This work was supported by NIH Grant HL-113905

이 연구 수행 모든 동물의 절차는 실험 동물의 관리 및 사용에 대한 가이드에 맞은 노바 사우스 이스턴 대학의 기관 동물 케어 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다, 제 8 판 (국립 아카데미 프레스, 워싱턴 DC, 2011 ). 수용체자가 방사선 1. 준비 조직 섹션 <ol><li> 희생시 수확 신선한 뇌 조직, 및 알루미늄 호일 대신에 포장 -20 ° C에 냉동 빨리. 20 ° C 냉동 - 정확한 형상을 유지 두개골 내를 모의하는 뇌 몰드에서 뇌를 배치하기 위해, 알루미늄 호일 대신 랩. 30 분 후, 장소 밀봉 냉동 보관 백에 조직 및 장기 저장을 위해 -80 ° C에 냉동 장치로 이동한다. <ol><li> -80 -10 ° C 및 -18 ℃의 최대의 최소로 설정 그라 이오 스탯에 C의 냉동고 및 전송 °, 피하기 위해 해동 관심의 냉동 조직 표본을 얻습니다. </li&gt; <li> 조직 상에 시료만을 배지에 시료의 작은 부분을 포함하는 글리콜 수지계 매립 매체 마운트 놓는다. 뇌의 경우, 뇌는 관상면에서 절편 수 있도록 수직으로 장착된다. </li></ol></li><li> 조직은 저온 유지 장치 내에서 마이크로톰에 탑재하고 제자리에 단단히 조여 놓습니다. 배측 - 복부 축이 수직 일반적으로 사용하는 뇌지도 책이라는 동일한 안테 - postero 좌표에있는 뇌의 왼쪽과 오른쪽을 확인하고. </li><li> 원하는 두께로 절단 시작 (20 μm의 권장) 및 슬라이드의 공간보다 큰 표면적을 갖고 수직 방향으로 현미경 슬라이드 상에 마운트 부 해동. 슬라이드의 첫 번째 세트는 (그림 3) 1-1, 1-2, 1-3, 1-4, 1-5 표시되어 있습니다 즉, 오의 연속 세트의 슬라이드 상에 섹션을 수집합니다. </li><li> 섹션과 슬라이드 세트를 작성 후 최대 1 시간 동안 공기 건조에 슬라이드, 다음 SLI를 배치 할 수 있도록-20 ° C에서 플라스틱 슬라이드 자체 밀봉 냉동 보관 가방 상자, 저장에 데스. </li></ol> 2. 수용체자가 방사선 주의 : 방사능. 방사능을 처리하기 위해 보호 복장을 사용합니다. 폐기 시설에 의존하고, 제대로 (반감기 60 일) 부패하거나 인증 기업으로 뽑힐 지침을 따라야합니다. <ol><li> (그림 5)를 -20 ° C 냉장고에서 관심의 &quot;-2&quot; &quot;-1&quot;과 슬라이드를 제거하고 슬라이드 그립으로 마운트합니다. 함께 &#39;비 특정&#39;치료를위한 &quot;-1&quot;슬라이드 및 &#39;전체&#39;치료를위한 &quot;-2&quot;슬라이드를 탑재합니다. 바인딩 항아리가 10이 포함됩니다의 &#39;총&#39;(표 1) &#39;비 특정&#39;항아리 2 R 길항제 AT PD123319 10 μm의 최종 농도를 포함하며, 분석 매체 버퍼에, 1 R 길항제 AT (AM5을)를을 로사 르탄 AM5에서 μM PD123319. </li><li> 슬라이드 전환그립을 실온에서 30 분 동안 AM5의 35-40 mL로 충전 전 배양 코 플린 항아리에 슬라이드 각각의 억제제를 배치한다. 4 분 간격으로 자신의 전 배양 조에서 다음 세트를 시작합니다. </li><li> 즉시 방에서 60 ~ 90 분 동안 10 AM5 ml의 플러스 각각의 억제제 (그림 4에서 계산) 125 I-SI-중앙 II의 소정의 농도를 포함, 배양 슬라이드 우편물에 대한 사전 배양 용액에서 슬라이드를 전송 온도. 충분한 방사성이있는 경우, 10 슬라이드 수정 슬라이드 그립에 (다시 다시하는) 배치 및 코 플린 단지에 125 I-SI-중앙 II와 함께 배양 할 수있다. </li><li> 장소 (필요한 경우), 블롯을 부드럽게 두 개의 별도의 용기에 증류수 400 ㎖에 1-2 초 동안 소용돌이에 의해 린스 슬라이드 그립에 다시 슬라이드. </li><li> 정확히 1 분마다 (그림 4 &lt;에 도시 된 바와 같이 대한 AM5의 35 ~ 40 ml에 포함 된 네 개의 코 플린 단지에 순차적으로 슬라이드를 이동/ STRONG&gt;). </li><li> 마지막 1 분 린스 후, 부드럽게 얼음 차가운 증류수 사 변경에 1-2 초 동안 섹션을 소용돌이 친다. </li><li> - 불어 건조 시원한 공기와 슬라이드 (주의 : 뜨거운 공기가 방사성 화합물 휘발) 4 분 (그림 5)에 대해 서로 다른 각도에서 설정 네 헤어 드라이어를 사용하여, 모든 섹션이 건조 될 때까지, 다음 종이 타월에 배치합니다. </li><li> 마운트 조직은 양면 테이프를 사용하여 X 선 필름에 동격의 판지에 위쪽을 향하도록 슬라이드. </li><li> 적어도 하나의 마운트, 각 판지 위에 125 요오드 교정 표준 슬라이드 (그림 6). 주 : 검정 표준은 완전히 머리 부와 동일한 두께로 절단하고 현미경 위에 해동 - 장착 저온 유지되는 한 용액 투베르쿨린 주사기를 원심 분리에 의해 압축 된 페놀 고리를 포함하는 화합물에 결합 된 125 요오드 혼합 뇌 페이스트 이루어져 슬라이드. 대안에서, 125 I 교정 표준20 ㎛의 두께로 절단 플라스틱 수지는 상업적으로 얻을 수있다. 이러한 표준의 플라스틱 수지가 부분적 ~ 40 %의 조직 동등성 보정에 반영되어야하는 방사선 차폐 필름. </li></ol> 3. 필름의 노출 및 현상 <ol><li> 스트랩 백 X 레이 카세트 및자가 방사선 필름과 암실로 진행합니다. 카세트를 열고 내부 슬라이드 (그림 6)와 골 판지를 배치합니다. <ol><li> 불을 끄고 안전 등의 전원을 켭니다. 조심스럽게, X 레이 필름의 상자를 열고 한 필름을 제거하고, 카세트에서 슬라이드의 상단에 (오른쪽 아래 모서리에있는 들쭉날쭉 한 가장자리) 필름 광택면을 배치합니다. 조심스럽게 카세트를 닫고, 빛 (그림 6) 밖으로 밀봉 잠금 막대를 비틀어. -20 ° C에서 몇 주에 며칠 동안 슬라이드를 노출. </li></ol></li><li> 암실에서, 카세트를 열고 필름 현상 PROC 진행ESS. <ol><li> 연속 트레이에 슬라이드를 놓고; 2 분 동안 개발자, 5 분 동안 5 % 빙초산 30 초 산, 그리고 해결사를 함유하는 물. 필름은 20 분 동안 흐르는 물과 트레이에 배치 한 후 더 이상 10 이상의 초 Photoflo에 넣고 걸. 낮은 바인딩과 지역에서 측정 신호를 얻기 위해 충분히,하지만 너무 오래 높은 결합을 가진 지역으로 필름을 포화과 같이 노출 시간은 경험적으로 결정되고 다른 노출 시간과 여러 영화를 포함 할 수 있습니다. 허용 노출이 얻어지면, 다음 단계로 진행합니다. </li></ol></li></ol> 4. 조직학 <ol><li> thionin 염색 및 염색 시약 (표 2, 그림 7)를 준비합니다. <ol><li> 슬라이드 랙에 &quot;-3&quot;슬라이드를 놓고 1 분 동안 탈 이온수로 시작하는 순차적으로 전송 한 후 10 분 동안 thionin 얼룩 솔루션은 deion에 세 딥 다음화된 물, 탈 이온수 한 30 초 세척. </li><li> 다음과 같이 물을 따르면, 에탄올 세척에 슬라이드 선반을 두십시오; 각각 1 분 100 % 둘 에탄올 세척 한 다음 50 %, 70 %, 30 초 동안 90 %. 마지막으로, 3 분 동안 크실렌으로 슬라이드 랙을 배치 한 다음 5 분 동안 제 크실렌 용액 위에 옮긴다. </li></ol></li><li> 마지막 자일 렌 화장실에서 한 번에 하나의 슬라이드를 제거하고 유기 용매 장착 매체 수지베이스와 슬라이드의 상단 커버 및 슬라이드 상에 24mm X 60mm의 coverslip에 배치합니다. ~ 48 시간 동안 슬라이드가 충분히 건조 허용하고 2,400 dpi의 그레이 스케일에서 컴퓨터로 스캔합니다. </li></ol> 5. 농도계 이미지 분석 <ol><li> 왼쪽 하단에있는 들쭉날쭉 한 가장자리 아래로 필름 광택면을 놓고 이미징 시스템의 컴퓨터에서 왜곡없이 막 밀도 정보를 전송할 수있는 전용 스캐너를 사용하여 스캔. </li><li> 독점 영상 SYS를 엽니 다TEM과 활용 교정 바 필름의 이미지 (- 12,도 9)의 미래 농도계 분석 교정 표준을 확립한다. </li><li> 템플릿을 설정 또는 경험적으로 관심의 영역을 요약하거나하여 관심의 측정 영역. 데이터는, 제어 또는 야생형 (부) 및 지역를 수집하고 영화를 기반으로 분리된다. (그림 9) 측정에서 밀도 (fmol / g), 스캔 영역, 총 대상 면적을 포함해야합니다. <ol><li> 관심의 영역이 강조의 매개 변수 (그림 10) 사이에 떨어지는 것을 보장하여 스캔 영역 막대를 조정합니다. </li><li> 스프레드 시트로 데이터 내보내기 (표 4). 밀도 시간을 총 타깃 영역을 곱하고 그 특정 영역의 결합에 대한 값을 얻기 위해 스캔 영역으로 나눈다. 이 측정 값 모두 완료되면, 특정 바인딩 (P)을 수득 총 설정된 비특이적 기판화내다. 평균은 이들 값에 대해 수행 될 수있다. </li></ol></li></ol>

Robert Speth has licensed antibodies to angiotensin II receptors to a commercial vendor and receives royalties from the sale of said antibodies. The other authors have nothing to disclose.

기술 된 프로토콜은 설치류 뇌 이전에 수거하고 -80 ℃에서 보관의 관상 부의 인접 부에서의 방사성 리간드의 결합을 &#39;전체&#39;및 &#39;비​​특이적&#39;의 시각화를 식별하고, 거의 모든 조직에 용이하게 적용 할 수 있다는 해부학 적 수용체 또는 방사성 리간드 결합 부위의 차이 금액을 표시 하부 구조를 해결했다. 프로토콜에서 설명하는 절차는 간단하고 정확하게 분석 결과를 해석 중요하다. ...

심혈관 질환 2011 년 1 년 미국에서 사망의 30 % 이상을 일으키는 원인이 미국에서 사망과 장애의 주요 원인이되고 있습니다. 미국 심장 협회 (American Heart Association)에서 가장 최근의 통계는 세 개 이상 한 사람이 하나가 나타냅니다 심혈관 질환의 이상 유형입니다. 심장 혈관 연구는이 질병을 이해에 진전을 만들기 위해 계속되지만 세대가 나이가 점점 시작으로 이러한 노력을 계속하는 것이 필수적이다. 레닌 - 안지오텐신 시스템 (RAS)는 주로 (도 1) 2-8 교감 신경계의 동맥 경화, 염증, 전신 혈관 수축 및 활성화를 촉진하여 심혈 관계의 조절에 중요한 역할을한다. RAS 장치 혈압 감소하는 신장의 방 사구체 세포 응답하여 혈류로 레닌 분비 될 때 활성화되는 호르몬 시스템, sympat 증가hetic 자극, 또는 황반 densa에 의한 나트륨의 흐름을 감소. 레닌 안지오텐신 I (ANG I)을 형성 (간에서 합성) 안 지오 텐시 노겐을 대사. 중앙 I는 안지오텐신 II (ANG II) 상기 RAS의 주요 이펙터 펩타이드를 형성하기 위해, 주로 폐, 신장, 혈관 내피 세포의 내강 측에, 안지오텐신 전환 효소 (ACE)에 의해 ectoenzyme을 대사한다. 중앙 II는 두 개의 수용체 아형을 활성화 할 수있다; (1 AT R) 타입 1 수용체 (2 R AT) 2 형 수용체는 심장 혈관 시스템을 조절하는 모두, 유체 및 전해질 항상성을 유지하고 지금은인지 기능 및 신경 퇴행성 질환에 영향을 미치는 것으로 간주됩니다 8,9을 처리합니다. 로컬, 뇌 특정 RAS는 독립적으로 중앙 II를 합성보고됩니다. 뇌에서, 전구체 단백질 지오 텐시 노겐는 레닌과 같은 ​​효소 I (3) 중앙으로 변환 별아교 세포 (10)에서 합성되고, 아마도 prorenin prorenin 수용체에 결합(11)이어서 풍부 뇌 12 뉴런의 세포 표면에 발현되는 안지오텐신 전환 효소에 의해 중앙 II로 전환. 중앙 II 생성이 intrabrain 1 AT 뇌에 대한 혈액을 매개로 중앙 II 분리되어 2 수용체에 작용 물질이다. 상기 한 R 중요한 생리 학적 역할을하지만, 더 나은 주로 심혈관 및 신장 (도 2)에 영향을 몸 전체의 병태 생리 학적 효과로 알려져있다. 중앙 II는 AT (1) R에 결합하면 혈관 수축의 원인; 혈류에 대한 저항을 증가시키고 혈압을 올리는. 또한, 증가 된 나트륨 및 보수성 선도 및 바소프레신​​ 알도스테론의 합성 및 분비를 촉진한다. 이러한 효과는 허혈성 뇌 손상 및인지 장애를 유발할 수 있으며, 파킨슨 병, 알츠하이머 병에 연결되며, diabeTES, 최근에 발견 된뿐만 아니라 학습과 기억 13-15에 영향을 줄 수 있습니다. 신장의 방 사구체 세포에 1 R AT 점에서 RAS의 피드백 루프는 레닌 분비가 억제됩니다. 흥미롭게도, AT (2) R은 일반적으로 1 R AT, 많은 다른 16 ~ 20 사이에서 혈관 확장, 신경 돌기의 가지, 축삭 재생, 항 증식 및 cerebroprotection의 원인의 조치를 반대 조절한다. 상기 R 2는 항 고혈압 최근에는 항암제 (21) 타겟으로서 확인되었다. 다양한 조직 내에서 중앙 II 수용체의 현지화 및 밀도를 결정하는 방법 그들은 RAS 특정 질병의 역할을 파악하는 데 도움이됩니다 양적 농도계 수용체자가 방사선을 사용하여 다양한 트리트먼트와 질병 상태에 의해 영향을받습니다. 수용체자가 방사선는 안지오텐신 I의 존재를 지시하기위한 효과적인 방법으로서 30 년 이상 사용되어왔다I 수용체와 뇌에서 RAS의 다른 구성 요소와 실험 조건 22-34의 다양한에서 쥐, 마우스, 기니 돼지, 개와 인간의 다른 조직. 뇌에서 중앙 II 수용체 위치의 중요성은 하나의 뇌에서 중앙 II의 작용에 기능적 신경 해부학을 적용 할 수 있다는 것, 예를 들면 시상 하부 (PVN)의 뇌실 핵 AT 한 R의 존재는 중앙의 기능을 제시 뇌 II는 바소프레신​​, 옥시토신 또는 부 신피질 자극 호르몬 방출 호르몬 (CRH) 방출, 또는 교감 신경계의 활성화를 촉진한다. 따라서, AT (1) R을 차단하는 약물은 뇌 RAS의 활동을 통해과 관련이 PVN 매개 효과의 일부를 줄일 수 있습니다. 진행중인 작업은 1 R 길항제 AT의 사용은 CRH의 외상 후 스트레스 장애 (PTSD) - 유도 방출을 감소시키고 PTSD의 증상을 개선 할 수 있음을 시사한다 (상처 등., 게시를 위해 제출). PVN, subfornical기관 (SFO)와 편도체는 항상성, 식욕 / 갈증, 수면, 기억, 감정 반응을 조절하기위한 알려져 있으며,이 시범 연구의 대상 지역이다. 이 영역은 현미경 슬라이드에 뇌의 코로나 섹션을 수집하고, 중앙 II 수용체에 대한 특정 방사성 리간드와 함께 특정 억제제와 섹션을 처리하여 조사 하였다. 본 연구에서 제안 된 벤더와 함께 모든 물질 및 시약 나열 요오드 125는 모노 125 I로 정제 된 중앙 II 수용체 길항제, 사르코 1 이소류신 8 중앙 II (SI 중앙 II)을 방사성 표지하는 데 사용되는 이전 35 설명 된 바와 같이 HPLC 방법을 사용하여 -SI 중앙 II. 이러한 높은 비 활동 방사성 리간드의 사용은 X 선 필름에 방사성 표지 부분의 노출 된 후 낮은 중간 및 높은 수용체 밀도 영역의 가시화를 허용한다. 요오드 (125)는 특정 량의 공지 된 양을 함유하는 뇌 페이스트 표준 필름을 교정함으로써영역에 결합 중앙 II 수용체 정량화 할 수있다. 실험 연구에서, 피험자의 뇌에서 바인딩 중앙 II 수용체 대조군의 뇌에서와 비교 될 수있다. 이것은 중앙 II의 행동이 유전 적 조건, 표현형 이상, 질병 상태 또는 약물 치료에 대한 응답으로 변경할지 여부를 표시 할 수 있습니다. 이 기술은 다음 RAS의 조절 곤란과 연관된 질환을 치료하는 치료제의 개발에 적용 할 수있다. 해부학 적 해상도하지만 사이트를 수용체 결합을 식별하는 대안적인 기술은, 해리 상수 방사성 리간드 결합 친화도를 평가하기위한 농도 범위에 걸쳐 방사성 리간드와 인큐베이션 조직 균질 물로부터 유도 된 조직의 막 제제를 사용하여 검정 (K D를 바인딩 관심의 조직) 및 최대 바인딩 용량 (B 최대). 여기에 설명 된 프로토콜은 5 대 공동으로 세분화 될 수있다mponents : 수용체자가 방사선에 대한 조직 섹션을 준비; 수용체자가 방사선; 필름의 노출 및 개발; 조직학; 및 농도계 이미지 분석.

<table><tbody><tr><td>500 ml Plastic Beakers</td><td>Fisher</td><td>02-591-30</td><td></td></tr><tr><td>24 mm x 60 mm Coverslips</td><td>Fisher</td><td>22-050-25</td><td></td></tr><tr><td>Autoradiography Imaging Film 24 mm x 30 cm</td><td>Carestream-Biomax MR Film</td><td>891-2560</td><td></td></tr><tr><td>Bacitracin (from Bacillus licheniformis)</td><td>Sigma</td><td>B-0125</td><td></td></tr><tr><td>Cardboard Sheet 8 x 11</td><td>Crescent Illustration Board #201</td><td>201</td><td></td></tr><tr><td>Coplin Jars</td><td>Fisher Scientific</td><td>E94</td><td></td></tr><tr><td>Commercial hair dryers</td><td>Conair</td><td>Model SD6X</td><td></td></tr><tr><td>Disposable Culture Tubes</td><td>Fisher</td><td>14-961-26</td><td></td></tr><tr><td>EDTA (Disodium salt, Dihydrate)</td><td>USB Corporation</td><td>15-699</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Fisher</td><td>16-100-210&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Formulary Substitute for D-19 Developer</td><td>Photographers Formulary, Inc.&amp;nbsp;</td><td>01-0036</td><td></td></tr><tr><td>Glacial Acetic Acid</td><td>Fisher</td><td>A38 SI-212</td><td></td></tr><tr><td>Histoprep/OCT</td><td>Fisher</td><td>SH75-125D</td><td></td></tr><tr><td>Film Fixer</td><td>Kodak</td><td>5160320</td><td></td></tr><tr><td>Photo flo</td><td>Kodak</td><td>1464502</td><td></td></tr><tr><td>Losartan</td><td>Fisher/Tocris</td><td>37-985-0</td><td></td></tr><tr><td>MCID&amp;trade; Core 7.0</td><td>MCID</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Fisher</td><td>S271</td><td></td></tr><tr><td>Peel-A-Way slide grips</td><td>VWR</td><td>48440-003</td><td></td></tr><tr><td>Permount</td><td>Fisher</td><td>SP15-100</td><td></td></tr><tr><td>PD123319</td><td>Fisher</td><td>13-615-0</td><td></td></tr><tr><td>Premium Charged Slides, Fine Ground Edge</td><td>Premiere Microscope Slides</td><td>9308W</td><td></td></tr><tr><td>&lt;sup&gt;125&lt;/sup&gt;I Ligands</td><td>Perkin Elmer</td><td>NEX- 248</td><td></td></tr><tr><td>&lt;sup&gt;125&lt;/sup&gt;SI-Ang II&amp;nbsp;</td><td>George Washington University</td><td>Radioiodinated by Dr. Speth</td><td></td></tr><tr><td>Slide Mailers</td><td>Fisher Scientific</td><td>HS15986</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Dibasic Phosphate Anhydrous (Na&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO4)</td><td>Fisher</td><td>RDCS0750500</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Acetate (Anhydrous)</td><td>Fisher</td><td>BP333-500</td><td></td></tr><tr><td>Thionin&amp;nbsp;</td><td>Fisher</td><td>T409-25</td><td></td></tr><tr><td>X-Ray Casette (10 x 12)</td><td>Spectronics Corporation</td><td>Four Square</td><td></td></tr><tr><td>Xylene</td><td>Fisher&amp;nbsp;</td><td>X3P-1GAL</td><td></td></tr></tbody></table>

receptor autoradiography protocol for the localized visualization of angiotensin ii receptors

이 프로토콜은 중앙 II 수용체 수용체 방사 법적 매핑을 수행하기위한 특정한 방사성 리간드를 사용하여 쥐의 뇌에서 안지오텐신 II (중앙 II)에 대한 수용체 결합 패턴을 설명합니다. 조직 표본 채취 및 -80 ° C에 저장됩니다. 그라 이오 스탯은 coronally 섹션에 조직 (뇌)를 사용하고 충전 슬라이드에 섹션을 장착 해동. 슬라이드에 장착 된 조직 섹션은 중앙 II 수용체를 방사성 표지 125 I-SI-중앙 II에서 배양된다. 인접한 슬라이드 두 가지로 구분된다 : 수용체 포화 비 방사성 중앙 II의 농도 또는 존재하에 (NSP)를 &#39;비특이적 결합을&#39;1 중앙 II 수용체 아형 AT (1 R AT) 선택적 중앙 II 수용체 길항제 , 1 R 길항제 없음으로 &#39;결합되지 합계&#39;. 이 중앙 II 수용체 아형 AT (2 AT R)의 포화 농도의 길항제 (PD123319, 10 μM)도 incubati에 존재버퍼에 AT (1) R 하위 유형에 결합하는 125 I-SI-중앙 II를 제한합니다. 22 ° C가, NSP 슬라이드 10 μM PD123319과 로사 르탄에 노출되어 ~에서 30 분 사전 부화 중에 슬라이드 10 μM PD123319에 노출되는 &#39;바인딩 합계&#39;있다. 슬라이드는 &#39;결합 합계&#39;위한 PD123319의 존재하에 125 I-SI 중앙 II와 함께 배양하고, 분석 완충액에 NSP위한 PD123319과 로사 르탄, 여러 &#39;세척&#39;다음 완충액 및 물을 염과의 비를 제거한다 특히 방사성 리간드를 결합. 슬라이드는 전문 필름 카세트를 사용하여 다음자가 방사선 필름에 노출 타격 건조기를 사용하여 건조된다. 필름을 현상하고 이미지 독자적인 영상 시스템 및 스프레드 시트를 사용하여 시각적이고 정량적 농도계위한 컴퓨터로 스캐닝된다. 슬라이드의 추가 설정은 조직 학적 비교를 thionin 염색된다. 수용체자가 방사선을 사용하는 장점은 시각화하는 능력이다중앙 II 티슈 시험편의 단면 내의 시츄 수용체 및 해부학 인접한 조직 학적 기준 단면과 비교하여 조직의 영역을 식별한다.

레닌 - 안지오텐신 시스템의 대사 경로의 개요도 2에 설명되어있는도 1 (R 1 R AT 2 AT) 안지오텐신 II 수용체 아형에 직접 포커스에 나타낸다. (3) 디스플레이를 관상 뇌의 이동도 도 4에 도시 된 바와 같이 다음 소정의 125 I-시앙 II 농도를 사용하여 수용체자가 방사선 절차를 통해 실행된?...

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Receptor Autoradiography Protocol for the Localized Visualization of Angiotensin II Receptors

Here we present a protocol to describe the localization of angiotensin II Type 1 receptors in the rat brain by quantitative, densitometric, in vitro receptor autoradiography using an iodine-125 labeled analog of angiotensin II.

안지오텐신 II 수용체의 현지화 시각화에 대한 수용체자가 방사선 프로토콜

This protocol describes receptor binding patterns for Angiotensin II (Ang II) in the rat brain using a radioligand specific for Ang II receptors to ...

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Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Neuroscience

17.8K 조회수.  Nova Southeastern University. Here we present a protocol to describe the localization of angiotensin II Type 1 receptors in the rat brain by quantitative, densitometric, in vitro receptor autoradiography using an iodine-125 labeled analog of angiotensin II. 

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The NeuroStar TMS Device: Conducting the FDA Approved Protocol for Treatment of Depression

The Neuronetics NeuroStar Transcranial Magnetic Stimulation (TMS) System is a class II medical device that produces brief duration, pulsed magnetic fields. These rapidly alternating fields induce electrical currents within localized, targeted regions of the cortex which are associated with various physiological and functional brain changes.1,2,3
In 2007, O'Reardon et al., utilizing the NeuroStar device, published the results of an industry-sponsored, multisite, randomized, sham-stimulation controlled clinical trial in which 301 patients with major depression, who had previously failed to respond to at least one adequate antidepressant treatment trial, underwent either active or sham TMS over the left dorsolateral prefrontal cortex (DLPFC). The patients, who were medication-free at the time of the study, received TMS five times per week over 4-6 weeks.4
The results demonstrated that a sub-population of patients (those who were relatively less resistant to medication, having failed not more than two good pharmacologic trials) showed a statistically significant improvement on the Montgomery-Asberg Depression Scale (MADRS), the Hamilton Depression Rating Scale (HAMD), and various other outcome measures. In October 2008, supported by these and other similar results5,6,7, Neuronetics obtained the first and only Food and Drug Administration (FDA) approval for the clinical treatment of a specific form of medication-refractory depression using a TMS Therapy device (FDA approval K061053).
In this paper, we will explore the specified FDA approved NeuroStar depression treatment protocol (to be administered only under prescription and by a licensed medical profession in either an in- or outpatient setting).

In this article, we examine the methodology and considerations relevant to the FDA approved depression treatment protocol using the Neuronetics NeuroStar TMS device.

NeuroStar TMS 장치 : FDA를 실시는 우울증 치료 프로토콜을 승인

The Neuronetics NeuroStar Transcranial Magnetic Stimulation (TMS) System is a class II medical device that produces brief duration, pulsed magnetic ...

연구

신경과학

Automated Interactive Video Playback for Studies of Animal Communication

Video playback is a widely-used technique for the controlled manipulation and presentation of visual signals in animal communication. In particular, parameter-based computer animation offers the opportunity to independently manipulate any number of behavioral, morphological, or spectral characteristics in the context of realistic, moving images of animals on screen. A major limitation of conventional playback, however, is that the visual stimulus lacks the ability to interact with the live animal. Borrowing from video-game technology, we have created an automated, interactive system for video playback that controls animations in response to real-time signals from a video tracking system. We demonstrated this method by conducting mate-choice trials on female swordtail fish, Xiphophorus birchmanni. Females were given a simultaneous choice between a courting male conspecific and a courting male heterospecific (X. malinche) on opposite sides of an aquarium. The virtual male stimulus was programmed to track the horizontal position of the female, as courting males do in the wild. Mate-choice trials on wild-caught X. birchmanni females were used to validate the prototype's ability to effectively generate a realistic visual stimulus.

Video playback is a widely used technique in animal behavior. We created and evaluated a program that applies rules-based, interactive playback of 3-D computer animations in response to real-time, automated data on subject behavior.

동물 커뮤니케이션 연구를위한 자동화된 대화형 비디오 재생

Video playback is a widely-used technique for the controlled manipulation and presentation of visual signals in animal communication. In particular, ...

Spinal Cord Electrophysiology II: Extracellular Suction Electrode Fabrication

Development of neural circuitries and locomotion can be studied using neonatal rodent spinal cord central pattern generator (CPG) behavior. We demonstrate a method to fabricate suction electrodes that are used to examine CPG activity, or fictive locomotion, in dissected rodent spinal cords. The rodent spinal cords are placed in artificial cerebrospinal fluid and the ventral roots are drawn into the suction electrode. The electrode is constructed by modifying a commercially available suction electrode. A heavier silver wire is used instead of the standard wire given by the commercially available electrode. The glass tip on the commercial electrode is replaced with a plastic tip for increased durability. We prepare hand drawn electrodes and electrodes made from specific sizes of tubing, allowing consistency and reproducibility. Data is collected using an amplifier and neurogram acquisition software. Recordings are performed on an air table within a Faraday cage to prevent mechanical and electrical interference, respectively.

A demonstration of the fabrication and use of an extracellular suction electrode used to measure electrophysiological recordings of neonatal rodent spinal cords in vitro

척수 전기 생리학 II : 세포 흡입 전극 제작

Development of neural circuitries and locomotion can be studied using neonatal rodent spinal cord central pattern generator (CPG) behavior. We demonstrate ...

Nitropeptide Profiling and Identification Illustrated by Angiotensin II

Protein nitration is one of the most important post-translational modifications (PTM) on tyrosine residues and it can be induced by chemical actions of reactive oxygen species (ROS) and reactive nitrogen species (RNS) in eukaryotic cells. Precise identification of nitration sites on proteins is crucial for understanding the physiological and pathological processes related to protein nitration, such as inflammation, aging, and cancer. Since the nitrated proteins are of low abundance in cells even under induced conditions, no universal and efficient methods have been developed for the profiling and identification of protein nitration sites. Here we describe a protocol for nitropeptide enrichment by using a chemical reduction reaction and biotin labeling, followed by high resolution mass spectrometry. In our method, nitropeptide derivatives can be identified with high accuracy. Our method exhibits two advantages compared to the previously reported methods. First, dimethyl labeling is used to block the primary amine on nitropeptides, which can be used to generate quantitative results. Second, a disulfide bond containing NHS-biotin reagent is used for the enrichment, which can be further reduced and alkylated to enhance the detection signal on a mass spectrometer. This protocol has been successfully applied to the model peptide Angiotensin II in the current paper.

Proteomic profiling of tyrosine-nitrated proteins has been a challenging technique due to the low abundance of the 3-nitrotyrosine modification. Here we describe a novel approach for nitropeptide enrichment and profiling by using Angiotensin II as the model. This method can be extended for other in vitro or in vivo systems.

안지오텐신 II에 의해 설명 니트로 펩티드 프로파일링 및 식별

Protein nitration is one of the most important post-translational modifications (PTM) on tyrosine residues and it can be induced by chemical actions of ...

생화학

Visualizing Leukocyte Rolling and Adhesion in Angiotensin II-Infused Mice: Techniques and Pitfalls

Epifluorescence intravital video microscopy (IVM) of blood vessels is an established method to evaluate the activation of immune cells and their ability to role and adhere to the endothelial layer. Visualization of circulating cells by injection of fluorescent dyes or fluorophore-coupled antibodies is commonly used. Alternatively, fluorescent reporter mice can be used. Interactions of leukocytes, in particular lysozyme M+ (LysM+) monocytes, with the vessel wall play pivotal roles in promoting vascular dysfunction and arterial hypertension. We here present the technique to visualize and quantify leukocyte rolling and adhesion in carotid arteries in angiotensin II (AngII)-induced hypertension in mice by IVM.
The implantation of a catheter damages the vascular wall and leads to altered blood cell responses. We compared different injection techniques and administration routes to visualize leukocytes in a LysMCre+IRG+ mouse with widespread expression of red fluorescent protein and conditional expression of green fluorescent protein in LysM+ cells. To study LysM+ cell activation, we used AngII infused mice in which rolling and adhesion of leukocytes to the endothelium is increased. We either injected acridine orange using a jugular catheter or directly though the tail vein and compared the amount of rolling and adhering cells. We found that jugular catheter implantation per se increased the number of rolling and adhering LysM+ cells in sham-infused LysMCre+IRG+ mice compared to controls. This activation was augmented in AngII-infused mice. Interestingly, injecting acridine orange directly through the tail vein did not increase LysM+ cell adhesion or rolling in sham-infused mice. We thereby demonstrated the importance of transgenic reporter mice expressing fluorescent proteins to not interfere with in vivo processes during experimentation. Furthermore, tail vein injection of fluorescent tracers might be a possible alternative to jugular catheter injections.

This manuscript describes the use of transgenic reporter mice and different administration routes of fluorescent dyes in angiotensin II-induced hypertension using intravital video microscopy of blood vessels to evaluate the activation of immune cells and their ability to roll and adhere to the endothelium.

백혈구 롤링 Angiotensin II-주입 마우스에서 접착 시각화: 기술 및 함정

Epifluorescence intravital video microscopy (IVM) of blood vessels is an established method to evaluate the activation of immune cells and their ability ...

면역학 및 감염병학

Imaging of Estrogen Receptor-&alpha; in Rat Pial Arterioles using a Digital Immunofluorescent Microscope

Many of estrogen's effects on vascular reactivity are mediated through interaction with estrogen receptors 1, 2, 3. Although two sub-types exist (estrogen receptor -&alpha; and &beta;),estrogen receptor-&alpha; has been identified in both the smooth muscle and in endothelial cells of pial arterial segments using fluorescent staining combined with confocal laser scanning microscopy 4. Furthermore, ER-&alpha; is located in the nuclei and in the cytoplasm of rat basilar arteries 5. The receptors are abundant and fluoresce brightly, but clear visualization of discrete groups of receptors is difficult likely due to the numbers located in many cell layers of pial vessel segments. Additionally, many reports using immunohistochemical techniques paired with confocal microscopy poorly detail the requirements critical for reproduction of experiments 6. Our purpose for this article is to describe a simple technique to optimize the staining and visualization of ER-&alpha; using cross-sectional slices of pial arterioles obtain from female rat brains. We first perfuse rats with Evans blue dye to easily identify surface pial arteries which we isolate under a dissecting microscope. Use of a cryostat to slice 8 &mu;m cross sections of the arteries allows us to obtain thin vessel sections so that different vessel planes are more clearly visualized. Cutting across the vessel rather than use of a small vessel segment has the advantage of easier viewing of the endothelial and smooth muscle layers. In addition, use of a digital immunofluorescent microscope with extended depth software produces clear images of ten to twelve different vessel planes and is less costly than use of a confocal laser scanning microscope.

Imaging of Estrogen Receptor-&#945; in Rat Pial Arterioles using a Digital Immunofluorescent Microscope

The goal of this article is to demonstrate a method to optimize immunofluorescent detection of estrogen receptor-&#945; (ER&#945;) in rat pial arterial slices using a digital immunofluorescent microscope.

디지털 Immunofluorescent 현미경을 사용하여 쥐 Pial Arterioles에서 에스 트로겐 수용체 - α의 영상

Many of estrogen's effects on vascular reactivity are mediated through interaction with estrogen receptors 1, 2, 3. Although two sub-types exist (estrogen ...

생물학

Autoradiography as a Simple and Powerful Method for Visualization and Characterization of Pharmacological Targets

In vitro autoradiography aims to visualize the anatomical distribution of a protein of interest in tissue from experimental animals as well as humans. The method is based on the specific binding of a radioligand to its biological target. Therefore, frozen tissue sections are incubated with radioligand solution, and the binding to the target is subsequently localized by the detection of radioactive decay, for example, by using photosensitive film or phosphor imaging plates. Resulting digital autoradiograms display remarkable spatial resolution, which enables quantification and localization of radioligand binding in distinct anatomical structures. Moreover, quantification allows for the pharmacological characterization of ligand affinity by means of dissociation constants (Kd), inhibition constants (Ki) as well as the density of binding sites (Bmax) in selected tissues. Thus, the method provides information about both target localization and ligand selectivity. Here, the technique is exemplified with autoradiographic characterization of the high-affinity &#947;-hydroxybutyric acid (GHB) binding sites in mammalian brain tissue, with special emphasis on methodological considerations regarding the binding assay parameters, the choice of the radioligand and the detection method.

The method of autoradiography is routinely used to study binding of radioligands to tissue sections for determination of qualitative or quantitative pharmacology.

시각화 및 약리 대상의 특성에 대 한 간단 하 고 강력한 방법으로 autoradiography

In vitro autoradiography aims to visualize the anatomical distribution of a protein of interest in tissue from experimental animals as well as humans. The ...

Preparing a 68Ga-labeled Arginine Glycine Aspartate (RGD)-peptide for Angiogenesis

The &#945;v&#946;3 integrin is a heterodimeric adhesion molecule involved in tumor cell migration and angiogenesis. The integrin is overexpressed in angiogenic tumor endothelial cells, where it typically has a low concentration. This specific expression of &#945;v&#946;3 makes it a valid biomarker for antiangiogenic and imaging drugs. As a functional imaging modality, positron emission tomography (PET) provides information about biochemical and physiological changes in vivo, due to its unique high sensitivity at the nanomolar scale. Hence, radiometal-based PET radiopharmaceuticals have received great attention for the non-invasive quantification of tumor angiogenesis. This paper provides a systemic protocol to prepare a new radiometal-labeled peptide for the evaluation of angiogenesis. This protocol contains information about radiochemical reliability, lipophilicity, cell uptake, serum stability, and pharmacokinetic properties. The 68Ga-RGD-peptide is one of the representative PET ligands toward &#945;v&#946;3 integrin. Here, we introduce a protocol to prepare a 68Ga-RGD-peptide and the evaluation of its biological efficacy.

Preparing a 68Ga-labeled Arginine Glycine Aspartate RGD-peptide for Angiogenesis

The &#945;v&#946;3 integrin is a type of adhesion protein that is highly expressed on activated endothelial cells undergoing angiogenesis. Thus, evaluating the integrity of the integrin is of great interest in oncology. Here, we introduce a method to prepare 68Ga-labeled radiopeptides and a method to assess its biological effectiveness.

68가 표시 된 아르기닌 글리신 Aspartate (RGD) 준비-신생에 대 한 펩 티 드

The &#945;v&#946;3 integrin is a heterodimeric adhesion molecule involved in tumor cell migration and angiogenesis. The integrin is overexpressed in ...

의학

Live Cell Imaging and 3D Analysis of Angiotensin Receptor Type 1a Trafficking in Transfected Human Embryonic Kidney Cells Using Confocal Microscopy

Live-cell imaging is used to simultaneously capture time-lapse images of angiotensin type 1a receptors (AT1aR) and intracellular compartments in transfected human embryonic kidney-293 (HEK) cells following stimulation with angiotensin II (Ang II). HEK cells are transiently transfected with plasmid DNA containing AT1aR tagged with enhanced green fluorescent protein (EGFP). Lysosomes are identified with a red fluorescent dye. Live-cell images are captured on a laser scanning confocal microscope after Ang II stimulation and analyzed by software in three dimensions (3D, voxels) over time. Live-cell imaging enables investigations into receptor trafficking and avoids confounds associated with fixation, and in particular, the loss or artefactual displacement of EGFP-tagged membrane receptors. Thus, as individual cells are tracked through time, the subcellular localization of receptors can be imaged and measured. Images must be acquired sufficiently rapidly to capture rapid vesicle movement. Yet, at faster imaging speeds, the number of photons collected is reduced. Compromises must also be made in the selection of imaging parameters like voxel size in order to gain imaging speed. Significant applications of live-cell imaging are to study protein trafficking, migration, proliferation, cell cycle, apoptosis, autophagy and protein-protein interaction and dynamics, to name but a few.

Here we present a protocol to image cells expressing green fluorescent protein-tagged angiotensin type 1a receptors during endocytosis initiated by angiotensin II treatment. This technique includes labeling lysosomes with a second fluorescent marker, and then utilizing software to analyze the co-localization of receptor and lysosome in three dimensions over time.

공 초점 현미경을 사용하여 트랜 인간 배아 신장 세포의 라이브 셀 이미징 및 3D 분석 안지오텐신 수용체의 유형 (1A)의 인신 매매

Live-cell imaging is used to simultaneously capture time-lapse images of angiotensin type 1a receptors (AT1aR) and intracellular compartments in ...

Direct Detection of Isolevuglandins in Tissues Using a D11 scFv-Alkaline Phosphatase Fusion Protein and Immunofluorescence

Isolevuglandins (IsoLGs) are highly reactive gamma ketoaldehydes formed from H2-isoprostanes through lipid peroxidation and crosslink proteins leading to inflammation and various diseases including hypertension. Detection of IsoLG accumulation in tissues is crucial in shedding light on their involvement in the disease processes. However, measurement of IsoLGs in tissues is extremely difficult, and currently available tools, including mass spectrometry analysis, are laborious and extremely expensive. Here we describe a novel method for in situ detection of IsoLGs in tissues using alkaline phosphatase-conjugated D11 ScFv and a recombinant phage-display antibody produced in E. coli by immunofluorescent microscopy. Four controls were used for validating the staining: (1) staining with and without D11, (2) staining with bacterial periplasmic extract with the alkaline phosphatase linker, (3) irrelevant scFV antibody staining, and (4) competitive control with IsoLG prior to the staining. We demonstrate the effectiveness of the alkaline phosphatase-conjugated D11 in both human and mouse tissues with or without hypertension. This method will likely serve as an important tool to study the role of IsoLGs in a wide variety of disease processes.

This article provides a detailed methodology for the measurement of isolevuglandins in tissues by immunofluorescence using alkaline phosphatase-conjugated ScFv D11 antibody. Hypertension models in both mice and humans are used to explain the step-by-step procedures and fundamental principles associated with isolevuglandin measurement in tissue samples.

D11 scFv-알칼리성 포스파타제 융합 단백질 및 면역형광을 이용한 조직 내 이솔레부글란딘의 직접 검출

Isolevuglandins (IsoLGs) are highly reactive gamma ketoaldehydes formed from H2-isoprostanes through lipid peroxidation and crosslink proteins leading to ...