이 작품은 독일 Forschungsgemeinschaft (SFB 656, 뮌스터, 독일, 프로젝트 C7 &amp; C6)와 IZKF 뮌스터 (코어 단위 SMAP)에 의해 지원되었다. 저자는 트룩 반 르, 앤 Kanzog, 유트 NEUGEBAUER, Wiebke Gottschlich 및 radiotracers 생산을위한 우수한 기술 지원과 다니엘 BURKERT와 스벤 Fatum에 대한 로마 Priebe에 감사합니다.

1. 기증자의 장기 복구 <ol><li> 정위 현미경, 8-10 주 된 쥐 (기증자와받는 사람의 체중이 일치해야합니다)의 기록 중량을 설정합니다. </li><li> 기증자 쥐 (루이스 브라운 노르웨이 F1, LBN F1)은 산소 / isoflurane을 흡입 (isoflurane을 4 % / 2 L / 분 산소)를 사용하여 마취. 2-2.5 %로 isoflurane을 낮추는 방법으로 마취를 유지합니다. </li><li> 수술 패드에 마취 쥐를 놓습니다. 패드에 접착 테이프를 가진 쥐의 사지를 고정하고 쥐의 눈에 안과 연고 (Bepanthen, 바이엘)을 적용합니다. </li><li> 면도 쥐의 복부를 소독하고 치골에서 간 꼬리 국경 복부 정중선 절개를 수행합니다. 주의 깊게 오른쪽으로 대장으로 이동하여 왼쪽 신장과 혈관을 노출합니다. 왼쪽 신장에 거즈의 얇은 시트를 배치하고 건조를 방지하기 위해 예열 등장 식염수로 적시십시오. </li><li> 조심스럽게 (뒤몽 각도 팁 집게로 지방 조직을 해부 몬트 SS-45 집게 이녹스 의료, 파인 과학 도구, cat.no. 11203-25) 좌측 요관을 포위. 요관과의 직접적인 접촉을 피 대신에, 충분한 주변의 지방 조직으로 동원. </li><li> 뒤몽 각도 팁 집게를 사용하여 신장 동맥에서 좌측 신장 정맥을 분리합니다. 두 선박의 모든 지방과 결합 조직을 제거하고 부신과 고환 혈관을 부식. </li><li> 각각 왼쪽 신장 동맥과 정맥에 이상과 접합 아래의 대동맥과 하대 정맥 (IVC)를 해부하고, 모든 나가는 동맥을 부식. </li><li> 장간막 동맥 근처에 최대한의 왼쪽 신장 동맥 위에 미세 클램프 (마이크로 Serrefines, 파인 과학 도구, cat.no. 18055-04)와 부신 대동맥 클램프. 수술 실크를 사용하여 infrarenal 대동맥 (5-0, Vömel, 예술 아니오. 14739) 왼쪽 신장 동맥 아래 약 5mm를 결찰. </li><li> 수술 실크 infrarenal IVC (5-0, Vömel)을 결찰하고, 부신 IVC 클램프미세 클램프 (마이크로 Serrefines, 파인 과학 도구, cat.no. 18055-03). </li><li> 좋은 가위 (- ToughCut 스트레이트 11.5 cm, 파인 과학 도구, cat.no. 14058-11 아이리스 가위)를 사용하여 가능한 한 가깝게 IVC에 신장 정맥을 잘라. </li><li> 천천히 삽입하여 2 ㎖ 얼음처럼 차가운 HTK 관류 용액 (CUSTODIOL HTK, 프란즈 쾰러 케미)와 현장에서 신장을 붓는다 canula (Microlance 3 27G ¾, BD, cat.no. 302200) infrarenal 대동맥합니다. 확인하는 신장 색상 변경 (현재 올리브 색을 칠한). </li><li> 먼저, 다음, infrarenal 대동맥 부신 대동맥을 절개하고 최대한 가까이 방광에 마지막으로 요관. </li><li> 얼음 HTK 관류 용액에 요관 및 저장과 함께 신장과 혈관 공급 장치를 제거합니다. </li><li> 혈관 클램프 및 마취 마음의 연속 절단을 제거하여 기증자의 쥐를 안락사. </li></ol> 2. 받는 사람 준비 및 이식을TION <ol><li> 정위 현미경, 쥐의 기록 중량을 설정합니다. </li><li> isoflurane을 4 %를 사용하여받는 사람 쥐 (루이스)를 마취. 2-2.5 %로 isoflurane을 낮추는 방법으로 마취를 유지합니다. </li><li> 수술 패드에 마취 쥐를 놓습니다. 패드에 접착 테이프를 가진 쥐의 사지를 고정하고 쥐의 눈에 안과 연고를 적용합니다. 직장 온도 센서와 온난화 패드를 사용하여 모니터 및 제어 체온. 수술하는 동안 반복적으로 온도, 호흡과 동물의 심장 박동을 제어합니다. </li><li> 면도 복부를 소독하고 치골에서 간 꼬리 국경 복부 정중선 절개를 수행합니다. 피부 외상을 최소화하기 위해 메스 forcutting에게 피부를 사용합니다. 오른쪽에 소장을 이동하여 왼쪽 신장과 혈관을 노출합니다. </li><li> 조심스럽게 뒤몽 각도 팁 집게와 면봉을 사용하여 신장 캡슐을 제거합니다. </li><li> 신장에 가까운 왼쪽 신장 동맥, 정맥과 요관을 막다수술 실 (4-0 Mersilene, ETHICON, 고양이. 아니. EH6732H)를 사용하여 두 ligations와 종자의 배꼽. 만 신장 종자의 배꼽을 떠나는 신장의 소비세 큰 부분. 면봉 잘라 표면을 청소하고 출혈을 확인합니다. 필요한 경우 다른 합자를 추가합니다. </li><li> 조심스럽게 면봉 꼬리 사이트에 infrarenal 대동맥과 하대의 맥을 덮고있는 결합 조직을 통해 퉁명스럽게 해부. </li><li> 뒤몽 각도 팁 집게를 사용 infrarenal 대동맥과 대정맥에서 눈에 띄는 신경을 분리합니다. </li><li> 먼저 고환 혈관의 분기 아래에, 그리고 일반적인 장골 혈관의 분기 위의 두 번째 하나를 조심스럽게 두 2-4mm 길이 구멍을 형성 infrarenal 대동맥과 대정맥 사이의 결합 조직 시트를 해부. 사이 iliolumbar 동맥과 정맥을 부식. </li><li> 두 구멍의 각을 통해, 하나의 수술 실 (ETHICON, 고양이 no.EH6665E. Mersilene 0)를 그립니다. 이 스레드 infrarenal 당겨 사용부드럽게 지느러미 사이트에 분기 혈관에 대한 액세스를 얻을 수있는 동물의 우측 대동맥과 대정맥. 두 구멍 사이의 이러한 혈관 중 하나를 부식하고 이후 수술 스레드를 제거합니다. </li><li> 다음으로, 대동맥과 상 오프닝에서 시작하여 상부 개구부 (마이크로 Serrefines에서 대정맥으로 끝나는 개의 미세 클램프 (마이크로 Serrefines, 파인 과학 도구, cat.no. 18055-04)의 방향으로 응용 프로그램에 의해 대동맥과 IVC를 막다 , 파인 과학 도구, cat.no. 18055-03). </li><li> 그 후 조심스럽게 피어스 바늘 대동맥의 고립 된 부분의 위쪽 끝 (Microlance 3 27G ¾, BD, cat.no. 302200)는 고급 스프링 가위 (Vannas 봄 가위의 아래쪽 블레이드를 삽입 - 3mm 블레이드, 미세 과학 천자 구멍을 통해 도구 cat.no 15000-00)과 짧은 세로 절개를 수행합니다. 남아있는 혈액을 제거하는 얼음처럼 차가운 HTK 관류 용액으로 격리 된 대동맥을 세척합니다. </li><li> 마찬가지로,주의 깊게 관통바늘로 대정맥의 절연 부분의 하단 끝은 천자 구멍을 통해 좋은 봄 가위의 아래쪽 블레이드를 삽입하고 곧 대동맥 절개 아래에 끝나는 세로 절개를 수행합니다. 다시 남아있는 혈액을 제거하는 용기를 세척하십시오. </li><li> 스토리지 솔루션에서 신장 이식을 제거합니다. 왼쪽 신장의 이전 위치를 아래에 배치하고 방향이 올바른지 확인합니다. </li><li> 이식 신장 동맥의 방향을 확인하고 꼬임이 없는지 확인합니다. 다음 이식에 거즈의 얇은 시트를 배치하고 냉각하는 얼음처럼 차가운 HTK 관류 솔루션을 적시고 건조를 방지 할 수 있습니다. </li><li> 위의 첫 번째, 다음의 하단에 - 이식 신장 동맥 수술 실 (.. Ethilon 9-0, ETHICON, 고양이없이 2809G)와에 열립니다하는 대동맥 조각의 부신 부분의 구멍을 흥분시키는 대동맥 절개. 수술 스레드를 사용하여 연속 봉합 시계 방향으로 절개를 닫습니다(Ethilon 9-0), 뒤몽 각도 팁 포셉과 곡선 Castroviejo 바늘 홀더 (파인 과학 도구, 고양이. No. 12061-01). 그 후, 시계 반대 방향으로 두 번째 연속 봉합을 통해 결합 조직에 첫 번째 봉합사를 다룹니다. 지금 이식의 대동맥 부분 만 아래 부분 폐쇄 남아 있습니다. 정기적으로 얼음처럼 차가운 HTK 관류 솔루션 이식을 냉각. </li><li> 봉합의 압박감과 무결성을 검증뿐만 아니라 이식에 남아있는 혈액을 제거 이식 대동맥 조각의 오픈 엔드에 삽입 무딘 바늘을 통해 얼음처럼 차가운 HTK 관류 용액 1 ㎖로 이식을 붓는다. 그 후, 수술 실크 대동맥 조각 (5-0, Vömel)의 열린 끝을 결찰. </li><li> 이식 신장 정맥의 방향을 확인하고 꼬임이 없는지 확인합니다. </li><li> 대정맥의 절개의 하단에 다음, 상단의 첫 번째 - 외과 실 (Ethilon 9-0)와 이식 혈관의 개통을 흥분시키는. 절개를 닫습니다수술 실 (Ethilon 9-0), 뒤몽 각도 팁 포셉과 곡선 Castroviejo 바늘 홀더를 사용하여 연속 봉합으로 시계 방향으로 돌립니다. 정기적으로 얼음처럼 차가운 HTK 관류 솔루션 이식을 냉각. </li><li> 맨 대정맥 클램프로 시작, 미세 클램프를 제거 반대. 마지막 대동맥 클램프를 제거한 후 조심스럽게 면봉 결국 가벼운 출혈을 중지합니다. 몇 초 후에 이식은 장미 빛 착색 설정하고, uretric 수축이 나타납니다. </li><li> 받는 사람`의 방광에 이식의 요관 삽입 신중 Vannas 봄 가위로 자른다 (학생 Vannas 봄 가위 직선, 파인 과학 도구, cat.no. 91500-09를 사용하여 방광의 상단에있는 근육의 작은 패치를 제거한다 ). 그런 다음 뒤몽 각도 팁 집게를 사용하여 이식 요관에서 주변 조직을 (주로 지방)를 제거합니다. 따라서 신중하게 요관의 끝을 잡고 조심스럽게 주변의 지방, 결합 조직을 분리하고 내장 혈관 아프로반대 방향으로 잡아 당겨 m. 수술 실 (Prolene으로 6-0, ETHICON, 고양이. No. 8697H)의 끝에 uretric 끝을 흥분시키는과 연결된 바늘로 방광의 이전 준비 상단을 관통. 방광을 통해 요관을 당겨 두 번째 천공을 통해 기지를 종료합니다. </li><li> 수술 실 (Ethilon 9-0)와 방광의 상단에 조직을 분리 요관에서 이전을 흥분시키는. 첨부 외과 스레드와 요관의 끝을 잘라 조심스럽게 아래에서 밀어 방광에 다시 요관을 당깁니다. 그 후, 수술 실 (Ethilon 9-0)와 두 번째 방광 천자를 닫습니다. </li><li> 수술 봉합 실 (Mersilene 0)를 사용하여 두 개의 연속하지만 별도의 봉합하여 복벽과 피부를 닫습니다. Pividon 요오드를 사용하여 상처를 소독하고 상처의 통증을 제어하기 위해 수술 후 3 일 동안 부 프레 노르 핀 (㎏ / BW / 입찰 당 0.1 밀리그램) SC를 관리 할 수​​ 있습니다. </li></ol> 3. 영상 동종 이식 거부<ol><li> isoflurane을 2-2.5 %를 사용하여 공복 쥐를 마취. </li><li> 30 MBq FDG (0.1에서 30 MBq FDG ML 0.9 % 염화나트륨)는 24 G 카테터를 (브라운, Introcan, 4252500-01)를 사용하여 측면 꼬리 정맥을 catheterizing을 통해 IV를 관리하고 있습니다. 그 후, 0.9 ML 0.9 % 염화나트륨 용액으로 카테터를 제거. </li><li> 시간당 0.9 % 염화나트륨 용액 1 ㎖의 정맥 주사로 스캔 수화물 동물의 시작할 때까지 마취없이 고정 장치에서 쥐를 남겨주세요. </li><li> 스캔이 시작되기 전에 즉시 isoflurane을 2 %를 사용하여 다시 마취 쥐. </li><li> 높은 해상도 마취 쥐를 놓고 멀티 와이어 챔버 기반의 동물 PET 카메라 quadHIDAC (옥스포드 양전자 시스템 주식 회사, 옥스포드, UK). PET 스캐너의 공간 분해능은 1.0 mm이며, 전체 FOV (직경 165 mm의 축 방향 길이 280 ㎜)에 상수이다. 펄스 맥박 산소와 직장 온도 센서 및 제어 마취를 사용하여 스캔하는 동안 모니터 및 제어 체온. </li><li> 60m에 대해 동적 획득을 시작FDG의 신장 배설로 인해 신장의 추적 축적을 줄이기 위해 FDG 주입 후 180 분을 시작합니다. </li><li> 신장 실질의 식별을 위해 18 F-클리어런스 5의 계산을위한 스캐너에 쥐의 위치를 이동하지 않고 18 F-불소 IV 5 MBq을 적용하고 60 분 후 즉시 18 F-불소 주입 다른 PET 스캔을 수행합니다. 두 검사에서 이미지를 재구성. 2 분 신장 피질의 주위에 18 F-불소 주입 (관류 상) 한 후 재구성 된 이미지를 수동으로 관심 볼륨 (VOI)을 추적하고 FDG의 이미지에 VOI를 전송합니다. 조심스럽게 VOI에서 신장 골반이 제외 된 금액입니다. 두 검사에서 이미지를 재구성하고 수동 신장 피질 주변 관심 볼륨 (VOI)을 추적. 목록 모드 데이터는 0.4 × 0.4 × 0.4 mm 3 복셀 크기의 이미지로 재구성 하였다. 조심스럽게 VOI에서 신장 골반이 제외 된 금액입니다. </li><li> 비 O 님의 FDG 섭취를 계산F 총 수와 볼륨 및 주입 용량 (% ID)의 비율을 계산합니다. 우리는 이미지 분석을위한 MATLAB (R2011b 버전, 매스 웍스, 틱, MA, USA)와 단층 영상 (TIM) 버전 2.8을 사용했다. </li></ol>

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	<li>Wu, O., Levy, A. R., Briggs, A., Lewis, G., Jardine, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+rejection+and+chronic+nephropathy:+a+systematic+review+of+the+literature.">Acute rejection and chronic nephropathy: a systematic review of the literature.</a> Transplantation. 87, 1330-1339 (2009).</li><li>Miller, B. F., Gonzales, E., Wilchins, L. J., Nathan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kidney+transplantation+in+the+rat.">Kidney transplantation in the rat.</a> Nature. 194, 309-310 (1962).</li><li>Reuter, S., Schn&#246;ckel, U., Schr&#246;ter, R., Schober, O., Pavenst&#228;dt, H., Sch&#228;fers, M., Gabri&#235;ls, G., Schlatter, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-invasive+imaging+of+acute+renal+allograft+rejection+in+rats+using+small+animal+F-FDG-PET.">Non-invasive imaging of acute renal allograft rejection in rats using small animal F-FDG-PET.</a> PLoS. One. 4, e5296 (2009).</li><li>Reuter, S., Schn&#246;ckel, U., Edemir, B., Schr&#246;ter, R., Kentrup, D., Pavenst&#228;dt, H., Schober, O., Schlatter, E., Gabri&#235;ls, G., Sch&#228;fers, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Potential+of+noninvasive+serial+assessment+of+acute+renal+allograft+rejection+by+18F-FDG+PET+to+monitor+treatment+efficiency.">Potential of noninvasive serial assessment of acute renal allograft rejection by 18F-FDG PET to monitor treatment efficiency.</a> J. Nucl. Med. 51, 1644-1652 (2010).</li><li>Schn&#246;ckel, U., Reuter, S., Stegger, L., Schlatter, E., Sch&#228;fers, K. P., Hermann, S., Schober, O., Gabri&#235;ls, G., Sch&#228;fers, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+18F-fluoride+small+animal+PET+to+noninvasively+assess+renal+function+in+rats.">Dynamic 18F-fluoride small animal PET to noninvasively assess renal function in rats.</a> Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 35, 2267-2274 (2008).</li><li>Grabner, A., Schn&#246;ckel, U., Kentrup, D., Sch&#228;fers, M., Reuter, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strategies+for+Non-Invasive+Molecular+Imaging+of+Acute+Allograft+Rejection+by+Gamma+Scintigraphy+and+Positron+Emission+Tomography.">Strategies for Non-Invasive Molecular Imaging of Acute Allograft Rejection by Gamma Scintigraphy and Positron Emission Tomography.</a> Curr. Radiopharm. 4, 10-23 (2011).</li><li>Racusen, L. C., Solez, K., Colvin, R. B., Bonsib, S. M., Castro, M. C., Cavallo, T., Croker, B. P., Demetris, A. J., Drachenberg, C. B., Fogo, A. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Banff+97+working+classification+of+renal+allograft+pathology.">The Banff 97 working classification of renal allograft pathology.</a> Kidney Int. 55, 713-723 (1999).</li><li>Edemir, B., Reuter, S., Borgulya, R., Schr&#246;ter, R., Neugebauer, U., Gabri&#235;ls, G., Schlatter, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+rejection+modulates+gene+expression+in+the+collecting+duct.">Acute rejection modulates gene expression in the collecting duct.</a> J. Am. Soc. Nephrol. 19, 538-546 (2008).</li><li>Velic, A., Gabri&#235;ls, G., Hirsch, J. R., Schr&#246;ter, R., Edemir, B., Paasche, S., Schlatter, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+rejection+after+rat+renal+transplantation+leads+to+downregulation+of+Na++and+water+channels+in+the+collecting+duct.">Acute rejection after rat renal transplantation leads to downregulation of Na+ and water channels in the collecting duct.</a> Am. J. Transplant. 5, 1276-1285 (2005).</li><li>Reuter, S., Velic, A., Edemir, B., Schr&#246;ter, R., Pavenst&#228;dt, H., Gabri&#235;ls, G., Bleich, M., Schlatter, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protective+role+of+NHE-3+inhibition+in+rat+renal+transplantation+undergoing+acute+rejection.">Protective role of NHE-3 inhibition in rat renal transplantation undergoing acute rejection.</a> Pflugers Arch. 456, 1075-1084 (2008).</li></ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

FDG-PET 영상은 급성 거부 반응의 진단을위한 새로운 옵션입니다. 때문에 비 침습적 특정 성격, FDG-PET 코어 생검에 의한 고전적인 진단에 비해 장점이다. 생검, FDG-PET 분석은 전체 이식의 제한된 샘플 크기는 대조적으로. 또한, 하나의 항 응고 치료에 환자에 적용 할 수 있습니다, 하나는 반복 처리 효율 4를 모니터링하는 예를 들어 PET 조치를 수행 할 수 있습니다. 또한, 우리는 이미 AR,...

<table><tbody><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Equipment&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>Mathieu Needle Holder - 14 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>12010-14</td><td></td></tr><tr><td>Castroviejo Micro Needle Holder - 9 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>12061-01</td><td></td></tr><tr><td>Surgical Scissors - Sharp_Blunt</td><td>Fine Science Tools</td><td>14001-12</td><td></td></tr><tr><td>Iris Scissors - ToughCut Straight 11.5 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>14058-11</td><td></td></tr><tr><td>Student Vannas Spring Scissors </td><td>Fine Science Tools</td><td>91500-09</td><td></td></tr><tr><td>Vannas Spring Scissors - 3 mm Blades</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-00</td><td></td></tr><tr><td>Student Tissue Forceps - 1x2 Teeth 12 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>91121-12</td><td></td></tr><tr><td>Dumont SS-45 Forceps - Inox Medical</td><td>Fine Science Tools</td><td>11203-25</td><td></td></tr><tr><td>Micro-Serrefine Clip Applicator with Lock</td><td>Fine Science Tools</td><td>18056-14</td><td></td></tr><tr><td>Micro-Serrefine 6 mm x 1 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>18055-03</td><td></td></tr><tr><td>Micro-Serrefine 4 mm x 0.75 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>18055-04</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Reagent&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>Isoflurane (&lt;em&gt;e.g.&lt;/em&gt; Forene 100% v/v)</td><td>Abott</td><td></td><td></td></tr><tr><td>cutane antiseptic (&lt;em&gt;e.g.&lt;/em&gt; Octeniderm) </td><td>Sch&amp;#252;lke</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Povidone Iodine (&lt;em&gt;e.g.&lt;/em&gt; Betaisodona)</td><td>Mundipharma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ophthalmic ointment (&lt;em&gt;e.g.&lt;/em&gt; Bepanthen)</td><td>Bayer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Buprenorphin (&lt;em&gt;e.g.&lt;/em&gt; Temgesic)</td><td>RB Pharmaceuticals</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HTK perfusion solution (&lt;em&gt;e.g.&lt;/em&gt; CUSTODIOL HTK)</td><td>Dr. Franz K&amp;#246;hler Chemie</td><td></td><td></td></tr><tr><td>surgical thread Mersilene 0</td><td>Ethicon</td><td>EH6665E</td><td></td></tr><tr><td>surgical thread Mersilene 4-0</td><td>Ethicon</td><td>EH6732H</td><td></td></tr><tr><td>surgical thread Prolene 6-0</td><td>Ethicon</td><td>8697H</td><td></td></tr><tr><td>surgical thread Ethilon 9-0</td><td>Ethicon</td><td>2809G</td><td></td></tr><tr><td>surgical silk 5-0</td><td>V&amp;#246;mel</td><td>14739</td><td></td></tr><tr><td>Canula (&lt;em&gt;e.g.&lt;/em&gt; Microlance 3, 27G &amp;#190;)</td><td>BD</td><td>302200</td><td></td></tr></tbody></table>

non-invasive imaging of acute allograft rejection after rat renal transplantation using 18f-fdg pet

말기 신장 질환 환자의 수, 신장 이식 수혜자의 수는 지속적으로 증가한다. 급성 세포 동종 이식 거부 (AR)의 에피소드 장기 이식 생존을위한 부정적인 예후 인자이며, 적시에 진단 이식 기능 1 중요합니다. 현재, AR은 확실히 침략 방법으로, 이식 부상 또는 손실이 상당한 위험을 드러낸다, 코어 생검에 의해 진단 할 수 있습니다. 또한, 생검은 AR이 초점 또는 누덕 누덕 기운 경우 위음성 결과를 초래할 수 있습니다 항응고제 약물과이 기술의 제한된 샘플링 사이트를 복용하는 환자에서 가능하지 않습니다. 결과적으로, 이것은 종종 다양한 이식 모델의 사용을 포함하여 동물에서 수행해야하는 새로운 AR 탐지 방법에 대한 지속적인 검색에 상승했다. 60 년대 쥐의 신장 이식 대해 조사를 위해 잘 확립 된 실험 방법이기 때문에AR 2 ATION 및 분석. 또한 작은 동물 양전자 방출 단층 촬영 (PET)은 동종 uninephrectomized 쥐의 신장 이식 모델에서 AR을 평가하고 비 침습, 특정의 새로운 옵션으로 이식 FDG-PET 영상을 제안하는 18 F-fluorodeoxyglucose (FDG)를 사용하여에 우리는 여기에 존재 인간의 상황을 3도 AR과 조기 진단. 또한,이 방법은 이식 거부 4 모니터링을 개선하기 위해 후속 적용 할 수 있습니다.

조직학 거절의 심각도는 염증의 정도에 의해 반영되는 반면 AR 백혈구 동안, 즉, 주로 T 림프구가 이식으로 모집하고 있습니다. 여기에 묘사주기 - 산성 - 쉬프 (PAS) 염색에 (그림 1), 신장 이식은 AR, 즉 사구 체 신염, tubulitis, endothelialitis 및 이식 침투 (그림 1, ATX POD4) (POD = 수술 일) 상당한 조직 학적 흔적을 보여줍니다 거부의 징후 기본 컨트롤 신장...

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Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

우리는 여기에서 비 침습적 18F-fluorodeoxyglucose와 양전자 방출 단층 촬영을 이용하여 급성 이식 거부 반응을 평가하기 위해 쥐의 신장 이식 모델을 제시한다.

쥐 신장 이식 후 급성 동종 이식 거부의 비 침습 이미징 사용<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG PET

The number of patients with end-stage renal  disease, and the number of kidney allograft recipients continuously increases.  Episodes of acute cellular ...

non-invasive-imaging-acute-allograft-rejection-after-rat-renal

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Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

Human Biology

Osmoregulation and Excretion

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16.9K 조회수.  University of Münster. 우리는 여기에서 비 침습적 18F-fluorodeoxyglucose와 양전자 방출 단층 촬영을 이용하여 급성 이식 거부 반응을 평가하기 위해 쥐의 신장 이식 모델을 제시한다.

비디오: Non-invasive Imaging of Acute Allograft Rejection after Rat Renal Transplantation Using 18F-FDG PET

PET and MRI Guided Irradiation of a Glioblastoma Rat Model Using a Micro-irradiator

For decades, small animal radiation research was mostly performed using fairly crude experimental setups applying simple single-beam techniques without the ability to target a specific or well-delineated tumor volume. The delivery of radiation was achieved using fixed radiation sources or linear accelerators producing megavoltage (MV) X-rays. These devices are unable to achieve sub-millimeter precision required for small animals. Furthermore, the high doses delivered to healthy surrounding tissue hamper response assessment. To increase the translation between small animal studies and humans, our goal was to mimic the treatment of human glioblastoma in a rat model. To enable a more accurate irradiation in a preclinical setting, recently, precision image-guided small animal radiation research platforms were developed. Similar to human planning systems, treatment planning on these micro-irradiators is based on computed tomography (CT). However, low soft-tissue contrast on CT makes it very challenging to localize targets in certain tissues, such as the brain. Therefore, incorporating magnetic resonance imaging (MRI), which has excellent soft-tissue contrast compared to CT, would enable a more precise delineation of the target for irradiation. In the last decade also biological imaging techniques, such as positron emission tomography (PET) gained interest for radiation therapy treatment guidance. PET enables the visualization of e.g., glucose consumption, amino-acid transport, or hypoxia, present in the tumor. Targeting those highly proliferative or radio-resistant parts of the tumor with a higher dose could give a survival benefit. This hypothesis led to the introduction of the biological tumor volume (BTV), besides the conventional gross target volume (GTV), clinical target volume (CTV), and planned target volume (PTV).
At the preclinical imaging lab of Ghent University, a micro-irradiator, a small animal PET, and a 7 T small animal MRI are available. The goal was to incorporate MRI-guided irradiation and PET-guided sub-volume boosting in a glioblastoma rat model.

In the past, small animal irradiation was usually performed without the ability to target a well-delineated tumor volume. The goal was to mimic the treatment of human glioblastoma in rats. Using a small animal irradiation platform, we performed MRI-guided 3D conformal irradiation with PET-based sub-volume boosting in a preclinical setting.

애완 동물 및 MRI 유도 세포종 쥐 모델의 방사선 마이크로 irradiator를 사용 하 여

For decades, small animal radiation research was mostly performed using fairly crude experimental setups applying simple single-beam techniques without ...

연구

암 연구학

Non-Invasive PET/MR Imaging in an Orthotopic Mouse Model of Hepatocellular Carcinoma

Preclinical experimental models of hepatocellular carcinoma (HCC) that recapitulate human disease represent an important tool to study tumorigenesis and evaluate novel therapeutic approaches. Non-invasive whole-body imaging using positron emission tomography (PET) provides critical insights into the in vivo characteristics of tissues at the molecular level in real-time. We present here a protocol for orthotopic HCC xenograft creation with and without hepatic artery ligation (HAL) to induce tumor hypoxia and the assessment of their tumor metabolism in vivo using [18F]Fluoromisonidazole ([18F]FMISO) and [18F]Fluorodeoxyglucose ([18F]FDG) PET/magnetic resonance (MR) imaging. Tumor hypoxia could be readily visualized using the hypoxia marker [18F]FMISO, and it was found that the [18F]FMISO uptake was higher in HCC mice that underwent HAL than in the non-HAL group, whereas [18F]FDG could not distinguish tumor hypoxia between the two groups. HAL tumors also displayed a higher level of hypoxia-inducible factor (HIF)-1&#945; expression in response to hypoxia. Quantification of HAL tumors showed a 2.3-fold increase in [18F]FMISO uptake based on the standardized value uptake (SUV) approach.

Here, we present a protocol to create orthotopic hepatocellular carcinoma xenografts with and without hepatic artery ligation and perform non-invasive positron emission tomography (PET) imaging of tumor hypoxia using [18F]Fluoromisonidazole ([18F]FMISO) and [18F]Fluorodeoxyglucose ([18F]FDG).

간세포 암종의 동소 마우스 모델에서 비침습적 PET/MR 이미징

Preclinical experimental models of hepatocellular carcinoma (HCC) that recapitulate human disease represent an important tool to study tumorigenesis and ...

Non-invasive Imaging and Analysis of Cerebral Ischemia in Living Rats Using Positron Emission Tomography with 18F-FDG

Stroke is the third leading cause of death among Americans 65 years of age or older1. The quality of life for patients who suffer from a stroke fails to return to normal in a large majority of patients2, which is mainly due to current lack of clinical treatment for acute stroke. This necessitates understanding the physiological effects of cerebral ischemia on brain tissue over time and is a major area of active research. Towards this end, experimental progress has been made using rats as a preclinical model for stroke, particularly, using non-invasive methods such as 18F-fluorodeoxyglucose (FDG) coupled with Positron Emission Tomography (PET) imaging3,10,17. Here we present a strategy for inducing cerebral ischemia in rats by middle cerebral artery occlusion (MCAO) that mimics focal cerebral ischemia in humans, and imaging its effects over 24 hr using FDG-PET coupled with X-ray computed tomography (CT) with an Albira PET-CT instrument. A VOI template atlas was subsequently fused to the cerebral rat data to enable a unbiased analysis of the brain and its sub-regions4. In addition, a method for 3D visualization of the FDG-PET-CT time course is presented. In summary, we present a detailed protocol for initiating, quantifying, and visualizing an induced ischemic stroke event in a living Sprague-Dawley rat in three dimensions using FDG-PET.

Non-invasive Imaging and Analysis of Cerebral Ischemia in Living Rats Using Positron Emission Tomography with 18F-FDG

Brain damage resulting from cerebral ischemia may be non-invasively imaged and studied in rats using pre-clinical positron emission tomography coupled with the injectable radioactive probe, 18F-fluorodeoxyglucose. Further, the use of modern software tools that include volume of interest (VOI) brain templates dramatically increase the quantitative information gleaned from these studies.

과 양전자 방출 단층 촬영을 이용하여 비 침습적 영상 및 뇌허혈의 분석 생활 쥐<sup&gt; (18)</sup&gt; F-FDG

Stroke is the third leading cause of death among Americans 65 years of age or older1. The quality of life for patients who suffer from a stroke fails to ...

의학

Mouse Kidney Transplantation: Models of Allograft Rejection

Rejection of the transplanted kidney in humans is still a major cause of morbidity and mortality. The mouse model of renal transplantation closely replicates both the technical and pathological processes that occur in human renal transplantation. Although mouse models of allogeneic rejection in organs other than the kidney exist, and are more technically feasible, there is evidence that different organs elicit disparate rejection modes and dynamics, for instance the time course of rejection in cardiac and renal allograft differs significantly in certain strain combinations. This model is an attractive tool for many reasons despite its technical challenges. As inbred mouse strain haplotypes are well characterized it is possible to choose donor and recipient combinations to model acute allograft rejection by transplanting across MHC class I and II loci. Conversely by transplanting between strains with similar haplotypes a chronic process can be elicited were the allograft kidney develops interstitial fibrosis and tubular atrophy. We have modified the surgical technique to reduce operating time and improve ease of surgery, however a learning curve still needs to be overcome in order to faithfully replicate the model. This study will provide key points in the surgical procedure and aid the process of establishing this technique.

Here, we present a protocol to study the immunology of rejection. The surgical model presented reports a short operating time and a concise technique. Depending on the donor-recipient strain combination, the transplanted kidney may develop acute cellular rejection or chronic allograft damage, defined by interstitial fibrosis and tubular atrophy.

마우스 신장 이식 : 동종 이식 거부의 모델

Rejection of the transplanted kidney in humans is still a major cause of morbidity and mortality. The mouse model of renal transplantation closely ...

Preparing a 68Ga-labeled Arginine Glycine Aspartate (RGD)-peptide for Angiogenesis

The &#945;v&#946;3 integrin is a heterodimeric adhesion molecule involved in tumor cell migration and angiogenesis. The integrin is overexpressed in angiogenic tumor endothelial cells, where it typically has a low concentration. This specific expression of &#945;v&#946;3 makes it a valid biomarker for antiangiogenic and imaging drugs. As a functional imaging modality, positron emission tomography (PET) provides information about biochemical and physiological changes in vivo, due to its unique high sensitivity at the nanomolar scale. Hence, radiometal-based PET radiopharmaceuticals have received great attention for the non-invasive quantification of tumor angiogenesis. This paper provides a systemic protocol to prepare a new radiometal-labeled peptide for the evaluation of angiogenesis. This protocol contains information about radiochemical reliability, lipophilicity, cell uptake, serum stability, and pharmacokinetic properties. The 68Ga-RGD-peptide is one of the representative PET ligands toward &#945;v&#946;3 integrin. Here, we introduce a protocol to prepare a 68Ga-RGD-peptide and the evaluation of its biological efficacy.

Preparing a 68Ga-labeled Arginine Glycine Aspartate RGD-peptide for Angiogenesis

The &#945;v&#946;3 integrin is a type of adhesion protein that is highly expressed on activated endothelial cells undergoing angiogenesis. Thus, evaluating the integrity of the integrin is of great interest in oncology. Here, we introduce a method to prepare 68Ga-labeled radiopeptides and a method to assess its biological effectiveness.

68가 표시 된 아르기닌 글리신 Aspartate (RGD) 준비-신생에 대 한 펩 티 드

The &#945;v&#946;3 integrin is a heterodimeric adhesion molecule involved in tumor cell migration and angiogenesis. The integrin is overexpressed in ...

Orthotopic Rat Kidney Transplantation: A Novel and Simplified Surgical Approach

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of renal replacement therapy. Over the past few decades, the rat kidney transplantation model has been used to study the immunological phenomena of rejection and tolerance. This model has become an indispensable tool to test new immunomodulatory pharmaceuticals and regimens prior to proceeding with expensive preclinical large animal studies.
This protocol provides a detailed overview of how to reliably perform orthotopic kidney transplantation in rats. This protocol includes three distinctive steps that increase the probability of success: perfusion of the donor kidney by flushing through the portal vein and the use of a cuff system to anastomose the renal veins and ureters, thereby decreasing cold and warm ischemia times. Using this technique, we have achieved survival rates beyond 6 months with normal serum creatinine in animals with syngeneic or tolerant kidney transplants. Depending on the aim of the study, this model can be modified by pre- or posttransplant treatments to study the acute, chronic, cellular, or antibody-mediated rejection. It is a reproducible, reliable, and cost-effective animal model to study different aspects of kidney transplantation.

The purpose of this manuscript and protocol is to explain and demonstrate in detail the surgical procedure of orthotopic kidney transplantation in rats. This method is simplified to achieve the correct perfusion of the donor kidney and shorten the reperfusion time by using the venous and ureteral cuff anastomosis technique.

직교 쥐 신장 이식: 새롭고 단순화 된 외과 접근

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of ...

A Rat Orthotopic Renal Transplantation Model for Renal Allograft Rejection

Renal allograft rejection limits the long-term survival of patients after renal transplantation. Rat orthotopic renal transplantation is an essential model to investigate the mechanism of renal allograft rejection in pre-clinical studies and could aid in the development of novel approaches to improve the long-term survival of renal allografts. Donor kidney implantation in rat orthotopic renal transplantation is commonly performed by end-to-side anastomosis to recipients' aorta and inferior vena cava. In this model, the donor's kidney was implanted using end-to-end anastomosis to the recipients' renal artery and renal vein. The donor's ureter was anastomosed to the recipient's bladder in an end-to-side 'tunnel' method. This model contributes to better healing of ureter-bladder anastomosis and increases the recipients' survival by avoiding interference with blood supply and venous reflux of the lower body. This model can be used to investigate the mechanisms of acute and chronic immune and pathologic rejection of renal allografts. Here, the study describes the detailed protocols of this orthotopic renal transplantation between rats.

The rat orthotopic renal transplantation model contributes to investigating the mechanism of renal allograft rejection. The current model increases the recipients' survival without interference with blood supply and venous reflux of the lower body using an end-to-end anastomosis of kidney implantation and an end-to-side "tunnel" method of ureter-bladder anastomosis.

신장 동종이식편 거부반응을 위한 쥐 동위원소 신장 이식 모델

Renal allograft rejection limits the long-term survival of patients after renal transplantation. Rat orthotopic renal transplantation is an essential ...

High-Resolution Cardiac Positron Emission Tomography/Computed Tomography for Small Animals

Positron emission tomography (PET) and computed tomography (CT) are among the most employed diagnostic imaging techniques, and both serve in understanding cardiac function and metabolism. In preclinical research, dedicated scanners with high sensitivity and high spatio-temporal resolution are employed, designed to cope with the demanding technological requirements posed by the small heart size and very high heart rates of mice and rats. In this paper, a bimodal cardiac PET/CT imaging protocol for experimental mouse and/or rat models of cardiac diseases is described, from animal preparation and image acquisition and reconstruction to image processing and visualization.
In particular, the 18F-labeled fluorodeoxyglucose ([18F]FDG)-PET scan allows for the measurement and visualization of glucose metabolism in the different segments of the left ventricle (LV). Polar maps are convenient tools to display this information. The CT part consists of a time-resolved 3D reconstruction of the entire heart (4D-CT) using retrospective gating without electrocardiography (ECG) leads, allowing the morphofunctional evaluation of the LV and the subsequent quantification of the most important cardiac function parameters, such as ejection fraction (EF) and stroke volume (SV). Using an integrated PET/CT scanner, this protocol can be executed within the same anesthesia induction without the need to reposition the animal between different scanners. Hence, PET/CT can be seen as a comprehensive tool for the morphofunctional and metabolic evaluation of the heart in several small animal models of cardiac diseases.

Here, we present an experimental imaging protocol for the quantification of cardiac function and morphology using high-resolution positron emission tomography/computed tomography for small animals. Both mice and rats are considered, discussing the different requirements of computed tomography contrast agents for the two species.

소형 동물을 위한 고해상도 심장 양전자 방출 단층 촬영/컴퓨터 단층 촬영

Positron emission tomography (PET) and computed tomography (CT) are among the most employed diagnostic imaging techniques, and both serve in understanding ...

<meta charset="utf8"></head><body>쥐의 간 이식 및 동종 이식 개통 분석

Heterotopic Auxiliary Whole Liver Rat Transplant Model Utilizing a Hepaticoureterostomy for Allograft Rejection Studies

Small animal transplant models are indispensable for organ tolerance studies investigating feasible therapeutic interventions in preclinical studies. Rat liver transplantation (LTx) protocols typically use an orthotopic model where the recipients&#39; native liver is removed and replaced with a donor liver. This technically demanding surgical procedure requires advanced micro-surgical skills and is further complicated by lengthy anhepatic and lower body ischemia times. This prompted the development of a less complicated heterotopic method that can be performed faster with no anhepatic or lower body ischemia time, reducing post-surgery stress for the recipient animal.
This heterotopic LTx protocol includes two main steps: excising the liver from the donor rat and transplanting the whole liver into the recipient rat. During the excision of the donor liver, the surgeon ligates the supra-hepatic vena cava (SHVC) and hepatic artery (HA). On the recipient side, the surgeon removes the left kidney and positions the donor liver with the portal vein (PV), infra-hepatic vena cava (IHVC), and bile duct facing the renal vessels. Further, the surgeon anastomoses the recipient&#39;s renal vein end to end with the IHVC of the liver and arterializes the PV with the renal artery using a stent. A hepaticoureterostomy is utilized for biliary drainage by anastomosing the bile duct to the recipient&#39;s ureter, permitting the discharge of bile via the bladder.
The average duration of the transplantation was 130 min, cold ischemia duration was around 35 min, and warm ischemia duration was less than 25 min. Hematoxylin and eosin histology of the auxiliary liver from syngeneic transplants showed normal hepatocyte structure with no significant parenchymal alterations 30 days post-transplant. In contrast, 8-day post-transplant allogeneic graft specimens demonstrated extensive lymphocytic infiltration with a Banff Schema rejection activity index score of 9. Therefore, this LTx method facilitates a low morbidity rejection model alternative to orthotopic LTx.

<meta charset="utf8"></head><body>동종이식 거부 반응 연구를 위한 간절개술을 활용하는 이주제 보조 전체 간 쥐 이식 모델

The rat heterotopic auxiliary liver transplant protocol described here offers a practical investigational tool for exploring mechanisms of hepatic allograft rejection. This model helps to alleviate the surgical hurdles and animal stress of orthotopic liver transplantation in rats.

동종이식 거부 반응 연구를 위한 간절개술을 활용하는 이주제 보조 전체 간 쥐 이식 모델

Small animal transplant models are indispensable for organ tolerance studies investigating feasible therapeutic interventions in preclinical studies. Rat ...

쥐 신장 이식 후 급성 동종 이식 거부의 비 침습 이미징 사용

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애완 동물 및 MRI 유도 세포종 쥐 모델의 방사선 마이크로 irradiator를 사용 하 여

간세포 암종의 동소 마우스 모델에서 비침습적 PET/MR 이미징

과 양전자 방출 단층 촬영을 이용하여 비 침습적 영상 및 뇌허혈의 분석 생활 쥐

마우스 신장 이식 : 동종 이식 거부의 모델

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직교 쥐 신장 이식: 새롭고 단순화 된 외과 접근

신장 동종이식편 거부반응을 위한 쥐 동위원소 신장 이식 모델

소형 동물을 위한 고해상도 심장 양전자 방출 단층 촬영/컴퓨터 단층 촬영

동종이식 거부 반응 연구를 위한 간절개술을 활용하는 이주제 보조 전체 간 쥐 이식 모델

동종이식 거부 반응 연구를 위한 간절개술을 활용하는 이주제 보조 전체 간 쥐 이식 모델