We would like to thank CSL Ltd. for supporting the purchase of the endoscopy equipment. The research in the laboratory of ME is supported by the Ludwig Institute for Cancer Research, and the laboratories of TP and ME are supported by the Victorian State Government Operational Infrastructure Support and the National Health and Medical Research Council of Australia. ME is an NHMRC Senior Research Fellow.

医学研究動物倫理委員会のウォルターとエリザ·ホール研究所は、これらのプロトコルに記載された手順のそれぞれを承認した。 実験マウスの作製<ol><li>少なくとも4性別の実験的コホートを構成するには、飼育さと同じ特定の病原体を含まない（SPF）動物施設/部屋に収容し、オートクレーブ食料と水で提供されて6〜8週齢のC57BL / 6マウス（ ハツカネズミ ） が一致した。雌マウスの使用は、異なる株からのマウスの共同住宅を可能にボックス番号を制限し、ケージにケージのばらつきを減少させる。 </li><li>そのマウスを確認し3.0ミリメートルの直径の内視鏡検査シースを使用して、内視鏡検査の手続きを可能にするために、年齢の少なくとも6週間である。 </li><li>腸内細菌叢に関連した変動を低減するために、同じラックに格納されているケージから、同じ遺伝的背景のマウス、および可能な場合に使用します。動物施設との間の細菌叢の変動が考慮WHEに入れなければならないnは各実験22に対する適切な対照マウスと遺伝子型を決定する。 </li><li>耳/つま先の切り抜き、タトゥー、または類似のことでマークマウスが簡単に識別できるようにする。 </li><li>ベースライン実験的な重みを決定するために、0日目にマウスを計量。 </li><li>内視鏡検査を実行し、ベースライン結腸の表現型を記録するために、0日目にマウスの（第5節参照）。 </li></ol>上皮損傷と急性大腸炎モデル2.前臨床試験<ol><li>治療剤の溶液を調製するテストされる。強制経口（PO）で配信治療のため、100μlに最大音量の解決策を準備する。腹腔内（IP）注射によって送達治療のために、200μlの最大音量の解決策を準備する。 注：長期間にわたって繰り返さipまたは経口薬剤投与は、変更されたマウスの動作が発生することができます。長期の不快感を避けるには、ip注射部位を交互に。経口投与のために、AUTOCをマウスに与える経管栄養の手順で不利な関連性を最小限にするために「御馳走」としてヒマワリの種をlaved。 </li><li> 1日目に、目的の治療（ステップ2.1で調製）と、適切な車両制御を管理する。 （ 図6A）提供される例では、組換えヒト5μgの（相対湿度）iInterleukin（IL）-11タンパク質を、200μlのリン酸緩衝生理食塩水（PBS）に溶解し、腹腔内投与した</li><li>テストされている治 ​​療薬のために確立された薬物動態プロファイルに依存するであろう、行政のタイミングと頻度を決定します。 図1は 、実験の過程で一日二回の腹腔内注射を使用して予防的治療の概要を説明します。 </li><li>便の硬さと血液の存在を含め、監視し、毎日、各マウスの重量を量る。治療の日には、計量を繰り返し取り扱いによって引き起こされるマウスにストレスを最小限に抑えるために、治療薬の投与と一致する必要があります。 </lI&gt; <li> 3日目に、2.5％（2.5グラム/ 100ミリリットル）日常動物施設によってマウスに提供飲料水中のDSS溶液を調製。約5ミリリットル/ DSS溶液のマウス/日の実験のために必要とされる。動物施設の環境温度が変動した場合にDSS水の消費量が変化してもよい。 注：DSSが刺激性で、MSDSの指示に従って処理する必要があります。 </li><li> 5連続日間きれいな水ボトルのマウスを自由に新鮮なDSSを提供します。 5日目の夜には、マッシュポテト食品ペレットと小さなペトリ皿（100グラムの食物ペレット/ 10グラムのプロテインシェイク/ 10ミリリットル水）に提供されるタンパク質のサプリメントに加えて、通常の飲料水を提供する。これは脱水を防ぎ、厳しい減量を最小限に抑えることを支援します。 </li><li> CO 2中毒によりマウスを安楽死させると8日目の朝に、その後の組織学的分析のための組織を収集し、またはマウスは以上3つのCのための≥15％の重量損失が発生した場合最初のいずれか早いonsecutive日、。 注：（w / v）の動物施設とDSSのバッチの微生物叢に応じて1から4パーセントの間でDSSの投与量を調整します。適切なDSSの投与量および回避バッチ間の変動を確立するために、ルーチンバッチ試験を行う。適切な投与量は、体重減少（元の重量の15％より大きくない）に基づいており、大腸組織病理を確認すべきである。 </li></ol>慢性大腸炎や大腸炎関連癌モデル3.前臨床試験<ol><li>慢性大腸炎モデルの場合はステップ3.7から始める。 </li><li>大腸炎関連癌（CAC）モデルの場合は、1日目に、10mg / kgの（w / w）のアゾキシメタン（AOM、250μL、腹腔内）で各マウスを注入する。 注：AOMは発がん性物質であるとMSDSの指示に従って処理する必要があります。 </li><li> AOMのストック溶液は、10mg / mlのアリコートとして調製し、-20℃で保存する。注射の日に、AOMのストック溶液を、1mg / mで解凍し、希釈するPBS中のL。 AOMストック溶液の凍結融解の繰り返しは避けるべきである。 </li><li> AOM用量は8-12 mg / kgを間に調整することができる。ルーチンバッチ試験は、バッチ間の変動によるマウスに毒性を回避するために、適切なAOM投与量を確立するために必要とされる。 </li><li> 1-7日間、AOM投与重みが安定する、以下、この理由のため、重量の監視は、その糞便中に細胞傷害性代謝産物を排出します処理動物を避けるために日1-7中に省略することができる。 </li><li> 7日目、すべての寝具は、細胞毒性の手順に従って変更する必要がある。寝具の変更が完了したら、彼らはもはや細胞傷害性代謝産物を排出されませんように、動物は、もはや、細胞毒性取り扱い手順を必要としません。 </li><li> 8日目に、2.5％（2.5グラム/ 100ml）で（ステップ2.5で説明したように）DSS溶液を調製し、マウスを自由に与える。 </li><li>実験を通して毎日のマウスを計量し、病気の兆候を監視し、フリルFUを含むR、ハンチング、血便と縮小の動き。 </li><li> 13日目に、DSS溶液を除去し、28日8-28日まで通常の飲料水をマウスに与える慢性大腸炎/ CACプロトコルの1「サイクル」を構成している。 </li><li>日13-28、にマウスを通常の飲用水が与えられたときに、マッシュ食品ペレットを有するマウス、小さなペトリ皿（100gの食物ペレット/ 10gのプロテインシェイク/水10ml）に設けられたタンパク質サプリメントを提供する。これは脱水を防ぎ、厳しい減量を最小限に抑えることを支援します。 注：マウスはDSS消費の一貫性を確保するために、DSSを含む飲料水を受信して​​いるときマッシュ中のタンパク質サプリメントが提供されるべきではない。 </li><li> 20日目に（第5節参照）個々のマウスの健康状態を監視するために第二の内視鏡検査を行う。 </li><li>日に29リピートDSSサイクル（サイクル2：2.5％（V）DSSデイズ34から50の間、日29-33、通常の飲料水の間に提供/ w）である。 </li><li> 40日目THIを行う個々のマウスの健康状態を監視し、腫瘍量を決定するための内視鏡検査をRD（セクション5を参照）。 </li><li>全く腫瘍が40日内視鏡検査によって表示されていない場合は、日数50から72（2.5％（V）DSSデイズ56から72の間、日50-55、通常の飲料水の間に提供/ wのサイクル3）上の第三のDSSサイクルを開始。一般的に、腫瘍は40日目から見えるので、DSSの第3サイクルを省くことができる。 </li><li>腫瘍は内視鏡検査によって目に見えるようになると、各マウスに内視鏡的腫瘍スコアを割り当てる（ セクション5を参照）と同じようなベースラインの腫瘍負担とコホートに個々のマウスを割り当てる。 </li><li> 42日（または時腫瘍が見える）で、治療化合物または関連する車両制御を管理する（2.2節を参照してください）​​。投与量のタイミングは、治療薬の薬物動態プロファイルに依存するであろう。介入治療の例が提供され、確立された腫瘍（ 図2）を有するマウスに週三回腹腔内注射。 </li><li> Eを実行します腫瘍負荷を監視するための治療処置の期間にわたって週1回ndoscopic試験。一般に、治療的処置の4週間客観治療反応を観察するのに十分である。治療の中止後に、マウスのコホートは、腫瘍の再発のために内視鏡検査によりモニターすることができる。 </li><li> CO 2中毒によるマウスを安楽死させるとマウスは以上の3日間連続≥15％の減量を経験するとき、または、いずれか早い方の日72日の朝、生化学的および/ ​​または組織学的分析のために組織を集める。 </li></ol>散発性結腸直腸癌モデルにおける4.前臨床試験<ol><li> 1日目に、10mg / kgのAOM（ステップ3.2参照）で各マウスの腹腔内注入する。 AOM用量は8-12 mg / kgを間に調整することができる。ルーチンバッチ試験は、バッチ間の変動によるマウスに毒性を回避するために、適切なAOM投与量を確立するために必要とされる。 </li><li>各週の最初の日に注射を繰り返します次の5週間（ 図3）。マウスは、全体の6週間の細胞毒性安全手順に従って処理してください。 </li><li>繰り返し処理によって引き起こされるマウスに苦痛を最小限にするためにAOM注射の日に、各マウスを計量。 注：AOMは発がん性物質であるとMSDSの指示に従って処理する必要があります。 </li><li>すべての動物は、このプロトコルに必要AOMの腹腔内注射の6週間の細胞毒性安全手順に従って処理してください。 </li><li>週8中、新興の腫瘍のために監視するために内視鏡検査を行う（第5節参照）。腫瘍が見えるようになるまで、内視鏡検査では隔週行われるべきである。一般的に、野生型C57BL / 6動物はAOMの最初の投与後、約40週間までに腫瘍の開発を始める。 </li><li>腫瘍は内視鏡検査によって目に見えるようになると、各マウスに内視鏡的腫瘍スコアを割り当てる（セクション5を参照）と類似したとのコホートへの個々のマウスを割り当て<html>治療的処置の開始前に腫瘍の負担。 </li><li>週40（または時腫瘍が最初に表示されている）の間に、治療化合物または関連する車両制御を管理する。 </li><li>投与量のタイミングは、治療の薬物動態プロファイルに依存することになる（ステップ2.1参照）。介入治療の例が提供され、確立された腫瘍（ 図3）を有するマウスに週3回腹腔内注射。 </li><li>腫瘍負荷を監視するための治療の治療期間の間、内視鏡検査を毎週実行します。一般に、治療的処置の4週間客観治療反応のために十分である。治療中止後、マウスのコホートは、腫瘍再発のための内視鏡検査によりモニターすることができる。 </li><li> CO 2中毒によりマウスを安楽死させると週45の間、生化学的および/ ​​またはコロンと腫瘍の組織学的分析のための組織を収集し、または治療の4週間後。 </li></ol>ve_title &quot;&gt; 5。内視鏡検査<ol><li>内視鏡検査機器は、標準的な手順16に従って実装してください。 </li><li> 70％エタノールまたは抗細菌性潤滑剤を内視鏡プローブを滅菌し、きれい。 </li><li>ビデオは、iMovieのように、ラップトップまたはデスクトップコンピュータおよび標準メディアソフトウェアを使用して記録することができる。標準的なコンピュータのモニタではなく、医療グレードのモニター、内視鏡検査手順（ 図4）の間にコロンを可視化するのに十分である。 </li><li> 0.2 L /分の速度で同時に100％O 2中の3％イソフルランを有するチャンバ内に5~6匹のマウスの群を麻酔。マウスは、つま先のピンチによって確認され、麻酔をかけた後、イソフルランレベルはメンテナンスのために0.5から2パーセントに変更する必要があります。 </li><li>チャンバーから個々のマウスを外し、鼻コーンに固定その頭でそれ腹側を上に配置します。全身麻酔は、監視されるべきであり、それらが複数あるように後ろ足を調整すべきであるマウスの後ろに出tretched。 </li><li>乾燥を防ぐために、マウスの眼に獣医軟膏を置きます。 </li><li>それは明らかに肛門を明らかにするために下部脊椎を満たしているマウスの尾を持ってください。水のビーカーに硬性内視鏡シースを挿入し、一度に一つの小さな気泡の放出を可能にするために空気の流れを調整します。 </li><li>空気の流れは、コロンが膨張するように許可されます。気流が強すぎると、空気は、マウスの胃にポンピングされる。追加給油は必要ありません。 </li><li>慎重に直腸内に硬性内視鏡シースを挿入します。一般的に、内視鏡は、マウス曲線にコロンをその時点で3センチ、まで挿入し、硬性内視鏡にアクセスすることはできませんすることができます。 </li><li>内視鏡検査手順の間に一般的な難しさが原因糞便に大腸の内腔へのアクセスの遮断である。優しく排便を奨励する前に手順にマウスの腹のマッサージ、または慎重にFECA周り内視鏡を操作することで、これを避ける手順中のL状物質。蠕動は、大腸の筋肉組織が弛緩するまで内視鏡を位置に保持されるべき時に、も発生することがあります。 </li><li>内視鏡検査手順の任意の段階で録画を開始する。疾患スコアは、処置中に経験豊富なアシスタントによって記録、またはビデオファイルから、後の時点ですることができる。 </li><li>内視鏡検査の後、彼らのケージにマウスを返し、麻酔からの回復中にそれらを監視。動物は、イソフルランを投与ノーズコーンから除去した後2分以内に、一般的に目を覚まし、モバイルである。 </li><li>これらの手順は、経験豊富な科学者によって行われていることを確認します。各内視鏡検査の手順は、マウス当たり約2分かかります。 </li></ol> 6.病スコアリング<ol><li> （i）の変化を文書大腸炎重症度のマウス内視鏡指数（MEICS）16、透明性によって示される結腸壁の厚さのためにビデオをスコア、大腸炎を監視するには（ii）の便の硬さ、（iii）は、血管の完全性とが存在することを、粒状形で存在するが、（v）のフィブリン沈着（ 図5a）で示さ出血こと再生の（iv）の潰瘍および領域。 </li><li>腫瘍負荷を監視するには、腫瘍の発生率とサイズのビデオをスコア。腫瘍サイズは、腫瘍16（ 図5b）によって占有結腸内腔の直径によって決定される。これは、単一のマウス用炎および腫瘍の両方のスコアリングパラメータを使用することが一般的である。内視鏡検査、個々の腫瘍および結腸粘膜の健康を使用すると、単一の動物において新しい治療の成功のための読み出しを提供し、経時的にモニターすることができる。 </li><li> （オプションの）静止画像が代表図形（ 図6）を生成するためにビデオから抽出することができる。 </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

マウスでの大腸疾患病理の信頼性と再現性誘導の概略の方法を説明している3つのプロトコル。ルーチン内視鏡監視とここで概説介入戦略と組み合わせることで、これらのプロトコルは、治療薬の有効性への強力な前臨床洞察を提供します。私たちの研究室は、定期的に新規治療薬10,23,24の成功を監視するために、これらのプロトコルのすべてを使用する。 新しい治療法を試験するための前臨床動物モデルを選択する考慮事項が数多くあります。これらは、ヒト疾患のモデルの妥当性、および治療標的の提案アクションに腫瘍微小環境の寄与を含む。ここでは、確立された腸疾患モデルにおける治療的介入のための3つのプロトコルを提供する。これらのモデルは、再現可能であり、疾患を誘発する試薬の配信は、管理が容易である。重要なことは、モデルは非常に関連しています複数のファセットと大腸炎の発症、および腫瘍の開始と進行のステージに。 DSSおよび/ ​​またはAOMにより誘発される疾患に対する感受性はかなり25を変化させることができるように研究者は、考慮した実験を設計する際に使用されるマウス系統の遺伝的背景を取る必要があります。さらに、異なる微生物群集は細菌によって代謝されるAOMの文脈において異なる代謝能力を有することができる。私たちは、単一の実験で（商用ベンダーを含む）を別の動物施設に生まれたマウスの異なるコホートを使用しないことを警告する。同様に、異なる施設から使用したマウスの異なる微生物叢は、上皮バリアの損傷11誘発性をDSSに、異なる宿主応答を誘発し得る。逆転写酵素を阻害するDSSの能力は、その後の分子解析26,27に影響するので、（例えば、RNA精製の ​​ための）組織の適切な分析もまた、考慮されるべきである。 <p classは= &quot;jove_contentは&quot;&gt;マウスの内視鏡検査を繰り返し、個々のマウスにおける疾患の発症および進行を監視するための最先端の技術である。ビデオを録画や静止画を抽出する能力は、複数の疾患パラメータおよび腫瘍の監視を簡単に行うことが可能。動物福祉を改善することに加えて、内視鏡監視はまた、伝統的に疾患の転帰を追跡するために異なる時点で殺処分された実験用マウスの複数のコホートの必要性を低減する。 MEICSスコアリングシステムは、病理組織学的分析に代わるものではありませんが、代替が生きたマウスでの動物の健康および粘膜損傷を監視する手段を提供する。マウスの内視鏡検査は、専門の研究室の技術であり、すべての手順は、マウスの適切な操作と取り扱いを確保するため、ならびに疾患のスコアリングに使用される画像で一貫​​した品質を提供するために訓練を受けた担当者が行ってください。資格のある個人の手では、内視鏡検査はtumoにほとんど、あるいは全く損傷を誘導することを見出した腫瘍内出血を引き起こすRS。それは初期の腫瘍負荷を決定する手段を提供し、治療薬の投与前に類似した腫瘍の負担と動物群のコホートに私たちを可能にするので概要を治療プロトコルのために、我々は、内視鏡検査は非常に有利考える。マウスの連続監視がタイムリーに失敗した実験を終了させるオプションを指定して、早い段階で新しい治療法の有効性を決定するために、研究者を可能にします。 炎症性腸疾患および結腸直腸癌の進行についての理解として、治療のための新たな標的が同定される。適切な動物モデルは、最も有望な新しい治療法が臨床試験に向けて移動されることを確実に不可欠であろう。

大腸癌（CRC）は、世界中の悪性腫瘍1の4 番目の最も一般的な原因である。この疾患の家族の基礎の理解の重要な進歩にもかかわらず、遺伝的素因だけのCRCケース2の〜20％のに貢献しています。残りは、慢性炎症を含む多くの外因性および環境要因に起因する。ヒトでは、慢性炎症および結腸癌との間のリンクは、炎症性疾患3の期間に応じて、程度及び重症度、大腸炎関連大腸癌（CAC）を発症する危険性がより高い潰瘍性大腸炎（UC）患者において明らかである-5。したがって、新しい治療法は、免疫応答および炎症、腫瘍の微小環境6-8による成長促進因子の関連した生産を制御するために開発されている。の治療効力を特徴付けるための適切な前臨床動物モデルの増加要件は存在し疾患の発症および進行に対するこれらの薬剤。 マウスモデルは、明白に、炎症性微小環境でも明白な炎症9,10の非存在下で、CRCの進行に寄与することが実証されている。これらのモデルは、上皮損傷および急性および慢性炎症性腸疾患（IBD）11,12をモデル化するためのマウスの飲料水に設けられた多糖、デキストラン硫酸ナトリウム（DSS）の使用を含む。 DSSは、粘膜障害および大腸炎を誘導するメカニズムは完全には理解されていないが、いくつかの研究では、DSSは、細胞内で細胞の逆転写酵素とRNA分解酵素活性を阻害する、または損傷上皮に至る結腸膜と融合ナノ - 脂質複合体の形成を促進することを示唆している13,14。標準のDSSモデルへの変更は、また結腸上皮細胞は組織の恒常性とのRegu性を維持するメカニズムに重要な洞察を提供してきました後半粘膜免疫応答15。 アゾキシメタン（AOM）の腹腔内投与は、単独で、またはDSSとの組み合わせで、上皮粘膜および炎症および間質微小環境16,17に体細胞変異の間の相互作用を調べるためのモデルを提供します。 AOMは、直接DNA変異を生じない発癌物質1,2-ジメチルヒドラジン（DMH）の代謝産物である。その代わりに、AOMはMAMがグルクロン酸と抱合した後、胆汁の分泌物18を介して腸に搬送され、肝臓、シトクロムアイソフォームCYP2E1によって（MAM）methylazoxymethanolに加水分解される。これは、細菌のβグルクロニダーゼは、DNAアルキル化および上皮細胞19における変異の蓄積をもたらすMAMの分解に寄与すると考えられている。ほとんどのAOM誘発性結腸腫瘍はプロテアソームdegradatiに耐性タンパク質をレンダリングする、をコードする遺伝子βカテニンにおけるミスセンス変異を抱くカノニカルWntシグナル伝達経路20の異常な活性化、その結果、上に。 AOMの活性はDSSによって誘発粘膜損傷と組み合わせると、その後の創傷治癒応答は、成長と変異誘発された上皮の拡大を助長している微小環境を作成します。このモデルのバリエーションでは、数週間の期間にわたって単独でAOMの反復投与は、DSS誘導性大腸炎10,17の非存在下で、散発性結腸直腸癌をモデル化するために使用することができる。これらの2つの相補のモデルは、炎症促進性の腫瘍微小環境10に関連付けられてどちらもそれぞれCAC及び散発性CRCを研究するための実験的な設定を提供する。 マウスにおけるシリアル視鏡の使用は、ベッカーと同僚21によって開拓され、大腸炎および腫瘍進行の長手方向の監視を可能にした。ここでは、DSS誘導性粘膜損傷および/またはAOM媒介TUに基づいて3前臨床プロトコルを提供MOR誘導が再現可能に特定の結腸の病理を誘導する。第一のプロトコルは、IBDに関連した病理組織学的機能の多くを引き出すDSSの投与に応答して、急性粘膜損傷を誘発説明しています。第二のプロトコルは、一般にIBDの患者で観察炎症のフレアを模倣するためにDSS投与の3つの連続した​​サイクルに基づいており、AOM誘発性の変異と組み合わせて実施することができる。最終的なプロトコルはAOM誘発性散発上皮の変異に基づいています。これらのプロトコルのそれぞれに対して、我々は、新薬の有効性をモニターするために開発した予防的および治療的介入の方法を含む、関連する標準的な手順を拡張。

<table><tbody><tr><td>Dextran sulfate sodium (MW 36,000-50,000)</td><td>MP Biochemicals</td><td>160110</td><td>Requires batch testing.</td></tr><tr><td>Azoxymethane</td><td>Sigma</td><td>A5486-100MG</td><td>Requires batch testing.</td></tr><tr><td>Vanilla protein shake</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Available from hospital pharmacies.</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>PPC</td><td>M60303</td><td>This is a restricted reagent, which should be stored under lock and key.</td></tr><tr><td>70% ethanol</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>Standard lab reagent.</td></tr><tr><td>Coloview miniendoscopic system</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Endovision Tricam</td><td>Karl Storz</td><td>20212001-020</td><td></td></tr><tr><td>Xenon 175 light source with anti-fog pump</td><td>Karl Storz</td><td>20134001</td><td></td></tr><tr><td>HOPKINS straight Forward Telescope</td><td>Karl Storz</td><td>64301AA</td><td></td></tr><tr><td>Endoscopic sheath (total diameter 3 mm)</td><td>Kalr Stroz</td><td>61029C</td><td></td></tr><tr><td>Fiber optic light cable</td><td>Kalr Stroz</td><td>69495ND</td><td></td></tr><tr><td>Computer and media player software</td><td>Apple</td><td></td><td>iMovie</td></tr><tr><td>Scale</td><td>Any</td><td></td><td>Any scale suitable for weighing mice.</td></tr></tbody></table>

non-invasive assessment of the efficacy of new therapeutics for intestinal pathologies using serial endoscopic imaging of live mice

Animal models of inflammatory bowel disease (IBD) and colorectal cancer (CRC) have provided significant insight into the cell intrinsic and extrinsic mechanisms that contribute to the onset and progression of intestinal diseases. The identification of new molecules that promote these pathologies has led to a flurry of activity focused on the development of potential new therapies to inhibit their function. As a result, various pre-clinical mouse models with an intact immune system and stromal microenvironment are now heavily used. Here we describe three experimental protocols to test the efficacy of new therapeutics in pre-clinical models of (1) acute mucosal damage, (2) chronic colitis and/or colitis-associated colon cancer, and (3) sporadic colorectal cancer. We also outline procedures for serial endoscopic examination that can be used to document the therapeutic response of an individual tumor and to monitor the health of individual mice. These protocols provide complementary experimental platforms to test the effectiveness of therapeutic compounds shown to be well tolerated by mice.

体重減少は、日常的に、マウスの全体的な健康状態を監視するために使用される大腸炎に関連する疾患をモニターするために、標準的なパラメータとして使用される。動物は、一般的には、DSS含有水が投与されている間、自分の体重を維持し、唯一のそれらは通常の飲料水に戻されたときに緩い重量に開始します。許容重量損失のパラメータは、金融機関の動物倫理委員会に合わせて確立されるべきである。長期の下痢に関連付けられた脱水を防ぐために、通常の飲料水に加えて、プロテインシェイクを補充したマッシュのルーチン提供を（食物ペレットがマッシュポテトや飲料水と混合）を使用する。 代替麻酔、ケタミン/キシラジンまたは類似の薬剤などのイソフルラン機器が利用できない場合に、使用することができる。による内視鏡の剛性の性質のために、これらの手順は、マウス結腸の最も遠位3cmの可視化を可能にする。との新しい内視鏡<html> （柔軟性と蛍光を含む）の追加機能は、実験の必要性に応じてご利用いただけます。 DSSの有害な影響は、主に中央結腸において観察され、より穏やかな病理を有するマウスの遠位結腸に限定されているので、硬性内視鏡は、個々のマウスの粘膜の健康のモニタリングを妨げない。我々は、急性DSS誘発大腸炎の予防的処置のためのプロトコルを説明しているが、このプロトコルは、容易に介入治療戦略をテストするために改変することができる。上皮損傷および大腸炎を軽減するために設計された薬剤の有効性は、個々のマウスにおいて、縦方向に監視され（ 図5）に記載のスコアリングパラメータに基づいて定量することができる。これは、実験プロトコルの間、特定の時点でマウスの殺処分を必要とする伝統的な実験デザインよりも有利であり、経時治療に対する疾病の応答の特徴付けを可能にしない。 <html>トン &quot;&gt;ヒトでの臨床試験では、個々の患者に治療に応答する方法の異なる腫瘍においてかなりの変動性を強調している。ここで説明する手順は、全体的な腫瘍量、ならびににわたって個々の腫瘍の治療応答をモニターする手段を提供する実験の。それは、癌モデルについて概説されている介入プロトコルは考慮に腫瘍の開始に対する治療の影響を取ることはありませんことを考慮することが重要である。予防的なプロトコル、事前の腫瘍は内視鏡検査によって可視になったときに提供される治療で、この情報を得るために必要とされる。ここで説明するプロトコルは、進行に対する治療効果についての情報を提供する個々の腫瘍（腫瘍サイズで測定）。腫瘍退縮も見える腫瘍の数の減少によって示され得る。 グラム &quot;/&gt; 図1：急性大腸損傷のモデルでは予防的治療療法の有効性を監視（a）の実験プロトコルは、開始から完了まで8日間が必要です。治療薬は、予防的治療のために1日目から（b）に投与される。 DSSは、実験プロトコルの3日目から飲料水を（c）に設けられている。内視鏡検査は、動物における疾患の進行をモニターするために（d）を実施する。推奨の時点では、5日目と8（疾病負担を決定するために）0日目（未処理）と2日目（ヘルスモニタリング）などがあります。実験は、野生型マウスでは8日目の朝（f）の経時的な疾患の増加の進行（e）を終了する。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/52383/52383fig2highres.jpg" /> 図2：モデルOに介入療法の有効性を監視するF大腸炎関連癌は。実験プロトコル（A）は、スタートから完成まで72日を要する。 （b）は、治療薬は、介入治療のために46日目から確立された腫瘍を有するマウスに投与される。 AOM（c）は 1日目に注入され、DSSは、内視鏡検査（d）は 、動物における疾患の進行を監視するために実行される8日目に開始し、実験プロトコルの3つのサイクルにわたって飲料水に設けられている。推奨の時点では（腫瘍量に応じた群の動物に）0日目（未処理）、20日（ヘルスモニタリング）、および40日目を含む。内視鏡検査は、疾患の転帰を監視するために治療的処置の過程にわたって毎週実施される。実験（e）は、以降40日目から増加し、野生型マウス（f）は 、腫瘍負荷において72日目の朝に終了される。 <img alt="図3"SRC = &quot;/ファイル/ ftp_upload / 52383 / 52383fig3highres.jpg&quot; /&gt; 図3：自発的な大腸癌のモデルに介入療法の有効性をモニタリングする実験プロトコルは（a）の開始から完了まで&gt; 50週間が必要です。 （b）は、治療薬は、介入の治療のための確立された腫瘍を有するマウスに投与される。 AOM（c）は、実験プロトコルの経過にわたって毎週、その後6つの連続した注射のための1日目に注入している。内視鏡検査（d）は、動物における疾患の進行をモニターするために行われる。推奨の時点では、隔週そこ（腫瘍量を確立するために）の後に0日目（未処理）および8週目（腫瘍監視）とが含まれる。内視鏡検査は、治療の結果をモニターするため、治療の過程にわたって毎週実施される。実験（e）は、以降の週40から増加する野生型マウス（f）は 、腫瘍負荷において50週で終了した。 </<html> P&gt; <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/52383/52383fig4highres.jpg" width="650" /> 図4：機器のセットアップ装置の個々の部分と、内視鏡装置用の実験装置は、（a）は 、示された。個々のコンポーネントとの硬性内視鏡（b）は 、示された。スケールバー= 2.5 cmである。 <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/52383/52383fig4highres.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図5" src="/files/ftp_upload/52383/52383fig5highres.jpg" width="650" /> 図5：内視鏡検査によるスコアリング病パラメータ大腸炎重症度のマウス内視鏡指数（MEICS）の概要（a）に。。個々の腫瘍のスコアリングパラメータの概要（b）にES / ftp_upload / 52383 / 52383fig5highres.jpg「ターゲット= &quot;_空白&quot;&gt;この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 <img alt="図6" src="/files/ftp_upload/52383/52383fig6highres.jpg" width="650" /> 図6：代表治療的処置のための代表的な減量、内視鏡画像とスコア：。。。シーケンシャル以下の開発（A）急性DSS誘発粘膜損傷AOM / DSSプロトコルに従って開発された（b）の腫瘍（C）腫瘍AOMプロトコル。群当たりN = 3匹のマウス。 * P &lt;0.05、*** P &lt;0.001（スチューデントのt検定）。 <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/52383/52383fig6highres.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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Non-invasive Assessment of the Efficacy of New Therapeutics for Intestinal Pathologies Using Serial Endoscopic Imaging of Live Mice

We describe methods for longitudinal monitoring of the efficacy of therapeutics for the treatment of colonic pathologies in mice using a rigid endoscope. This protocol can be readily used for the characterization of the therapeutic response of an individual tumor in live mice and also for monitoring potential disease relapse.

生きたマウスのシリアル内視鏡イメージングを使用して、腸の異常のための新しい治療の有効性の非侵襲的評価

Animal models of inflammatory bowel disease (IBD) and colorectal cancer (CRC) have provided significant insight into the cell intrinsic and extrinsic ...

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Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Medicine

9.9K ビュー.  The Walter and Eliza Hall Institute for Medical Research. We describe methods for longitudinal monitoring of the efficacy of therapeutics for the treatment of colonic pathologies in mice using a rigid endoscope. This protocol can be readily used for the characterization of the therapeutic response of an individual tumor in live mice and also for monitoring potential disease relapse.

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Important Endpoints and Proliferative Markers to Assess Small Intestinal Injury and Adaptation using a Mouse Model of Chemotherapy-Induced Mucositis

Intestinal adaptation is the natural compensatory mechanism that occurs when the bowel is lost due to trauma. The adaptive responses, such as crypt cell proliferation and increased nutrient absorption, are critical in recovery, yet poorly understood. Understanding the molecular mechanism behind the adaptive responses is crucial to facilitate the identification of nutrients or drugs to enhance adaptation. Different approaches and models have been described throughout the literature, but a detailed descriptive way to essentially perform the procedures is needed to obtain reproducible data. Here, we describe a method to estimate important endpoints and proliferative markers of small intestinal injury and compensatory hyperproliferation using a model of chemotherapy-induced mucositis in mice. We demonstrate the detection of proliferating cells using a cell cycle specific marker, as well as using small intestinal weight, crypt depth, and villus height as endpoints. Some of the critical steps within the described method are the removal and weighing of the small intestine and the rather complex software system suggested for the measurement of this technique. These methods have the advantages that they are not time-consuming, and that they are cost-effective and easy to carry out and measure.

Here, we present a protocol to establish important endpoints and proliferative markers of small intestinal injury and compensatory hyperproliferation using a model of chemotherapy-induced mucositis. We demonstrate the detection of proliferating cells using a cell cycle specific marker and using small intestinal weight, crypt depth, and villus height as endpoints.

化学療法誘発性粘膜炎のマウスモデルを用いて小腸損傷と適応を評価するための重要なエンドポイントと増殖マーカー

Intestinal adaptation is the natural compensatory mechanism that occurs when the bowel is lost due to trauma. The adaptive responses, such as crypt cell ...

がん研究

Functional Assessment of Intestinal Motility and Gut Wall Inflammation in Rodents: Analyses in a Standardized Model of Intestinal Manipulation

Inflammation of the gastrointestinal tract is a common reason for a variety of human diseases. Animal research models are critical in investigating the complex cellular and molecular of intestinal pathology. Although the tunica mucosa is often the organ of interest in many inflammatory diseases, recent works demonstrated that the muscularis externa (ME) is also a highly immunocompetent organ that harbours a dense network of resident immunocytes.1,2 These works were performed within the standardized model of intestinal manipulation (IM) that leads to inflammation of the bowel wall, mainly limited to the ME. Clinically this inflammation leads to prolonged intestinal dysmotility, known as postoperative ileus (POI) which is a frequent and unavoidable complication after abdominal surgery.3 The inflammation is characterized by liberation of proinflammatory mediators such as IL-64 or IL-1&beta; or inhibitory neurotransmitters like nitric oxide (NO).5 Subsequently, tremendous numbers of immunocytes extravasate into the ME, dominated by polymorphonuclear neutrophils (PMN) and monocytes and finally maintain POI.2 Lasting for days, this intestinal paralysis leads to an increased risk of aspiration, bacterial translocation and infectious complications up to sepsis and multi organ failure and causes a high economic burden.6
In this manuscript we demonstrate the standardized model of IM and in vivo assessment of gastrointestinal transit (GIT) and colonic transit. Furthermore we demonstrate a method for separation of the ME from the tunica mucosa followed by immunological analysis, which is crucial to distinguish between the inflammatory responses in these both highly immunoactive bowel wall compartments. All analyses are easily transferable to any other research models, affecting gastrointestinal function.

Postoperative ileus (POI) is a complication of abdominal surgery leading to increased morbidity and a prolonged hospital stay. Because prophylactic or therapeutic strategies are lacking intensified research is necessary. Therefore we established a standardized and feasible mouse model to investigate the pathophysiology of POI and to study potential therapeutic options.

げっ歯類における腸運動と腸壁の炎症の機能評価：腸管操作の標準化されたモデルで分析

Inflammation of the gastrointestinal tract is a common reason for a variety of human diseases. Animal research models are critical in investigating the ...

医学

Flexible Colonoscopy in Mice to Evaluate the Severity of Colitis and Colorectal Tumors Using a Validated Endoscopic Scoring System

The use of modern endoscopy for research purposes has greatly facilitated our understanding of gastrointestinal pathologies. In particular, experimental endoscopy has been highly useful for studies that require repeated assessments in a single laboratory animal, such as those evaluating mechanisms of chronic inflammatory bowel disease and the progression of colorectal cancer. However, the methods used across studies are highly variable. At least three endoscopic scoring systems have been published for murine colitis and published protocols for the assessment of colorectal tumors fail to address the presence of concomitant colonic inflammation. This study develops and validates a reproducible endoscopic scoring system that integrates evaluation of both inflammation and tumors simultaneously. This novel scoring system has three major components: 1) assessment of the extent and severity of colorectal inflammation (based on perianal findings, transparency of the wall, mucosal bleeding, and focal lesions), 2) quantitative recording of tumor lesions (grid map and bar graph), and 3) numerical sorting of clinical cases by their pathological and research relevance based on decimal units with assigned categories of observed lesions and endoscopic complications (decimal identifiers). The video and manuscript presented herein were prepared, following IACUC-approved protocols, to allow investigators to score their own experimental mice using a well-validated and highly reproducible endoscopic methodology, with the system option to differentiate distal from proximal endoscopic colitis (D-PECS).

Over the past few years, new generation endoscopes have emerged as important diagnostic research aids for evaluating murine colitis and colorectal tumors. We present herein a detailed protocol for endoscopic assessment of inflammation and colorectal tumors in mice, as well as a novel scoring system that uses decimal identifiers to document the endoscopic severity of colitis and colorectal tumors.

検証済みの内視鏡スコアリングシステムを使用して、大腸炎および結腸直腸腫瘍の重症度を評価するためにマウスでの柔軟な大腸内視鏡検査

The use of modern endoscopy for research purposes has greatly facilitated our understanding of gastrointestinal pathologies. In particular, experimental ...

Murine Endoscopy for In Vivo Multimodal Imaging of Carcinogenesis and Assessment of Intestinal Wound Healing and Inflammation

Mouse models are widely used to study pathogenesis of human diseases and to evaluate diagnostic procedures as well as therapeutic interventions preclinically. However, valid assessment of pathological alterations often requires histological analysis, and when performed ex vivo, necessitates death of the animal. Therefore in conventional experimental settings, intra-individual follow-up examinations are rarely possible. Thus, development of murine endoscopy in live mice enables investigators for the first time to both directly visualize the gastrointestinal mucosa and also repeat the procedure to monitor for alterations. Numerous applications for in vivo murine endoscopy exist, including studying intestinal inflammation or wound healing, obtaining mucosal biopsies repeatedly, and to locally administer diagnostic or therapeutic agents using miniature injection catheters. Most recently, molecular imaging has extended diagnostic imaging modalities allowing specific detection of distinct target molecules using specific photoprobes. In conclusion, murine endoscopy has emerged as a novel cutting-edge technology for diagnostic experimental in vivo imaging and may significantly impact on preclinical research in various fields.

Murine Endoscopy for In Vivo Multimodal Imaging of Carcinogenesis and Assessment of Intestinal Wound Healing and Inflammation

Small animal imaging techniques allow serial diagnostic examinations and therapeutic interventions in vivo. Recently, the scope of applications has significantly widened and currently includes assessment of colonic tumor development, wound healing and monitoring of inflammation. This protocol illustrates these diverse potential applications of murine endoscopy.

マウス内視鏡検査のため<em&gt;インビボ</em&gt;発がんと腸の評価のマルチモーダルイメージング創傷治癒および炎症

Mouse models are widely used to study pathogenesis of human diseases and to evaluate diagnostic procedures as well as therapeutic interventions ...

Video Imaging and Spatiotemporal Maps to Analyze Gastrointestinal Motility in Mice

The enteric nervous system (ENS) plays an important role in regulating gastrointestinal (GI) motility and can function independently of the central nervous system. Changes in ENS function are a major cause of GI symptoms and disease and may contribute to GI symptoms reported in neuropsychiatric disorders including autism. It is well established that isolated colon segments generate spontaneous, rhythmic contractions known as Colonic Migrating Motor Complexes (CMMCs). A procedure to analyze the enteric neural regulation of CMMCs in ex vivo preparations of mouse colon is described. The colon is dissected from the animal and flushed to remove fecal content prior to being cannulated in an organ bath. Data is acquired via a video camera positioned above the organ bath and converted to high-resolution spatiotemporal maps via an in-house software package. Using this technique, baseline contractile patterns and pharmacological effects on ENS function in colon segments can be compared over 3-4 hr. In addition, propagation length and speed of CMMCs can be recorded as well as changes in gut diameter and contraction frequency. This technique is useful for characterizing gastrointestinal motility patterns in transgenic mouse models (and in other species including rat and guinea pig). In this way, pharmacologically induced changes in CMMCs are recorded in wild type mice and in the Neuroligin-3R451C mouse model of autism. Furthermore, this technique can be applied to other regions of the GI tract including the duodenum, jejunum and ileum and at different developmental ages in mice.

This article describes a video imaging technique and high-resolution spatiotemporal mapping to identify changes in the neural regulation of colonic motility in adult mice. Subtle effects on gastrointestinal (GI) function can be detected using this approach in isolated tissue preparations to advance our understanding of GI disease.

マウスにおける胃腸の運動を分析するためにビデオ画像と時空間マップ

The enteric nervous system (ENS) plays an important role in regulating gastrointestinal (GI) motility and can function independently of the central ...

神経科学

Induction of Intestinal Graft-versus-host Disease and Its Mini-endoscopic Assessment in Live Mice

Acute graft-versus-host disease (GvHD) represents the most severe complication that patients previously undergoing allogeneic hematopoietic stem cell transplantation (allo-HCT) face and is frequently associated with a poor clinical outcome. While, for instance, GvHD manifestations of the skin are usually responsive to established immune-suppressive therapies and are, hence, not taking a fatal course, the presence and the intensity of intestinal GvHD, especially of the mid-to-lower parts of the gut, strongly influence the outcome and overall survival of patients with acute GvHD. Therapeutic options are essentially limited to the classic immune-suppressive agents yielding only moderate disease-mitigating effects. Hence, detailed knowledge about the tissue-resident immune cascade, changes in the intestinal microbiota, and the stromal response prior, upon, and after intestinal GvHD onset are urgently needed to understand the events and mechanisms underlying its pathogenesis and to develop innovative therapeutic options. Murine models of GvHD are frequently employed to identify and functionally assess molecules and pathways putatively driving intestinal GvHD. However, means to specifically monitor and evaluate intestinal inflammation over time are essentially lacking since established scores to assess and grade acute GvHD are routinely comprised of various parameters which rather reflect&#160;systemic GvHD manifestations. The detailed evaluation of intestinal GvHD has been restricted to studies using euthanized mice, thereby essentially excluding longitudinal (i.e., kinetic) analyses of the colonic compartment under a given experimental condition (e.g., antibody-mediated blockade of a proinflammatory cytokine) in live mice (i.e., in vivo). The mini-endoscopic in situ assessment of the distal colon of allo-HCT-treated mice described here allows a) a detailed macroscopic evaluation of different aspects of intestinal inflammation and b) the option to collect tissue samples for downstream analyses at various time points over the course of the observation period. Overall, the mini-endoscopic approach provides a major advance in preclinical noninvasive monitoring and assessment of intestinal GvHD.

Here, we present a protocol that describes allogeneic hematopoietic stem cell transplantation and allows repetitive mini-endoscopic evaluations of the distal colon in situ for the presence, characteristics, and severity of colonic inflammation within live mice suffering from intestinal graft-versus-host disease.

腸管移植片対宿主病と生きたマウスのミニ内視鏡評価の誘導

Acute graft-versus-host disease (GvHD) represents the most severe complication that patients previously undergoing allogeneic hematopoietic stem cell ...

免疫・感染学

Intravital Imaging of Intraepithelial Lymphocytes in Murine Small Intestine

Intraepithelial lymphocytes expressing &#947;&#948; T cell receptor (&#947;&#948; IEL) play a key role in immune surveillance of the intestinal epithelium. Due in part to the lack of a definitive ligand for the &#947;&#948; T cell receptor, our understanding of the regulation of &#947;&#948; IEL activation and their function in vivo remains limited. This necessitates the development of alternative strategies to interrogate signaling pathways involved in regulating &#947;&#948; IEL function and the responsiveness of these cells to the local microenvironment. Although &#947;&#948; IELs are widely understood to limit pathogen translocation, the use of intravital imaging has been critical to understanding the spatiotemporal dynamics of IEL/epithelial interactions at steady-state and in response to invasive pathogens. Herein, we present a protocol for visualizing IEL migratory behavior in the small intestinal mucosa of a GFP &#947;&#948; T cell reporter mouse using inverted spinning disk confocal laser microscopy. Although the maximum imaging depth of this approach is limited relative to the use of two-photon laser-scanning microscopy, spinning disk confocal laser microscopy provides the advantage of high speed image acquisition with reduced photobleaching and photodamage. Using 4D image analysis software, T cell surveillance behavior and their interactions with neighboring cells can be analyzed following experimental manipulation to provide additional insight into IEL activation and function within the intestinal mucosa.

We describe a method to visualize GFP-labeled &#947;&#948; IELs using intravital imaging of murine small intestine by inverted spinning disk confocal microscopy. This technique enables the tracking of live cells within the mucosa for up to 4 h and can be used to investigate a variety of intestinal immune-epithelial interactions. &#160;

マウス小腸における上皮内リンパ球の分体イメージング

Intraepithelial lymphocytes expressing &#947;&#948; T cell receptor (&#947;&#948; IEL) play a key role in immune surveillance of the intestinal ...

An Intravital Microscopy-Based Approach to Assess Intestinal Permeability and Epithelial Cell Shedding Performance

Intravital microscopy of the gut using confocal imaging allows real time observation of epithelial cell shedding and barrier leakage in living animals. Therefore, the intestinal mucosa of anesthetized mice is topically stained with unspecific staining (acriflavine) and a fluorescent tracer (rhodamine-B dextran), mounted on a saline solution-rinsed plate and directly imaged using a confocal microscope. This technique can complement other non-invasive techniques to identify leakage of intestinal permeability, such as transmucosal passage of orally administered tracers. Besides this, the approach presented here allows the direct observation of cell shedding events at real-time. In combination with appropriate fluorescent reporter mice, this approach is suitable for shedding light into cellular and molecular mechanisms controlling intestinal epithelial cell extrusion, as well as to other biological processes. In the last decades, interesting studies using intravital microscopy have contributed to knowledge on endothelial permeability, immune cell gut homing, immune-epithelial communication and invasion of luminal components, among others. Together, the protocol presented here would not only help increase the understanding of mechanisms controlling epithelial cell extrusion, but could also be the basis for the developmental of other approaches to be used as instruments to visualize other highly dynamic cellular process, even in other tissues. Among technical limitations, optical properties of the specific tissue, as well as the selected imaging technology and microscope configuration, would in turn, determine the imaging working distance, and resolution of acquired images.

Taking advantage of intravital microscopy, the method presented here enables real-time visualization of intestinal epithelial cell shedding in living animals. Therefore, topically stained intestinal mucosa (acriflavine and rhodamineB-dextran) of anesthetized mice is imaged up to single-cell resolution using confocal microscopy.

腸透過性と上皮細胞流れ性能を評価する生体内顕微鏡ベースのアプローチ

Intravital microscopy of the gut using confocal imaging allows real time observation of epithelial cell shedding and barrier leakage in living animals. ...

Performing Colonoscopic-Guided Pinch Biopsies in Mice and Evaluating Subsequent Tissue Changes

Understanding the tissue and cellular changes that occur in the acute injury response as well as during the wound healing process is of paramount importance when studying diseases of the gastrointestinal (GI) tract. The murine colonic pinch biopsy model is a useful tool to define these processes. Additionally, the interplay between gut luminal content (e.g., microbes) and the colon can be studied. However, wound induction and the ability to track wound closure over time in a reliable manner can be challenging. Moreover, tissue preparation and orientation must be carried out in a standardized way to optimally interrogate histologic and molecular changes. Here, we present a detailed method describing biopsy-induced injury and the monitoring of wound closure through repeat colonoscopies. An approach is described that ensures consistent and reproducible measurements of wound size, the ability to collect the wound bed for molecular analyses as well as visualize the wound bed upon sectioning of tissues. The ability to successfully carry out these techniques allows for studies of the acute injury response, wound healing and luminal-host interactions within the colon.

Here, we provide a detailed description of the procedure to induce colonoscopic-guided pinch biopsies in mice and track wound closure in real time. Additionally, methods for the preparation of tissues for histological, immunohistochemical and molecular analyses of the wound bed are provided.

マウスにおける大腸誘導ピンチ生検の実施と、その後の組織変化の評価

Understanding the tissue and cellular changes that occur in the acute injury response as well as during the wound healing process is of paramount ...

Functional Assessment of Intestinal Permeability and Neutrophil Transepithelial Migration in Mice using a Standardized Intestinal Loop Model

The intestinal mucosa is lined by a single layer of epithelial cells that forms a dynamic barrier allowing paracellular transport of nutrients and water while preventing passage of luminal bacteria and exogenous substances. A breach of this layer results in increased permeability to luminal contents and recruitment of immune cells, both of which are hallmarks of pathologic states in the gut including inflammatory bowel disease (IBD). 
Mechanisms regulating epithelial barrier function and transepithelial migration (TEpM) of polymorphonuclear neutrophils (PMN) are incompletely understood due to the lack of experimental in vivo methods allowing quantitative analyses. Here, we describe a robust murine experimental model that employs an exteriorized intestinal segment of either ileum or proximal colon. The exteriorized intestinal loop (iLoop) is fully vascularized and offers physiological advantages over ex vivo chamber-based approaches commonly used to study permeability and PMN migration across epithelial cell monolayers.
We demonstrate two applications of this model in detail: (1) quantitative measurement of intestinal permeability through detection of fluorescence-labeled dextrans in serum after intraluminal injection, (2) quantitative assessment of migrated PMN across the intestinal epithelium into the gut lumen after intraluminal introduction of chemoattractants. We demonstrate feasibility of this model and provide results utilizing the iLoop in mice lacking the epithelial tight junction-associated protein JAM-A compared to controls. JAM-A has been shown to regulate epithelial barrier function as well as PMN TEpM during inflammatory responses. Our results using the iLoop confirm previous studies and highlight the importance of JAM-A in regulation of intestinal permeability and PMN TEpM in vivo during homeostasis and disease. 
The iLoop model provides a highly standardized method for reproducible in vivo studies of intestinal homeostasis and inflammation and will significantly enhance understanding of intestinal barrier function and mucosal inflammation in diseases such as IBD.

Dysregulated intestinal epithelial barrier function and immune responses are hallmarks of inflammatory bowel disease that remain poorly investigated due to a lack of physiological models. Here, we describe a mouse intestinal loop model that employs a well-vascularized and exteriorized bowel segment to study mucosal permeability and leukocyte recruitment in vivo.

標準化腸ループモデルを用いたマウスにおける腸透過性と好中球経上皮移動の機能評価

The intestinal mucosa is lined by a single layer of epithelial cells that forms a dynamic barrier allowing paracellular transport of nutrients and water ...