 감지 하는 능력에 의존 하며 동물의 호흡은 매우 얕은 또는 체포를 하는 경우이 메서드를 사용 하 여 신뢰할 수 있다. 이 소자의 배치는 후 두의 시각화를 필요로 하지 않습니다 때문에 그들은 일반적으로 매우 쉽게 배치, Supraglottic 장치 또한 고려할 수 있습니다. 그러나이 소자 들은 직접 입력 하지 기도,, 그리고 따라서 직접 흐름 기도, 환기 laryngospasm 개발 하는 무 능력, 인감 꽉 충분히 오픈 가슴 절차 또는 비상 사태 동안 환기의 부족을 위한 잠재적인 소생, 그리고 위 tympany3,,48의 개발. 토끼를 위해 특별히 설계 된 새로운 장치는 유망한 대안을 제공할 수 있습니다 하지만 더 많은 연구가 이러한 장치를 평가 하는 데 필요한 그리고 기도 부족에 대 한 우려가 여전히 남아 있다. 위 tympany 수도 있습니다 intubated 동물에 잠재적인 합병증 endotracheal 튜브는 실수로 식도;에 배치 하는 경우 그러나, 직접 시각화 기술 사용 하 여 후 두에 가이드 카 테 테 르의 적절 한 배치를 확인 하 여이 합병증의 위험을 최소화 합니다.
튜브26,,2728수 갑을 차고 풍선 사용 하는 경우에 특히 endotracheal 튜브를 삽입할 때 arytenoid 및 tracheal 점 막에 외상은 또 다른 잠재적인 관심사입니다. 토끼에서 기관 수 수 쉽게 부상, 피하 기종, 매, 심지어 죽음10,27,,2829등 합병증으로 이어질 수 있는. 우리는 여기에 설명 하는 기법을 수행 하는 동안 한다 주의 tracheal 부상을 방지 하기 위해 uncuffed endotracheal 튜브, 가이드 카 테 터의 둥근된 끝 기도에 삽입 되 고는 glottis에 가이드 카 테 터를 강요 하지 사용 하 여. 또한, 적절 한 크기의 endotracheal 튜브의 선택은 중요 한 중요성의. Endotracheal 튜브 크기 해야 될 동물의 크기에 대 한 고려 뿐만 아니라 기도 보다 작은 직경 때문에 후 두 입구의 개통에 비해. Endotracheal 튜브 직경에 너무 큰 arytenoid 점 막 또는 연골 외상 될 수 있습니다. 다른 한편으로, 작은 endotracheal 튜브의 사용 증가 기도 저항 귀착되 고 점액 또는 한 꼬임 방해의 가능성을 증가 시킵니다. 이러한 이유로, 호흡 모니터링 intubated 토끼에서 매우 중요 하다. 펄스 프로브가 뿐만 아니라 공기의 측정 추적 해야capnography; d capnograph 사용할 수 없는 경우, 기도 모니터는 대안을 공기의 흐름을 감지 하는 데 사용할 수 있습니다 (하지만 exhaled 이산화탄소의 측정을 제공 하지 않습니다). 또한, 보조 환기의 경우 작은 직경 튜브 사용된24,30때에 특히 귀중 한 수 있습니다.
이 기술을 사용 하 여 이미 언급 한 혜택 뿐만 아니라이 방법의 또 다른 주요 장점은 바쁜 임상 설정에서 중요 한 될 수 있는 조 수에 대 한 필요 없이 단일 개인에 의해 수행 수입니다. 이 상황에서를 모든 필요한 공급 수집 그들에서 삽 관 법 과정 가이드 카 테 테 르 장소 이며 머리의 움직임은 피해 야 한다 하는 경우에 특히 중요 하다.
여기 설명 하는 기술은 모든 토끼 intubations, 년 당 약 200-400 intubations 금액에 대 한 우리의 기관에서 수의학 및 연구 직원에 의해 사용 됩니다. 그것은 일반적인 토끼 마 취 교육 세션, 약 30 분 소요에서 매우 쉽게 진행 된다. 우리는 상대적으로 쉽게 배울 수, 그것은 그들의 처음 3 시도 및 일반적으로 수 학습 학생 들 다음 추가 시도에서 성공적으로 과정을 반복 하는 것을 발견 했다. 미래 연구를 위해 그것은 귀중 한 시간 능력 및 다른 삽 관 법 기술에 비해이 방법에 대 한 시간이 지남에 능력을 유지 하는 능력을 비교 하는 것입니다. 이 장 님 기법16의 변형에 대 한 공부는, 하는 동안 다양 한 삽 관 법 기술에 대 한 학습 곡선의 포괄적인 평가 하지 아직 수행 되었습니다. 연구의 또 다른 잠재적인 미래 방향 비교 특히 긍정적인 압력 환기 하는 동안 함수에 관한 새로운 종의 supraglottic 기도 장치에 직접 endotracheal 삽 관 법을 포함할 수 있습니다.
결론적으로, 우리는 여기에 설명 하는 토끼의 삽 관 법에 대 한 기술 비-침략 적, 안정적, 특수 장비를 사용 하 여 필요 하지 않습니다, 쉽게 마스터, 이며 보조에 대 한 필요 없이 단일 개인에 의해 수행할 수 있습니다. 모든 기도 액세스 기술을 어느 정도의 위험을 제시 하지만 마 취 동안 적절 한 기도의 혜택 직접 시각화 기술을 사용 하 여 합병증을 최소화 하기 위해 위에 설명 하는 단계에 따라 위험 무거운까지 있다.

토끼는 좁은, 깊은 구두 강 endotracheal 삽 관 법에 대 한 후 두의 가시성 제한 하는. 그들은 또한 매우 큰 다 육 혀와 뺨이 있다, 좁은 구강과 결합 될 때는 후 두 경 삽입할 때 문제가 발생할 수 있습니다 및 삽입 endotracheal 튜브1glottis 시각화. 큰 해야 합니다 수 주의 삽 관 법을 시도할 때 구강 및 기도에 상해를 초래 하지 않도록 합니다. 후 두 조직 매우 어렵다면 고 넣어야 하 반복한 시도에서 과도 한 외상 중요 한 염증, 삽 관 법을 만들기 하면 더 어려운2.
이러한 이유로, 다양 한 대안 기술 설명, 특히 supraglottic 기도 등의 디바이스는 laryngeal 튜브3,4, 후 두 마스크 기도 (LMA)4,5, 6 그리고 종의 supraglottic 기도 장치7. 기도에 공기 흐름을 직접 두 풍선 튜브의 구성 되어 후 두 튜브: 튜브 중간 큰 풍선 위 인 두에 물개를 형성 하 고 원심 끝에 작은 풍선이 식도 입구3물개. Glottis4,,56에 완벽 한 물개를 형성 하는 비정상적으로 선단부에 타원형 마스크 튜브는 LMA에 의하여 이루어져 있다. 종의 장치는 첫 번째 동물 종의 supraglottic 기도 장치, 고양이 대 한 현재 사용할 수와 토끼, 압력을 만들 각 종족에 대 한 해 부 구조에 맞게 설계 된7인 두 인감. 그러나,이 소자 들은 기도 직접 입력 하지 않으면, 때문에 그들은 위 tympany 같은 합병증에 대 한 위험을 선물 수 있습니다. 기관 내에서 적절 한 인감의 부족 우려 호흡기 지원, 긴급, 또는 흉부 수술3,8에 대 한 긍정적인 압력 환기에 대 한 이러한 장치의 사용에 대 한 적합성에 관한 제공합니다. 또한, 기도의 직접 삽 관 법의 부족 인사 노출 마 취 가스5낭비 될 수 있습니다.
직접 endotracheal 삽 관 법을 위한 많은 방법이 있다9,10,11,12,13,,1415설명. 하나의 인기 있는 방법은 이후는 후 두 경의 삽입 필요16,17,,1819 oropharyngeal 캐비티에 부상의 위험을 줄일 수 있습니다 맹인 기술입니다. , 20. 시각 장 님 기법으로이 방법을 사용 하려면 endotracheal 튜브 및 가이드 배치에 주의 조작을 통해 공기 흐름에 대 한 모니터링. 이 메서드는 일반적으로 연구와 저자의 경험에서 임상 수의학의 연습에 사용이 시간이 소모 하 고 항상 성공 하지 수 및 따라서 가르치는 더 어렵습니다 기술과 마 취 에이전트의 추가 주입 해야 9 , 10. 또한 호흡 사용 하는 튜브의 적절 한 배치에 대 한 모니터링, 때문에이 방법은 것 더 어렵고 신뢰할 수 중 호흡기 체포. 또 다른 인기 있는 방법은 더 큰 종으로 이루어집니다로 넣어야 하는 전통적인 후 두 경 기술을 사용 하는. 그러나, 토끼에 전통적인 후 두 경 기술이입니다 어려운 endotracheal 튜브를 입에 넣으면 성 대의 방해 이다. 따라서,이 메서드를 사용 하 여 반복된 삽 관 법 시도, 증가 마 취 주입, 및 구두 구멍과 기도10상해에 발생할 수 있습니다.
삽 관 법에 대 한 더 비싼 하 고 기술적으로 도전적인 옵션 또한 존재 한다. Fiberoptic 후 두 경 쉽게 삽입을 endotracheal 튜브의 튜브에는 후 두 경 삽입 하 고 화면에 기관지로 삽입을 시각화 수 있습니다. 마찬가지로, 내 시경 후 두 영역을 시각화 하 고 튜브의 배치를 가이드를 사용할 수 있습니다. 그러나, 이러한 두 가지이 방법 쉽게 일반적인 임상 설정9,,1112에서 사용할 수 않을 수 있습니다 비싼 장비 사용을 해야 합니다. 코 구멍을 통해 삽 관 법이 특정 병원 체 자유로운21되지 않은 토끼, 특히 폐에 코 구멍에서 기회 주의 병원 체를 도입의 위험을 선물 하지만 설명 하고있다, 그는 다른 방법입니다. 마지막으로, 삽 관 법의 더 많은 침략 적 방법 또한 출판 되었습니다, 시경 바늘 cricothyroidotomy 가이드 와이어의 위치 다음의 사용 뿐만 아니라 기도에 배치 하는 바늘을 통해 가이드 카 테 터의 역행 삽입을 포함 하 여 혈관 팽창, 그리고 칼 집 중개자13,14. 침략 적 기법으로 이러한 방법을 절차 후 통증과 감염 같은 잠재적인 합병증을 있다. 우리가 여기, 후 두 경 및 가이드 카 테 테 르를 사용 하 여 설명 하는 기술 능력을 짧은 시간으로 최소한의 교육으로 배울 수 있다, 비-침략 적, 보조에 대 한 필요 없이 단일 개인에 의해 수행 수 이며의 사용을 요구 하지 않습니다. 특수 장비입니다.

<table><tbody><tr><td>Ketalar&lt;br/&gt; Ketamine HCl Inj.</td><td>JHP Pharmaceuticals</td><td>NDC 42023-113-10</td><td>35mg/kg IM in epaxial muscles or quadriceps muscle (preferred)</td></tr><tr><td>Anased&lt;br/&gt; Xylazine (100mg/ml)</td><td>Lloyd Labs</td><td>NADA #139-236</td><td>5mg/kg IM in epaxial muscles or quadriceps muscle (preferred)</td></tr><tr><td>Welch Allyn Laryngoscope Handle</td><td>Welch Allyn</td><td>60300</td><td>Requires 2 size C alkaline batteries</td></tr><tr><td>Size 0 or 1 Miller Laryngoscope Blade</td><td>Welch Allyn</td><td>68040</td><td></td></tr><tr><td>2.5 &amp;ndash; 4.0 mm ID uncuffed endotracheal tube</td><td>Jorgenson</td><td>J0149V</td><td>Suitable for 2.5-5 kg rabbits&lt;br/&gt; 3.5 mm most commonly used</td></tr><tr><td>Sovereign polypropylene catheter, 5 Fr x 22&amp;rdquo;</td><td>Medtronic</td><td>8890703310</td><td>Cut to 8-10 inches&lt;br/&gt; Mark the cut end with permanent marker to indicate which end not to insert</td></tr><tr><td>Lidocaine 2% HCL Inj</td><td>VetOne</td><td>L-2000-04</td><td></td></tr><tr><td>4-Ply Nonsterile, Bulk Packed Versalon Sponges (Gauze pads)</td><td>Covidien</td><td>KC9024A</td><td></td></tr><tr><td>Tape, Twill, Bleached &amp;frac12;&amp;rdquo; x 72 yds</td><td>Encompass Textiles</td><td>48210-025</td><td>Used for securing endotracheal tube</td></tr><tr><td>HR Lubricating Jelly</td><td>HR Pharmaceuticals</td><td>201</td><td>For lubricating endotracheal tube tip</td></tr><tr><td>Great Plains Ballistics: BAAM (Beck Airway Airflow Monitor) 22</td><td>BoundTree Medical</td><td>21410</td><td>For confirmation of successful intubation</td></tr><tr><td>Ambu Pediatric Co2 Detector</td><td>AMBU INC</td><td>172713</td><td>For confirmation of successful intubation</td></tr></tbody></table>

endotracheal intubation of rabbits using a polypropylene guide catheter

토끼에서 endotracheal 삽 관 법은 그들의 특별 한 해부학 때문 전하실 수 있습니다. 마 취 동안 기도 특허를 달성 하는 것은 기도 방해, 예방 위 tympany ventilatory 지원 하 고 회피에 대 한 중요 합니다. 삽 관 법의 어려움으로 인해 후 두 마스크 기도 또는 후 두 튜브의 사용과 같은 대체 방법은 탐험 되었습니다. 그러나, 이러한 방법 직접 기도를 초래 하지 않습니다 및 따라서 합병증의 개발에 대 한 위험을 제공할 수 있습니다. 또한, 기도의 직접 삽 관 법의 부족 인원 노출 마 취 가스를 낭비 될 수 있습니다. 블라인드 배치를 포함 하 여 수많은 방법 endotracheal 삽 관 법에 대 한 설명 되었습니다, 그리고 fiberoptic 후 두 경 또는 내 시경, 및 반지 배치 사용 합니다. 이러한 수많은 간행물에도 불구 하 고 많은 여전히 성공을 달성 하기 위해 투쟁. 여기 우리가 능력을 짧은 시간으로 최소한의 교육으로 가르칠 수 있는 삽 관 법 기술에 대 한 자세한 설명을 제공 합니다. 간단히, 주 사용 마 취의 관리 후에 토끼의 적절 한 위치, 폴 리 프로필 렌 카 테 터는 직접 시각화 사용 하는 후 두 경으로 기도에 배치 됩니다. 테는 기도로 endotracheal 튜브를 직접 가이드로 사용 됩니다. 이 방법은 고가의 장비 없이도 삽 관 법 수 있으며 보조에 대 한 필요 없이 단일 개인에 의해 수행할 수 있습니다. 결론적으로,이 기술은 수 쉽게 고 아주 작은 비용에 수행 임상 설정 연구 또는.

저자의 기관에서이 기술은 일반적으로 토끼 처리와 마 취 기법 훈련 세션 동안 실험실 및 수의 직원에 게 배운. 교육 세션 전용된 훈련 동물 들과 함께 수행 됩니다. 트레이너는 기술을 한 번 및 고 연수생 트레이너의 지도 기법을 수행 하는 다음. 연수생은 일반적으로 1-3 시도 안에 성공 달성. 일단, 개인 두 번째 시간, 삽 관 법을 수행 하는 데 필요한 및 일반적으로 성공적으로 첫 번째 추가 시도에 다시 토끼를 넣어야 수 있습니다 그들은 성공적으로 토끼를 intubated 있다 후. 이러한 훈련 세션 동안, 특히 개인 이전에 다른 기술로 훈련에서 피드백 일관 되 게이 기술을 학습과 성공적으로 완료 하는 얼마나 쉬운에 대 한 의견을 포함 합니다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig1.jpg"> 
그림 1. Endotracheal 삽 관 법에 대 한 공급: 1) 크기 0 또는 1 밀러 후 두 경 블레이드, 2) 탯 줄 테이프 (또는 endotracheal 튜브를 보호 하기 위한 기타 용품), 후 두 경 3) 0.25 mL 2 %lidocaine, 4) 5-프랑스의 폴 리 프로필 렌 테 잘라 8-10 인치 아닌 둥근 끝을 명확 하 게 나타내는 어떤 끝 기도 (화살표), 5에 삽입 되지 않도록 해야 영구 표시와 함께 표시) 공기 흐름 감지 장치, 6) 7 튜브의 선단부에 적용 살 균 윤활제) endotracheal 튜브를 uncuffed. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig1large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig2.jpg"> 
그림 2 : Endotracheal 삽 관 법에 대 한 sternal 위치. 토끼는 앞 발 테이블의 끝에 확장 된 sternally 위치 하 고 있다. 뒷 다리 팔 다리는 다시 확장 하 고 토끼의 머리는 척추 정렬 됩니다. 왼쪽 손 준비는 후 두 경의 삽입에 대 한 확장으로 머리를 높이 데 사용 됩니다. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig3.jpg"> 
그림 3 : 후 두 경의 삽입. A)는 후 두 경 칼 날의 팁과 입의 지붕 부드러운 입맛 표시 될 때까지 다음 오른손을 사용 하 여 왼쪽된 diastema에 삽입 됩니다. 소프트 구개 표시 되는 후 두 경은 밀고 앞으로 토끼의 다시 머리와 목을 앞으로 확장 하는 동안 후 두를 시각화 하. B)는 후 두의 시각화. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig4.jpg"> 
그림 4 : 가이드 카 테 터의 발전. A) 왼손에 후 두 경 블레이드를 전환 후 오른쪽 후 두 과거 오프닝을 통해 가이드 카 테 터의 둥근된 끝을 이동 합니다. B) 가이드 테 직접 시각화와 성 대를 통해 전달 됩니다. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig5.jpg"> 
그림 5 : Tracheal 튜브의 발전. Endotracheal 튜브 가이드 카 테 터를 통해 스레드 및 성 대에서 저항까지 고급 이다. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig6.jpg"> 
그림 6 : lidocaine 점. Lidocaine (2%, 0.25 mL) endotracheal 관의 개통으로 얻은입니다. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig6large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig7.jpg"> 
그림 7 : Endotracheal 튜브 발전. Lidocaine, 주입 후 2 분 endotracheal 튜브 부드럽게 왜곡 성 대를 통과 하 여 고급입니다. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig7large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56369/56369fig8.jpg"> 
그림 8 : Endotracheal 튜브를 통해 공기 흐름의 확인. 공기 탐지 장치 endotracheal 튜브를 통해 공기 흐름을 확인 하는 데 사용할 수 있습니다 또는 치과 거울도 성공적인 삽 관 법을 나타내는 호흡에서 응축을 검출 하기 위하여 사용할 수 있습니다. <a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56369/56369fig8large.jpg" style="font-size: 14px;" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

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Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter

토끼에서 endotracheal 삽 관 법은 그들의 특이 한 해부학 때문에 도전적 이다. 여기 선물이 가이드로 폴 리 프로필 렌 카 테 터를 사용 하 여 기도의 직접 삽 관 법에 대 한 기술. 이 방법은 상대적으로 저렴 한 공급을 활용 하 여, 최소한의 훈련이 필요 합니다 그리고 어떤 임상 설정에서 쉽게 수행 될 수 있습니다.

폴 리 프로필 렌 가이드 카 테 터를 사용 하 여 토끼의 endotracheal 삽 관 법

Endotracheal intubation in rabbits can be challenging due to their unusual anatomy. Achieving a patent airway during anesthesia is critical for the ...

endotracheal-intubation-rabbits-using-polypropylene-guide

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Biology

33.4K 조회수.  Mayo Clinic. 토끼에서 endotracheal 삽 관 법은 그들의 특이 한 해부학 때문에 도전적 이다. 여기 선물이 가이드로 폴 리 프로필 렌 카 테 터를 사용 하 여 기도의 직접 삽 관 법에 대 한 기술. 이 방법은 상대적으로 저렴 한 공급을 활용 하 여, 최소한의 훈련이 필요 합니다 그리고 어떤 임상 설정에서 쉽게 수행 될 수 있습니다.

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Endotracheal Intubation in Mice via Direct Laryngoscopy Using an Otoscope

Mice, both wildtype and transgenic, are the principal mammalian model in biomedical research currently. Intubation and mechanical ventilation are necessary for whole animal experiments that require surgery under deep anesthesia or measurements of lung function. Tracheostomy has been the standard for intubating the airway in these mice to allow mechanical ventilation. Orotracheal intubation has been reported but has not been successfully used in many studies because of the substantial technical difficulty or a requirement for highly specialized and expensive equipment. Here we report a technique of direct laryngoscopy using an otoscope fitted with a 2.0 mm speculum and using a 20 G&#160;intravenous catheter as an endotracheal tube. We have used this technique extensively and reliably to intubate and conduct accurate assessments of lung function in mice. This technique has proven safe, with essentially no animal loss in experienced hands. Moreover, this technique can be used for repeated studies of mice in chronic models.

Endotracheal Intubation in Mice via Direct Laryngoscopy Using an Otoscope

We have developed a simple, reliable, and relatively inexpensive method for endotracheal intubation in mice via direct laryngoscopy using an otoscope with a 2.0 mm speculum. This technique is atraumatic and can be used for repeated measurements in chronic experiments. We find it superior to tracheostomy or previously reported nonsurgical techniques.

마우스의 기관 내 삽관<em&gt;를 통해</em이경 사용&gt; 직접 후두경

Mice, both wildtype and transgenic, are the principal mammalian model in biomedical research currently. Intubation and mechanical ventilation are ...

연구

의학

A Reversible, Non-invasive Method for Airway Resistance Measurements and Bronchoalveolar Lavage Fluid Sampling in Mice

Airway hyperreactivity (AHR) measurements and bronchoalveolar lavage (BAL) fluid sampling are essential to experimental asthma models, but repeated procedures to obtain such measurements in the same animal are generally not feasible.  Here, we demonstrate protocols for obtaining from mice repeated measurements of AHR and bronchoalveolar lavage fluid samples.  Mice were challenged intranasally seven times over 14 days with a potent allergen or sham treated.  Prior to the initial challenge, and within 24 hours following each intranasal challenge, the same animals were anesthetized, orally intubated and mechanically ventilated.  AHR, assessed by comparing dose response curves of respiratory system resistance (RRS) induced by increasing intravenous doses of acetylcholine (Ach) chloride between sham and allergen-challenged animals, were determined.  Afterwards, and via the same intubation, the left lung was lavaged so that differential enumeration of airway cells could be performed.  These studies reveal that repeated measurements of AHR and BAL fluid collection are possible from the same animals and that maximal airway hyperresponsiveness and airway eosinophilia are achieved within 7-10 days of initiating allergen challenge.  This novel technique significantly reduces the number of mice required for longitudinal experimentation and is applicable to diverse rodent species, disease models and airway physiology instruments.  

Repeated measurements of rodent respiratory physiology and sampling of airway inflammatory cells are desirable, but generally not feasible. Here we describe a repeatable method for orally intubating mice that permits repeated measurements of airway hyperreactivity and sampling of airway inflammatory cells.

에어웨이 저항 측정 및 마우스에 Bronchoalveolar 세척 유체 샘플링에 대한 가역, 비침습 방법

Airway hyperreactivity (AHR) measurements and bronchoalveolar lavage (BAL) fluid sampling are essential to experimental asthma models, but repeated ...

생물학

Blind Endotracheal Intubation in Neonatal Rabbits

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical characteristics, which is further complicated in the case of the newborn. Of the different methods of advanced airway management, endotracheal intubation is less aggressive than tracheostomy, and is more feasible than supraglottic management given the lack of supraglottic devices of such a small size. As direct glottis visualization is very difficult in animals this size, this blind intubation model is presented as an effective alternative, especially for experiments requiring prolonged anesthesia. Using this method, we performed blind intubations with a 90% success rate.

We describe a technique of endotracheal intubation in newborn rabbits after esophageal catheterization with a gastric tube.

신생아 토끼의 맹인 내트라큐어 삽관

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical ...

Simplifying Transcutaneous Intratracheal Drug Delivery in the Newborn Preterm Rabbit

Intratracheal (IT) drug delivery allows the direct delivery of pharmaceutical substances to the lung, maximizing potential pulmonary benefit and minimizing systemic drug exposure. The transcutaneous technique is simple and allows for the IT delivery of substances to the lung of prematurely born rabbits shortly after birth. Newborn pups are anesthetized with inhaled Isoflurane before being placed in a supine position with the neck extended. The larynx is identified and stabilized before transcutaneous placement of a 26-gauge (G) catheter into the trachea. Following catheterization of the trachea, a 30 G blunt needle attached to a Hamilton syringe is introduced into the IT catheter and is used for delivering a precise volume into the trachea during spontaneous respiration. After the IT injection is completed, the needle and catheter are withdrawn, and the pup is allowed to recover from anesthesia. Transcutaneous IT injection delivers a large proportion of the injected substance to the lung, with the majority remaining in the lung 3 hours after the intervention. The injections are well tolerated from the day of birth and can be repeated for multiple consecutive days without influencing survival. This technique can be used to investigate the effect of pharmaceutical agents on lung development and in the prevention of neonatal lung injury in preterm rabbits.

Transcutaneous intratracheal injection allows for effective intrapulmonary drug delivery during spontaneous respiration. Single and multiple injections are well tolerated with no effect on survival. The technique is simple to perform and can examine the effect of substances on lung development and the prevention of lung injury in newborn rabbits.

Intratracheal (IT) drug delivery allows the direct delivery of pharmaceutical substances to the lung, maximizing potential pulmonary benefit and ...

Isolated Lung Perfusion System in the Rabbit Model

The isolated lung perfusion system has been widely used in pulmonary research, contributing to elucidate the lungs&#39; inner workings, both micro and macroscopically. This technique is useful in the characterization of pulmonary physiology and pathology by measuring metabolic activities and respiratory functions, including interactions between circulatory substances and the effects of inhaled or perfused substances, as in drug testing. While in vitro methods involve the slicing and culturing of tissues, the isolated ex vivo lung perfusion system allows to work with a complete functional organ making possible the study of a continuous physiological function while recreating ventilation and perfusion. However, it should be noted that the effects of the absence of central innervation and lymphatic drainage still have to be fully assessed. This protocol aims to describe the assembly of the isolated lung apparatus, followed by the surgical extraction and cannulation of lungs and heart from experimental lab animals, as well as to display the perfusion technique and signal processing of data. The average viability of the isolated lung ranges between 5-8 h; during this period, the pulmonary capillary permeability increases, causing edema and lung injury. The functionality of preserved pulmonary tissue is measured by the capillary filtration coefficient (Kfc), used to determine the extent of pulmonary edema through time.

The isolated rabbit lung preparation is a gold standard tool in pulmonary research. This publication aims to describe the technique as developed for the study of physiological and pathological mechanisms involved in airway reactivity, lung preservation, and preclinical research in lung transplantation and pulmonary edema.

토끼 모델의 절연 폐 관류 시스템

The isolated lung perfusion system has been widely used in pulmonary research, contributing to elucidate the lungs&#39; inner workings, both micro and ...

Endotracheal Intubation Using a Flexible Intubation Endoscope as a Standardized Model for Safe Airway Management in Swine

Endotracheal intubation is often a basic requirement for translational research in porcine models for various interventions that require a secured airway or high ventilation pressures. Endotracheal intubation is a challenging skill,&#160;requiring a minimum number of successful endotracheal intubations to achieve a high success rate under optimal conditions, which is often unachievable for non-anaesthesiology researchers. Due to the specific porcine airway anatomy, a difficult airway can usually be assumed. The impossibility of establishing a secure airway can result in injury, adverse events, or death of the laboratory animal. Using a prospective, randomized, controlled evaluation approach, it has been shown that fiberoptic-assisted endotracheal intubation takes longer but has a higher first-pass success rate than conventional intubation without causing clinically relevant drops in oxygen saturation. This model presents a standardized regimen for endoscopically guided endotracheal intubation, providing a secured airway, especially for researchers who are inexperienced in the technique of endotracheal intubation via direct laryngoscopy. This procedure is expected to minimize animal suffering and unnecessary animal losses.

The use of pigs in research has increased in recent years. Nevertheless, pigs are characterized by difficult airway anatomy. By demonstrating how to perform endoscopically guided endotracheal intubation, the present protocol aims to further increase laboratory animals' safety to avoid animal suffering and unnecessary death.

돼지의 안전한 기도 관리를 위한 표준화된 모델로 유연한 삽관 내시경을 사용한 기관내 삽관

Endotracheal intubation is often a basic requirement for translational research in porcine models for various interventions that require a secured airway ...

Model of Ischemia and Reperfusion Injury in Rabbits

The protocol here provides a simple, highly replicable methodology to induce in situ acute regional myocardial ischemia in the rabbit for non-survival and survival experiments. New Zealand White adult rabbit is sedated with atropine, acepromazine, butorphanol, and isoflurane. The animal is intubated and placed on mechanical ventilation. An intravenous catheter is inserted into the marginal ear vein for the infusion of medications. The animal is pre-medicated with heparin, lidocaine, and lactated Ringer&#39;s solution. A carotid cut-down is performed to obtain arterial line access for blood pressure monitoring. Select physiologic and mechanical parameters are monitored and recorded by continuous real-time analysis.
With the animal sedated and fully anesthetized, either a fourth intercostal space small left thoracotomy (survival) or midline sternotomy (non-survival) is performed. The pericardium is opened, and the left anterior descending (LAD) artery is located.
A polypropylene suture is passed around the second or third diagonal branch of the LAD artery, and the polypropylene filament is threaded through a small vinyl tube, forming a snare. The animal is subjected to 30 min of regional ischemia, achieved by occluding the LAD by tightening the snare. Myocardial ischemia is confirmed visually by regional cyanosis of the epicardium. Following regional ischemia, the ligature is loosened, and the heart is allowed to re-perfuse.
For both survival and non-survival experiments, the myocardial function can be assessed via an echocardiography (ECHO) measurement of the fractional shortening. For non-survival studies, data from sonomicrometry collected using three digital piezoelectric ultrasonic probes implanted within the ischemic area and the left ventricle developed pressure (LVDP) using an apically inserted left ventricle (LV) catheter can be continuously acquired for evaluating the regional and global myocardial function, respectively.
For survival studies, the incision is closed, a left needle thoracentesis is performed for pleural air evacuation, and postoperative pain control is achieved.

The present study demonstrates a highly reproducible animal model of acute regional myocardial ischemia and reperfusion injury in rabbits using a left mini-thoracotomy for survival cases or a midline sternotomy for non-survival cases.

토끼의 허혈 및 재관류 손상 모델

The protocol here provides a simple, highly replicable methodology to induce in situ acute regional myocardial ischemia in the rabbit for non-survival and ...

<meta charset="utf8"></head><body>Non-survival Rat 모델을 위한 기관절개술 기반 기관내 삽관 프로토콜

Endotracheal Intubation via Tracheotomy and Subsequent Thoracotomy in Rats for Non-Survival Applications

Endotracheal intubation and subsequent ventilation are often basic requirements for translational research in rat models for various interventions that require controlled or high ventilation pressures or access to the thoracic cavity and organs. Conventional endoorotracheal intubation using the anatomically existing route through the mouth is well suited for survival experiments. However, this procedure poses some challenges, including generally higher levels of the required experience and technical skill, more advanced equipment, and greater time effort with relevant intubation failure rates and complications such as tracheal perforation, temporary systemic hypooxygenation, and relevant aerial leakage.
This manuscript, therefore, presents a detailed step-by-step protocol for endotracheal intubation through tracheotomy in non-survival rat models when guaranteed intubation success, constant oxygenation levels, high ventilation pressures, or open thoracotomy are required.
The protocol emphasizes the importance of meticulous surgical technique to ensure consistent and reliable outcomes, especially for researchers who are inexperienced or lack routine in the technique of endoorotracheal intubation via direct laryngoscopy. This procedure is, therefore, expected to minimize animal suffering and unnecessary animal losses.

<meta charset="utf8"></head><body>Non-survival 응용 프로그램을 위한 쥐의 기관절개술을 통한 기관내 삽관 및 후속 흉곽절개술

Here we introduce a standardized procedure for endotracheal intubation via tracheotomy followed by thoracotomy in rats, aimed at enhancing the precision and reproducibility of non-survival applications requiring invasive ventilation and exposure of thoracic organs in in vivo rat models.

Non-survival 응용 프로그램을 위한 쥐의 기관절개술을 통한 기관내 삽관 및 후속 흉곽절개술

Endotracheal intubation and subsequent ventilation are often basic requirements for translational research in rat models for various interventions that ...

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