Name: facial nerve axotomy in mice: a model to study motoneuron response to injury
Uploaded: 2015-02-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 11 s
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This work is funded by NIH RO1 NS 40433 (K.J.J.).

実行されるすべての手順は、医療機関動物実験委員会のインディアナ大学大学院によって承認され、健康ガイドラインの国立研究所に従っている。 1.手術手技<ol><li> NIHガイドライン25に従って無菌滅菌手袋を使用して、この手順の間に技術、機器、および無菌手術野を維持します。 （完全なリストに特異的な試薬/機器の表を参照）、それらをオートクレーブで手術を開始する前に、ツールを滅菌する。動作中のツールを殺菌するためにガラスビーズ滅菌器を使用してください。 </li></ol> 2.麻酔と準備<ol><li>獣医イソフルラン気化器システムを用いて、0.9リットル/分の酸素と2.5％のイソフルランの混合物で麻酔ボックス内にマウスを麻酔。マウスを箱から取り出す前に、身体の位置の変化に応答しないことを確認してください。 </li><li> MOUに眼軟膏を適用します乾燥からそれらを保護するために、それ自体の目。 </li><li>ノーズコーンにあるボックスからのガスの流れを切り替えます。コー​​ンの内側の鼻と口を備えた外科用パッドと吸収ベンチ紙で覆われて加熱されたパッドの上に真正面からその左側にマウスを置きます。継続的にマウスの呼吸のリズムと速度を監視し、必要に応じてイソフルランレベルを調整 - 麻酔の適切なレベルを維持するために、（2.5の間で3％イソフルラン）、および総鎮静を確認するために、つま先ピンチ反射を使用しています。 </li></ol> 3.外科的アプローチ<ol><li>合わせて、手術野でステレオスコープを集中。それは視野の端に沿って配置されるように、ノーズコーンとテープを上下に調整する。 </li><li>マウスは、その左側に横たわっていると、切開が行われる耳の後ろの領域を露出させ、ノーズコーンに右耳の端をテープで固定します。後耳介静脈が耳全体に水平に移動することを確認してください。 Tの正しい配置に注意してください彼は耳の動物とテーピングはすぐに顔面神経を見つけるために重要である。 </li><li>にし、70％エタノールで耳の後ろに毛皮を湿らせ、かみそりまたは外科用メスの刃を使用して、手術部位を剃る。毛皮を事前に湿潤この解剖学的位置に簡単に剃ることができます。 </li><li> 70％エタノールに続くようなベタジン外科スクラブ（7.5％ポビドンヨード）などのヨウ素溶液、で皮膚をきれいにしてください。徹底的に領域を消毒するために、この清掃をさらに2回繰り返します。 </li><li> 、切開する耳の突起にエリア後方に尾側耳から後耳介静脈をトレースする場所を決定する。隆起に3ミリメートルの後部 - 春のはさみを使用して、4ミリメートル切開2を作る。 </li><li>鈍的切開を使用して皮下脂肪および筋膜を通して解剖。 、血管または筋肉組織を簡単に破損する可能性があるため、ハサミで直接切断しないでください。 </li><li>出血が発生した場合は、無菌の綿棒で手術部位に圧力を適用する少なくとも30秒間。重要な流体損失が発生した場合、25または27 G針を使用して0.9％滅菌生理食塩水までの0.5mlを腹腔​​内にマウスを注入する。 </li><li>顔面神経を見つけるために、いくつかの主要なランドマーク、脊髄副神経、外耳道を使用し、（後述）二腹筋を前方。顔面神経の枝が可視化されるまで、これらのランドマークの周りに解剖。それは明らかにし、筋膜の層が下にある構造に付着されたときに神経が重要な白色固体構造として表示されます。 <ol><li>皮下脂肪と筋膜が解剖された後、僧帽筋を支配するために頭蓋骨の尾の部分から移動する脊髄副神経を検索します。顔面神経は、脊髄アクセサリ神経に深い。 </li><li>真珠のような白に見え、顔面神経への吻側見ることができる軟骨外耳道を探す。 </li><li>の上部とC上に位置し、前二腹筋の筋腹を探す顔面神経にaudal。 </li></ol></li><li>顔面神経の主枝を可視化されると、茎乳突孔からその起源を見つけるために背側にそれらをトレースします。細かい使用すると、開いて新しく高度な面積を維持するために背側鉗子を移動した後、開いた手術部位を保持する神経のパス以下の春のはさみのヒントを進めるためにデュモン鉗子＃45分の5をひっくり返した。 </li><li>この時点で、頬骨と顔面神経の幹、頬、および限界下顎枝を可視化する。 注：一時的な分岐が孔に近い見つかります。近い顎にその上下に限界下顎神経の枝、従って、これらの神経枝は、このレベルでは表示されません。 <ol><li>神経切断を行う場合は、先端の細い鉗子で軽く神経を安定させ、春のはさみで神経を切った。脳幹から神経をavulsing防ぐために、ピンセットで神経にあまりにも多くのトラクションを適用することは避けてください。押す互いに離れる切り株、または全く再接続が発生しないことを保証するために、遠位神経の部分をカットし、削除する。 </li><li>挫滅損傷を実行した場合は、すべての軸索を切断する一定の圧力を用いて30秒間の神経を圧縮するデュモン＃45分の5鉗子を使用し、最初のクラッシュサイトに直交する第2の角度でこのクラッシュを繰り返します。そうでなければ怪我は動物の間一貫性がなくなります、30秒のクラッシュ時の圧力の可変量を適用することは避けてください。 </li></ol></li></ol> 4.閉会と回復<ol><li>下にある構造上の脂肪と筋肉を再配置します。 </li><li>切開のエッジを近似すると7.5ミリメートルの創傷クリップを使用して傷を閉じます。縫合糸または接着剤は、創傷閉鎖のためにも許容される。術後の鎮痛薬は、この時点で提供することができる。 </li><li>マウスの耳からテープを外します。イソフルランの流れをオフにして、マウスが1分30秒純酸素を呼吸することができます。 PL麻酔から回復する寝具で空のケージにマウスをエース。 </li><li>マウスが回復されると、顔面神経麻痺の確証的兆候がその挙動を調べる。ウィスカーが麻痺して戻って頬に向かって傾斜してなり、鼻がずれてしまう、との目は、空気のパフに応じて点滅しません。 </li><li>ハウス動物共同で、彼らが女性である場合は、手術後。彼らはより積極的であり、強制的に感染につながる、彼らのcagemateの創傷クリップを削除する傾向があるため、共同で雄マウスを収納しないでください。必要であれば、この時点では術後の鎮痛薬を提供します。 </li><li>全く感染または他の合併症は術後に発生していないことを確認するために操作した後、数日間一日一回のマウスを監視します。彼らは自分の上で落ちていない場合は、10日手術後 - 7創傷クリップを外します。 </li><li>目のまばたき反射が再いずれかになるまで、毎日の角膜合併症を防ぐために、罹患した眼に眼軟膏を潤滑適用カバーまたは安楽死まで、。 </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

The critical step for this protocol is positioning the mouse properly before surgery is begun. If the mouse is not lying flat on its side, the ear is not taped at the correct angle, or the incision is made in an incorrect location, then finding the facial nerve becomes much more difficult. When this technique is mastered, surgeries will take only minutes per mouse. 
Either sutures, glue, or wound clips can be used to close the wound. Wound clips are preferred because of the small size of incis...

多くの末梢神経損傷モデルが存在するが、運動ニューロンの研究のために際立っている1は、顔面神経軸索切断モデルです。また脳神経VIIとして知られている顔面神経は、橋に由来し、顔の表情1,2の筋肉を神経支配。この外科プロトコルでは、顔面神経は茎乳突孔からの出口で露出し、切断又は破砕のいずれかです。神経損傷の重症度を順次軸索の束を包む結合組織層である軸索、神経内膜、神経周膜、及び神経上膜の完全性に基づいて、けがを差別サンダーランド3分類、以下に分類することができる。挫滅損傷（軸索断裂）では、軸索が切断されているが、神経周膜と神経上膜は保持されます。無傷の神経鞘は軸索が4,5を再成長、その中の導管となるため、顔面神経挫滅からの完全な機能回復には約11日で発生する。上の一方では、カット損傷（神経断裂）に、軸索およびすべて3結合組織層が切断されており、全体の遠位神経は筋肉組織の神経支配を回復するために再成長しなければならない。神経上膜を外科的に再接続は、しばしば神経切断損傷を有するヒト患者において行われているが、回復の成果はめったに最適である。さらなる研究は、神経がその標的に再成長に失敗し、どの治療法が改善し、再生プロセスを加速するために使用することができるかを理解する必要がある。 顔面神経の軸索切断モデルを使用して神経損傷を研究する多くの利点がある。まず、顔面神経の軸索切断手順は、迅速、簡単、かつ再現性が高い。と顔の筋肉の結果として麻痺は重要な機能に影響を与えないとも動物によって許容されている。これは運動ニューロンが目の中で比較的均質な集団に存在するので、簡略化されて運動ニューロン細胞体を研究脳神経損傷モデルは、あるため、橋の電子顔面運動核。 7亜核が筋肉の特定のグループを支配するために、それぞれ固有のがあるので人口は、顔面運動核内の核内のパターンに基づいて異なるんので、軸索切断に応じて、核内の違いが結果の2,6,7に影響を与える可能性がある。 顔面神経損傷モデルの主な利点は、神経の神経支配は非常に対称的であり、顔面運動核8との間にクロストークがないのでunaxotomized側ペアリング内部対照として役立つことができることである。この外科的方法を使用することの別の利点は、直接CNSへの外傷または血液脳関門9の破壊がないことである。そのような過度の出血や感染症などの合併症は、この手順に稀である。 様々な分析は、神経損傷に対する生理学的応答を評価するために行うことができる。まばたき反射およびウィスカー活性の回復は、行動として使用することができ機能回復の10,11の尺度。鼻毛活動の録画は現在、顔面神経の神経支配12,13の回復を検出するための最も強力な方法である。安楽死の後、脳幹の組織学的分析は、顔面運動核内の運動ニューロン細胞体で行うことができる。顔面運動核の損傷2,6に対する応答の差検査を可能にする、特定の顔面筋にそれぞれ特定の七亜核に細分される。顔面運動ニューロンは、細胞の生存を定量化するためにカウントすることができ、または免疫組織化学は、バイオマーカーおよび特定の細胞集団14を識別するために使用することができる。顔面運動核を正確神 ​​経損傷15,16に対する細胞応答の分子解析のためのレーザーキャプチャーマイクロダイセクションを使用してすることができる。顔面神経の軸索切断の影響は、運動皮質17,18に分析することができる。また、神経はウォラー変性19またはを研究するために解剖することができます軸索再生20、および筋肉が神経筋接合部21を研究するために除去することができる。顔面神経の軸索切断はまた、22添付の中枢および末梢神経膠細胞を研究筋肉21、及び免疫系の応答23を標的とするために使用することができる。多くの顔面神経軸索切断モデル24を研究してなされたものであるが、神経損傷は、患者にとって重大な問題であり、現在の治療は、最適な結果を生み出すことができないので、末梢神経損傷のさらなる研究が必要である。このモデルは、神経損傷に対する生理的応答を調べ、神経再生治療の有効性を分析するための強力なツールである。

<table><tbody><tr><td>Stereo microscope</td><td>Leica</td><td>M60</td><td></td></tr><tr><td>Labeling tape</td><td>Fisher Scientific</td><td>15-952</td><td></td></tr><tr><td>Vannas-T&amp;uuml;bingen spring scissors - straight/sharp/8.5 cm/5 mm cutting edge</td><td>Fine Science Tools</td><td>15003-08</td><td>Sterilize before use</td></tr><tr><td>Dumont #5/45 forceps - standard tips/angled 45&amp;deg;/Dumoxel/11 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-35</td><td>Sterilize before use</td></tr><tr><td>Michel suture clips - 7.5 mm x 1.75 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>12040-01</td><td>Described as &quot;wound clip&quot; in protocol, sterilize before use</td></tr><tr><td>Hagenbarth cross action wound clip applier 5&quot;</td><td>George Tiemann &amp;amp; Co</td><td>160-910</td><td>Used to apply wound clip, sterilize before use</td></tr><tr><td>Michel suture clip applicator &amp;amp; remover - For 7.5 mm clips</td><td>Fine Science Tools</td><td>12029-12</td><td>Used to remove wound clip</td></tr><tr><td>0.9% Sodium chloride injection, USP</td><td>Hospira</td><td>0409-4888-10</td><td></td></tr><tr><td>Betadine, 16 oz, with dispenser</td><td>Fisher Scientific</td><td>19-027132</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glass bead sterilizer</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

facial nerve axotomy in mice: a model to study motoneuron response to injury

この外科プロトコルの目標は、茎乳突孔からの出口で、顔の筋肉組織を神経支配顔面神経を、露出させ、どちら末梢神経損傷を誘導するためにそれをカットまたは押しつぶすことです。この手術の利点は、このように、他の神経損傷モデルに比べて、比較的穏やかな手術結果をもたらし、その単純さ、再現性、およびその後の顔面神経麻痺から生体機能や移動度に対する効果の欠如である。脳神経損傷モデルを使用することの主な利点は、運動ニューロンは、運動ニューロン細胞体の研究を単純化する、橋顔面運動核における比較的均一な集団内に存在することである。なぜなら顔面神経の神経支配と顔面運動核の間のクロストークの欠如の対称的な性質のため、操作が対に内部対照としてunaxotomized側を一方的に行うことができる。様々な分析を評価するために術後に行うことができますこの記事の範囲を超えてその詳細は生理的反応、だ。例えば、筋機能の回復は、神経再生のための行動のマーカーとして役立つことができる、または運動ニューロンは、細胞の生存を測定するために定量化することができる。さらに、運動ニューロンを正確に分子解析のためのレーザーマイクロダイセクションを使用してキャプチャすることができる。顔面神経の軸索切断が最小侵襲性および忍容性が良好であるため、遺伝的に改変されたマウスの多種多様に利用することができる。また、この手術モデルは、末梢神経損傷の治療の有効性を分析するために使用することができる。顔面神経損傷は、運動ニューロンだけでなく、中枢および末梢神経膠微小環境の応答は、免疫系だけでなく、調査のための手段を提供し、筋肉組織を標的とする。顔面神経損傷モデルは、神経損傷および再生を研究するための強力なツールとなって広く受け入れられている末梢神経損傷モデルである。

顔面神経の軸索切断が行われた後、運動ニューロンの損失は、損傷の結果として起こる。損傷後の運動ニューロンの生存は、性別、手術時の動物の年齢、運動ニューロンのカウントが行われる時時点、及びモランとGraeberレビュー24と神野と山田レビュー22などの多くの変数が、運動ニューロンの生存データを要約の両方に依存する。一般的に、運動ニューロンの約86％が28日後...

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Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury

We present a surgical protocol detailing how to perform a cut or crush axotomy on the facial nerve in the mouse. The facial nerve axotomy can be employed to study the physiological response to nerve injury and test therapeutic techniques.

マウスにおける顔面神経軸索切断：傷害に運動ニューロン応答を研究するためのモデル

The goal of this surgical protocol is to expose the facial nerve, which innervates the facial musculature, at its exit from the stylomastoid foramen and ...

facial-nerve-axotomy-mice-model-to-study-motoneuron-response-to

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Medicine

12.8K ビュー.  Indiana University School of Medicine. We present a surgical protocol detailing how to perform a cut or crush axotomy on the facial nerve in the mouse. The facial nerve axotomy can be employed to study the physiological response to nerve injury and test therapeutic techniques. 

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The Spared Nerve Injury (SNI) Model of Induced Mechanical Allodynia in Mice

Peripheral neuropathic pain is a severe chronic pain condition which may result from trauma to sensory nerves in the peripheral nervous system. The spared nerve injury (SNI) model induces symptoms of neuropathic pain such as mechanical allodynia i.e. pain due to tactile stimuli that do not normally provoke a painful response [1]. 
The SNI mouse model involves ligation of two of the three branches of the sciatic nerve (the tibial nerve and the common peroneal nerve), while the sural nerve is left intact [2]. The lesion results in marked hypersensitivity in the lateral area of the paw, which is innervated by the spared sural nerve. The non-operated side of the mouse can be used as a control. The advantages of the SNI model are the robustness of the response and that it doesn&#x2019;t require expert microsurgical skills.
The threshold for mechanical pain response is determined by testing with von Frey filaments of increasing bending force, which are repetitively pressed against the lateral area of the paw [3], [4]. A positive pain reaction is defined as sudden paw withdrawal, flinching and/or paw licking induced by the filament. A positive response in three out of five repetitive stimuli is defined as the pain threshold. 
As demonstrated in the video protocol, C57BL/6 mice experience profound allodynia as early as the day following surgery and maintain this for several weeks.

The Spared Nerve Injury SNI Model of Induced Mechanical Allodynia in Mice

The Spared Nerve Injury animal model is described here as a mouse model of peripheral neuropathic pain following partial denervation of the sciatic nerve by lesioning the tibial and common peroneal nerve branches, leaving the remaining sural nerve intact. Behavioral modification resulting from mechanical allodynia is quantified by von Frey filaments.

マウスで誘導機械的異痛症の倹約神経損傷（SNI）モデル

Peripheral neuropathic pain is a severe chronic pain condition which may result from trauma to sensory nerves in the peripheral nervous system. The spared ...

医学

Motor Nerve Transection and Time-lapse Imaging of Glial Cell Behaviors in Live Zebrafish

The nervous system is often described as a hard-wired component of the body even though it is a considerably fluid organ system that reacts to external stimuli in a consistent, stereotyped manner, while maintaining incredible flexibility and plasticity. Unlike the central nervous system (CNS), the peripheral nervous system (PNS) is capable of significant repair, but we have only just begun to understand the cellular and molecular mechanisms that govern this phenomenon. Using zebrafish as a model system, we have the unprecedented opportunity to couple regenerative studies with in vivo imaging and genetic manipulation. Peripheral nerves are composed of axons surrounded by layers of glia and connective tissue. Axons are ensheathed by myelinating or non-myelinating Schwann cells, which are in turn wrapped into a fascicle by a cellular sheath called the perineurium. Following an injury, adult peripheral nerves have the remarkable capacity to remove damaged axonal debris and re-innervate targets. To investigate the roles of all peripheral glia in PNS regeneration, we describe here an axon transection assay that uses a commercially available nitrogen-pumped dye laser to axotomize motor nerves in live transgenic zebrafish. We further describe the methods to couple these experiments to time-lapse imaging of injured and control nerves. This experimental paradigm can be used to not only assess the role that glia play in nerve regeneration, but can also be the platform for elucidating the molecular mechanisms that govern nervous system repair.

Although the peripheral nervous system (PNS) is capable of significant repair after injury, little is known about the cellular and molecular mechanisms that govern this phenomenon. Using live, transgenic zebrafish and a reproducible nerve transection assay, we can study dynamic glial cell behaviors during nerve degeneration and regeneration.

モーター神経切断とライブゼブラフィッシュにおけるグリア細胞の挙動のタイムラプスイメージング

The  nervous system is often described as a hard-wired component of the body even  though it is a considerably fluid organ system that reacts to external ...

神経科学

The Fibular Nerve Injury Method: A Reliable Assay to Identify and Test Factors That Repair Neuromuscular Junctions

The neuromuscular junction (NMJ) undergoes deleterious structural and functional changes as a result of aging, injury and disease. Thus, it is imperative to understand the cellular and molecular changes involved in maintaining and repairing NMJs. For this purpose, we have developed a method to reliably and consistently examine regenerating NMJs in mice. This nerve injury method involves crushing the common fibular nerve as it passes over the lateral head of the gastrocnemius muscle tendon near the knee. Using 70 day old female mice, we demonstrate that motor axons begin to reinnervate previous postsynaptic targets within 7 days post-crush. They completely reoccupy their previous synaptic areas by 12 days. To determine the reliability of this injury method, we compared reinnervation rates between individual 70 day old female mice. We found that the number of reinnervated postsynaptic sites was similar between mice at 7, 9, and 12 days post-crush. To determine if this injury assay can also be used to compare molecular changes in muscles, we examined levels of the gamma-subunit of the muscle nicotinic receptor (gamma-AChR) and the muscle-specific kinase (MuSK). The gamma-AChR subunit and MuSK to are highly upregulated following denervation and return to normal levels following reinnervation of NMJs. We found a close relationship between transcript levels for these genes and innervation status of muscles. We believe that this method will accelerate our understanding of the cellular and molecular changes involved in repairing the NMJ and other synapses.

We have developed a nerve injury method to reliably examine muscle reinnervation, and thus regeneration of neuromuscular junctions in mice. This technique involves injuring the common fibular nerve via a simple and highly reproducible surgery. Muscle reinnervation in then assessed by whole-mounting the extensor digitorum longus muscle.

腓骨神経損傷方法：神経筋接合部を修復信頼性の高い同定するためのアッセイおよびテスト要因

The neuromuscular junction (NMJ) undergoes deleterious structural and functional changes as a result of aging, injury and disease. Thus, it is imperative ...

Facial Nerve Surgery in the Rat Model to Study Axonal Inhibition and Regeneration

This protocol describes consistent and reproducible methods to study axonal regeneration and inhibition in a rat facial nerve injury model. The facial nerve can be manipulated along its entire length, from its intracranial segment to its extratemporal course. There are three primary types of nerve injury used for the experimental study of regenerative properties: nerve crush, transection, and nerve gap. The range of possible interventions is vast, including surgical manipulation of the nerve, delivery of neuroactive reagents or cells, and either central or end-organ manipulations. Advantages of this model for studying nerve regeneration include simplicity, reproducibility, interspecies consistency, reliable survival rates of the rat, and an increased anatomic size relative to murine models. Its limitations involve a more limited genetic manipulation versus the mouse model and the superlative regenerative capability of the rat, such that the facial nerve scientist must carefully assess time points for recovery and whether to translate results to higher animals and human studies. The rat model for facial nerve injury allows for functional, electrophysiological, and histomorphometric parameters for the interpretation and comparison of nerve regeneration. It thereby boasts tremendous potential toward furthering the understanding and treatment of the devastating consequences of facial nerve injury in human patients.

This protocol describes a reproducible approach to facial nerve surgery in the rat model, including descriptions of various inducible patterns of injury.

軸索抑制と再生を研究するラットモデルにおける顔面神経外科

This protocol describes consistent and reproducible methods to study axonal regeneration and inhibition in a rat facial nerve injury model. The facial ...

A Mouse Model of Direct Anastomosis via the Prespinal Route for Crossing Nerve Transfer Surgery

Crossing nerve transfer surgery has been a powerful approach for repairing injured upper extremities in patients with brachial plexus avulsion injuries. Recently, this surgery was creatively applied in the clinical treatment of brain injury and achieved substantial rehabilitation of the paralyzed arm. This functional recovery after the surgery suggests that peripheral sensorimotor intervention induces profound neuroplasticity to compensate for the loss of function after brain damage; however, the underlying neural mechanism is poorly understood. Therefore, an emergent clinical animal model is required. Here, we simulated clinical surgery to establish a protocol of direct anastomosis of bilateral brachial plexus nerves via the prespinal route in mice. Neuroanatomical, electrophysiological, and behavioral experiments helped identify that the transferred nerves of these mice successfully reinnervated the impaired forelimb and contributed to accelerating motor recovery after brain injury. Therefore, the mouse model revealed the neural mechanisms underlying rehabilitation upon crossing nerve transfer after central and peripheral nervous system injuries.

We simulated clinical surgery to establish a protocol of direct anastomosis of bilateral brachial plexus nerves via the prespinal route in mice, contributing to the study of the neural mechanisms underlying rehabilitation upon crossing nerve transfer after central and peripheral nervous system injuries.

交差神経移植手術のための脊髄前ルートを介した直接吻合のマウスモデル

Crossing nerve transfer surgery has been a powerful approach for repairing injured upper extremities in patients with brachial plexus avulsion injuries. ...

Traumatic Peripheral Nerve Injury in Mice

Traumatic peripheral nerve injury (TPNI) is a common cause of morbidity following orthopedic trauma. Reproducible and precise methods of injuring nerve and denervating muscle have long been a goal in musculoskeletal research. Many traumatically injured limbs have nerve trauma that defines the long-term patient outcome. Over several years, precise methods of producing microsurgical nerve injuries have been developed, including crush, lacerations, and nerve-gap grafting, allowing for reproducible outcome assessments. Moreover, newer methods are created for calibrated crush injuries that offer clinically relevant correlations with outcomes used to assess human patients. The principles of minimal manipulation to ensure low variability in nerve injury allow for adding still more associated tissue injuries into these models. This includes direct muscle crush and other components of limb injury. Finally, atrophy assessment and precise analysis of behavioral outcomes make these methods a complete package for studying musculoskeletal trauma that realistically incorporates all the elements of human traumatic limb injury.

The present protocol describes traumatic peripheral nerve injuries (TPNIs), including precisely calibrated crush, strictly aligned and misaligned laceration, as well as grafted and non-grafted gaps of the sciatic nerve in mice. Custom-designed sensors are developed to gauge nerve trauma, induced with commonly available tools to ensure reproducible post-TPNI outcomes.

Traumatic peripheral nerve injury (TPNI) is a common cause of morbidity following orthopedic trauma. Reproducible and precise methods of injuring nerve ...

<meta charset="utf8"></head><body>マウス長耳挙筋におけるエレクトロポレーションと神経損傷

Combined In Vivo Electroporation and Short&#45;Term Reinnervation of the Cranial Levator Auris Longus Skeletal Muscle

The neuromuscular junction (NMJ) is the peripheral synapse controlling the contraction of skeletal muscle fibers to allow the coordinated movement of many organisms. At the NMJ, a presynaptic motor axon terminal contacts a muscle postsynaptic domain and is covered by terminal Schwann cells. The integrity and function of the NMJ is compromised under several conditions, including aging, neuromuscular diseases, and traumatic injuries. To analyze the potential contribution of muscle-derived proteins to NMJ maintenance and regeneration, an in vivo gene transfer strategy has been combined with the denervation of the cranial levator auris longus (LAL) muscle after mechanical nerve injury. Previous findings showed that the forced expression of control fluorescent proteins does not alter NMJ organization or neurotransmission. This procedure aims to describe a detailed method of in vivo electroporation of the LAL muscle followed by transection or crushing of the specific branch of the facial nerve innervating cranial muscles, leading to NMJ denervation and reinnervation, respectively. The combination of these experimental strategies in the convenient LAL muscle constitutes an efficient method to study the potential contribution of muscle protein overexpression or silencing in the context of short-term NMJ reinnervation.

<meta charset="utf8"></head><body>著者スポットライト:神経損傷後の神経筋接合部における筋タンパク質の再生的役割

Here, we present a protocol that combines in vivo electroporation and denervation of the cranial levator auris longus (LAL) muscle. This procedure enables the study of the potential role of muscle-derived proteins in the regeneration of the neuromuscular synapse.

頭蓋挙筋長耳骨格筋の In vivo エレクトロポレーションと短期再神経支配の組み合わせ

The neuromuscular junction (NMJ) is the peripheral synapse controlling the contraction of skeletal muscle fibers to allow the coordinated movement of many ...

凍結傷害によるマウスの口腔顔面筋線維症モデルの確立

Freezing Injury in Mouse Masseter Muscle to Establish an Orofacial Muscle Fibrosis Model

Orofacial muscle constitutes a subset of skeletal muscle tissue, with a distinct evolutionary trajectory and development origin. Unlike the somite-derived limb muscles, the orofacial muscles originate from the branchial arches, with exclusive contributions from the cranial neural crest. A recent study has revealed that regeneration is also different in the orofacial muscle group. However, the underlying regulatory mechanism remains to be uncovered. Current skeletal muscle regeneration models mainly focus on the limb and trunk muscle. In this protocol, dry ice was used to induce freezing injury in the mouse masseter muscle and tibialis anterior muscle to create an orofacial muscle fibrosis model. The temporal dynamics of muscle satellite cells and fibro-adipogenic progenitors were different between the two muscles, leading to impaired myofiber regeneration and excessive extracellular matrix deposition. With the help of this model, a deeper investigation into muscle regeneration in the orofacial area could be carried out to develop therapeutic approaches for patients with orofacial diseases.

著者スポットライト:口腔顔面筋の再生の探求 – 洞察とイノベーション

The goal of this protocol is to establish an orofacial muscle fibrosis model. Comparison of the histology between mice masseter and tibialis anterior muscle after freezing injury confirmed masseter muscle fibrosis. This model will facilitate further investigation into the mechanism underlying orofacial muscle fibrosis.

口腔顔面筋線維症モデルを確立するためのマウス咬筋の凍結損傷

Orofacial muscle constitutes a subset of skeletal muscle tissue, with a distinct evolutionary trajectory and development origin. Unlike the somite-derived ...

マウスにおける顔面神経軸索切断：傷害に運動ニューロン応答を研究するためのモデル

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マウスで誘導機械的異痛症の倹約神経損傷（SNI）モデル

モーター神経切断とライブゼブラフィッシュにおけるグリア細胞の挙動のタイムラプスイメージング

腓骨神経損傷方法：神経筋接合部を修復信頼性の高い同定するためのアッセイおよびテスト要因

軸索抑制と再生を研究するラットモデルにおける顔面神経外科

交差神経移植手術のための脊髄前ルートを介した直接吻合のマウスモデル

Traumatic Peripheral Nerve Injury in Mice

頭蓋挙筋長耳骨格筋の In vivo エレクトロポレーションと短期再神経支配の組み合わせ

頭蓋挙筋長耳骨格筋の In vivo エレクトロポレーションと短期再神経支配の組み合わせ

頭蓋挙筋長耳骨格筋の In vivo エレクトロポレーションと短期再神経支配の組み合わせ

口腔顔面筋線維症モデルを確立するためのマウス咬筋の凍結損傷