Name: resolving affinity purified protein complexes by blue native page and protein correlation profiling
Uploaded: 2017-04-01T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 35 s
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This work was funded by the Wellcome Trust (WT098051).

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	<li>Goudreault, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+PP2A+phosphatase+high+density+interaction+network+identifies+a+novel+striatin-interacting+phosphatase+and+kinase+complex+linked+to+the+cerebral+cavernous+malformation+3+(CCM3)+protein.">A PP2A phosphatase high density interaction network identifies a novel striatin-interacting phosphatase and kinase complex linked to the cerebral cavernous malformation 3 (CCM3) protein.</a> Mol Cell Proteomics. 8 (1), 157-171 (2009).</li><li>Leitner, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Probing+native+protein+structures+by+chemical+cross-linking,+mass+spectrometry,+and+bioinformatics.">Probing native protein structures by chemical cross-linking, mass spectrometry, and bioinformatics.</a> Mol Cell Proteomics. 9 (8), 1634-1649 (2010).</li><li>Rappsilber, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+beginning+of+a+beautiful+friendship:+cross-linking/mass+spectrometry+and+modelling+of+proteins+and+multi-protein+complexes.">The beginning of a beautiful friendship: cross-linking/mass spectrometry and modelling of proteins and multi-protein complexes.</a> J Struct Biol. 173 (3), 530-540 (2011).</li><li>Sinz, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemical+cross-linking+and+mass+spectrometry+to+map+three-dimensional+protein+structures+and+protein-protein+interactions.">Chemical cross-linking and mass spectrometry to map three-dimensional protein structures and protein-protein interactions.</a> Mass Spectrom Rev. 25 (4), 663-682 (2006).</li><li>Walzthoeni, T., Leitner, A., Stengel, F., Aebersold, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mass+spectrometry+supported+determination+of+protein+complex+structure.">Mass spectrometry supported determination of protein complex structure.</a> Curr Opin Struct Biol. 23 (2), 252-260 (2013).</li><li>Kaake, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+in+vivo+cross-linking+mass+spectrometry+platform+to+define+protein-protein+interactions+in+living+cells.">A new in vivo cross-linking mass spectrometry platform to define protein-protein interactions in living cells.</a> Mol Cell Proteomics. 13 (12), 3533-3543 (2014).</li><li>Kao, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+novel+cross-linking+strategy+for+fast+and+accurate+identification+of+cross-linked+peptides+of+protein+complexes.">Development of a novel cross-linking strategy for fast and accurate identification of cross-linked peptides of protein complexes.</a> Mol Cell Proteomics. 10 (1), (2011).</li><li>Hughes, M. A., Langlais, C., Cain, K., MacFarlane, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation,+characterisation+and+reconstitution+of+cell+death+signalling+complexes.">Isolation, characterisation and reconstitution of cell death signalling complexes.</a> Methods. 61 (2), 98-104 (2013).</li><li>Lim, S., Zou, Y., Friedman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+transcriptional+activator+Mirk/Dyrk1B+is+sequestered+by+p38alpha/beta+MAP+kinase.">The transcriptional activator Mirk/Dyrk1B is sequestered by p38alpha/beta MAP kinase.</a> J Biol Chem. 277 (51), 49438-49445 (2002).</li><li>Havugimana, P. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+census+of+human+soluble+protein+complexes.">A census of human soluble protein complexes.</a> Cell. 150 (5), 1068-1081 (2012).</li><li>Kirkwood, K. J., Ahmad, Y., Larance, M., Lamond, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+native+protein+complexes+and+protein+isoform+variation+using+size-fractionation-based+quantitative+proteomics.">Characterization of native protein complexes and protein isoform variation using size-fractionation-based quantitative proteomics.</a> Mol Cell Proteomics. 12 (12), 3851-3873 (2013).</li><li>Kristensen, A. R., Gsponer, J., Foster, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+high-throughput+approach+for+measuring+temporal+changes+in+the+interactome.">A high-throughput approach for measuring temporal changes in the interactome.</a> Nat Methods. 9 (9), 907-909 (2012).</li><li>Liu, F., Heck, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interrogating+the+architecture+of+protein+assemblies+and+protein+interaction+networks+by+cross-linking+mass+spectrometry.">Interrogating the architecture of protein assemblies and protein interaction networks by cross-linking mass spectrometry.</a> Curr Opin Struct Biol. 35, 100-108 (2015).</li><li>Wittig, I., Schagger, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Native+electrophoretic+techniques+to+identify+protein-protein+interactions.">Native electrophoretic techniques to identify protein-protein interactions.</a> Proteomics. 9 (23), 5214-5223 (2009).</li><li>Heide, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complexome+profiling+identifies+TMEM126B+as+a+component+of+the+mitochondrial+complex+I+assembly+complex.">Complexome profiling identifies TMEM126B as a component of the mitochondrial complex I assembly complex.</a> Cell Metab. 16 (4), 538-549 (2012).</li><li>Wessels, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+953+human+proteins+from+a+mitochondrial+HEK293+fraction+by+complexome+profiling.">Analysis of 953 human proteins from a mitochondrial HEK293 fraction by complexome profiling.</a> PLoS One. 8 (7), 68340 (2013).</li><li>Wessels, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=LC-MS/MS+as+an+alternative+for+SDS-PAGE+in+blue+native+analysis+of+protein+complexes.">LC-MS/MS as an alternative for SDS-PAGE in blue native analysis of protein complexes.</a> Proteomics. 9 (17), 4221-4228 (2009).</li><li>Remmerie, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unraveling+tobacco+BY-2+protein+complexes+with+BN+PAGE/LC-MS/MS+and+clustering+methods.">Unraveling tobacco BY-2 protein complexes with BN PAGE/LC-MS/MS and clustering methods.</a> J Proteomics. 74 (8), 1201-1217 (2011).</li><li>Sessler, N., Krug, K., Nordheim, A., Mordmuller, B., Macek, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+the+Plasmodium+falciparum+proteasome+using+Blue+Native+PAGE+and+label-free+quantitative+mass+spectrometry.">Analysis of the Plasmodium falciparum proteasome using Blue Native PAGE and label-free quantitative mass spectrometry.</a> Amino Acids. 43 (3), 1119-1129 (2012).</li><li>Bode, D., Yu, L., Tate, P., Pardo, M., Choudhary, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+Two+Distinct+Nucleosome+Remodeling+and+Deacetylase+(NuRD)+Complex+Assemblies+in+Embryonic+Stem+Cells.">Characterization of Two Distinct Nucleosome Remodeling and Deacetylase (NuRD) Complex Assemblies in Embryonic Stem Cells.</a> Mol Cell Proteomics. 15 (3), 878-891 (2016).</li><li>Cox, J., Mann, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MaxQuant+enables+high+peptide+identification+rates,+individualized+p.p.b.-range+mass+accuracies+and+proteome-wide+protein+quantification.">MaxQuant enables high peptide identification rates, individualized p.p.b.-range mass accuracies and proteome-wide protein quantification.</a> Nat Biotechnol. 26 (12), 1367-1372 (2008).</li><li>Cox, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+practical+guide+to+the+MaxQuant+computational+platform+for+SILAC-based+quantitative+proteomics.">A practical guide to the MaxQuant computational platform for SILAC-based quantitative proteomics.</a> Nat Protoc. 4 (5), 698-705 (2009).</li><li>Kim, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+regulatory+factor+recruits+the+nucleosome+remodeling+complex+to+wingless+integrated+(Wnt)+signaling+gene+promoters+in+mouse+embryonic+stem+cells.">A novel regulatory factor recruits the nucleosome remodeling complex to wingless integrated (Wnt) signaling gene promoters in mouse embryonic stem cells.</a> J Biol Chem. 287 (49), 41103-41117 (2012).</li><li>Lauberth, S. M., Rauchman, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+conserved+12-amino+acid+motif+in+Sall1+recruits+the+nucleosome+remodeling+and+deacetylase+corepressor+complex.">A conserved 12-amino acid motif in Sall1 recruits the nucleosome remodeling and deacetylase corepressor complex.</a> J Biol Chem. 281 (33), 23922-23931 (2006).</li><li>Miller, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sall4+controls+differentiation+of+pluripotent+cells+independently+of+the+Nucleosome+Remodelling+and+Deacetylation+(NuRD)+complex.">Sall4 controls differentiation of pluripotent cells independently of the Nucleosome Remodelling and Deacetylation (NuRD) complex.</a> Development. 143 (17), 3074-3084 (2016).</li><li>Dharmarajan, V., Lee, J. H., Patel, A., Skalnik, D. G., Cosgrove, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structural+basis+for+WDR5+interaction+(Win)+motif+recognition+in+human+SET1+family+histone+methyltransferases.">Structural basis for WDR5 interaction (Win) motif recognition in human SET1 family histone methyltransferases.</a> J Biol Chem. 287 (33), 27275-27289 (2012).</li><li>Schwanhausser, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+quantification+of+mammalian+gene+expression+control.">Global quantification of mammalian gene expression control.</a> Nature. 473 (7347), 337-342 (2011).</li><li>Smits, A. H., Jansen, P. W., Poser, I., Hyman, A. A., Vermeulen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stoichiometry+of+chromatin-associated+protein+complexes+revealed+by+label-free+quantitative+mass+spectrometry-based+proteomics.">Stoichiometry of chromatin-associated protein complexes revealed by label-free quantitative mass spectrometry-based proteomics.</a> Nucleic Acids Res. 41 (1), 28 (2013).</li><li>Lambert, J. P., Tucholska, M., Pawson, T., Gingras, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Incorporating+DNA+shearing+in+standard+affinity+purification+allows+simultaneous+identification+of+both+soluble+and+chromatin-bound+interaction+partners.">Incorporating DNA shearing in standard affinity purification allows simultaneous identification of both soluble and chromatin-bound interaction partners.</a> J Proteomics. 100, 55-59 (2014).</li><li>Wittig, I., Braun, H. P., Schagger, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blue+native+PAGE.">Blue native PAGE.</a> Nat Protoc. 1 (1), 418-428 (2006).</li><li>Schagger, H., Cramer, W. A., von Jagow, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+molecular+masses+and+oligomeric+states+of+protein+complexes+by+blue+native+electrophoresis+and+isolation+of+membrane+protein+complexes+by+two-dimensional+native+electrophoresis.">Analysis of molecular masses and oligomeric states of protein complexes by blue native electrophoresis and isolation of membrane protein complexes by two-dimensional native electrophoresis.</a> Anal Biochem. 217 (2), 220-230 (1994).</li><li>Schagger, H., von Jagow, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blue+native+electrophoresis+for+isolation+of+membrane+protein+complexes+in+enzymatically+active+form.">Blue native electrophoresis for isolation of membrane protein complexes in enzymatically active form.</a> Anal Biochem. 199 (2), 223-231 (1991).</li><li>Camacho-Carvajal, M. M., Wollscheid, B., Aebersold, R., Steimle, V., Schamel, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two-dimensional+Blue+native/SDS+gel+electrophoresis+of+multi-protein+complexes+from+whole+cellular+lysates:+a+proteomics+approach.">Two-dimensional Blue native/SDS gel electrophoresis of multi-protein complexes from whole cellular lysates: a proteomics approach.</a> Mol Cell Proteomics. 3 (2), 176-182 (2004).</li><li>Liu, F., Rijkers, D. T., Post, H., Heck, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proteome-wide+profiling+of+protein+assemblies+by+cross-linking+mass+spectrometry.">Proteome-wide profiling of protein assemblies by cross-linking mass spectrometry.</a> Nat Methods. 12 (12), 1179-1184 (2015).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

여기, 우리는 단백질 복합체를 해결하기 위해 양적 질량 분석과 함께 파란색 기본 겔 전기 영동 다음에 친화력 정화의 사용을 설명합니다. 이 방법은 기능성 단백질 어셈블리로 일차원 단백질 상호 작용의 목록을 해명하기위한 방법을 제공한다. 우리는 에피토프 - 태그 단백질의 사용을 기반으로하는 방법을 보여줍니다. 태그가 단백질을 발현하는 세포주를 사용할 수없는 경우, 대안은 관심의 단백질에 대한 항체를 사용하는 네이티브 경쟁 용출을 달성 할 수 펩타이드가 제공 할 수도 있습니다. 출발 물질과 구슬의 양의 크기는 목적 단백질의 발현 수준에 따라 수정해야 할 수도 있습니다. 우리는 일반적으로 출발 물질 2-5 × 108 셀이 프로토콜을 수행하고, 이는 심지어 낮은 발현 수준을 갖는 단백질을 충분하다. 용해 완충액의 조성은 달성하도록 실험적으로 선택되어야근처 미끼의 가용화를 완료합니다. 이 바인딩 특정 염색질 또는 막 단백질에서 단백질의 일부 ​​유형에 대한 도전이 될 수 있습니다. 대안적인 옵션은 연구중인 단백질 복합체는 높은 염 또는 염색질 결합 단백질 20, 29, 초음파 및 / 또는 뉴 클레아 제 처리를 사용하여 안정한 것이어야한다 소금의 양을 증가시키는 것을 포함한다. 막 단백질의 경우, DDM 또는 디기 토닌에 세제를 전환하는 것이 바람직 할 수도있다 (30). 이 DNA 결합 단백질의 경우, 정제 단계 (20) 중 벤조 나제 바와 같은 뉴 클레아 제를 포함하는 것이 유용하다. 핵산의 완전한 제거는 검출 된 상호 작용 단백질과 DNA 사이에서 발생에 의해 매개되지 않는 것을 보장한다. 이 방법을 사용하여 조사중인 착체의 안정성이 때 중요한 요소를 고려한다. 절차는 길고 preservin을 포함 할 수있다g 단백질 복합체 밤새. 우리는이 크로 마틴 리모델링 복합체 (D 보데와 M 파르도, 데이터가 표시되지 않음) 좋은 성공을 달성,하지만이 평가되어야한다. 필요한 경우 친화 정제 공정을 단축 할 수있다. 같은 크기 배제 크로마토 그래피 등의 기본 분류를 허용 대체 기술은 널리 단백질 복합체의 특성을 50 년 이상 사용되어왔다. 우리는 청색 등 천연 PAGE의 해상도가 크기 배제 크로마토 그래피 20, 31, 32, 33을 사용하여 달성이 우수하다는 것을 보여 주었다. 블루 기본 페이지의 또 다른 장점은 비용이 크로마토 그래피 시스템을 필요로하지 않는, 오히려 실험실에서 널리 퍼져 단백질 전기 영동 장비를 사용합니다. 의 측면에서 손에 시간,이 방법은 기존의 geLC-MS / MS (A)보다 더 많은 작업을 포함하지 않습니다pproach 또는 오프라인 크로마토 그래피 분별. 대부분의 분류 기술 할 그러나, 그것은 그들의 해상도에 한계가 있습니다. 매우 균일 또는 질량과 모양에 가까운 단지는 파란색 기본 페이지에서 제공하는 해상도 및 공유 서브 유닛과 별개의 단지를 해결 보편적으로 성공하지 않을 수 있습니다 여기에보고 따라서 프로토콜을 넘어 수 있습니다. 격려하여, 우리는 세 개의 서브 유닛 (M 파르도, 준비 원고를) 공유하는 두 개의 매우 유사 사량 단지를 분리하는데 성공했다. 질량 분석 점점 민감한되어 있기 때문에, 불특정 인터랙 오염물 미세한 양 AP-MS 샘플에서 검출 될 수있다. 여기에 제시된 방법은보다 높은 분자량에서 미끼 마이그레이션 피크와 일치 마이그레이션 봉우리 단백질에 관심을 집중하여 친화력 정화의 배경 오염 실제 인터랙의 차별에 도움이 있습니다단량체 단백질. 몇몇 그룹이 이전의 분리 10, 11, 12, 34에 대한 필요없이 셀룰러 규모 단백질 복합체를 묘사하는 단백질 상관 프로파일이어서 분별 기법을 사용 하였다. 그러나,이 하위 화학 양 론적 상호 작용을 검출하는 오류가 발생할 수 있습니다. 친화력 정화를 통해 농축 단계의 통합이를 극복하는 데 도움이 될 수 있습니다. 여기에 설명 된 방법은 특정 단백질이 동일한 셀룰러 컨텍스트 내의 소요 부분에 상기 다수의 복합체 단백질 복합체의 토폴로지 탐색 및 해명에 일반적으로 유용한 것으로한다. 이 전략은 단백질 복합체를 해결하기 위해 고가의 크로마토 그래피 분별 장비가 없을 수 있습니다 실험실 간단하고 의무입니다.

세포에서, 가장 단백질은 일시적인 단백질 - 단백질 상호 작용을 통해 안정한 단백질 또는 조립체를 형성하여 기능을 수행한다. 단백질 상호 작용을 특성화하는 것은 충분히 이해 세포 과정에 매우 중요합니다. 질량 분석 (AP-MS)와 함께 선호도 정화는 천연 단백질 상호 작용을 식별하기 위해 가장 일반적으로 적용되는 전략 중 하나입니다. 지난 10 년간 달성 기기의 기능을 크게 향상이 방법은 매우 강력한 만들었습니다. AP-MS 실험에 의해 확인 된 상호 작용이 미끼와할까요 사이의 직접 및 간접 협회의 혼합물을 포함하는 것이 중요합니다. 또한, 종종 단백질은 다른 생물학적 역할을 할 수도 있습니다 동일한 세포 맥락에서 여러 가지 다른 단지에 참여, 따라서 AP-MS에 의해 식별됩니다 인터랙는 별개의 단백질 어셈블리 또는 기능 엔티티의 혼합을 나타낼 수 있습니다. 도출 할 수 없습니다이러한 토폴로지 정보는 AP-MS 간단한 실험에 의해 생성 된 단백질의 모노 차원 목록에서 선험적. 그러나,이 기술은 이러한 어셈블리를 해결하기 위해 하나 이상의 방법과 결합하여 단백질 복합체의 구조를 정의하는 데 더 이용 될 수있다. AP-MS를 통해 확인 된 단백질 상호 작용의 토폴로지를 해결하기 위해 몇 가지 전략이 적용되고있다. 하나의 방법은 실험 1과 베이트 이전 라운드에서 확인할까요을 이용하여 반복적 인 AP-MS 실험을 수행한다. 매우 유익한 있지만,이 두 실험 및 해석 상당히 노동 집약적 인 작업입니다. 질량 분석기와 결합 단백질 가교 점점 단백질 복합체 2, 3, 4, 5에 대한 위상 정보를 도출하는 데 사용되고있다. 그러나 computatio가교 결합 된 펩티드의 최종 분석은 여전히 ​​도전 과제로 남아 따라서 흐름의 병목 현상이다. MS 분해성 가교 시약의 출현 단백질 (6, 7)를 상호 작용에 가까운 위치에 아미노산 잔기의 매핑을 용이하게한다. 또 다른 방법은 종래의 직교 분리 기술 8,9 친화 정제를 조합하는 것이다. 겔 여과 나 이온 교환 수, 또는 수 크로스 구배 분획 법에 의해 크로마토 그래피 분별은 또한 최근에 의해 통과 복잡한 분리 단계 10, 11, 12, 13, 시스템 전체의 레벨에서 multiprotein 착물을 설명하기 위해 정량적 질량 분석과 조합하여 사용되고있다. 블루 네이티브 폴리 아크릴 아미드 겔 전기 영동 (BN-PAGE)는 널리 적용되었습니다천연 단백질 상호 작용, 미토콘드리아 막 단백질 복합체 (14)를 포함하는 일반적으로 사람들을 조사합니다. 이 분리 기술은 최근 미토콘드리아 단지 15 일에뿐만 아니라 라벨이없는 단백질 정량과 상관 프로파일 링과 함께 사용 된 16, 17,뿐만 아니라 19 일 전체 세포 18에서 다른 단백질 복합체를 푸는합니다. 우리는 이후 기본 분류 방법과 정량적 인 MS와 친화력 정화의 조합이 특정 단백질을 포함하는 여러 단백질 어셈블리를 해결하기위한 유용한 전략을 제공해야한다는 가설을 세웠다. 여기서 우리는 정량적 질량 SP이어서 절연 단지 청색 기본 폴리 아크릴 아마이드 겔 전기 영동법으로 일반 에피토프 계 친화 정제를 조합하는 방법을 설명ectrometry 단백질 상관 프로파일은 단백질에 관여 할 수있는 여러 어셈블리를 해결합니다. 우리는 에피토프 태그에 융합 관심의 단백질이 생리적 풍부 가까이 달성하고 효율적인 기본을 보장하기 위해 내생 로커스에서 표현 마우스 배아 줄기 세포를 사용 복잡한 격리. 이 방법은 단백질이 기존의 geLC-MS (20)보다 더 많은 작업을 필요로하지 않는 동안, 자신의 상관 프로필을 기반으로 별개의 어셈블리에 이러한 문제를 해결하기에 종사 여러 상호 작용을 풀어.

<table><tbody><tr><td>Protein G Dynabeads</td><td>Life Technologies</td><td>10003D</td><td></td></tr><tr><td>FLAG antibody M2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F1804</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20, protein grade, 10% solution</td><td>Millipore</td><td>655206</td><td></td></tr><tr><td>Dimethyl pimelimidate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>80490</td><td></td></tr><tr><td>0.2 M Triethanolamine buffer, pH 8.2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T0449</td><td></td></tr><tr><td>3x FLAG peptide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F4799</td><td></td></tr><tr><td>Vivaspin 5K NMWCO, PES</td><td>Sartorius</td><td>VS0112</td><td></td></tr><tr><td>NativePAGE 3-12% Bis-Tris gel</td><td>Life Technologies</td><td>BN1001</td><td></td></tr><tr><td>20x NativePAGE Running Buffer</td><td>Life Technologies</td><td>BN2001</td><td></td></tr><tr><td>20x NativePAGE Cathode Additive</td><td>Life Technologies</td><td>BN2002</td><td></td></tr><tr><td>4x NativePAGE sample loading buffer</td><td>Life Technologies</td><td>BN2003</td><td></td></tr><tr><td>NativeMARK</td><td>Life Technologies</td><td>LC0725</td><td></td></tr><tr><td>NativePAGE 5% G-250 sample additive&amp;nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>BN2004</td><td></td></tr><tr><td>Nunc conical bottom 96-well plate, polypropylene</td><td>Thermo</td><td>249944</td><td></td></tr><tr><td>Multiscreen HTS 96-well filtration system</td><td>Thermo</td><td>MSDVN6550</td><td></td></tr><tr><td>Nunc 96-well cap natural</td><td>Thermo</td><td>276002</td><td></td></tr><tr><td>TCEP (Tris(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>646547</td><td></td></tr><tr><td>Iodoacetamide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I1149</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitrile, HPLC grade</td><td>Fisher Scientific</td><td>A/0627/17</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin, sequencing grade</td><td>Roche</td><td>11418475001</td><td></td></tr><tr><td>MaxQuant (software)</td><td>N.A.</td><td>N.A.</td><td>http://www.biochem.mpg.de/5111795/maxquant</td></tr><tr><td>Perseus (software)</td><td>N.A.</td><td>N.A.</td><td>http://www.biochem.mpg.de/5111810/perseus</td></tr></tbody></table>

resolving affinity purified protein complexes by blue native page and protein correlation profiling

Most proteins act in association with others; hence, it is crucial to characterize these functional units in order to fully understand biological processes. Affinity purification coupled to mass spectrometry (AP-MS) has become the method of choice for identifying protein-protein interactions. However, conventional AP-MS studies provide information on protein interactions, but the organizational information is lost. To address this issue, we developed a strategy to unravel the distinct functional assemblies a protein might be involved in, by resolving affinity-purified protein complexes prior to their characterization by mass spectrometry. Protein complexes isolated through affinity purification of a bait protein using an epitope tag and competitive elution are separated through blue native electrophoresis. Comparison of protein migration profiles through correlation profiling using quantitative mass spectrometry allows assignment of interacting proteins to distinct molecular entities. This method is able to resolve protein complexes of close molecular weights that might not be resolved by traditional chromatographic techniques such as gel filtration. With little more work than conventional AP-geLC-MS/MS, we demonstrate this strategy may in many cases be adequate for obtaining protein complex topological information concomitantly to identifying protein interactions.

질량 분석에 의해 친 화성 정제 블루 천연 단백질 상관 프로파일의 워크 플로우 (ABC-MS) 전략은도 7에 도시되어있다. 관심의 단백질 주변의 원주민 단백질 복합체 (이 경우 FLAG)에 에피토프 태그에 대한 항체를 사용하여 친화력 정화 및 경쟁력 용출에 의해 격리됩니다. 착물은 BN-PAGE에 의해 해결되며, 전체 겔 레인은 48 개 부분으로 절개하고, 샷건 LC-MS / MS를 위해 준비했다. MS 정량 정보는 청색 기본 분리 걸쳐 각각의 식별 된 단백질 마이그레이션 프로파일을 생성하는 데 사용된다. 상호 작용하는 단백질을 겹쳐 피크 구별 복잡한 디스플레이 유사한 이동 프로파일을 형성한다. 목적 단백질은 하나 개 이상의 부 조립에 걸리는 경우, 다수의 피크가, 그 이동 프로파일에서 관찰 된 서브 착물 청색 네이티브 겔 해상력 내에 주어진다. 미그의 체계적인 비교배급량 프로필 계층 클러스터링을 사용하여 단백질의 프로파일 상관에 의해 달성 될 수있다. dendrogram은 모든 분획에 대한 피크 강도가 별개의 단백질 복합체에 속하는 단백질 (도 8)의 상호 작용의 확인을 용이하게 열지도 시각화된다. 우리는 MTA2, 복잡한 20 개조 NuRD 염색질의 핵심 서브 유닛의 상호 작용 파트너를 분석하기 위해이 전략을 사용했다. 도 9에 도시 된 바와 같이, MTA2의 이동 프로파일은 더 풍부 표시 하부 질량 피크, 700 kDa 이상 1.2 MDA 간의 구별 강도의 두 피크를 표시. MTA1 / 3 HDAC1 / 2 Mbd3 포함한 기타 NuRD 코어 서브 유닛은, 상기 서브 유닛, 즉 Chd4의 일부 피크이라도 동일한 분리 패턴을 보였다 B Gatad2a / 및 Rbbp4 / 7은 (도 9a 역 풍부 분포 있었다 B). 한편, CDK의 프로필2ap1,이 Wnt 유전자 프로모터 (23)에 NuRD 복합체를 모집 규제 인자 만 높은 질량 피크 (도 9c)를 표시하고 있으므로 Sall4도 NuRD 20, 24, 25에 결합하는 것으로 나타났다 전사 리프레했다. 따라서, 청색 기본 PAGE에 의한 친 화성 정제 MTA2 관련 단백질 분획은 NuRD 복합체의 두 가지 형태를 확인할 수 있었다. ABC-MS는 특정한 단백질 엔티티에 할당하면서 신규 인터랙의 식별을 허용한다. 열 -지도에 표시된 단백질 클러스터 및 분획 강도의 시험을 통하여 우리는 두 NuRD 피와 일치 개의 이전 피크를 표시 NuRD 소단위와 Wdr5와 Wdr5 상기 MLL의 메틸화 착체 (26)의 조절 서브 유닛 사이의 강한 상관을 검출Wdr5 및 NuRD 간의 새로운 상호 작용을 제안 eaks (도 8). 우리는 크기 배제 크로마토 그래피 (20)의 공동 면역와 공동으로 마이그레이션하여이 상호 작용을 확인했다. 계층 적 클러스터링 디스턴스 메트릭 계산의 선택은 클러스터 따라서 상관의 형태에 영향을 미칠 것이다. 우리는 단백질 또는 관심의 복잡한의 기존 상호 작용의 지식을 가진 가장 적합한을 달성하기 위해 서로 다른 측정 실험을하는 것이 좋습니다. 일반적으로 우리는 맨하탄 (L1)의 거리 메트릭 (20)에 최적의 결과를 달성했다. 피어슨 상관 또는 유클리드 거리 메트릭은 다른 분류 기법 10, 11, 12에 기초하여 복합체를 식별하기 위해보고되었다. 관음청색 기본 분획으로부터 수득 titative MS 데이터는 단백질 복합체의 화학량 론을 결정하는 데 사용될 수있다. iBAQ (강도 계 절대 정량) 값은 식별 된 단백질 (27), (28)의 상대적인 풍부함의 측정치를 제공한다. 마이그레이션 프로파일 내의 모든 피크 분획에서의 단백질의 복합 부재 iBAQ 값은 상대적인 양을 얻기 베이트 단백질의 정규화된다. 주어진 단백질 복합체 부재의 프로파일 피크 걸쳐 정규화 iBAQs 수평 흐름을 따라야하고, 그래프 값 미끼 단백질에 대해 상호 작용하는 단백질의 화학량 론을 반영한다. 화학량 론 계산의 더 상세한 표현, 20 참조. <img alt="그림 7" src="/files/ftp_upload/55498/55498fig7.jpg" /> 도 7 : 도식 플로 요약 ABC-MS의trategy. 이는도 20에서 수정된다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55498/55498fig7large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 8" src="/files/ftp_upload/55498/55498fig8.jpg" /> MTA2의 인터랙의 BN-PAGE 이전 프로파일도 8 계층 클러스터링. MTA2 관련 단백질은 자신의 마이그레이션 프로필의 유사성에 따라 클러스터했다. 오직 NuRD 착체를 함유하는 가열 - 맵의 서브 세트 (파란색 상자 묶인) 도시되어있다. 노란색 상자가 NuRD 단지와 Wdr5의 강한 상관 관계를 강조한다. 주석 분자량이 같은 젤에서 실행 단백질 표준의 이동 거리에서 추정되었다. 이 연구는 원래 생화학 및 모 20 미국 사회 분자 세포 프로테오믹스에 발표 된<html> lecular 생물학. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55498/55498fig8large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 9" src="/files/ftp_upload/55498/55498fig9.jpg" /> NuRD 소단위와 관련된 단백질도 9 BN-PAGE 이전 단면도. A) 동일한 강도의 패턴으로 존재하고 MTA2 NuRD 소단위. B) 상기 역 강도 패턴 MTA2 및 NuRD 소단위. 오직 고 분자량 NuRD 엔티티에 존재하는 C) 및 MTA2 Cdk2ap1. 주석 분자량은 단백질 표준의 마이그레이션 프로필에서 추정되었다. 이 연구는 원래 분자 세포 프로테오믹스 (20) 생화학 및 분자 생물학에 대한 미국 사회에 출판되었다.&quot;_blank&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="보충 파일" src="/files/ftp_upload/55498/proteinGroupsDB04.jpg" /> 보충 자료 : 샘플 데이터 세트. ABC-MS 실험에서 단백질 동정 및 정량 값을 포함 proteingroups.txt 파일 MaxQuant 유래. 이 연구는 원래 분자 세포 프로테오믹스 (20) 생화학 및 분자 생물학에 대한 미국 사회에 출판되었다. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/55498/proteinGroupsDB04.txt" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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Resolving Affinity Purified Protein Complexes by Blue Native PAGE and Protein Correlation Profiling

여기에서 우리는 라벨 무료 양적 질량 분석을 사용하여 단백질 상관 프로파일 다음에 친 화성이 단백질 복합체의 정화 및 파란색 기본 페이지에서 자신의 분리를위한 프로토콜을 제시한다. 이 방법은 서로 다른 단백질 복합체에 상호 작용 체를 해결하는 데 유용합니다.

블루 기본 페이지와 단백질 상관 관계 프로파일 링에 의한 선호도 정제 단백질 복합체 해결

Most proteins act in association with others; hence, it is crucial to characterize these functional units in order to fully understand biological ...

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Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Biochemistry

13.8K 조회수.  Wellcome Trust Sanger Institute.  여기에서 우리는 라벨 무료 양적 질량 분석을 사용하여 단백질 상관 프로파일 다음에 친 화성이 단백질 복합체의 정화 및 파란색 기본 페이지에서 자신의 분리를위한 프로토콜을 제시한다. 이 방법은 서로 다른 단백질 복합체에 상호 작용 체를 해결하는 데 유용합니다. 

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Protein Complex Affinity Capture from Cryomilled Mammalian Cells

Affinity capture is an effective technique for isolating endogenous protein complexes for further study. When used in conjunction with an antibody, this technique is also frequently referred to as immunoprecipitation. Affinity capture can be applied in a bench-scale and in a high-throughput context. When coupled with protein mass spectrometry, affinity capture has proven to be a workhorse of interactome analysis. Although there are potentially many ways to execute the numerous steps involved, the following protocols implement our favored methods. Two features are distinctive: the use of cryomilled cell powder to produce cell extracts, and antibody-coupled paramagnetic beads as the affinity medium. In many cases, we have obtained superior results to those obtained with more conventional affinity capture practices. Cryomilling avoids numerous problems associated with other forms of cell breakage. It provides efficient breakage of the material, while avoiding denaturation issues associated with heating or foaming. It retains the native protein concentration up to the point of extraction, mitigating macromolecular dissociation. It reduces the time extracted proteins spend in solution, limiting deleterious enzymatic activities, and it may reduce the non-specific adsorption of proteins by the affinity medium. Micron-scale magnetic affinity media have become more commonplace over the last several years, increasingly replacing the traditional agarose- and Sepharose-based media. Primary benefits of magnetic media include typically lower non-specific protein adsorption; no size exclusion limit because protein complex binding occurs on the bead surface rather than within pores; and ease of manipulation and handling using magnets.

Here we describe protocols to disrupt mammalian cells by solid-state milling at a cryogenic temperature, produce a cell extract from the resulting cell powder, and isolate protein complexes of interest by affinity capture upon antibody-coupled micron-scale paramagnetic beads.

Cryomilled 포유 동물 세포에서 단백질 단지 선호도 캡처

Affinity capture is an effective technique for isolating endogenous protein complexes for further study. When used in conjunction with an antibody, this ...

연구

생화학

Multimer-PAGE: A Method for Capturing and Resolving Protein Complexes in Biological Samples

There are many well-developed methods for purifying and studying single proteins and peptides. However, most cellular functions are carried out by networks of interacting protein complexes, which are often difficult to investigate because their binding is non-covalent and easily perturbed by purification techniques. This work describes a method of stabilizing and separating native protein complexes from unmodified tissue using two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis. Tissue lysate is loaded onto a non-denaturing blue-native polyacrylamide gel, then an electric current is applied until the protein migrates a short distance into the gel. The gel strip containing the migrated protein is then excised and incubated with the amine-reactive cross-linking reagent dithiobis(succinimidyl propionate), which covalently stabilizes protein complexes. The gel strip containing cross-linked complexes is then cast into a sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel, and the complexes are separated completely. The method relies on techniques and materials familiar to most molecular biologists, meaning it is inexpensive and easy to learn. While it is limited in its ability to adequately separate extremely large complexes, and has not been universally successful, the method was able to capture a wide variety of well-studied complexes, and is likely applicable to many systems of interest.

A method for stabilizing and separating native protein complexes from unmodified tissue lysate using an amine-reactive protein cross-linker coupled to a novel two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) system is presented.

다량 체-PAGE : 생물학적 샘플에서 캡처하는 방법 및 해결 단백질 단지

There are many well-developed methods for purifying and studying single proteins and peptides. However, most cellular functions are carried out by ...

CN-GELFrEE - Clear Native Gel-eluted Liquid Fraction Entrapment Electrophoresis

Protein complexes perform an array of crucial cellular functions. Elucidating their non-covalent interactions and dynamics is paramount for understanding the role of complexes in biological systems. While the direct characterization of biomolecular assemblies has become increasingly important in recent years, native fractionation techniques that are compatible with downstream analysis techniques, including mass spectrometry, are necessary to further expand these studies. Nevertheless, the field lacks a high-throughput, wide-range, high-recovery separation method for native protein assemblies. Here, we present clear native gel-eluted liquid fraction entrapment electrophoresis (CN-GELFrEE), which is a novel separation modality for non-covalent protein assemblies. CN-GELFrEE separation performance was demonstrated by fractionating complexes extracted from mouse heart. Fractions were collected over 2 hr and displayed discrete bands ranging from ~30 to 500 kDa. A consistent pattern of increasing molecular weight bandwidths was observed, each ranging ~100 kDa. Further, subsequent reanalysis of native fractions via SDS-PAGE showed molecular-weight shifts consistent with the denaturation of protein complexes. Therefore, CN-GELFrEE was proved to offer the ability to perform high-resolution and high-recovery native separations on protein complexes from a large molecular weight range, providing fractions that are compatible with downstream protein analyses.

This protocol describes how to prepare and perform clear native gel-eluted liquid fraction entrapment electrophoresis (CN-GELFrEE), a native separation technique for non-covalent biomolecular assemblies and proteins from heterogeneous samples that is compatible with various downstream protein analysis techniques.

CN-GELFrEE - 지우기 기본 젤 - 용출 액체 분수 내포 전기 영동

Protein complexes perform an array of crucial cellular functions. Elucidating their non-covalent interactions and dynamics is paramount for understanding ...

화학

2 in 1: One-step Affinity Purification for the Parallel Analysis of Protein-Protein and Protein-Metabolite Complexes

Cellular processes are regulated by interactions between biological molecules such as proteins, metabolites, and nucleic acids. While the investigation of protein-protein interactions (PPI) is no novelty, experimental approaches aiming to characterize endogenous protein-metabolite interactions (PMI) constitute a rather recent development. Herein, we present a protocol that allows simultaneous characterization of the PPI and PMI of a protein of choice, referred to as bait. Our protocol was optimized for Arabidopsis cell cultures and combines affinity purification (AP) with mass spectrometry (MS)-based protein and metabolite detection. In short, transgenic Arabidopsis lines, expressing bait protein fused to an affinity tag, are first lysed to obtain a native cellular extract. Anti-tag antibodies are used to pull down protein and metabolite partners of the bait protein. The affinity-purified complexes are extracted using a one-step methyl tert-butyl ether (MTBE)/methanol/water method. Whilst metabolites separate into either the polar or the hydrophobic phase, proteins can be found in the pellet. Both metabolites and proteins are then analyzed by ultra-performance liquid chromatography-mass spectrometry (UPLC-MS or UPLC-MS/MS). Empty-vector (EV) control lines are used to exclude false positives. The major advantage of our protocol is that it enables identification of protein and metabolite partners of a target protein in parallel in near-physiological conditions (cellular lysate). The presented method is straightforward, fast, and can be easily adapted to biological systems other than plant cell cultures.

Protein-protein and protein-metabolite interactions are crucial for all cellular functions. Herein, we describe a protocol that allows parallel analysis of these interactions with a protein of choice. Our protocol was optimized for plant cell cultures and combines affinity purification with mass spectrometry-based protein and metabolite detection.

2 1: 원스텝 단백질 단백질과 단백질 대사 산물 단지의 병렬 분석에 대 한 친 화력 정화

Cellular processes are regulated by interactions between biological molecules such as proteins, metabolites, and nucleic acids. While the investigation of ...

Analysis of Thylakoid Membrane Protein Complexes by Blue Native Gel Electrophoresis

Photosynthetic electron transfer chain (ETC) converts solar energy to chemical energy in the form of NADPH and ATP. Four large protein complexes embedded in the thylakoid membrane harvest solar energy to drive electrons from water to NADP+ via two photosystems, and use the created proton gradient for production of ATP. Photosystem PSII, PSI, cytochrome b6f (Cyt b6f) and ATPase are all multiprotein complexes with distinct orientation and dynamics in the thylakoid membrane. Valuable information about the composition and interactions of the protein complexes in the thylakoid membrane can be obtained by solubilizing the complexes from the membrane integrity by mild detergents followed by native gel electrophoretic separation of the complexes. Blue native polyacrylamide gel electrophoresis (BN-PAGE) is an analytical method used for the separation of protein complexes in their native and functional form. The method can be used for protein complex purification for more detailed structural analysis, but it also provides a tool to dissect the dynamic interactions between the protein complexes. The method was developed for the analysis of mitochondrial respiratory protein complexes, but has since been optimized and improved for the dissection of the thylakoid protein complexes. Here, we provide a detailed up-to-date protocol for analysis of labile photosynthetic protein complexes and their interactions in Arabidopsis thaliana.

A protocol for the elucidation of plant thylakoid protein complex organization and composition with blue native polyacrylamide gel electrophoresis (BN-PAGE) and 2D-SDS-PAGE is described. The protocol is optimized for Arabidopsis thaliana, but can be used for other plant species with minor modifications.

블루 기본 젤 전기 이동 법에 의해 Thylakoid 막 단백질 복합물의 분석

Photosynthetic electron transfer chain (ETC) converts solar energy to chemical energy in the form of NADPH and ATP. Four large protein complexes embedded ...

High-Resolution Complexome Profiling by Cryoslicing BN-MS Analysis

Proteins generally exert biological functions through interactions with other proteins, either in dynamic protein assemblies or as a part of stably formed complexes. The latter can be elegantly resolved according to molecular size using native polyacrylamide gel electrophoresis (BN-PAGE). Coupling of such separations to sensitive mass spectrometry (BN-MS) has been well-established and theoretically allows for exhaustive assessment of the extractable complexome in biological samples. However, this approach is rather laborious and provides limited complex size resolution and sensitivity. Also, its application has remained restricted to abundant mitochondrial and plastid proteins. Thus, for a majority of proteins, information regarding integration into stable protein complexes is still lacking. Presented here is an optimized approach for complexome profiling comprising preparative-scale BN-PAGE separation, sub-millimeter sampling of broad gel lanes by cryomicrotome slicing, and mass spectrometric analysis with label-free protein quantification. The procedures and tools for critical steps are described in detail. As an application, the report describes complexome analysis of a solubilized endosome-enriched membrane fraction from mouse kidneys, with 2,545 proteins profiled in total. The results demonstrate identification of uniform, low-abundance membrane proteins such as intracellular ion channels as well as high resolution, complex protein assembly patterns, including glycosylation isoforms. The results are in agreement with independent biochemical analyses. In summary, this methodology allows for comprehensive and unbiased identification of protein (super)complexes and their subunit composition, providing a basis for investigating stoichiometry, assembly, and interaction dynamics of protein complexes in any biological system.

A versatile cryoslicing BN-MS protocol using a microtome is presented for high-resolution complexome profiling.

BN-MS 분석에 의한 고분해능 컴플렉스 프로파일링

Proteins generally exert biological functions through interactions with other proteins, either in dynamic protein assemblies or as a part of stably formed ...

Blue Native Polyacrylamide Gel Electrophoresis (BN-PAGE) for Analysis of Multiprotein Complexes from Cellular Lysates

Multiprotein complexes (MPCs) play a crucial role in cell signalling, since most proteins can be found in functional or regulatory complexes with other proteins (Sali, Glaeser et al. 2003). Thus, the study of protein-protein interaction networks requires the detailed characterization of MPCs to gain an integrative understanding of protein function and regulation. For identification and analysis, MPCs must be separated under native conditions. In this video, we describe the analysis of MPCs by blue native polyacrylamide gel electrophoresis (BN-PAGE). BN-PAGE is a technique that allows separation of MPCs in a native conformation with a higher resolution than offered by gel filtration or sucrose density ultracentrifugation, and is therefore useful to determine MPC size, composition, and relative abundance (Sch&auml;gger and von Jagow 1991); (Sch&auml;gger, Cramer et al. 1994). By this method, proteins are separated according to their hydrodynamic size and shape in a polyacrylamide matrix. Here, we demonstrate the analysis of MPCs of total cellular lysates, pointing out that lysate dialysis is the crucial step to make BN-PAGE applicable to these biological samples. Using a combination of first dimension BN- and second dimension SDS-PAGE, we show that MPCs separated by BN-PAGE can be further subdivided into their individual constituents by SDS-PAGE. Visualization of the MPC components upon gel separation is performed by standard immunoblotting. As an example for MPC analysis by BN-PAGE, we chose the well-characterized eukaryotic 19S, 20S, and 26S proteasomes.

Blue Native Polyacrylamide Gel Electrophoresis BN-PAGE for Analysis of Multiprotein Complexes from Cellular Lysates

In this video, we describe the characterization of multiprotein complexes (MPCs) by blue native polyacrylamide gel electrophoresis (BN-PAGE). In a first dimension, dialyzed cellular lysates are separated by BN-PAGE to identify individual MPCs. In a second dimension SDS-PAGE, MPCs of interest are further subdivided to analyze their constituents by immunoblotting.

셀룰러 Lysates에서 Multiprotein의 단지의 분석을 위해 블루 기본 Polyacrylamide 젤 전기 영동 (BN - PAGE)

Multiprotein complexes (MPCs) play a crucial role in cell signalling, since most proteins can be found in functional or regulatory complexes with other ...

생물학

<meta charset="utf8"></head><body>His-tagged FEN1 단백질의 효율적인 정제를 위한 FPLC 최적화

Affinity Purification of a 6X-His-Tagged Protein using a Fast Protein Liquid Chromatography System

Functional characterization of proteins requires them to be expressed and purified in substantial amounts with high purity to perform biochemical assays. The Fast Protein Liquid Chromatography (FPLC) system allows high-resolution separation of complex protein mixtures. By adjusting various parameters in FPLC, such as selecting the appropriate purification matrix, regulating the protein sample's temperature, and managing the sample's flow rate onto the matrix and the elution rate, it is possible to ensure the protein's stability and functionality. In this protocol, we will demonstrate the versatility of the FPLC system to purify 6X-His-tagged flap endonuclease 1 (FEN1) protein, produced in bacterial cultures. To improve protein purification efficiency, we will focus on multiple considerations, including proper column packing and preparation, sample injection using a sample loop, flow rate of sample application to the column, and sample elution parameters. Finally, the chromatogram will be analyzed to identify fractions containing high yields of protein and considerations for proper recombinant protein long-term storage. Optimizing protein purification methods is crucial for improving the precision and reliability of protein analysis.

<meta charset="utf8"></head><body>저자 스포트라이트: Optimizing Affinity Chromatography for His-Tagged FEN1 Protein

This article provides a procedure for the affinity purification of a human recombinant protein, flap endonuclease 1 (FEN1), which has been labeled with a 6X-histidine tag. The protocol involves the utilization of two distinct immobilized metal ion columns for the purification of the tagged protein.

Fast Protein 액체 크로마토그래피 시스템을 사용한 6X-His-Tagged 단백질의 친화성 정제 

Functional characterization of proteins requires them to be expressed and purified in substantial amounts with high purity to perform biochemical assays. ...

블루 기본 페이지와 단백질 상관 관계 프로파일 링에 의한 선호도 정제 단백질 복합체 해결

요약

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Fast Protein 액체 크로마토그래피 시스템을 사용한 6X-His-Tagged 단백질의 친화성 정제

Fast Protein 액체 크로마토그래피 시스템을 사용한 6X-His-Tagged 단백질의 친화성 정제

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