Name: microrna based liquid biopsy: the experience of the plasma mirna signature classifier (msc) for lung cancer screening
Uploaded: 2017-10-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 14 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about MicroRNA Based Liquid Biopsy: The Experience of the Plasma miRNA Signature Classifier MSC for Lung Cancer Screening at JoVE.com

パオラ ・ Suatoni、エレナ Bertocchi、ノースカロライナ州ニニ、アナマリア Calanca、著者に感謝し、キアラ バンフィ処理のボランティア試験、行政の援助;クラウディオ ・ Jacomelli とデータ管理のクラウディオ ・ チッテリオ。仕事はがん研究のためにイタリア語協会支えられた [捜査官補助金 GS、および 12162 にアップ、14318 15928 号 (特別プログラム「がんリスク評価と早期診断の革新的なツール」、5 × 1000)];イタリア保健省 [グラント号RF-2010];国立がん研究所 (アメリカ) から UO1 CA166905 を付与します。MB は、財団 Pezcoller 奨学金によって支えられました。

当院の研究倫理委員会で承認されたプロトコル。
 1 プラズマ サンプル コレクション K 2 EDTA のスプレー塗装と室温で保管バキュテナー チューブ内 <ol><li>収集 10 mL 全血のサンプル。 。
	メモ: 溶血を抑える、2 h でプラズマを区切ります。熱衝撃を避けるために、セル換散非特異的 miRNA のリリースにつながる低温 (すなわち、4 ° C) で全血を格納しないでください</li>。
	<li>内で 1 時間、別の 1,258 x g と 10 分のための 4 ° C でまず遠心分離によるプラズマ</li>
	<li>リンパ球性のリングが付いている接触を慎重に回避 15 mL チューブに上清のプラズマを転送します</li>。
	<li>遠心分離機プラズマ 1,258 x g で 10 分のための 4 ° C 2 時間</li>
	<li>1.5 mL クリオバイアル、管の基部に血漿分画の収集を回避するのにプラズマの分注 1 mL</li>。
	<li>ストアすべての因数で &#8722;、溶血の評価の 1 つを除いて、80 ° C。5 週間以内、分子の分析を実行する必要があります</li>。
</ol> 2。吸光光度測定による溶血の評価 <ol><li>プラズマ分離ステップの吸光光度法、キュベットで作る、1:10 直後後 (例えば、100 μ L の 1 X 900 μ L 中のプラズマの 1x PBS で血漿の希釈PBS) とそれを均質化するミックス 
	注: 血漿サンプルは固定されません吸光光度測定、凍結サンプルの (および特に lipemic のサンプルで) として吸光光度分析に干渉 flocculates を形作ることができる前にします</li>。
	<li>375 で吸光度を読み 414 nm nm、541 nm、および 576 nm 紫外可視分光光度計, を用いたベースライン補正解決 750 で nm とパスの長さ 10 mm. の 1 mL の 1x PBS を使用して空白の測定を行い</li>。
	<li>414 で吸光度の比を計算する nm ・ 375 nm; 1.4 より溶血されましたサンプルを考慮すると血の撤退を繰り返す (表 1 に QC1).</li>
</ol> 3。血漿総 RNA 抽出 均質化ソリューションの mL あたり 1 チオグリセ μ <ol><li>20 1 チオグリセ/均質化 (OMG) ソリューションの準備。1 チオグリセは粘性なので慎重に正確な測定のためのピペットします。それを使用する前に OMG ソリューションまたは 2-10 ° C で氷の上を冷やす 
	注: 作業ソリューションは 2 ~ 10 ° C で安定して 1 ヶ月</li>。
	<li>中断凍結乾燥 DNase ヌクレアーゼ フリーの 275 μ L を追加することによって私はバイアルに水し、軽くミックス (ボルテックスにかけないでください)。視覚補助として追加 5 μ L ブルーの私を再構成した DNase を染めるし、ヌクレアーゼ フリー チューブの単回使用の因数にソリューションを分配します。再構成した DNase を保存私-10-30 ° c ° C</li>
	<li>プラズマの 200 μ L から、追加 200 μ L 冷蔵 OMG ソリューションの</li>。
	<li>渦 15-30 秒完全な均質化を確保するため。泡が発生した場合は氷に落ち着くサンプルを聞かせて</li>
	<li>追加 200 μ L の換散バッファーと 25 μ L の試料と 20 の渦にプロティナーゼ K の s.</li>
	<li>、Thermomixer で 15 分間サンプルが 37 で予熱加温 ° C</li>
	<li>楽器のデッキ プレート トレイの各サンプルのカートリッジをロードし、適切な位置に、栓を配置します</li>。
	<li>計測器カートリッジ内の適切な位置にライセートを転送します</li>。
	<li>DNase の追加 5 μ L 私カートリッジ内の適切な位置にソリューションします</li>。
	<li>各溶出チューブのベースにヌクレアーゼ フリー水の追加 60 μ L.</li>
	<li>選択、&#34; RSC miRNA 組織 &#34; メソッドと実行自動精製を開始。RNA サンプルの合計で格納できる &#8722; 80 ° C</li>
</ol> 4。Taq ベースの RT <ol><li>Taq マイクロ Rna を逆転写キット cDNA に RNA を変換する興味の miRNAs の Taq RT プライマー プールを使用します</li>。
	<li>カスタム Taq RT プライマー プール 6 μ を使用してキットの手順に従って 1.5 mL 遠心チューブに氷の上の RT の反作用の組合せの準備 12 μ L.</li>
	<li>追加 3 μ l の最終体積 15 μ L の RNA を合計、5 分氷でインキュベート</li>
	<li>ロード熱 cycler の構成のとおりに RT の反作用: 16 ° C、30 分、30 分、85 ° C で 4、5 分押しの 42 ° C ° C 
	注: cDNA は少なくとも 1 週間の-20 ° c-15 ストアをすることができます</li>。
</ol> 5。中古増幅 <ol><li>ミックス 2.5 μ L 各 RT 製品の 25 μ L の総ボリュームの 6.25 μ L ヌクレアーゼ フリー水、3.75 μ L カスタム Taq プール、2 x Taq マスター ミックスの 12.5 μ L.</li>
	<li>は、次の熱プロファイルに従って熱 cycler を使用して中古増幅反応を実行: 95 ° C、10 分、2 分、2 分、12 サイクル 95 ° C の 15 ° C、72 ° C、55 s、および 4 分の 60 ° C、押し 99.9 ° C 10 分、4 ° C</li>
	<li>は 0.1 X テ, pH 8.0 175 μ L を追加することによって、製品を希釈します 。
	注: 希釈は少なくとも 1 週間の 15-20 ° C ~ で店をすることができます</li>。
</ol> 6。カスタム Taq アレイ マイクロ Rna カード RT qPCR 反応 <ol><li>使用 384 ウェル microfluidicCustom Taq 配列マイクロ Rna カード 8 サンプル 24 特定 miRNAs (重複で発見) の血漿中濃度を同時に測定します。24 の miRNAs の MiRBase id (v21): ミール-101 が 3 p がミール-106 a-5 p、ミール-126 が 3 p は-ミール-133a-3 p は、ミール-140 が 3 p、ミール-140、5 p、ミール-142、3 p、ミール-145 が 5 p はミール-148b-3 p は-ミール-15 b-5 p は、ミール-16 は 5 p、ミール-17 は 5 pミール-197 は 3 p が-ミール-19b-3 p は、ミール-21 は 5 p、ミール-221 が 3 p、ミール-28 が 3 p がミール-30 b-5 p はミール-30 c-5 p はミール 320 a がミール 451 a、ミール-486 は 5 p、ミール-660 は 5 p、およびが-ミール-92 a-3 p</li>
	<li>Taq ユニバーサル マスター ミックス × 2 の 56.25 μ L とヌクレアーゼ フリー水 0.5 mL チューブの 55.69 μ L 希釈のプリアンプのサンプルのミックス 1.13 μ L.</li>
	<li>カスタム Taq アレイ マイクロ Rna カードに最大 8 PCR 反応混合物をロードします</li>。
	<li>2 分の 311 × g で遠心します。</li>
	<li>アレイ カード シーラーとカスタム カードをシールします</li>。
	<li>反応が続いて、サイクリングのパラメーターの変更リアルタイム PCR システムを使用して、リアルタイムの実行: 94.5 ° C、10 分、30 の 97 ° C の 40 のサイクル 59.7 60 ° C、s、s.</li>
</ol> 7。データの外挿と比世代 <ol>バック グラウンド信号およびすべての試金およびサンプルの 0.15 の固定しきい値を削除する自動ベースラインを設定、raw の Ct 値を取得する <li>ソフトウェアを使用します。貧しい増幅曲線および/または受動的な参照信号とスポットを削除します</li>。
	<li>で生の Ct 値をエクスポート &#34; .xls &#34; フォーマットし、さらに分析の 2 つの重複の Ct の平均値を使用します</li>。
	<li>相関 Mirna &#39; 臨床研究サンプルの上で歴史的な測定に表現レベル(表 2)。各カスタム作られたマイクロ カードのサンプルの少なくとも 50% は、ピアソンの結果する場合 &#39; s 相関 &#60; 97.5、繰り返してカード (表 1 の QC2).</li>
	<li>計算、&#8722; すべての Mirna、miRNA 比 log2 値に相当の間 ΔCts です</li>。
</ol> 8。署名関連の miRNA による溶血の評価 <ol><li>生成次の miRNA 比それぞれカットオフ (log2 値) を用いた短い記憶域血漿検体用 miRNA の溶血関連署名 (1-5 週間で &#8722; 80 ° C)。ミール-126/451 &#60; &#8722; 0.07、15 b/451 &#60; &#8722; 3.67、221/451 &#60; &#8722; 3.18、30 b/451 &#60; &#8722; 1.1、126/486-5 p &#60; &#8722; 0.33、15 b/486-5 p &#60; &#8722; 3.86、221/486-5 p &#60; &#8722; 3.17、30 b/486-5 p &#60; &#8722; 1.42、126/92 a &#60; 1.8、15 b/92 a &#60; &#8722; 221/92 a、1.8 &#60; &#8722; 1.04 30 b/92 a &#60; 0.87、126/16 &#60; &#8722; 15 b/16 2.85 &#60; &#8722; 6.33、221/16 &#60; &#8722; 5.9、30 b/16 &#60; &#8722; 3.68</li>。
	<li>比 (8 のうち 16) の少なくとも 50% がそれぞれカットオフを超える溶血のサンプルとして分類 (表 1 の QC3).</li>
</ol> 9。リスク レベルの定義: 高、中間、および低 図 3 で報告された MSC を構成する miRNA 比 <ol><li>4 つ定義署名: 病 (RD)、積極的な病 (RAD) の存在の危険性の危険性病気 (PD), と積極的な疾患 (PAD) の存在</li>。
	<li>各署名に対して短い記憶域血漿検体のそれぞれのカットオフ値を超える比率を定義 (1-5 週間で &#8722; 80 ° C)。超える比肯定的な考慮する必要がある数は RD の PD、27 のうち 9、RAD のパッド ( 図 3 A) 28 のうち 14</li>。
	<li>属性各サンプルにそれぞれの MSC リスク レベル次のように: 場合リスクは低く RD neg &#8745; PD neg &#8745; RAD neg &#8745; パッド neg; 中間リスク場合 RD pos &#8746; PD pos &#8745; RADneg &#8745; パッド neg;または高リスク場合 RAD pos &#8746; パッド pos ( 図 3 B).</li>
</ol>

<ol>
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ガブリエラ ・ ソッツィ、マティア ・ ボエリ、羽後 Pastorino は、この資料で明らかに miRNA 署名に関する Gensignia 生命科学へのライセンス 3 つの特許出願の共同発明者です。残りのすべての著者を送信した作業に関連して利益相反宣言しません。

落とし穴と方法論的ワークフローの課題 BioMILD は、診断ツールとして循環の miRNAs の分析最初の前向き研究は、しきい値とカットオフ データ解析のために利用された回顧シリーズから生成されます。血漿検体の異なるストレージの間隔の問題を克服するためにパラメーターが MSC のパフォーマンスの増加の可能性に洗練されたことができます。しかし、Mirna の解析を開始する前に全体的なプロセスのいくつかの側面は、包含の規準、検体の採取、処理など慎重に評価する必要があります、データ解析のバイオインフォマティクス アルゴリズムを採用します。次のセクションは、各単一ステップの主要な問題に対処し、それらを克服する戦略を立案し、本稿で説明したワークフローのほとんどの重要なポイントについて説明します。
調査の人口 スクリーニング試験 BioMILD の登録基準: 50 〜 75 年古い、重い現在または過去 (10 年未満) の喫煙者、少なくとも 30 パック年と 5 年以内にがんのない前の歴史。この人口の推定肺がんの有病率と年間発生率であった約 1% 0.7%。提案プロトコルで説明されているように MSC テストを適用するために分析した人口は、類似した特性を維持しなければなりません。特に、上記 QC2 ステップは同様の母集団から得られた特定の過去のデータとの比較を含みます。97.5 以下の相関関係は、技術的な問題を示すものになる可能性が、その一方で、変更された循環 miRNA レベル肺癌のリスクを反映してほとんどの人が実際にしきい値以下。つまり、ここで報告されたパラメーターと QC2 ステップを肺癌のリスクが高い人口に適用する場合は、許容可能なサンプルを除外すること。新しい、適切な参照パラメーターも、各人口の期待される結果によると分析のために特定を定義する必要があります。
採血し、溶血 生物学的サンプルのコレクションです重要な事前分析ステップ サンプル品質や特性を損なう従って分析の最終結果を変更可能性がありますので血液サンプルについては、新鮮な血液を収集し、試料を可能な限り迅速に処理することが重要です。サンプルは、4 ° C で保存するも凍結・融解の通路は、セル換散 (溶血) および RNA の劣化を引き起こす可能性がありますので、血撤退後冷凍する必要があります。溶血処理を最小限に抑えるためには、血液コレクション31から 2 h でプラズマを分離することをお勧めします。
溶血は赤い血球 (赤血球) の内訳と周囲の環境に自分のコンテンツの結果リリースが主原因です。これは、循環赤血球細胞内コンテンツのリリースが大幅に潜在的プラズマ解析30の精度に影響を与える、血中マイクロ Rna プロファイルを変えるためにのテスト miRNAs の問題かもしれない。
また血漿検体の溶血の最小限のレベルを識別するためにできることは、バイオ マーカーとしての miRNAs の循環に基づく研究にとって重要です。溶血以来 [高度溶血サンプルの赤黄色からプラズマの色の範囲、2 つの遠心分離手順後外観検査によって最初評価できます。しかし、単なる目視検査は、分子バイオ マーカー研究のコンテキストで十分な区別できない場合があります。
溶血血漿サンプルを識別するために簡単な事前分析方法は、吸光光度測定波長 (λ) = 414 主なヘモグロビンのピーク吸光度、干渉の他のソースの適切な調整後の nm。375 で吸光度値に 414 nm ピークを正規化は、そのため、nm、33脂質のコンテンツを示すもの。軽症 independenthemolysis スコア (HS) の組み合わせで、またはより良い、使用される34をすることができます。このオンカラム ベースのプロシージャは、少なくとも 6.1 mg/dL 無料ヘモグロビンを識別できます。それ以外の場合、赤血球固有 Mirna 検出による溶血検体を識別できます。フォルトゥナートらが効率的にできる 16 の miRNAs 比率に基づいて特定の溶血関連シグネチャを識別も溶血の非常に低い割合は、赤血球固有 miRNA レベル32でかなりの増加を引き出すことができる、のでプラズマ サンプル33溶血を分類します。述べられるすべてのアッセイは、吸光度比 414/375 以来の組み合わせで使用されるかもしれないおよび/または溶血関連 Mirna を測定品質管理としてポスト分析フェーズで使用できるに対し、さらにコストを節約予備解析の段階で HS を採用ステップ。
Mirna の分離と RNA の純度を循環 抽出 RNA プロシージャは、以降の解析の成功のための非常に影響力のあるステップです。抽出など、プラズマの低入力サンプルから始まって miRNAs の正確な数量を確保するため可能な限り効率的にする必要があります。プラズマは、多くの蛋白質、核酸、RT qPCR の下流の酵素反応を妨害することができますし、循環 Mirna 検出に影響を与える可能性があります他のコンポーネントなどの高濃度が特徴です。いくつかの抽出方法は、研究のこれらのタイプで使用されているが、一般に、RNA 濃縮のシリカ系有機抽出がプラズマ阻害剤より良いし、TRIzol だけで35の除去をできます。それにもかかわらず、手動で抽出はここ数年で自動抽出による交換済み。汚染、高い再現性および経済の時間使用のマイナーなリスク手動隔離のプロトコルに比べて自動化システムの主な利点であります。また、自動抽出法は、血液サンプル手動プロトコル36と比較して最高の効率から最高のマイクロ Rna 量をもたらした。
正規化の問題 血中 miRNA の正常化はまだ物議を醸す問題です。確かに、サンプルの質や量の違いは、存在や病気、従って曖昧なデータ解釈につながるとの結論を誤解を招くリスクによる Mirna 発現レベルの真の変化の同定と干渉することができます。これまでのところ、コンセンサスの欠如は、様々 な正規化戦略37になりました。
血漿から抽出された総 RNA は通常紫外線吸光光度法または蛍光を用いた吸光光度法などの標準的な数量化のしきい値を下回るこうして RNA 質量標準化38を排除します。その結果、溶出 RNA 量が固定ではなく、固定ボリュームが RT 反応39の入力として選択されます。
組織サンプルで miRNA 解析に使用成績のハウスキーピング、RNU48 と RNU6 のようなには適していない細胞マイクロ Rna 測定を正規化両方ないので常に RNase を介した劣化40のための循環の検出疾患特異的37の自由化もと。すべての循環の miRNAs はコントロールを参照として効果的に使用できるかは明らかです。たとえば、ミール 16 よくハウスキーピング、d の提案します。それはがん患者28,37の血漿検体を自由化は母国の調査は示した。また、ミール 16 レベルは高度溶血30に影響されます。
高スループット試金のためいくつかの Mirna を測定し、平均の式の値に正規化ですが一般に認められた41miRNAs の限られた数は、分析する必要がある場合、この正規化の方法は適用できません。正規化の問題を回避するためにボエリらは以前に 24 の miRNAs28相互比率に基づいてアルゴリズムを確立しました。診断ツールの開発に非常に有用であるにもかかわらず、このようなアプローチは、おそらく腫瘍の開発の役割を持っている、従って機能キャリブレータとして Mirna を識別する Mirna を変更効果的に区別することを容易に許可しません。肺がんの早期発見、血清ミール-テストを開発したビアンキらのグループが採用したもう一つの効果的な戦略は、6"ハウスキーピング血清-Mirna"小さいサンプルの中でさまざまな群の幾何平均を正規化に基づいていたと患者42のクラス。
MiRNA ベース液生検と潜在的なアプリケーションの機能 プラズマ ベースの MSC は、重い喫煙者で肺癌の早期診断の研究分子非侵襲的なテストです。MSC テスト (SE、87%)、高い感性と負の予測値 (NPV、99%) による手法、肺癌発見前に中間またはリスクの高い科目を識別できます。具体的には、MSC を例のスクリーニング手法だけで29の 19.7% から 3.7%、偽陽性を減らすことによって実装できます。MSC テストはまた唯一肺がん患者を考慮したとき良好な予後に示している単独で、または他の臨床病理学的パラメーター43,44との組み合わせで監視ツールとして使用することができます。潜在的に、MSC テストはスクリーニングの費用対効果の減少肺がん診断アルゴリズムの一貫性を向上できます。
MSC のほか早期肺癌発見のための他の非侵襲的なテストが報告されています。ビアンキら。循環のミール テスト 34 miRNA 署名45、に基づいて、13 miRNA 署名42に削減を提案しました。得られた血清サンプル fordiscovery と検証から連続観測の喫煙被験者 (コスモス) 例スクリーニング試験では、欧州機関のオンコロジー (IEO)、ミラノ、イタリア) で実行されます。ミール テストは、リスクの高いボランティアの肺がん検診の 78% の精度を示した。13 血中 Mirna と MSC を構成する 24 の間だけ 5 miRNAs (ミール 92 a、ミール-30 b、ミール-30 c、ミール-148a とミール-140-5 p) の重複だった。異なるタイプのサンプル (プラズマ対血清) を開始し、データの精緻化によるものと考えられます。実際には、ミール - テストは、血清、ハウスキーピングとして振舞っている著者の選択した 6 Mirna を 3 含まれていた MSC miRNA 比 (ミール 15 b、ミール-19b とミール 197) の中でも。それにもかかわらず、プラズマでの MSC とミール実験血清より深く肺癌の検出のため液体生検の miRNA ベースの使用を検証します。
MiRNAs 肺がんバイオ マーカーの同定のためプロファイリングは、喀痰サンプル46にも行われています。喀痰を簡単に収集することができます、それで非常に安定する miRNA の発現レベルが表示されます。ただし、肺がん検診ボランティアは 50-55 歳以上であり、痰になり、入手が困難な COPD などの併存と重い喫煙者であります。確かに、別の体液の中でプラズマとして miRNAs の潜在的な役割を調査するための最良の選択肢の一つです (ただしに限定されない) 肺がんバイオ マーカー。
全体的に、本稿で説明する手順は制限なし (神経系、心血管疾患や糖尿病、癌) から検討した病理学のタイプとの目的で、様々 な疾患のコンテキストに関連することができます。臨床使用 (診断、予後、治療にも反応をバイオ マーカー)。

肺癌は、最も一般に診断されたがんすべて癌診断1の約 25% を占める、世界中です。過去 2 年間、減らされたタバコの使用のために主に肺癌の死亡率の着実な減少にもかかわらず肺がん両方の男性と女性の癌死の主要な原因のまま。2017 年に、それは約 25%、アメリカ合衆国、ヨーロッパ、それぞれ1,2で全がんによる死亡の 20% を占めると予測されます。
以来、症状は、通常病気の早期では発生しないが、肺癌の大部分は後半の段階で診断されます。これは、治療的介入と治療3の貧しい人々 の有効性の限られた可能性に します。したがって、多くの科学的な努力を目的で早期肺癌発見の効果的なテストを識別します。
さまざまな試験をスクリーニングは、低線量計算トモグラフィー (例) 初期段階肺がん4を検出するための撮影と比較してより良いツールに対し、胸部が肺がん検診に値を持っていないことを示しています。さらに、手法を使って thatscreening 削減肺がん死亡率現在および元ヘビースモーカー5間で 20% までが示されています。これらのデータは、いくつかのプロ社会4,6ガイドラインで定義されている危険度が高い人口の肺がん検診の使用をサポートします。
例のスクリーニングに関する主要な懸念の中でのメモの偽陽性・過剰診断率が高いがあります。この科学的なコミュニティはこれらの問題を克服し、例のスクリーニング検査の特異性を高めるのための戦略を探しています。非侵襲的な相補的なバイオ マーカーの開発はここで役に立つかもしれない。日には、捜査では、Mirna、DNA、遺伝子のメチル化、小さなタンパク質など他の候補バイオ マーカーの広範なリストがある7。
血液ベースのバイオ マーカー、Mirna、循環と免疫応答バイオ マーカーを含むより高度な検証フェーズ8に達する。免疫応答バイオ マーカーは、両方の細胞と表面の腫瘍抗原に対する免疫応答肺がん患者9組み込まれている知識に基づいています。例えば、AjonaらC4d、診断、肺がん10の予後、古典的補体経路の分解産物の役割を評価しました。そうでなければ、市販の抗体血清テスト 7 腫瘍関連抗原を非小細胞肺癌患者で検証されており、感性の 36% を示し, 特異性11の 91% を調べるします。免疫応答バイオ マーカーは、興味深いですが潜在的な臨床応用のための検証研究が必要があります。
miRNAs は内生小さい非コード Rna 保存機構と動物や植物の王国中大の機能的意義。Mirna の役割はタンパク質翻訳を調節する: ターゲット遺伝子12の大規模なセットの発現を抑えます。それはよく記載されている変化 ofmiRNAs の式がほとんどの人間のがん12,13,14の病因に貢献します。さらに、腫瘍と間質細胞の両方解放機構の解明に、血漿、血清15,1617 尿などの体液に RNA 結合蛋白質、協会の定款によって安定化された Mirnaと唾18。ホスト応答と腫瘍とその微小環境19動的相互作用、Mirna を循環を反映したがって場合があります。一緒に取られてこれらの観測を行った循環 miRNAs ひと癌の検出のための biomarkers の有望なクラス。
さまざまな方法で検出できる Mirna を循環: マイクロ アレイ プラットフォーム20、定量的逆転写 PCR (RT qPCR)21、および次世代シーケンス (NGS)14,22。前述の技術に基づいて様々 な発現プロファイル研究は、最後の年で開発されています。マイクロ アレイは、高スループット技術、何千もの 1 つの単一のアッセイの miRNAs を分析することです。ただし、低ダイナミック レンジと Rt-qpcr や NGS に比べて特異性があります。さらに、マイクロ アレイ、非定量法、そのためさらなる実験的検証が必要。シーケンス ベースのメソッドは、未知の miRNAs の同定を許可し、検出フェーズに特に適しています。一方、NGS メソッドはまだ高価であり、特別な機器や専門家の多くは、こうして大検証コホートと臨床23利用の制限が必要になります。現時点では、RT qPCR、診断/臨床コンテキスト24miRNA 検出を循環させるため最も採用されているプラットフォームです。Mirna の解析に使用できるさまざまな RT qPCR テクノロジーがありますが、TaqMan PCR によって続いた茎ループ RT は、最も広く使用されている25。この手法は、非常に敏感で正確な (単一のヌクレオチドの差別)、高ダイナミック レンジ;しかし、知られている miRNAs のみの検出が可能します。
マイクロ Rna 品質管理研究 (miRQC) Mestdaghらは広く Mirna プロファイリング 3 前述技術26に基づいていくつかの市販のプラットフォームの特性を調査によって。196 miRNAs 組織と血清のサンプルを分析することによって異なるプラットフォームのパフォーマンスは、再現性や感度、精度、特異性、差動式の一致の面で評価されました。結果ことを示した NGS に基づいてプラットフォームとマイクロ アレイ技術は高い再現性と特異性、RT qPCR プラットフォームより正確な敏感なと特に体などの低入力 RNA サンプルのためのより高い検出率を持っていた流体。こうして Rt-qpcr よう日常臨床検査の潜在的なアプリケーションのための最も適切な方法です。
2011 年・ ソッツィら分析最初例 screeningtrial (INT IEO トライアル)27の登録ボランティアや Mirna を循環する 24 の相互比率によって構成される 4 つの miRNA 署名から収集した血漿検体の miRNA のプロファイル生成されました。これらの署名された、患者から病気自由な個人を識別することができるまたは致死例疾患検出28前に時間または最大 2 年間に肺がん。さらに論文では最初に説明した同じグループ時間 miRNA 署名分類 (MSC)、3 つのレベルのリスクの患者を分類するために 4 つの miRNA 署名を組み合わせることによって得られる: 高、中、低です。その臨床的有用性は、軽度のスクリーニング試験、観測アーム29と年次または隔年の例の腕を比較する無作為化試験に登録 1,000 以上の個人の大規模な回顧展セットで検証されました。確かに、MSC と手法の組み合わせ削減例偽陽性率が約 5 倍と 3 つの MSC リスク グループ全生存期間に関連付けられています。
「Fondazione IRCCS Istituto ナツィオナーレ ・ デイ ・周辺」で 2013 年に後で (ミラノ、それ) 将来スクリーニング試験 (BioMILD) ベースの MSC テストが開始されたプラズマを用いた手法を実装します。BioMILD 試験に登録ボランティアはすぐに別のカスタム作られたマイクロ カードを使用したプロファイリング miRNA のプラズマに処理手法と血の撤退を受けます。手法と結果の組み合わせでは、特定健診でアルゴリズムの24を定義します。
現在の仕事から血液サンプルのコレクション、プラズマ分離、RNA の抽出、BioMILD 試験で使用される全体の方法論的プロトコルが記載されてし、Rt-qpcr マイクロ カードを作った 24 Mirna 発現プロファイルのカスタムを使用します。高い一貫性と再現性を考えると、これらの手順も使用できます他の疾患における液体生検の miRNA ベースの開発のため。

<table><tbody><tr><td>&amp;nbsp;1x PBS&amp;nbsp;</td><td>Lonza</td><td>BE-17-516</td><td></td></tr><tr><td>20xTE Buffer, pH 8.0</td><td>Molecular probe</td><td>T11493</td><td>Dilute the 20X stock solution to have the final concentration of&amp;nbsp; 0,1X in Nuclease-free water</td></tr><tr><td>Nuclease-free water&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Maxwell RSC miRNA Tissue Kit&amp;nbsp;</td><td>Promega</td><td>AS1460</td><td>The kit contains Homogenization Solution, DNase I, Proteinase K, Lysis Buffer and cartridges. For 1-Thioglycerol, inhalation and contact with skin and eyes should be avoided. Use it under a Fume Cabinet.</td></tr><tr><td>TaqMan MicroRNA Reverse Transcription Kit&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher</td><td>4366596</td><td></td></tr><tr><td>Custom TaqMan RT Primer Pool&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher</td><td>4459649</td><td></td></tr><tr><td>TaqMan PreAmp Master Mix 2X&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher</td><td>4391128</td><td></td></tr><tr><td>Custom TaqMan&amp;nbsp; PreAmp pool&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher</td><td>4459657</td><td></td></tr><tr><td>TaqMan Universal Master Mix II, No UNG 2x&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher</td><td>4440048</td><td></td></tr><tr><td>Custom TaqMan Array MicroRNA Cards&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher</td><td>4449137</td><td>Bring the Custom TaqMan Array MicroRNA Cards to room temperature before to load samples</td></tr><tr><td>Vacutainer Safety-Lock Blood Collection Set&amp;nbsp;</td><td>Becton Dickinson</td><td>367286-364815</td><td></td></tr><tr><td>Vacutainer plastic spray-coated K&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;EDTA tube.&amp;nbsp;</td><td>Becton Dickinson</td><td>366643</td><td>Lavender BD Hemogard closure&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Cuvette PS semi-micro&amp;nbsp;</td><td>VWR/PBI</td><td>&amp;nbsp;643-0326</td><td>Light path 10 mm</td></tr><tr><td>NanoDrop 2000c UV-VIS Spectrophotometer</td><td>Thermo Fisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cryogenic vials 1.5 ml&amp;nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z359033</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge 5810R&amp;nbsp;</td><td>Eppendorf</td><td></td><td>Bring the centrifuge to 4 &amp;deg;C before starting plasma collection</td></tr><tr><td>Heraeus Multifuge 3S+ Centrifuge</td><td>Thermo Fisher</td><td>D-37520</td><td></td></tr><tr><td>Vortex Mixer</td><td>Velp Scientifica</td><td>F202A0173</td><td></td></tr><tr><td>ThermoMixer T- shaker</td><td>Euroclone&amp;nbsp;</td><td>A00564</td><td>Bring the Thermo Mixer to 37 &amp;deg;C before starting RNA&amp;nbsp; extraction</td></tr><tr><td>Maxwell RSC Instrument</td><td>Promega</td><td>AS4500</td><td></td></tr><tr><td>GeneAmp PCR System 9700 thermo-cycler&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ViiA 7 Real-Time PCR System&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ViiA 7 RUO software&amp;nbsp;</td><td>Thermo Fisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Arrey Card Staker/Sealer</td><td>Thermo Fisher</td><td>4331770</td><td></td></tr></tbody></table>

microrna based liquid biopsy: the experience of the plasma mirna signature classifier (msc) for lung cancer screening

前臨床段階で早期肺癌発見のため液体の生検など、低侵襲テストの開発は、この致命的な病気の予後を改善することが重要です。マイクロ Rna (Mirna) は、特定の小さな、非コーディング RNAs 生体信号の細胞外のメッセンジャーとして機能するかもしれない遺伝子の発現を調節する、腫瘍とその周囲の微小環境間のクロストークから派生した組織です。彼らは従って肺癌の早期発見のための理想的な候補者を表すことができます。この作品での肺がん検診では、試用版で登録ボランティアの血漿サンプル カスタム作られたマイクロ カードおよび量的なリアルタイム PCR を使用して循環 miRNA テストの将来の検証のための方法論的ワークフローを提案します。さらに、以来、miRNAs の溶血に関するより一般的な技術的な問題のリリースは分析に影響を与える、標準の操作手順に含まれている品質管理手順は掲載されています。プロトコルは再現性のある、信頼性の高い定量的な結果を与えるただし、大臨床シリーズを使用する場合事前分析と解析の両方の機能で慎重に評価します。

BioMILD 試用版が重い喫煙者個人の大規模コホートで一次スクリーニング検査として組み合わせた例 MSC アプローチの効率のテストを目的とした肺がんの早期発見のための前向き研究。リスクのクラスは 24 プラズマ循環 miRNAs の比率を評価する miRNA のテストに基づいて各ボランティアに起因します。主報告30,31,32溶血は偽の結果は、血液細胞によって miRNAs の非特異的なリリースのため得ることができるので、miRNA を循環の解析の重要な問題です。方法論的ワークフロー提案の事前分析の品質管理は、溶血されましたを識別する (表 1に QC1) をステップし、こうして非解析、血漿サンプルは記述されていた。図 1は、溶血 (図 1A) とそれぞれ A414/A375 値と非溶血されました (図 1B) 血漿検体の吸光光度分析をレポートします。臨床における分子テストの結果、有志管理のため重要なこの QC1 が許可された採血を繰り返すと、ほとんどの場合、サンプルを復元します。
分子処理後 RT qPCR のパフォーマンスを正確に技術的な問題を識別するために評価されるべき。図 2Aは、受動的な参照信号に起因する低性能と Rt-qpcr を示しています。この場合新しいマイクロ カードに事前の増幅産物をリロードすることをお勧めします。図 2Bのように、RT qPCR がうまくカード miRNA の式の値が歴史上の測定と対等であることを確認する最初のポスト分析の品質管理手順に進みます (表 1の QC2)。QC2 ステップが失敗した場合、中古増幅反応、逆のトランスクリプションの間に、技術的な問題が発生したし、逆のトランスクリプションから始まって全体の分子の処理を繰り返しすると便利です。
最後の品質管理手順 (表 1の QC3) 評価分子レベルにおいても溶血。(ミール 16、ミール 451、ミール-486-5 p、およびミール 92 a) 4 の赤血球固有 Mirna の発現レベルを比較した 4 非溶血関連 miRNAs (ミール 126、ミール 15 b、ミール-221、ミール-30 b) のそれらに、miRNA の溶血に関する署名の生成によって構成される、16 (4 x 4) miRNA 比。肯定的なサンプルは、プロトコル セクション 9 および図 3で説明したよう最終的な MSC リスク レベルの分類に否定的なサンプルが進む中、溶血されましたように分類されます。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56326/56326fig1.jpg"> 
図 1:新鮮血漿試料の吸光光度分析します。溶血されました 2 (A) の吸光光度プロファイルおよび (B) 2 非溶血されました血漿検体、波長 A414 A375 比吸光度を測定します。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56326/56326fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56326/56326fig2.jpg"> 
図 2: マイクロ流体 Rt-qpcr パフォーマンス カード解析します。増幅と多成分は、貧困層の比較 (A) と (B) 良い品質マイクロ カードを印刷します。すべての 24 の miRNAs と単一代表 miRNA は、各パネルで報告されます。多成分のプロットは、これらの RT qPCR 反応で発生する受動的な参照信号を示しています。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56326/56326fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56326/56326fig3.jpg"> 
図 3:リスク層別化のための MSC アルゴリズム。ボランティアから 6 の血漿サンプルを考慮した代表的な結果は、スクリーニング試験 BioMILD に在籍。(A) 疾患 (RD)、積極的な病 (RAD) 病 (PD)、積極的な疾患 (PAD) と対応するカットオフ値 (log2)-80 ° c で保存血漿検体の存在の存在の危険性のリスクの miRNA 比の署名少なくとも 1 週間、5 週間まで。(B) 組み合わせ高 (H) で解析可能なサンプルを分類する 4 つの署名の中間 (I) と低 (L) MSC リスク レベル。<a href="//ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56326/56326fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

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MicroRNA Based Liquid Biopsy: The Experience of the Plasma miRNA Signature Classifier MSC for Lung Cancer Screening

ここでは、早期肺癌発見のため循環マイクロ Rna 署名分類テストの実施試験をスクリーニングして、BioMILD で採用された詳細なプロトコルを提示します。

マイクロ Rna による液体生検: プラズマ miRNA 署名分類 (MSC) がん検診用の経験

The development of a minimally invasive test, such as liquid biopsy, for early lung cancer detection in its preclinical phase is crucial to improve the ...

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Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Cancer Research

MicroRNA Based Liquid Biopsy: The Experience of the Plasma miRNA Signature Classifier (MSC) for Lung Cancer Screening

15.6K ビュー.  Fondazione IRCCS Istituto Nazionale dei Tumori. ここでは、早期肺癌発見のため循環マイクロ Rna 署名分類テストの実施試験をスクリーニングして、BioMILD で採用された詳細なプロトコルを提示します。

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Detection of a Circulating MicroRNA Custom Panel in Patients with Metastatic Colorectal Cancer

There is increasing interest in liquid biopsy for cancer diagnosis, prognosis and therapeutic monitoring, creating the need for reliable and useful biomarkers for clinical practice. Here, we present a protocol to extract, reverse transcribe and evaluate the expression levels of circulating miRNAs from plasma samples of patients with colorectal cancer (CRC). microRNAs (miRNAs) are a class of non-coding RNAs of 18-25 nucleotides in length that regulate the expression of target genes at the translational level and play an important role, including that of pro- and anti-angiogenic function, in the physiopathology of various organs. miRNAs are stable in biological fluids such as serum and plasma, which renders them ideal circulating biomarkers for cancer diagnosis, prognosis and treatment decision-making and monitoring. Circulating miRNA extraction was performed using a rapid and effective method that involves both organic and column-based methodologies. For miRNA retrotranscription, we used a multi-step procedure that considers polyadenylation at 3&#39; and the ligation of an adapter at 5&#39; of the mature miRNAs, followed by random miRNA pre-amplification. We selected a 24-miRNA custom panel to be tested by quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR) and spotted the miRNA probes on array custom plates. We performed qRT-PCR plate runs on a real-time PCR System. Housekeeping miRNAs for normalization were selected using GeNorm software (v. 3.2). Data were analyzed using Expression suite software (v 1.1) and statistical analyses were performed. The method proved to be reliable and technically robust and could be useful to evaluate biomarker levels in liquid samples such as plasma and/or serum.

We present a protocol to evaluate the expression levels of circulating microRNA (miRNAs) in plasma samples from cancer patients. In particular, we used a commercially available kit for circulating miRNA extraction and reverse transcription. Finally, we analyzed a panel of 24 selected miRNAs using real-time pre-spotted probe custom plates.

転移性大腸癌患者における循環マイクロ Rna カスタム パネルの検出

There is increasing interest in liquid biopsy for cancer diagnosis, prognosis and therapeutic monitoring, creating the need for reliable and useful ...

がん研究

Detection and Monitoring of Tumor Associated Circulating DNA in Patient Biofluids

Complications associated with upfront and repeat surgical tissue sampling present the need for minimally invasive platforms capable of molecular sub-classification and temporal monitoring of tumor response to therapy. Here, we describe our dPCR-based method for the detection of tumor somatic mutations in cell free DNA (cfDNA), readily available in&#160;patient biofluids. Although limited in the number of mutations that can be tested for in each assay, this method provides a high level of sensitivity and specificity. Monitoring of mutation abundance, as calculated by MAF, allows for the evaluation of tumor response to therapy, thereby providing a much-needed supplement to radiographic imaging.

Here, we present a protocol to detect tumor somatic mutations in circulating DNA present in patient biological fluids (biofluids). Our droplet digital polymerase chain reaction (dPCR)-based method enables quantification of the tumor mutation allelic frequency (MAF), facilitating a minimally invasive complement to diagnosis and temporal monitoring of tumor response.

患者の生体流体における腫瘍関連循環DNAの検出とモニタリング

Complications associated with upfront and repeat surgical tissue sampling present the need for minimally invasive platforms capable of molecular ...

Detection of Cell-Free DNA in Blood Plasma Samples of Cancer Patients

Identifying mutations in tumors of cancer patients is a very important step in disease management. These mutations serve as biomarkers for tumor diagnosis as well as for the treatment selection and its response in cancer patients. The current gold standard method for detecting tumor mutations involves a genetic test of tumor DNA by means of tumor biopsies. However, this invasive method is difficult to be performed repeatedly as a follow-up test of the tumor mutational repertoire. Liquid biopsy is a new and emerging technique for detecting tumor mutations as an easy-to-use and non-invasive biopsy approach.
Cancer cells multiply rapidly. In parallel, numerous cancer cells undergo apoptosis. Debris from these cells are released into a patient&#8217;s circulatory system, together with finely fragmented DNA pieces, called cell-free DNA (cfDNA) fragments, which carry tumor DNA mutations. Therefore, for identifying cfDNA based biomarkers using liquid biopsy technique, blood samples are collected from the cancer patients, followed by the separation of plasma and buffy coat. Next, plasma is processed for the isolation of cfDNA, and the respective buffy coat is processed for the isolation of a patient&#39;s genomic DNA. Both nucleic acid samples are then checked for their quantity and quality; and analyzed for mutations using next-generation sequencing (NGS) techniques.
In this manuscript, we present a detailed protocol for liquid biopsy, including blood collection, plasma, and buffy coat separation, cfDNA and germline DNA extraction, quantification of cfDNA or germline DNA, and cfDNA fragment enrichment analysis.

In this paper we present a detailed protocol for non-invasive liquid biopsy technique, including blood collection, plasma and buffy coat separation, cfDNA and germline DNA extraction, quantification of cfDNA or germline DNA, and cfDNA fragment enrichment analysis.

がん患者の血漿サンプルにおける無細胞DNAの検出

Identifying mutations in tumors of cancer patients is a very important step in disease management. These mutations serve as biomarkers for tumor diagnosis ...

Exosomal miRNA Analysis in Non-small Cell Lung Cancer (NSCLC) Patients' Plasma Through qPCR: A Feasible Liquid Biopsy Tool

The discovery of alterations in the EGFR and ALK genes, amongst others, in NSCLC has driven the development of targeted-drug therapy using selective tyrosine kinase inhibitors (TKIs). To optimize the use of these TKIs, the discovery of new biomarkers for early detection and disease progression is mandatory. These plasma-isolated exosomes can be used as a non-invasive and repeatable way for the detection and follow-up of these biomarkers. One ml of plasma from 12 NSCLC patients, with different mutations and treatments (and 6 healthy donors as controls), were used as exosome sources. After RNAse treatment, in order to degrade circulating miRNAs, the exosomes were isolated with a commercial kit and resuspended in specific buffers for further analysis. The exosomes were characterized by western blotting for ALIX and TSG101 and by transmission electron microscopy (TEM) analysis, the standard techniques to obtain biochemical and dimensional data of these nanovesicles. Total RNA extraction was performed with a high yield commercial kit. Due to the limited miRNA-content in exosomes, we decided to perform retro-transcription PCR using an individual assay for each selected miRNA. A panel of miRNAs (30b, 30c, 103, 122, 195, 203, 221, 222), all correlated with NSCLC disease, were analyzed taking advantage of the remarkable sensitivity and specificity of Real-Time PCR analysis; mir-1228-3p was used as endogenous control and data were processed according to the formula 2-&#916;&#916;ct 13. Control values were used as baseline and results are shown in logarithmic scale.

Exosomal miRNA Analysis in Non-small Cell Lung Cancer NSCLC Patients' Plasma Through qPCR: A Feasible Liquid Biopsy Tool

This protocol describes the feasibility to perform miRNA profiling in exosomes, released in plasma of NSCLC patients, through a commercial exosome isolation kit with Proteinase K and RNAse treatments, in order to avoid circulating miRNAs contamination and evaluate their biomarker features in NSCLC.

定量PCRを通じて非小細胞肺癌（NSCLC）患者の血漿中のエキソソームのmiRNA解析：実行可能な液体生検ツール

The discovery of alterations in the EGFR and ALK genes, amongst others, in NSCLC has driven the development of targeted-drug therapy using selective ...

医学

A Blood-based Test for the Detection of ROS1 and RET Fusion Transcripts from Circulating Ribonucleic Acid Using Digital Polymerase Chain Reaction

We have developed novel methods for the isolation and characterization of tumor-derived circulating ribonucleic acid (cRNA) for blood-based liquid biopsy. Robust detection of cRNA recovered from blood represents a solution to a critical unmet need in clinical diagnostics. The test begins with the collection of whole blood into blood collection tubes containing preservatives that stabilize cRNA. Cell-free, exosomal, and platelet-associated RNA is isolated from plasma in this test system. The cRNA is reverse transcribed to complementary DNA (cDNA) and amplified using digital polymerase chain reaction (dPCR). Samples are evaluated for both the target biomarker as well as a control gene. Test validation included limit of detection, accuracy, and robustness studies with analytic samples. The method developed as a result of these studies reproducibly detect multiple fusion variants for ROS1 (C-Ros proto-oncogene 1; 8 variants) and RET (rearranged during transfection proto-oncogene; 8 variants). The sample processing workflow has been optimized so that test results can consistently be generated within 72 hours of sample receipt.

Detection of circulating ribonucleic acid (cRNA) from blood is an unmet need in clinical diagnostics. Here we describe methods that characterize cRNA from non-small cell lung cancer patients using sensitive and specific digital polymerase chain reaction. The tests meet design requirements to detect fusion variants within 72 hours.

血液ベース ROS1 の検出のためのテストし、デジタル ポリメラーゼ連鎖反応を使用してリボ核酸を循環から融合の成績証明書を RET

We have developed novel methods for the isolation and characterization of tumor-derived circulating ribonucleic acid (cRNA) for blood-based liquid biopsy. ...

Probe-based Real-time PCR Approaches for Quantitative Measurement of microRNAs

Probe-based quantitative PCR (qPCR) is a favoured method for measuring transcript abundance, since it is one of the most sensitive detection methods that provides an accurate and reproducible analysis. Probe-based chemistry offers the least background fluorescence as compared to other (dye-based) chemistries. Presently, there are several platforms available that use probe-based chemistry to quantitate transcript abundance. qPCR in a 96 well plate is the most routinely used method, however only a maximum of 96 samples or miRNAs can be tested in a single run. This is time-consuming and tedious if a large number of samples/miRNAs are to be analyzed. High-throughput probe-based platforms such as microfluidics (e.g. TaqMan Array Card) and nanofluidics arrays (e.g. OpenArray) offer ease to reproducibly and efficiently detect the abundance of multiple microRNAs in a large number of samples in a short time. Here, we demonstrate the experimental setup and protocol for miRNA quantitation from serum or plasma-EDTA samples, using probe-based chemistry and three different platforms (96 well plate, microfluidics and nanofluidics arrays) offering increasing levels of throughput.

Circulating microRNAs have recently emerged as promising and novel biomarkers for various cancers and other diseases. The goal of this article is to discuss three different probe-based real-time PCR platforms and methods that are available to quantify and determine the abundance of circulating microRNAs.

プローブベースのリアルタイムPCRは、マイクロRNAの定量的測定のためのアプローチ

Probe-based quantitative PCR (qPCR) is a favoured method for measuring transcript abundance, since it is one of the most sensitive detection methods that ...

生物学

Fast and Simplified Method for High Through-put Isolation of miRNA from Highly Purified High Density Lipoprotein

Small non-coding RNAs (miRNAs) have been implicated in a variety of human diseases including metabolic syndromes. They may be utilized as biomarkers for diagnosis and prognosis or may serve as targets for drug development, respectively. Recently it has been shown that miRNAs are carried in lipoproteins, particularly high density lipoproteins (HDL) and are delivered to recipient cells for uptake. This raises the possibility that miRNAs play a critical and pivotal role in cellular and organ function via regulation of gene expression as well as messenger for cell-cell communications and crosstalk between organs. Current methods for miRNA isolation from purified HDL are impractical when utilizing small samples on a large scale. This is largely due to the time consuming and laborious methods used for lipoprotein isolation. We have developed a simplified approach to rapidly isolate purified HDL suitable for miRNA analysis from plasma samples. This method should facilitate investigations into the role of miRNAs in health and disease and in particular provide new insights into the variety of biological functions, outside of the reverse cholesterol transport, that have been ascribed to HDL. Also, the miRNA species which are present in HDL can provide valuable information of clinical biomarkers for diagnosis of various diseases.

MicroRNAs play an important regulatory role and are emerging as novel therapeutic targets for various human diseases. It has been shown that miRNAs are carried in high density lipoproteins. We have developed a simplified method to rapidly isolate purified HDL suitable for miRNA analysis from human plasma.

高度に精製された高密度リポタンパク質からのmiRNAのハイスループット分離のための高速かつ簡便法

Small non-coding RNAs (miRNAs) have been implicated in a variety of human diseases including metabolic syndromes. They may be utilized as biomarkers for ...

Exosome Isolation: A Technique to Separate Exosomes from the Plasma of Non-small Cell Lung Cancer Patients

Source: Giallombardo, M., et al. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/53900/exosomal-mirna-analysis-non-small-cell-lung-cancer-nsclc-patients">Exosomal miRNA Analysis in Non-small Cell Lung Cancer (NSCLC) Patients&#39; Plasma Through qPCR: A Feasible Liquid Biopsy Tool.</a> J. Vis. Exp.&#160;(2016).
The plasma-isolated exosomes can be used as a non-invasive and repeatable way for the detection and follow-up of the biomarkers for early detection and disease progression. This video describes the protocol for the separation of exosomes from the plasma samples of non-small cell lung cancer patients, which could be used for DNA and protein extractions.

エクソソーム単離:非小細胞肺癌患者の血漿からエクソソームを分離する技術

Source: Giallombardo, M., et al. Exosomal miRNA Analysis in Non-small Cell Lung Cancer (NSCLC) Patients&#39; Plasma Through qPCR: A Feasible Liquid Biopsy ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

肺がん

試験管研究

Antibody Microarray: A Technique to Study the Protein Expression of miRNA Treated Lung Cancer Cells

Source: Hossian, A. et. al. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/59460/analysis-combinatorial-mirna-treatments-to-regulate-cell-cycle">Analysis of Combinatorial miRNA Treatments to Regulate Cell Cycle and Angiogenesis.</a> J. Vis. Exp. (2019).
This video describes the technique to study the protein expression in miRNA transfected lung cancer cells by using antibody microarray to measure specific gene expression. In the featured protocol, we perform antibody microarray for the identification of the activity of a combinatorial miRNA treatment in halting cell cycle and angiogenesis.

抗体マイクロアレイ:miRNA処理肺がん細胞のタンパク質発現を研究する技術

Source: Hossian, A. et. al. Analysis of Combinatorial miRNA Treatments to Regulate Cell Cycle and Angiogenesis. J. Vis. Exp. (2019).
This video describes ...

Circulating miRNA Extraction: A Method to Isolate miRNA from Plasma Samples Via Organic Extraction and Small RNA Enrichment

Source: Canale, M. et al., <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/v/58615"> Detection of a Circulating MicroRNA Custom Panel in Patients with Metastatic Colorectal Cancer.</a> J. Vis. Exp. (2019).
This video describes the extraction of circulating microRNA from plasma samples of colorectal cancer patients using organic extraction followed by glass-fiber column enrichment. miRNAs are stable in biological fluids such as serum and plasma, which renders them ideal circulating biomarkers for cancer diagnosis, prognosis, and treatment decision-making and monitoring. This method will help identify new circulating biomarkers capable of predicting clinical outcomes in patients.

循環miRNA抽出:有機抽出と低分子RNA濃縮により血漿サンプルからmiRNAを単離する方法

Source: Canale, M. et al.,  Detection of a Circulating MicroRNA Custom Panel in Patients with Metastatic Colorectal Cancer. J. Vis. Exp. (2019).
This ...

マイクロ Rna による液体生検: プラズマ miRNA 署名分類 (MSC) がん検診用の経験

要約

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転移性大腸癌患者における循環マイクロ Rna カスタムパネルの検出

患者の生体流体における腫瘍関連循環DNAの検出とモニタリング

がん患者の血漿サンプルにおける無細胞DNAの検出

定量PCRを通じて非小細胞肺癌（NSCLC）患者の血漿中のエキソソームのmiRNA解析：実行可能な液体生検ツール

血液ベース ROS1 の検出のためのテストし、デジタルポリメラーゼ連鎖反応を使用してリボ核酸を循環から融合の成績証明書を RET

プローブベースのリアルタイムPCRは、マイクロRNAの定量的測定のためのアプローチ

高度に精製された高密度リポタンパク質からのmiRNAのハイスループット分離のための高速かつ簡便法

エクソソーム単離:非小細胞肺癌患者の血漿からエクソソームを分離する技術

抗体マイクロアレイ:miRNA処理肺がん細胞のタンパク質発現を研究する技術

循環miRNA抽出:有機抽出と低分子RNA濃縮により血漿サンプルからmiRNAを単離する方法

マイクロ Rna による液体生検: プラズマ miRNA 署名分類 (MSC) がん検診用の経験

要約

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転移性大腸癌患者における循環マイクロ Rna カスタム パネルの検出

患者の生体流体における腫瘍関連循環DNAの検出とモニタリング

がん患者の血漿サンプルにおける無細胞DNAの検出

定量PCRを通じて非小細胞肺癌（NSCLC）患者の血漿中のエキソソームのmiRNA解析：実行可能な液体生検ツール

血液ベース ROS1 の検出のためのテストし、デジタル ポリメラーゼ連鎖反応を使用してリボ核酸を循環から融合の成績証明書を RET

プローブベースのリアルタイムPCRは、マイクロRNAの定量的測定のためのアプローチ

高度に精製された高密度リポタンパク質からのmiRNAのハイスループット分離のための高速かつ簡便法

エクソソーム単離:非小細胞肺癌患者の血漿からエクソソームを分離する技術

抗体マイクロアレイ:miRNA処理肺がん細胞のタンパク質発現を研究する技術

循環miRNA抽出:有機抽出と低分子RNA濃縮により血漿サンプルからmiRNAを単離する方法

転移性大腸癌患者における循環マイクロ Rna カスタムパネルの検出

血液ベース ROS1 の検出のためのテストし、デジタルポリメラーゼ連鎖反応を使用してリボ核酸を循環から融合の成績証明書を RET