연구 NSERC 지원.

1. 사회화 <ol><li> 기존의 사회 계급을 소화하려면 각 왕새우는 7 보관되어 있습니다 - 별도의 플라스틱 용기 (30cm 길이 X 17.5 cm (폭) x 13cm 깊이)에서 14 일, 여과, 화난 물과 같은 역할을하는 작은 플라스틱 화분으로 가득 쉼터. 투명한 용기를 사용하는 경우 구분선 (예 : 종이 타월)는 왕새우가 시각 격리되도록하기 위해 용기 사이에 배치됩니다. </li><li> 십사일 - &quot;절연&quot;그룹에 왕새우가 추가 3 격리에 남아 있습니다. 물이 변경되고 왕새우는 3 회 매주 공급하고 있습니다. </li><li> 사회 계급을 설정하려면, 왕새우는 초기 격리 다음과 같은 동성 쌍에 배치됩니다. 크레이 피쉬는 무게이며, 몸 길이는 (텔슨에 연단) 측정, 쌍은 10 %의 무게와 길이 이내로 크기와 일치합니다. 화이트 아크릴 페인트는 개인을 식별하는 각 왕새우의 등딱지에 적용됩니다. (보통 점 한 회원과 다른 라인에 적용됩니다.) </li><li> 30 분 휴식 기간 후, 각 왕새우 쌍이 필터링, 화난 물 (상온)로 절반을 가득 깨끗한 흰색 플라스틱 용기 (48cm 길이 X 25cm (폭) x 13cm 깊이)에 상호 작용하도록 허용됩니다. 외계는 중 비디오 카세트 레코더에 연결된 카메라와 VHS 테이프에 기록, 또는 그것은 웹캠과 컴퓨터에 기록됩니다. 이것은 상호 작용이 지배 순위가 개발 할 수 있습니다. </li><li> 십사일 - 초기 상호 작용에 따라, 각 왕새우 쌍은 추가 3에 대한보다 큰 플라스틱 용기 (58cm 길이 X 30cm (폭) x 35cm 깊이)에 함께 보관되어 있습니다. 이 컨테이너는 여과 시스템에서 순환 물을받습니다. 단일 PVC 튜브는 (약 10cm 길이) 은신처 제공됩니다. </li></ol> 2. 테스트 수족관 및 제어 구축 방법 I <ol><li> 반사 환경, 유리 또는 플렉시 수족관 (52cm 길이 X 25cm x 세로 30cm 높이) (그림 1) 사용에 대한 답변을 확인하려면 다음과 같이하십시오. </li><li> 하나의 거울 (25cm 길이 20cm X 높이)는 수족관의 한쪽에 배치하거나,​​ 접착제 또는 설치 왁스와 보안이다. 두 개의 거울 (26cm 길이 20cm X 높이)는 최종 미러 인접, 측면에 배치하고, 접착제 또는 왁스로 안전하고 있습니다. </li><li> 나머지 벽은 무광택 마무리 창 필름에 나와 있습니다. 이 영화는 반사를 제거하지만, 조명 조건을 방해하지 않습니다. 필름 가벼운 샌딩이 영화는 완전히 비 - 반사되도록해야 할 수 있습니다. </li></ol> 방법 II <ol start="4"><li> 이 최종 챔버와 함께 라이브 왕새우 ( &quot;소스 왕새우&quot;), 플렉시 수족관에서 제공하는 시각적 자극에 대한 답변을 확인하려면 것은 (그림 2)이 사용됩니다. 수족관은 대형 중앙 구획 (48cm 길이 X 26cm x 세로 26cm 높이)와 동등한 크기의 두 작은 끝 구획 (X 26cm 폭 12cm 길이 26cm 높이)가 포함되어 있습니다. 최종 구획은 구획 사이의 통과에서 물과 화학 단서를 방지하기 위해 밀폐되어 투명 플렉시로 중앙 구획 구분됩니다. </li><li> 전체 수족관의 바깥쪽 경계는 각 끝에있는 두 장벽이 투명 떠나, 비 반사 매트 플라스틱으로 코팅됩니다. </li><li> 컨트롤로 모델링 점토의 건설 큐브 (예 : Sculptee) 불활성 개체의 시각적 입력을 제공하는 데 사용됩니다. 큐브 (3.5 cm X 3.0 cm X 3.3 cm)는 소스 왕새우의 대략적인 볼륨과 유사한 색상을 빨간색으로 색칠합니다. </li></ol> 3. 영상 교육 방법 I <ol><li> 우위 상태를 확인하기 위해 싸움을 다음 십사일 - 왕새우가 거울 / 매트 탱크 3 촬영합니다. </li><li> 크레이 피쉬는 aerated, 여과 물이 들어있는 유리 섬유 복합 컨테이너와 쉼터에 사용되는 플라스틱 화분에, 한 대씩 배치됩니다. 크레이 피쉬는 테스트 룸으로 이동하고 테스트하기 전에 적응 30 분 주어집니다. </li><li> 테스트 수족관은 거울과 절반 정도가 늘어선 아닌 반사 플라스틱으로 약 20cm의 깊이로 aerated, 여과 물을 가득와 반 가로수. </li><li> 디지털 카메라는 VHS 비디오 카세트 레코더의 오디오 / 비디오 케이블을 통해 연결되어 있고 전체 수족관을 볼 수있을만큼 높지 수족관 위에 배치됩니다. 동영상이 VHS 테이프에 기록됩니다. 또는 컴퓨터에 연결된 웹캠을 사용할 수 있으며, 동영상은 동영상 제작 프로그램에 기록하고 DVD에 저장할 수 있습니다. </li><li> 쌍 하나 왕새우는 꽃 냄비를 사용하여 수족관의 중앙에 부드럽게 위치하며, 활동은 20 분에 대해서만 기록됩니다. 아무 관계없는 사람은 시각과 청각 입력으로부터 간섭을 줄이기 위해, 녹음하는 동안 방에 존재하지 않습니다. 모든 노력은 녹음 환경이 조용 수 있도록 구성되어 있습니다. </li><li> 테스트를 다음, 왕새우가 제거되고 탱크가납니다, 씻어서 물로 리필. </li><li> 카운터 밸런스 실험 조건, 수족관이 곳으로 주변에 설정되어방의 반대편에 거울. 이 왕새우는 수족관의 한쪽을 선호하는 원인이 될 수 알려지지 않은 요인에 대한 보상하는 데 도움이됩니다. </li><li> 쌍 두 번째 회원은 다음 첫 번째와 같은 방식으로 테스트됩니다. </li></ol> 방법 II <ol start="9"><li> 마찬가지 방법 I에서 설명한 왕새우는 테스트 룸으로 이동됩니다 같은 녹음 장비를 사용하여 촬영하고 있습니다. </li><li> 모든 여왕님 (중간 시험 챔버와 두 최종 실) 약 20cm의 높이에 aerated, 여과 물을 채워지게된다. </li><li> 크레이 피쉬, 왕새우는 테스트중인로 거의 같은 크기는 한쪽 끝을 챔버에 배치하고, 컨트롤 큐브는 다른 배치됩니다. </li><li> 꽃 냄비 보호소를 사용하여 테스트중인 왕새우는 부드럽게 수족관의 중앙에 배치됩니다 20 분 촬영입니다. </li><li> 테스트 후, 수족관은 비운 씻어서 물로 리필입니다. </li><li> 한 켤레의 두 번째 멤버를 테스트하기 전에, 소스의 왕새우 및 제어 큐브는 균형 조건에 대응하기 위해, 반대 끝 방으로 이동됩니다. </li></ol> 4. 시각적 자극에 대한 반응 분석 방법 I <ol><li> 그래서 실험자의 왕새우의 사회적 지위, 거울 / 매트 수족관에서 동작 장님이되어 행동을 재판 싸우는 분석 전에 분석이다. </li><li> 크레이 피쉬는 수족관의 각 측면에 많은 시간을 보낸다 금액 기록됩니다. 크레이 피쉬는 chelipeds의 coxae는 탱크의 정중선 (그림 3)을 통과하면 다음으로 한쪽에서 전달하는 것으로 간주됩니다. </li><li> (설명을 표 1 참조), 매점 회전, 동결 및 역방향 도보를 건너 행동의 빈도도 기록됩니다. </li><li> 동작은 각 사회 그룹에 대한 이점 T - Test를 사용하여 비 반사 측면에 전시 행동에 비해있는 탱크의 반사 측면에 전시. </li></ol> 방법 II <ol start="5"><li> 방법에서와 마찬가지로 저는, 왕새우 문제의 비디오 테이프는 싸움의 시험 분석을하기 전에 분석하고 있습니다. </li><li> 크레이 피쉬는 수족관의 양쪽에 많은 시간을 보낸다 금액은 방법 나에서 설명한대로 기록됩니다 </li><li> 코너링의 주파수, 마주 회전, 교차점, 잘 양육을 종료하고 산책 (표 1) 반대로 기록됩니다. </li><li> 소스 왕새우 사이드에서 수행 행동은 각 사회 그룹에 대한 이점 T - 테스트를 사용하여 제어 큐브 사이드에서 수행 행동에 비해 수 있습니다. </li></ol> 5. 통하는 분석 <ol><li> 페어링의 초기 30 분 동안 전투 동작의 기록을 볼과 득점 있습니다. 각 30 분 녹음 세션 왕새우들이 발톱 및 / 또는 안테나를 사용하여 접촉하게하는 몇 가지 조우를 포함합니다. 이 발생 내에서 chelae은 일반적으로 추진하고 강렬하거나 상대를 쥐고​​ 사용되는, 그리고 안테나를 때로는 상대를 흔든다에 사용됩니다. 하나 크레이 피쉬는 상대를 뒤집어하고 바닥에 그를 잡아 시도할 수 있습니다. 각각의 만남은 역방향 도보로 또는 달성하기 위해 꼬리를 내리고 한 왕새우 휴양소는 &quot;수영 탈출.&quot;언제까지 </li><li> 고대 그리스의 운동 경기의 조우의 숫자가 기록되며, 왕새우의 정체성은 (흉부에 표시 페인트에 의해 결정) 각 발생에서 피정도 기록입니다. 각 30 분 세션에서 조우의 대부분을 잃는 왕새우는 패배자로 간주하고, 다른 왕새우는 승자 것으로 간주됩니다. </li></ol> 6. 대표 결과 30 분 전투 기간 동안, 모든 쌍은 무리한 행동을 나타냅니다. 이러한 행동은 안테나 도청, lunging, 밀고, 욕심, 강렬 chelae와 같은 다른보고 내리고 상대를 (예 : 월 &amp; 메르 시에 2006, 2007) 등이 있습니다. 각 쌍을 지속 피정 더욱 연락처를 피할에 결국 한 왕새우. 퇴각 크레이 피쉬는 패배자로 간주하고 종속으로 선정되며 선정된 왕새우가 지배적으로 선정됩니다. 순위는 은신처에 대한 하나의 플라스틱 튜브를 포함 들고 탱크 왕새우 행동을 관찰하여 이점 주택 기간 동안 모니터링할 수 있습니다. 지배 크레이 피쉬는 결국에 피난처를 점유하고 하위 왕새우가되지 않습니다. 하위 크레이 피쉬가 자주 chelae와 함께 산책하는 것은 전면에 가깝게 밖 개최하고, 지배 왕새우는 일반적으로 제기 chelae와 함께 산책과 더욱 차별 (Guiasu &amp; 던햄, 1998). 새로운 음식이 보관 탱크에 추가되면, 지배 왕새우는 대개 먼저 음식을 소요됩니다. P.과 함께 우리의 연구에 clarkii (예 : 월 &amp; 메르 시에 2006, 2007), 지속적인 페어링 3 일 후에 일반적으로 더 순위 reversals 없습니다. 페어링 기간이 완료되기 전에 드문 경우에는 쌍 멤버는 죽는다. 이것은 페어 링의​​ 기간이있는 경우 발생할 가능성이 높습니다길이 (예 : 십사일)와 왕새우가 너무 밀접하게 크기 또는 무게에 의해 일치하는 경우. 그러므로 죽음은 무게가 약 10 %의 차이를함으로써 피할 수 있습니다. 한 쌍의 한 회원이 죽으면, 다른 회원의 데이터가 연구에 포함되지 않습니다. 지배와 종속 왕새우 일반적으로 반사 환경에 다른 반응을 보여줍니다. 지배 크레이 피쉬는 일관되게 반사 측면에 더 많은 시간을 보내고 있지만, 종속과 격리 왕새우는 (5 월 &amp; 메르 시에, 2006, 2007)하지 않습니다. 지배 크레이 피쉬는 코너링과 비 반사 측면에보다 반사 측면에 더 자주 터닝을 전시지만, 격리하고 부하는 일반적으로하지 않습니다. 지배와 종속 왕새우 사이의 이러한 차이는 그러나, 바로 설립하지만 3-14일의 페어링 기간 (5 월 &amp; 머시, 2007)를 통해 개발되지 않습니다. 예비 증거는 지배와 종속 왕새우가 페어링 3 일 후에 라이브 왕새우 (소스 왕새우) (5 외., 2008)가 제공하는 영상 신호에 다른 반응을 나타냅니다. 지배 크레이 피쉬는 측면에서 더 이상의 소스 왕새우 및 코너와 수족관의 측면에 더 많은 시간을 보내고 있지만, 종속 왕새우는 양측 사이의 이러한 차이점을 전시하지 않습니다. <table border="1"><tbody><tr><td> 행동 </td><td> 설명 </td></tr><tr><td> 매점 </td><td> 수족관의 모서리를 마주하고 다른 벽 (그림 4)을 만지 두 발톱의 도움말과 함께 최소한 5의 곁에 남아 </td></tr><tr><td> 마주 끝 </td><td> 최종 벽을 감동 적어도 하나의 발톱의 일각과 함께 적어도 5의 (그림 5) 수조의 한쪽 끝을에서 벽을 마주 </td></tr><tr><td> 선회 </td><td> 시계 반대 방향으로 또는 그 반대로 시계 방향에서 도보 경로 방향 (그림 6)을 변경 </td></tr><tr><td> 횡단 </td><td> 수족관의 경계를 떠나 및 기타 벽면에 하나 이상의 신체 길이를 도보 (그림 7) </td></tr><tr><td> 도보 반대 </td><td> 적어도 하나의 신체 길이 뒤로 걷기 </td></tr><tr><td> 냉동 </td><td> 최소한 5 s에 대한 부속 및 안테나의 표시를 포함한 모든 운동의 돌연 정지 </td></tr><tr><td> 최대 양육 </td><td> 벽에 흉부의 복부 표면을 운반하고 벽에 적어도 하나 이상 도보로 다리를 놓는 동안 넷째와 다섯째 걷는 다리에 서서 </td></tr></tbody></table> P.에 의해 전시 표 1. 행동 테스트 탱크의 중심 구획에 clarkii. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig1.jpg" alt="그림 1" /> 그림 1. 나머지 절반이 아닌 반사 플라스틱 늘어서있는 동안 수족관의 방법 I. 하프에서 사용 수족관의 도식이, 거울 등이 즐비합니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig2.jpg" alt="그림 2" /> 그림 2. 방법 II에서 사용되는 수족관의 도식. 이 탱크는 손상 플렉시 장벽으로 나누어 테스트 왕새우가 배치됩니다 중심 지역, 두 끝 챔버로 구성되어 있습니다. 라이브 크레이 피쉬 한 최종 챔버에 배치하고, 큐브는 컨트롤과 같은 다른 쪽 끝을 챔버에 배치됩니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig3.jpg" alt="그림 3" /> 그림 3. 수직 점선으로 그려져 정중선과 테스트 수족관의 도식. chelipeds의 coxae가 정중선을 통과하면 왕새우는 한쪽에서 다른 전달합니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig4.jpg" alt="그림 4" /> 그림 4. 지키면서 왕새우의 위치를 나타내는 다이어그램. 두 chelae의 끝을 다른 벽 감동됩니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig5.jpg" alt="그림 5" /> 그림 5. 끝에 벽에 직면하고있는 동안 왕새우의 위치를 나타내는 다이어그램. 두 chelae 같은 벽을 만지됩니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig6.jpg" alt="그림 6" /> 그림 6. 도식 다이어그램 나타내는 가고 있습니다. 운동의 방향을 반대하는 것은 설정을 구성합니다. 밝혀졌는 코너 (예 : 방향 방향 1 2 방향 5 방향 4) 또는 측면에서 (표시되지 않음)에서 발생할 수 있습니다. 매점과 같은 방향으로 떠나는를 입력하면 (예 : 방향 3 방향 1) 회전되지 않습니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig7.jpg" alt="그림 7" /> FigurE 7. 건너 동작을 보여주는 도식. 크레이 피쉬는 가장 가까운 벽 (화살표)에서 적어도 한 몸 길이의 거리에서, 또 다른 벽 한 벽면과 여행을 떠났을 때 크로싱 발생합니다. <img src="/files/ftp_upload/1956/1956fig8.jpg" alt="그림 8" /> 그림 8. 사진은 행동을 양육 묘사. 크레이 피쉬는 지난 두 걷는 다리에 서서 최소한 한 걸을 수있는 다리와 접촉을하고, 벽에 몸을 리프트.

<ol>
	<li>Bruski, C. A., Dunham, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+importance+of+vision+in+agonistic+communication+of+the+crayfish+Orconectes+rusticus.+I:+an+analysis+of+bout+dynamics.">The importance of vision in agonistic communication of the crayfish Orconectes rusticus. I: an analysis of bout dynamics.</a> Behav. 103, 83-107 (1987).</li><li>Delgado-Morales, G., Hernandez-Falcon, J., Ramon, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Agnostic+behavior+in+crayfish:the+importance+of+sensory+inputs.">Agnostic behavior in crayfish:the importance of sensory inputs.</a> Crustaceana. 77 (1), 1-24 (2004).</li><li>Guiasu, R. C., Dunham, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inter-form+agonistic+contests+in+male+crayfishes,+Cambarus+robustus+(Decapoda,+Cambaridae).">Inter-form agonistic contests in male crayfishes, Cambarus robustus (Decapoda, Cambaridae).</a> Invert. Biol.. 117 (2), 144-154 (1998).</li><li>May, H. Y., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Responses+of+crayfish+to+a+reflective+environment+depend+on+dominance+status.">Responses of crayfish to a reflective environment depend on dominance status.</a> Can. J. Zool. 84 (8), 1104-1111 (2006).</li><li>May, H. Y., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Joffre+Duration+of+socialization+influences+responses+to+a+mirror:+responses+of+dominant+and+subordinate+crayfish+diverge+with+time+of+pairing.">Joffre Duration of socialization influences responses to a mirror: responses of dominant and subordinate crayfish diverge with time of pairing.</a> J. Exp. Biol. 210, 4428-4436 (2007).</li><li>May, H. Y., Luebbert, J., Mercier, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Responses+of+Crayfish+to+a+Visual+Stimulus+Provided+by+a+Conspecific.">Responses of Crayfish to a Visual Stimulus Provided by a Conspecific.</a> , (2008).</li></ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

지배 크레이 피쉬는 반사 환경에서 더 많은 시간을 보내고있는 관찰, 그들은 conspecific로 반영 이미지를 인식하고 영상 신호는 접근 행동을 이끌어내는 충분한 것을 제안합니다. 대신 반사 이미지의 라이브 왕새우를 사용하여 유사한 결과가 이러한 해석을 지원합니다. 종속과 고립된 왕새우는 반사 환경에 대한 이러한 환경 설정을 표시하지 않으며 종속 왕새우는 큐브를 통해 살아있는 왕새우을 ?...

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		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Single chamber test tank</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Brock University Machine Shop</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>End-chamber test tank</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Brock University Machine Shop</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Isolation container</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Rubbermaid</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>30 cm x 17.5 cm x 13 cm holes in lid to allow air and light to pass through when lid is on</td>
</tr>
<tr>
<td>Fighting chamber</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>48 cm x 25 cm x 13 cm</td>
</tr>
<tr>
<td>Social housing chamber</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>58 cm x 30 cm x 35 cm</td>
</tr>
<tr>
<td>small plastic flower pot</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>to serve as shelter</td>
</tr>
<tr>
<td>Coolpix 4500 camera</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Nikon</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>T120 video cassette recorder</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>RCA</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Computer</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Windows Movie Maker or other video acquiring software</td>
</tr>
<tr>
<td>webcam</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Logitech</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>modelling clay</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sculptee</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>to make control cube</td>
</tr>
<tr>
<td>red latex paint</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>FolkArt</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>to make control cube</td>
</tr>
<tr>
<td>waterbase varnish</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>FolkArt</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>to make control cube</td>
</tr>		</tbody>
		</table>
		</div>

recording behavioral responses to reflection in crayfish

사회 문제는 시각, 기계와 후각 시스템에서 감각 입력에 따라 달라집니다. 중요한 문제는 행동을 유도 각 감각 양상의 상대 역할을 우려. 영상 입력의 역할은 기계 chemosensory 자극의 시각적 자극을 분리하여 검사되었습니다. 일부 연구에서는 (Bruski &amp; 던햄, 1987 :. 델가도 - 모랄레스 외, 2004) 영상 입력은 blindfolds 또는 낮은 빛의 강도와 함께 제거되어 있고, 나머지 감각 modalities의 효과가 elucidated되었습니다. 대체 접근법은 적절한 기계적 chemosensory 단서의 부재에서 영상 입력의 효과를 연구하는 것입니다. 이 방법은 시각적인 입력의 독점적인 역할을 파악하는 것을 목표로하고있다. 우리는 화학 및 기계적 단서를 제공하지 않고 왕새우으로 시각적 자극을 제공하는 두 가지 방법을 사용했습니다. 한 방법으로, 왕새우는 성벽의 절반이 반사 환경을 제공하기 위해 거울에 나와있는 수족관에서 촬영하고 있으며, 나머지 절반은 아닌 반사 (무광택 마무리) 비닐에 싸여있다. 이것은 가재에게 반사가 아닌 반사 환경 사이의 선택을 제공합니다. 그것은 탱크의 절반에 걸쳐 이동으로 반사 환경은 왕새우 반영 ​​이미지의 형태로 시각 단서를 제공, 이러한 시각적 신호가 탱크의 비 반사 이분의 일에서 누락되었습니다. 다른 방법은, 작은 챔버가 아닌 이동의 시각 입력을 제공하는 반대 소형 챔버의 영상 신호와 불활성 개체를 제공하는 왕새우와 비디오 테이프의 각 끝에 작은 챔버로 구분하여 수족관의 가재의 행동을하는 것입니다 비 크레이 피쉬 소스. 우리 게시된 결과는 반사 환경에 왕새우 답변 사회화 및 지배력 순위에 따라 나타냅니다. Socialized 크레이 피쉬는 반사 환경에 더 많은 시간을 할애하고 비 반사 환경에서보다 더 자주이 특정 행동을 전시, 격리 왕새우는 이러한 차이를 보여 않습니다. 동성 쌍 안에 보관되어 있었다 왕새우가 지배 또는 종속 중 하나의 사회 계급을 개발했습니다. 반사에 대한 답변은 지배와 종속 왕새우 사이마다 (5 월 &amp; 메르 시에, 2006, 2007 월 &amp; 머시). 지배 크레이 피쉬는 반사 측면에 더 많은 시간을 소비 더 자주 반사 모서리를 입력하고 비 반사 측면에 비해 반사 모서리에 더 많은 시간을 보냈다. 하위 크레이 피쉬가 아닌 반사 측면에보다 반사 측면에 더 자주 반대로 걸었다. 예비 데이터는 작은 인접한 챔버에서 왕새우 (5 외., 2008)에서 제공하는 시각적 단서에서 유사한 효과를 보시기 바랍니다.

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Recording Behavioral Responses to Reflection in Crayfish

우리는 촉각과 화학적 단서의 부재에서 행동 시각적 단서의 효과를 연구를위한 두 가지 방법을 개발했습니다. 한 가지 방법은 수족관에서 반사 벽에 왕새우 찍고 답변을 포함, 다른 하나는 투명 파티션 뒤에 살아있는 왕새우가 제공하는 시각 입력의 효과를 검사합니다.

크레이 피쉬에 리플렉션하는 행동 응답 녹음

Social behavior depends on sensory input from the visual, mechanical and olfactory systems.  One important issue concerns the relative roles of each ...

recording-behavioral-responses-to-reflection-in-crayfish

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Neuroscience

10.6K 조회수.  Brock University. 우리는 촉각과 화학적 단서의 부재에서 행동 시각적 단서의 효과를 연구를위한 두 가지 방법을 개발했습니다. 한 가지 방법은 수족관에서 반사 벽에 왕새우 찍고 답변을 포함, 다른 하나는 투명 파티션 뒤에 살아있는 왕새우가 제공하는 시각 입력의 효과를 검사합니다.

비디오: Recording Behavioral Responses to Reflection in Crayfish

Membrane Potentials, Synaptic Responses, Neuronal Circuitry, Neuromodulation and Muscle Histology Using the Crayfish: Student Laboratory Exercises

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that influence a cell's membrane potential and which we address in these experiments are: (1) Ion concentration of K+ on the outside of the membrane, and (2) the permeability of the membrane to specific ions. The crayfish abdominal extensor muscles are in groupings with some being tonic (slow) and others phasic (fast) in their biochemical and physiological phenotypes, as well as in their structure; the motor neurons that innervate these muscles are correspondingly different in functional characteristics. We use these muscles as well as the superficial, tonic abdominal flexor muscle to demonstrate properties in synaptic transmission. In addition, we introduce a sensory-CNS-motor neuron-muscle circuit to demonstrate the effect of cuticular sensory stimulation as well as the influence of neuromodulators on certain aspects of the circuit. With the techniques obtained in this exercise, one can begin to answer many questions remaining in other experimental preparations as well as in physiological applications related to medicine and health. We have demonstrated the usefulness of model invertebrate preparations to address fundamental questions pertinent to all animals.

The experiments demonstrate an easy approach for students to gain experience in examining muscle structure, synaptic responses, the effects of ion gradients and permeability on membrane potentials. Also, a sensory-CNS-motor-muscle circuit is presented to show a means to test effects of compounds on a neuronal circuit.

멤브레인 후보, 시냅틱 응답,의 연결 회로, Neuromodulation과 크레이를 사용하여 근육 조직학 : 학생 실험실 연습

The purpose of this report is to help develop an understanding of the effects caused by ion gradients across a biological membrane. Two aspects that ...

연구

신경과학

Correlating Behavioral Responses to fMRI Signals from Human Prefrontal Cortex: Examining Cognitive Processes Using Task Analysis

The aim of this methods paper is to describe how to implement a neuroimaging technique to examine complementary brain processes engaged by two similar tasks. Participants' behavior during task performance in an fMRI scanner can then be correlated to the brain activity using the blood-oxygen-level-dependent signal. We measure behavior to be able to sort correct trials, where the subject performed the task correctly and then be able to examine the brain signals related to correct performance. Conversely, if subjects do not perform the task correctly, and these trials are included in the same analysis with the correct trials we would introduce trials that were not only for correct performance. Thus, in many cases these errors can be used themselves to then correlate brain activity to them. We describe two complementary tasks that are used in our lab to examine the brain during suppression of an automatic responses: the stroop1 and anti-saccade tasks. The emotional stroop paradigm instructs participants to either report the superimposed emotional 'word' across the affective faces or the facial 'expressions' of the face stimuli1,2. When the word and the facial expression refer to different emotions, a conflict between what must be said and what is automatically read occurs. The participant has to resolve the conflict between two simultaneously competing processes of word reading and facial expression. Our urge to read out a word leads to strong 'stimulus-response (SR)' associations; hence inhibiting these strong SR's is difficult and participants are prone to making errors. Overcoming this conflict and directing attention away from the face or the word requires the subject to inhibit bottom up processes which typically directs attention to the more salient stimulus. Similarly, in the anti-saccade task3,4,5,6, where an instruction cue is used to direct only attention to a peripheral stimulus location but then the eye movement is made to the mirror opposite position. Yet again we measure behavior by recording the eye movements of participants which allows for the sorting of the behavioral responses into correct and error trials7 which then can be correlated to brain activity. Neuroimaging now allows researchers to measure different behaviors of correct and error trials that are indicative of different cognitive processes and pinpoint the different neural networks involved.

The goal of our research is to correlate behavior to brain activity. Accurate behavioral measures and imaging techniques allow us to elucidate brain-behavior relationships.

인간의 전두엽 피질에서 fMRI 신호에 행동 응답을 연관 : 작업 분석을 사용하여인지 과정을 검토

The aim of this methods paper is to describe how to implement a neuroimaging technique to examine complementary brain processes engaged by two similar ...

A General Method for Evaluating Incubation of Sucrose Craving in Rats

For someone on a food-restricted diet, food craving in response to food-paired cues may serve as a key behavioral transition point between abstinence and relapse to food taking 1. Food craving conceptualized in this way is akin to drug craving in response to drug-paired cues. A rich literature has been developed around understanding the behavioral and neurobiological determinants of drug craving; we and others have been focusing recently on translating techniques from basic addiction research to better understand addiction-like behaviors related to food 2-4.
As done in previous studies of drug craving, we examine sucrose craving behavior by utilizing a rat model of relapse. In this model, rats self-administer either drug or food in sessions over several days. In a session, lever responding delivers the reward along with a tone+light stimulus. Craving behavior is then operationally defined as responding in a subsequent session where the reward is not available. Rats will reliably respond for the tone+light stimulus, likely due to its acquired conditioned reinforcing properties 5. This behavior is sometimes referred to as sucrose seeking or cue reactivity. In the present discussion we will use the term "sucrose craving" to subsume both of these constructs.
In the past decade, we have focused on how the length of time following reward self-administration influences reward craving. Interestingly, rats increase responding for the reward-paired cue over the course of several weeks of a period of forced-abstinence. This "incubation of craving" is observed in rats that have self-administered either food or drugs of abuse 4,6. This time-dependent increase in craving we have identified in the animal model may have great potential relevance to human drug and food addiction behaviors.
Here we present a protocol for assessing incubation of sucrose craving in rats. Variants of the procedure will be indicated where craving is assessed as responding for a discrete sucrose-paired cue following extinction of lever pressing within the sucrose self-administration context (Extinction without cues) or as responding for sucrose-paired cues in a general extinction context (Extinction with cues).

Responding for food or drug-paired cues increases over the course of a period of abstinence and this may relate to an increased susceptibility to relapse behaviors. Here we detail a procedure for evaluating this "incubation of craving" in rats that have self-administered sucrose.

쥐에서 자당의 갈망의 보육을 평가하기위한 일반적인 방법

For someone on a food-restricted diet, food craving in response to food-paired cues may serve as a key behavioral transition point between abstinence and ...

Large-scale Recording of Neurons by Movable Silicon Probes in Behaving Rodents

A major challenge in neuroscience is linking behavior to the collective activity of neural assemblies. Understanding of input-output relationships of neurons and circuits requires methods with the spatial selectivity and temporal resolution appropriate for mechanistic analysis of neural ensembles in the behaving animal, i.e. recording of representatively large samples of isolated single neurons. Ensemble monitoring of neuronal activity has progressed remarkably in the past decade in both small and large-brained animals, including human subjects1-11. Multiple-site recording with silicon-based devices are particularly effective because of their scalability, small volume and geometric design.
Here, we describe methods for recording multiple single neurons and local field potential in behaving rodents, using commercially available micro-machined silicon probes with custom-made accessory components. There are two basic options for interfacing silicon probes to preamplifiers: printed circuit boards and flexible cables. Probe supplying companies (<a href="http://www.neuronexustech.com/" >http://www.neuronexustech.com/</a>; <a href="http://www.sbmicrosystems.com/">http://www.sbmicrosystems.com/</a>; <a href="http://www.acreo.se/">http://www.acreo.se/</a>) usually provide the bonding service and deliver probes bonded to printed circuit boards or flexible cables. Here, we describe the implantation of a 4-shank, 32-site probe attached to flexible polyimide cable, and mounted on a movable microdrive. Each step of the probe preparation, microdrive construction and surgery is illustrated so that the end user can easily replicate the process.

We describe methods for large-scale recording of multiple single units and local field potential in behaving rodents with silicon probes. Drive fabrication, probe attachment to the drive and probe implantation processes are illustrated in sufficient details for easy replication.

설치류를 행동에 이동 가능한 실리콘 프로브에 의한 뉴런의 대규모 녹화

A major challenge in neuroscience is linking behavior to the collective activity of neural assemblies. Understanding of input-output relationships of ...

Recording and Analysis of Circadian Rhythms in Running-wheel Activity in Rodents

When rodents have free access to a running wheel in their home cage, voluntary use of this wheel will depend on the time of day1-5. Nocturnal rodents, including rats, hamsters, and mice, are active during the night and relatively inactive during the day. Many other behavioral and physiological measures also exhibit daily rhythms, but in rodents, running-wheel activity serves as a particularly reliable and convenient measure of the output of the master circadian clock, the suprachiasmatic nucleus (SCN) of the hypothalamus. In general, through a process called entrainment, the daily pattern of running-wheel activity will naturally align with the environmental light-dark cycle (LD cycle; e.g. 12 hr-light:12 hr-dark). However circadian rhythms are endogenously generated patterns in behavior that exhibit a ~24 hr period, and persist in constant darkness. Thus, in the absence of an LD cycle, the recording and analysis of running-wheel activity can be used to determine the subjective time-of-day. Because these rhythms are directed by the circadian clock the subjective time-of-day is referred to as the circadian time (CT). In contrast, when an LD cycle is present, the time-of-day that is determined by the environmental LD cycle is called the zeitgeber time (ZT).
Although circadian rhythms in running-wheel activity are typically linked to the SCN clock6-8, circadian oscillators in many other regions of the brain and body9-14 could also be involved in the regulation of daily activity rhythms. For instance, daily rhythms in food-anticipatory activity do not require the SCN15,16 and instead, are correlated with changes in the activity of extra-SCN oscillators17-20. Thus, running-wheel activity recordings can provide important behavioral information not only about the output of the master SCN clock, but also on the activity of extra-SCN oscillators. Below we describe the equipment and methods used to record, analyze and display circadian locomotor activity rhythms in laboratory rodents.

Circadian rhythms in voluntary wheel-running activity in mammals are tightly coupled to the molecular oscillations of a master clock in the brain. As such, these daily rhythms in behavior can be used to study the influence of genetic, pharmacological, and environmental factors on the functioning of this circadian clock.

쥐에 활동 륜 실행에 녹음 및 Circadian 리듬 분석

When rodents have free access to a running wheel in their home cage, voluntary use of this wheel will depend on the time of day1-5. Nocturnal rodents, ...

Simultaneous Electrophysiological Recording and Calcium Imaging of Suprachiasmatic Nucleus Neurons

Simultaneous electrophysiological and fluorescent imaging recording methods were used to study the role of changes of membrane potential or current in regulating the intracellular calcium concentration. Changing environmental conditions, such as the light-dark cycle, can modify neuronal and neural network activity and the expression of a family of circadian clock genes within the suprachiasmatic nucleus (SCN), the location of the master circadian clock in the mammalian brain. Excitatory synaptic transmission leads to an increase in the postsynaptic Ca2+ concentration that is believed to activate the signaling pathways that shifts the rhythmic expression of circadian clock genes. Hypothalamic slices containing the SCN were patch clamped using microelectrodes filled with an internal solution containing the calcium indicator bis-fura-2. After a seal was formed between the microelectrode and the SCN neuronal membrane, the membrane was ruptured using gentle suction and the calcium probe diffused into the neuron filling both the soma and dendrites. Quantitative ratiometric measurements of the intracellular calcium concentration were recorded simultaneously with membrane potential or current. Using these methods it is possible to study the role of changes of the intracellular calcium concentration produced by synaptic activity and action potential firing of individual neurons. In this presentation we demonstrate the methods to simultaneously record electrophysiological activity along with intracellular calcium from individual SCN neurons maintained in brain slices.

Procedures are described to perform simultaneous recordings of membrane potential or current and changes of intracellular calcium concentration. Suprachiasmatic nucleus neurons are filled with the calcium indicator bis-fura-2 using a patch clamp electrode in the whole cell patch clamp configuration.

Simultaneous electrophysiological and fluorescent imaging recording methods were used to study the role of changes of membrane potential or current in ...

Using Single Sensillum Recording to Detect Olfactory Neuron Responses of Bed Bugs to Semiochemicals

The insect olfactory system plays an important role in detecting semiochemicals in the environment. In particular, the antennal sensilla which house single or multiple neurons inside, are considered to make the major contribution in responding to the chemical stimuli. By directly recording action potential in the olfactory sensillum after exposure to stimuli, single sensillum recording (SSR) technique provides a powerful approach for investigating the neural responses of insects to chemical stimuli. For the bed bug, which is a notorious human parasite, multiple types of olfactory sensillum have been characterized. In this study, we demonstrated neural responses of bed bug olfactory sensilla to two chemical stimuli and the dose-dependent responses to one of them using the SSR method. This approach enables researchers to conduct early screening for individual chemical stimuli on the bed bug olfactory sensilla, which would provide valuable information for the development of new bed bug attractants or repellents and benefits the bed bug control efforts.

Bed bugs rely on olfactory receptor neurons housed in their antennal olfactory sensilla to detect semiochemicals in the environment. Utilizing single sensillum recording, we demonstrate a method to evaluate bed bug response to semiochemicals and explore the coding process involved.

Semiochemicals에 침대 버그의 후각 신경 세포 응답을 감지하기 위해 단일 ​​Sensillum 기록을 사용하여

The insect olfactory system plays an important role in detecting semiochemicals in the environment. In particular, the antennal sensilla which house ...

Electrophysiological Method for Recording Intracellular Voltage Responses of Drosophila Photoreceptors and Interneurons to Light Stimuli In Vivo

Voltage responses of insect photoreceptors and visual interneurons can be accurately recorded with conventional sharp microelectrodes. The method described here enables the investigator to measure long-lasting (from minutes to hours) high-quality intracellular responses from single Drosophila R1-R6 photoreceptors and Large Monopolar Cells (LMCs) to light stimuli. Because the recording system has low noise, it can be used to study variability among individual cells in the fly eye, and how their outputs reflect the physical properties of the visual environment. We outline all key steps in performing this technique. The basic steps in constructing an appropriate electrophysiology set-up for recording, such as design and selection of the experimental equipment are described. We also explain how to prepare for recording by making appropriate (sharp) recording and (blunt) reference electrodes. Details are given on how to fix an intact fly in a bespoke fly-holder, prepare a small window in its eye and insert a recording electrode through this hole with minimal damage. We explain how to localize the center of a cell's receptive field, dark- or light-adapt the studied cell, and to record its voltage responses to dynamic light stimuli. Finally, we describe the criteria for stable normal recordings, show characteristic high-quality voltage responses of individual cells to different light stimuli, and briefly define how to quantify their signaling performance. Many aspects of the method are technically challenging and require practice and patience to master. But once learned and optimized for the investigator's experimental objectives, it grants outstanding in vivo neurophysiological data.

Electrophysiological Method for Recording Intracellular Voltage Responses of Drosophila Photoreceptors and Interneurons to Light Stimuli In Vivo

Sharp microelectrodes enable accurate electrophysiological characterization of photoreceptor and visual interneuron output in living Drosophila. Here we show how to use this method to record high-quality voltage responses of individual cells to controlled light stimulation. This method is ideal for studying neural information processing in insect compound eyes.

의 기록 세포 내 전압 응답에 대한 전기 생리 방법<em&gt; 초파리</em&gt; 빛 자극에 광수와의 interneurons<em&gt; 생체</em

Voltage responses of insect photoreceptors and visual interneurons can be accurately recorded with conventional sharp microelectrodes. The method ...

A Novel Behavioral Assay to Investigate Gustatory Responses of Individual, Freely-moving Bumble Bees (Bombus terrestris)

Generalist pollinators like the buff-tailed bumble bee, Bombus terrestris, encounter both nutrients and toxins in the floral nectar they collect from flowering plants. Only a few studies have described the gustatory responses of bees toward toxins in food, and these experiments have mainly used the proboscis extension response on restrained honey bees. Here, a new behavioral assay is presented for measuring the feeding responses of freely-moving, individual worker bumble bees to nutrients and toxins. This assay measures the amount of solution ingested by each bumble bee and identifies how tastants in food influence the microstructure of the feeding behavior.
The solutions are presented in a microcapillary tube to individual bumble bees that have been previously starved for 2-4 hr. The behavior is captured on digital video. The fine structure of the feeding behavior is analyzed by continuously scoring the position of the proboscis (mouthparts) from video recordings using event logging software. The position of the proboscis is defined by three different behavioral categories: (1) proboscis is extended and in contact with the solution, (2) proboscis is extended but not in contact with the solution and (3) proboscis is stowed under the head. Furthermore the speed of the proboscis retracting away from the solution is also estimated.
In the present assay the volume of solution consumed, the number of feeding bouts, the duration of the feeding bouts and the speed of the proboscis retraction after the first contact is used to evaluate the phagostimulatory or the deterrent activity of the compounds tested.
This new taste assay will allow researchers to measure how compounds found in nectar influence the feeding behavior of bees and will also be useful to pollination biologists, toxicologists and neuroethologists studying the bumble bee&#39;s taste system.

A Novel Behavioral Assay to Investigate Gustatory Responses of Individual, Freely-moving Bumble Bees Bombus terrestris

A novel behavioral assay is described for investigating the short term gustatory responses of the mouthparts of freely-moving bumble bees (Bombus terrestris) toward nutrients and toxins in solution.

소설 행동 분석은 (엉망으로 꿀벌을 자유롭게 이동 개인의 미각 응답을 조사하기<em&gt; 뒤의 terrestris</em&gt;)

Generalist pollinators like the buff-tailed bumble bee, Bombus terrestris, encounter both nutrients and toxins in the floral nectar they collect from ...

Identification of Dopamine D1-Alpha Receptor Within Rodent Nucleus Accumbens by an Innovative RNA In Situ Detection Technology

In the central nervous system, the D1-alpha subtype receptor (Drd1&#945;) is the most abundant dopamine (DA) receptor, which plays a vital role in regulating neuronal growth and development. However, the mechanisms underlying Drd1&#945; receptor abnormalities mediating behavioral responses and modulating working memory function are still unclear. Using a novel RNA in situ hybridization assay, the current study identified dopamine Drd1&#945; receptor and tyrosine hydroxylase (TH) RNA expression from DA-related circuitry in the nucleus accumbens (NAc) area and substantia nigra region (SNR), respectively. Drd1&#945; expression in the NAc shows a &#34;discrete dot&#34; staining pattern. Clear sex differences in Drd1&#945; expression were observed. In contrast, TH shows a &#34;clustered&#34; staining pattern. Regarding TH expression, female rats displayed a higher signal expression per cell relative to male animals. The methods presented here provide a novel in situ hybridization technique for investigating changes in dopamine system dysfunction during the progression of central nervous system diseases.

Identification of Dopamine D1-Alpha Receptor Within Rodent Nucleus Accumbens by an Innovative RNA In Situ Detection Technology

Identification of dopamine D1-alpha receptor in the nucleus accumbens is critical for clarifying D1 receptor dysfunction during a central nervous system disease. We performed a novel RNA in situ hybridization assay to visualize single RNA molecules in a specific brain area.

크레이 피쉬에 리플렉션하는 행동 응답 녹음

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Simultaneous Electrophysiological Recording and Calcium Imaging of Suprachiasmatic Nucleus Neurons

Semiochemicals에 침대 버그의 후각 신경 세포 응답을 감지하기 위해 단일 Sensillum 기록을 사용하여

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