חומר זה מתבסס על עבודה הנתמכים על ידי הקרן הלאומית למדע תחת גרנט מס CMMI-1452943 ועל ידי המכללה בהצטיינות אוניברסיטת ארקנסו. אנחנו גם רוצים להכיר את בנק דם טבורי ארקנסו סיפק לנו כבל יחידות דם.

מחקר זה בוצע באישור אוניברסיטת ארקנסו הועד המוסדי (אישור מספר 16-04-722). יחידות דם חבל הטבור היו שנאספו ציטראט פוספט תמיסת דקסטרוז (שיקגו) ב ארקנסו בנק דם טבורי, יחידות לא מימש את הדרישה עבור אחסון נתרמו למחקר. כבל יחידות דם היו couriered למעבדה תוך 24 שעות של אוסף בטמפרטורות סביבה.
 1. בידוד של אנדותל ובתאים של דם טבורי <ol><li>הכנה של ריאגנטים.
	<ol><li>להכין EGM על-ידי הוספת אנדותל הבזליים בינוני (EBM) 10% סרום שור עוברית (FBS) בתוספת 20 ng/mL של פקטורי גדילה דמויי אינסולין (IGF), חומצה אסקורבית µg/mL 1, 5 ng/mL רקומביננטי האנושי גורם הגדילה באפידרמיס (rhEGF), µg 22.5/mL הפארין, 0.5 ng/mL כלי הדם צמיחה אנדותל (VEGF), יחד עם 10 ng/mL של recombinant האנושי פיברובלסט גורם גידול B (rhFGF-B), 0.2 הידרוקורטיזון µg/mL, ו-2% פניצילין-סטרפטומיצין-גלוטמין. לעקר את המדיום תרבות באמצעות polyethersulfone (פסי) 0.2 µm ממברנה מסנן ואקום.</li>
		<li>הכן עכברוש הזנב אני קולגן פתרון-ריכוז של 50 µg/mL באמצעות חומצה אצטית N 0.02 נקודות. לעקר את הפתרון הזה באמצעות מסנן מזרק 0.2 µm.</li>
		<li>מעיל מראש צלחות 6-ובכן עם 2 מ של החולדה מוכנה הזנב אני קולגן פתרון עבור כל טוב. למקם אותם בתוך אינקובטור ומתוחזק על 5% CO 2 ו- 37 מעלות צלזיוס במשך לפחות שעה לפני זריעה.</li>
		<li>לדלל כ 25 מ של דם טבורי עם הנקס מאוזנת מלח פתרון (HBSS)-ריכוז 1:1.</li>
		<li>Assay הכן רדיו-חיסונית משקעים (ריפה) המאגר באמצעות 150 מ מ נתרן כלורי, 1% טריטון X-100, 0.5% נתרן deoxycholate, 1 מ מ β-glycerophosphate, מרחביות 0.1% ו- 50 מ מ טריס (pH 8.0).</li>
	</ol></li> <li>בידוד של אנדותל ובתאים.
	<ol><li>כל חמים שהוכנו ריאגנטים באמבט מים ומתוחזק על 37 ° C לפני בידוד.</li>
		<li>להוסיף 20 מ של צפיפות בינונית ריאגנט הדרגתי. שפופרת צנטרפוגה 50 מ ל.</li>
		<li>בזהירות שכבה 20 מ של דם טבורי מדולל בצינור צנטריפוגה המכיל צפיפות בינונית מעבר צבע מבלי לשבור שכבה זו על-ידי כיוון על פיפטה לכיוון הקירות הצדדיים של הצינור.</li>
		<li>להפריד את מרכיבי הדם בהתבסס על צפיפות שלהם ( איור 1) על-ידי צריך שתוציאו ב g x 800 למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר, עם הבלמים של הרוטור צנטריפוגה חופש. נא לא להפריע הרבדים השונים.</li>
		<li>להסיר את השכבה פלזמה על ידי בקפידה pipetting זה יצא הצינור מבלי להפריע תא שני שכבות עד הקצה פיפטה הוא מסוגל להגיע את MNC שכבה (ראה איור 1). למחוק פלזמה שהוסר. 
		הערה: בעת שימוש פיפטה טיפים להסרת הפלזמה, להשאיר שכבה קטנה של פלזמה מעל לשכבה MNC ( איור 1) כדי להפחית הפרעות.</li>
		<li>לאסוף את המעיל באפי המכיל את MNCs באמצעות מזרק לגריל של מחט בקוטר 18. ולהעביר אותו ל שפופרת צנטרפוגה טריים.</li>
		<li>להוסיף אמצעי שווה של EBM לצנטריפוגה MNCs. שנאספו הצינורות האלה ב 500 x g 10 דקות ב-4 ° C. להשליך תגובת שיקוע. 
		הערה: בגדר תא יופיע אדום בגלל הנוכחות של תאי דם אדומים/אריתרוציטים.</li>
		<li>הוסף 5 מ של אמוניום כלוריד לפתרון lyse כדוריות דם אדומות. דגירה הצינורית הזאת על קרח למשך 5-10 דקות, ברעידות ומדי פעם. 
		הערה: זהירות יש לנקוט במהלך שלב זה לא תעלה על משך הזמן, כפי שהוא יכול להיות מזיק MNCs.</li>
		<li>Centrifuge הצינורות ב 500 g x 10 דקות ב 4 ° C ולמחוק את תגובת שיקוע. אם אריתרוציטים נמשכות, חזור על שלבים 1.2.8 ו 1.2.9 עד אין צבע אדום הוא ציין בגדר.</li>
		<li>Resuspend בגדר ב EGM מוכן ולהשתמש את hemocytometer כדי לספור את MNCs.</li>
		<li>וביופסיה העכברוש הזנב אני מצופים קולגן צלחת 6-טוב (מתוך שלב 1.1.3) ולשטוף הבארות שלוש פעמים עם 1 x באגירה פוספט תמיסת מלח (PBS).</li>
		<li>זרע בגדר MNC resuspended ב EGM לצלחת קולגן-ריכוז של עונה 1 פרק 10 7 MNCs כל היטב. מניחים אותה 37 ° C, 5% CO 2 מיכלים.</li>
		<li>לאחר 24 שעות, תשאף המדיום ולשטוף הבארות פעם אחת עם EGM. להוסיף 3 מ"ל של מדיום EGM מכל קידוח ולמקם אותו בחזרה 37 ° C, 5% CO 2 מיכלים.</li>
		<li>לחדש את צלחת בינונית EGM טריים כל יום במשך 7 ימים. לאחר 7 ימים, שינוי המדיום EGM בכל יום אחר.</li>
		<li>באמצעות מיקרוסקופ שדה בהיר, לקחת תמונות של צלחת 6-ובכן כל יום כדי לעקוב אחר ההתקדמות של תאי אנדותל מושבות. לסמן את הצלחת היכן המושבות עולות כדי לעקוב אחר הצמיחה שלהם. 
		הערה: בדרך כלל לוקח בין 5 ל 9 ימים על המושבות להופיע בתרבות.</li>
	</ol></li> <li>הרחבה של אנדותל ובתאים.
	<ol><li>את המעיל. הבקבוק התרבות T-25 עם עכברוש הזנב אני קולגן (50 µg/mL) למקם אותו ב- C ° 37, 5% CO 2 מגשים לפחות 60 דק. וביופסיה ואת לשטוף את הבקבוקון תרבות תא T-25 שלוש פעמים עם PBS 1 x לפני זריעה התאים.</li>
		<li>Trypsinize המושבות תא אנדותל כאשר הם מגיעים כ 3 מ מ גודל באמצעות µL 150 של 0.05% טריפסין-EDTA פתרון כל היטב. למקם את הצלחת 6-ובכן בחזרה 37 ° C, 5% CO 2 מגשים עבור מינימום 2-3</li>
		<li>טפח בעדינות את הצלחת 6-טוב מכך התאים המצורפת. מיד להוסיף 2 מ של EGM ולשחזר את התאים בתוך שפופרת צנטרפוגה 15 מ"ל.</li>
		<li>לספור את התאים באמצעות hemocytometer ולחשב את צפיפות זריעה הראשונית-</li>
		צינורות <li>ספין לצנטריפוגה 15 מ"ל ב 400 g x עבור 5 דק Resuspend בגדר תא ב EGM, את הבקבוק T-25 עם ~ 500,000 תאי זרע. לסמן את הבקבוק הזה. כמו מעבר 1 ולמקם את הבקבוק T-25 חזרה 37 ° C, 5% CO 2 מיכלים. 
		הערה: תאים יכול להיות מצופה EBM, DMEM כדי להשוות את הצמיחה עם EGM.</li>
		<li>עבור עוד קטעים, הבקבוק מגיעה למפגש 90%, בצע שלבים 1.3.1 - 1.3.5, reseed את התאים-10 תאים/ס מ 4 2 על המבחנות תרבות תא T-75 או T-175. המשך לאפיון של תאים מבודדים (שלבים 2 ו- 3).</li>
	</ol></li></ol> 2. אפיון מבודד התאים באמצעות ווסטרן סופג <ol><li>µL 50-100 הוספה של פירוק מאגר על כל מעבר בעת ביצוע השלבים הרחבה כדי לאפיין את התאים מבודד. לאסוף את החלבונים כ 500,000 או יותר מתאי.</li>
	<li>פיפטה למעלה ולמטה נמרצות קרע את התאים ולשחרר את החלבונים. לאסוף ולהעביר את החומר הממתן ל צינור microcentrifuge.</li>
	<li>לסובב את הצינור microcentrifuge ב 500 x g ולהעביר בזהירות את תגובת שיקוע ל צינור microcentrifuge. תווית ולאחסן את הצינורות ב-80 מעלות צלזיוס לאחסון לטווח ארוך-</li>
	<li>לכמת את כמות החלבונים בצינור כל שימוש או ברדפורד &#39; assay s או BCA 27 , 28 , 29.</li>
	<li>לבצע את המערבי סופג באמצעות הליכים סטנדרטיים 27 , 28 , 29. ניתוח µg 5 של חלבון הכולל עבור הביטוי של CD31, CD34, VEGFR2 וα-SMA. השתמש α-טובולין על נירמול הנתונים.</li>
</ol> 3. עקיף Immunofluorescence <ol><li>Sonicate coverslips זכוכית מ מ 18 דקה 50% אתנול, לייבש אותם. להשאיר את coverslips נקי בצלחת 12-ובכן לילה ב למכסה אבטחה עם אולטרה אור על לחטא אותם.</li>
	<li>מעיל coverslips עם 50 & #181; g/mL של עכברוש הזנב אני קולגן ולהעביר לצלחת 37 ° C, 5% CO 2 מגשים לפחות 60 דקות</li>
	<li>תשאף הקולגן ולהוסיף 1 מ"ל של PBS 1 x לצלחת 12-טוב לשטוף את coverslips. האחות של PBS 1 x וחזור פעמיים.</li>
	<li>זרע 250,000 תרבותי EPCs כל טוב ובמקום אותם חזרה 37 ° C, 5% CO 2 חממה לפחות 3 ימים לפני ביצוע immunostaining.</li>
	<li>לשטוף את הצלחת 3 פעמים עם 1 x PBS. להוסיף 1 מ"ל של מתנול כקרח מכל קידוח, דגירה בטמפרטורת החדר למשך 15 דקות לתקן את התאים.</li>
	<li>לבצע את immunostaining באמצעות 28 , 27 , 29 פרוטוקול סטנדרטי. להשתמש את הנוגדנים שלהם דילולים המתאים (למשל, CD31 (1:20), CD34 (1:50), α-SMA (1: 100), VEGFR2 (1:50)).</li>
	<li>תמונות של coverslips immunostained באמצעות מיקרוסקופ epifluorescence.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Asahara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+putative+progenitor+endothelial+cells+for+angiogenesis.">Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis.</a> Science. 275 (5302), 964-967 (1997).</li><li>Lin, Y., Weisdorf, D. J., Solovey, A., Hebbel, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Origins+of+circulating+endothelial+cells+and+endothelial+outgrowth+from+blood.">Origins of circulating endothelial cells and endothelial outgrowth from blood.</a> J Clin Invest. 105 (1), 71-77 (2000).</li><li>Shi, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evidence+for+circulating+bone+marrow-derived+endothelial+cells.">Evidence for circulating bone marrow-derived endothelial cells.</a> Blood. 92 (2), 362-367 (1998).</li><li>Hirschi, K. K., Ingram, D. A., Yoder, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessing+identity,+phenotype,+and+fate+of+endothelial+progenitor+cells.">Assessing identity, phenotype, and fate of endothelial progenitor cells.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 28 (9), 1584-1595 (2008).</li><li>Ingram, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+a+novel+hierarchy+of+endothelial+progenitor+cells+using+human+peripheral+and+umbilical+cord+blood.">Identification of a novel hierarchy of endothelial progenitor cells using human peripheral and umbilical cord blood.</a> Blood. 104 (9), 2752-2760 (2004).</li><li>Yoder, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Redefining+endothelial+progenitor+cells+via+clonal+analysis+and+hematopoietic+stem/progenitor+cell+principals.">Redefining endothelial progenitor cells via clonal analysis and hematopoietic stem/progenitor cell principals.</a> Blood. 109 (5), 1801-1809 (2007).</li><li>Sales, V. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transforming+growth+factor-beta1+modulates+extracellular+matrix+production,+proliferation,+and+apoptosis+of+endothelial+progenitor+cells+in+tissue-engineering+scaffolds.">Transforming growth factor-beta1 modulates extracellular matrix production, proliferation, and apoptosis of endothelial progenitor cells in tissue-engineering scaffolds.</a> Circulation. 114, 193-199 (2006).</li><li>Sales, V. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelial+Progenitor+Cells+as+a+Sole+Source+for+Ex+Vivo+Seeding+of+Tissue-Engineered+Heart+Valves.">Endothelial Progenitor Cells as a Sole Source for Ex Vivo Seeding of Tissue-Engineered Heart Valves.</a> Tissue Eng Pt A. 16 (1), 257-267 (2010).</li><li>Liew, A., Barry, F., O'Brien, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelial+progenitor+cells:+diagnostic+and+therapeutic+considerations.">Endothelial progenitor cells: diagnostic and therapeutic considerations.</a> Bioessays. 28 (3), 261-270 (2006).</li><li>Hur, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+two+types+of+endothelial+progenitor+cells+and+their+different+contributions+to+neovasculogenesis.">Characterization of two types of endothelial progenitor cells and their different contributions to neovasculogenesis.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 24 (2), 288-293 (2004).</li><li>Ingram, D. A., Caplice, N. M., Yoder, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unresolved+questions,+changing+definitions,+and+novel+paradigms+for+defining+endothelial+progenitor+cells.">Unresolved questions, changing definitions, and novel paradigms for defining endothelial progenitor cells.</a> Blood. 106 (5), 1525-1531 (2005).</li><li>Melero-Martin, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+vasculogenic+potential+of+human+blood-derived+endothelial+progenitor+cells.">In vivo vasculogenic potential of human blood-derived endothelial progenitor cells.</a> Blood. 109 (11), 4761-4768 (2007).</li><li>Melero-Martin, J. M., Bischoff, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+13.+An+in+vivo+experimental+model+for+postnatal+vasculogenesis.">Chapter 13. An in vivo experimental model for postnatal vasculogenesis.</a> Methods Enzymol. 445, 303-329 (2008).</li><li>Yoder, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+endothelial+progenitor+cells.">Human endothelial progenitor cells.</a> Cold Spring Harb Perspect Med. 2 (7), 006692 (2012).</li><li>Siddique, A., Shantsila, E., Lip, G. Y. H., Varma, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelial+progenitor+cells:+what+use+for+the+cardiologist.">Endothelial progenitor cells: what use for the cardiologist.</a> J Angiogenes Res. 2 (6), (2010).</li><li>Camci-Unal, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surface-modified+hyaluronic+acid+hydrogels+to+capture+endothelial+progenitor+cells.">Surface-modified hyaluronic acid hydrogels to capture endothelial progenitor cells.</a> Soft Matter. 6 (20), 5120-5126 (2010).</li><li>Hill, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circulating+endothelial+progenitor+cells,+vascular+function,+and+cardiovascular+risk.">Circulating endothelial progenitor cells, vascular function, and cardiovascular risk.</a> N Engl J Med. 348 (7), 593-600 (2003).</li><li>Young, P. P., Vaughan, D. E., Hatzopoulos, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biologic+properties+of+endothelial+progenitor+cells+and+their+potential+for+cell+therapy.">Biologic properties of endothelial progenitor cells and their potential for cell therapy.</a> Prog Cardiovasc Dis. 49 (6), 421-429 (2007).</li><li>Mehta, J. L., Szwedo, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circulating+endothelial+progenitor+cells,+microparticles+and+vascular+disease.">Circulating endothelial progenitor cells, microparticles and vascular disease.</a> J Hypertens. 28 (8), 1611-1613 (2010).</li><li>Nevskaya, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circulating+endothelial+progenitor+cells+in+systemic+sclerosis+are+related+to+impaired+angiogenesis+and+vascular+disease+manifestations.">Circulating endothelial progenitor cells in systemic sclerosis are related to impaired angiogenesis and vascular disease manifestations.</a> Ann Rheum Dis. 66, 67-67 (2007).</li><li>Cebotari, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+application+of+tissue+engineered+human+heart+valves+using+autologous+progenitor+cells.">Clinical application of tissue engineered human heart valves using autologous progenitor cells.</a> Circulation. 114, 132-137 (2006).</li><li>Ito, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelial+progenitor+cells+as+putative+targets+for+angiostatin.">Endothelial progenitor cells as putative targets for angiostatin.</a> Cancer Res. 59 (23), 5875-5877 (1999).</li><li>Vasa, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Increase+in+circulating+endothelial+progenitor+cells+by+statin+therapy+in+patients+with+stable+coronary+artery+disease.">Increase in circulating endothelial progenitor cells by statin therapy in patients with stable coronary artery disease.</a> Circulation. 103 (24), 2885-2890 (2001).</li><li>Wu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-engineered+microvessels+on+three-dimensional+biodegradable+scaffolds+using+human+endothelial+progenitor+cells.">Tissue-engineered microvessels on three-dimensional biodegradable scaffolds using human endothelial progenitor cells.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 287 (2), 480-487 (2004).</li><li>Boyer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+endothelial+cells+and+their+progenitor+cells+from+human+peripheral+blood.">Isolation of endothelial cells and their progenitor cells from human peripheral blood.</a> J Vasc Surg. 31 (1), 181-189 (2000).</li><li>Huber, B., Czaja, A. M., Kluger, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+epidermal+growth+factor+(EGF)+and+hydrocortisone+on+the+co-culture+of+mature+adipocytes+and+endothelial+cells+for+vascularized+adipose+tissue+engineering.">Influence of epidermal growth factor (EGF) and hydrocortisone on the co-culture of mature adipocytes and endothelial cells for vascularized adipose tissue engineering.</a> Cell Biol Int. 40 (5), 569-578 (2016).</li><li>Sturdivant, N. M., Smith, S. G., Ali, S. F., Wolchok, J. C., Balachandran, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acetazolamide+Mitigates+Astrocyte+Cellular+Edema+Following+Mild+Traumatic+Brain+Injury.">Acetazolamide Mitigates Astrocyte Cellular Edema Following Mild Traumatic Brain Injury.</a> Sci Rep. 6, 33330 (2016).</li><li>Lam, N. T., Muldoon, T. J., Quinn, K. P., Rajaram, N., Balachandran, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Valve+interstitial+cell+contractile+strength+and+metabolic+state+are+dependent+on+its+shape.">Valve interstitial cell contractile strength and metabolic state are dependent on its shape.</a> Integr Biol (Camb). 8 (10), 1079-1089 (2016).</li><li>Tandon, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Valve+interstitial+cell+shape+modulates+cell+contractility+independent+of+cell+phenotype.">Valve interstitial cell shape modulates cell contractility independent of cell phenotype.</a> J Biomech. 49 (14), 3289-3297 (2016).</li><li>Cockshell, M. P., Bonder, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+Culture+of+Human+CD133++Non-adherent+Endothelial+Forming+Cells.">Isolation and Culture of Human CD133+ Non-adherent Endothelial Forming Cells.</a> Bio-Protocol. 6 (7), (2016).</li></ol>

המחברים אין לחשוף.

כפי שהוזכר קודם, מחסידי EPCs בעלי מורפולוגיה המרוצף. MNCs מבודד שלנו התקדם מ מושבה תא בצורת כישור (איור 2א-2D) בשלבים המוקדמים למושבת קאבלסטון (איור 2E-2F) על פני תקופה של 10 ימים בתרבות. EPCs סומנו כאנטי באופן שונה על ידי קבוצות מחקר שונות, כלומר כמו ת?...

מספר חוקרים חקרו את המאפיינים ואת הפוטנציאל של האדם EPCs5,10,11,12,13. EPCs יכול להיות מתואר מחזורי תאים בעלי היכולת לדבוק רקמת אנדותל באתרים של היפוקסיה, איסכמיה, פציעה או היווצרות הגידול ולתרום היווצרות של כלי דם מבנים חדשים4,14. מעורבותם שנצפה כורוידאלית, בצורה של vasculogenesis כמחנכת, הובילה להבנה של הפתופיזיולוגיה של תאים אלה והשימוש שלהם יישומים טיפוליים4,15, 16. מספר EPCs של הפרט הוכח להיות בקורלציה עם מחלה קרדיו9,15,16,17,18,19 ,20. מחקרים אחרים יש גם הבדיל EPCs לתוך הפנוטיפ פיברובלסט כמו שסתום, הציע כי תאים אלה יכול לשמש עבור הנדסת רקמות הלב שסתומים7,21.
המסוים המולקולות על פני התא צריך לבודד EPCs לא זוהו בבירור עקב אי-התאמות בין חקירות4. הדבקה של MNCs על מטריצה מסוימים, עם חשיפה למגוון רחב של תנאים תרבות, בוצעה על ידי מספר קבוצות1,17,22,23, רומז כי ייתכן EPCs בשם הצגת מאפיינים פנוטיפי שונים. מאפיינים אלה כוללים חוסר יכולת phagocytotic, שפופרת-צורה Matrigel ואת ספיגת של ליפופרוטאין בצפיפות acetylated-דיל. Clonogenic גבוהה ופוטנציאל proliferative הם שני מאפיינים עם EPCs אשר ניתן hierarchized5. EPCs יכול גם טופס במבחנה בקוריאנית כאשר cocultured עם ריאות העובר האנושי fibroblasts4. תאים אלה ידועים לבטא סמני פני השטח של תאי אנדותל וכדי לחלוק חלק סמנים hematopoietic13,24,25. הסמנים ביטוי חיובי זה מקובל עבור phenotyping EPCs הם CD31, CD34, צמיחה אנדותל כלי הדם קולטן 2 (VEGFR2), Willebrand פון פקטור (vWF), CD133, c-Kit, ואת כלי הדם קדהרין אנדותל (VE-קדהרין)4 , 18. תאים המבטאים שיתוף CD90, CD45, CD14, CD115 או אקטין שריר חלק-אלפא (α-SMA) לא נחשבים EPCs בגלל מוגבל proliferative פוטנציאל, היכולת שלהם phagocytose חיידקים, וחוסר יכולת ליצור דה נובו אנושי כלי ויוו4,7. מאמר זה מתאר פרוטוקול שונה עבור בידודו של אנדותל ובתאים של דם טבורי האנושית ללא צורך תא כלשהו מיון פרוטוקולים. במאמר זה, השתמשנו CD31, CD34 ו VEGFR2 כסמני חיובית, עם α-SMA כאינדיקטור שלילי.
במאמר זה, אנו מציעים שיטה של בידוד ושל culturing ובתאים אנדותל של דם טבורי ללא תא מיון באמצעות התמחה מדיום הגידול אנדותל עם גורמי גדילה (EGM). EGM זו מכילה כלי הדם צמיחה אנדותל (VEGF) ואשר גורם הצמיחה פיברובלסט (FGF), לשפר את ההישרדות, התפשטות והעברה של תאי אנדותל26. זה כולל גם חומצה אסקורבית, האחראית על שמירה על המורפולוגיה המרוצף של תאים; דמויי אינסולין גורם גדילה-1 (IGF-1), אשר מספק האנגיוגנזה ותפקוד הנדידה; הפארין, אשר גורמת לשיפור יציבות לטווח ארוך של גורמי גדילה בינונית26. גורמי גדילה אחרים שיתווספו המדיום התרבות תאי אנדותל כולל תוספי עם גורם הגדילה באפידרמיס (EGF), אשר מסייע התפשטות תאים מגרה בידול, ואת הידרוקורטיזון, אשר sensitizes לתאים EGF26 . אנו מראים כי השימוש של מדיום הגידול הספציפי הזה מניב מספר גבוה יותר של EPCs לעומת אנדותל הבזליים בינוני (EBM) או של Dulbecco ששינה נשר בינוני (DMEM).

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;A) For isolation and culturing&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>EGM-2 BulletKit</td><td>Lonza</td><td>CC-3162</td><td>This product comes with all the growth factors needed to make the Endothelial Growth Medium</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>26140079</td><td></td></tr><tr><td>Pencillin-Streptomycin-Glutamine (100x)</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>10378016</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll-Paque</td><td>GE Heatlhcare</td><td>17-1440-02</td><td></td></tr><tr><td>Hank&#039;s Balanced Salt Solution</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>14170-112</td><td></td></tr><tr><td>Ammonium Chloride</td><td>Stem Cell Technologies</td><td>7850</td><td></td></tr><tr><td>1x Phosphate Buffer Saline</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>14190250</td><td></td></tr><tr><td>Rat Tail I Collagen</td><td>Corning</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>Glacial Acetic Acid</td><td>Amresco</td><td>0714-500ML</td><td></td></tr><tr><td>0.05% Trypsin-EDTA</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>25300054</td><td></td></tr><tr><td>HEPES buffer</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>15630080</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco&#039;s Modified Eagle&#039;s Medium</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>10566-016</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;B) Antibodies and cell lysates&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CD31&amp;nbsp;</td><td>Abcam</td><td>ab28364</td><td>1:250 dilution&amp;nbsp; for Western blotting</td></tr><tr><td>CD34</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-7045</td><td>1:100 dilution for Western blotting</td></tr><tr><td>&amp;alpha;-SMA</td><td>abcam</td><td>ab5694</td><td>1:100 dilution for Western blotting</td></tr><tr><td>&amp;alpha;-tubulin</td><td>abcam</td><td>ab7291</td><td>1:2,500 dilution for Western blotting</td></tr><tr><td>VEGFR2</td><td>abcam</td><td>sc504</td><td>1:100 dilution for Western blotting</td></tr><tr><td>Human umbilical vein endothelial cell lysate</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc24709&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Valve interstitial cell lysate</td><td></td><td></td><td>Primary cell line cultured from own lab and lysed with RIPA buffer</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;C) Western blotting and immunostaining&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10x Tris/Glycine/SDS buffer</td><td>Biorad</td><td>161-0772</td><td>Used as running buffer</td></tr><tr><td>10x Tris/Glycine buffer</td><td>Biorad</td><td>161-0771</td><td>Used as transfer buffer</td></tr><tr><td>Immobilon-FL transfer membrane</td><td>Merck Millipore</td><td>IPFL0010</td><td>This is a PVDF transfer membrane that has 45 &amp;micro;m pore size and is mentioned in the protocol as western blot membrane</td></tr><tr><td>4x Laemmli sample buffer</td><td>Biorad</td><td>161-0747</td><td></td></tr><tr><td>2-mercaptoethanol</td><td>Biorad</td><td>161-0710</td><td></td></tr><tr><td>10% Criterion TGX precast gel</td><td>Biorad</td><td>5671033</td><td></td></tr><tr><td>Prolong Gold antifade</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>P36930</td><td>Used for mounting immunostained coverslips for long term storage</td></tr><tr><td>Methanol</td><td>VWR Analytical</td><td>BDH1135-4LP</td><td></td></tr></tbody></table>

isolation of endothelial progenitor cells from human umbilical cord blood

קיומו של אנדותל ובתאים (EPCs) בדם היקפי ומעורבותו vasculogenesis דווחה לראשונה על ידי Ashara ועמיתיו1. מאוחר יותר, אחרים תיעד את קיום סוגים דומים של EPCs שמקורם במח העצם2,3. לאחרונה, Yoder אינגרם הראה כי EPCs נגזר דם חבל הטבור היה גבוה יותר proliferative פוטנציאל לעומת אלה מבודד למבוגרים היקפיים דם4,5,6. מלבד היותו מעורב vasculogenesis כמחנכת, EPCs גם הראו הבטחה כמקור תא ליצירת רקמות מהונדסים כלי הדם והלב שסתום בונה7,8. קיימות תקנות בידוד שונות, חלקן כרוכות המיון התא של תאי תאים (MNCs) נגזר מן המקורות שהזכרנו קודם בעזרת סמנים אנדותל, hematopoietic, או culturing אלה MNCs עם צמיחה אנדותל מיוחדים בינוני, או שילוב של טכניקות אלה9. כאן, אנו מציגים פרוטוקול בידוד, תרבות של EPCs באמצעות והתמחה אנדותל בינוני עם גורמי גדילה, ללא שימוש immunosorting, ואחריו את האפיון של תאים מבודדים באמצעות סופג המערבי, immunostaining.

בידוד והרחבה של אנדותל ובתאים: שרטוט (איור 1) מסופק המתארים את פרוטוקול הכולל. הרבדים רכיב דם שונות נצפו בעקבות צפיפות צנטריפוגה מעבר צבע של דם טבורי האנושי צפיפות בינונית הדרגתיות. לאחר זריעה MNCs על גבי הלוחות שטופלו קולגן, המוצלח מושבות נצפתה ל?...

Watch this Scientific Journal Video about Isolation of Endothelial Progenitor Cells from Human Umbilical Cord Blood at JoVE.com

Isolation of Endothelial Progenitor Cells from Human Umbilical Cord Blood

המטרה של פרוטוקול זה נועד לבודד ובתאים אנדותל של דם טבורי. חלק מהיישומים כוללות שימוש תאים אלה כמו סמן לזיהוי חולים עם הסיכון למחלות לב, במחלות איסכמי, ובונה יצירת שסתום כלי הדם והלב רקמות מהונדסים.

בידוד של אנדותל ובתאים של דם טבורי אנושי

The existence of endothelial progenitor cells (EPCs) in peripheral blood and its involvement in vasculogenesis was first reported by Ashara and ...

isolation-endothelial-progenitor-cells-from-human-umbilical-cord

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

11.0K Views.  University of Arkansas. המטרה של פרוטוקול זה נועד לבודד ובתאים אנדותל של דם טבורי. חלק מהיישומים כוללות שימוש תאים אלה כמו סמן לזיהוי חולים עם הסיכון למחלות לב, במחלות איסכמי, ובונה יצירת שסתום כלי הדם והלב רקמות מהונדסים.

Video: Isolation of Endothelial Progenitor Cells from Human Umbilical Cord Blood

Direct Induction of Human Neural Stem Cells from Peripheral Blood Hematopoietic Progenitor Cells

Human disease specific neuronal cultures are essential for generating in vitro models for human neurological diseases. However, the lack of access to primary human adult neural cultures raises unique challenges. Recent developments in induced pluripotent stem cells (iPSC) provides an alternative approach to derive neural cultures from skin fibroblasts through patient specific iPSC, but this process is labor intensive, requires special expertise and large amounts of resources, and can take several months. This prevents the wide application of this technology to the study of neurological diseases. To overcome some of these issues, we have developed a method to derive neural stem cells directly from human adult peripheral blood, bypassing the iPSC derivation process. Hematopoietic progenitor cells enriched from human adult peripheral blood were cultured in vitro and transfected with Sendai virus vectors containing transcriptional factors Sox2, Oct3/4, Klf4, and c-Myc. The transfection results in morphological changes in the cells which are further selected by using human neural progenitor medium containing basic fibroblast growth factor (bFGF) and vascular endothelial growth factor (VEGF). The resulting cells are characterized by the expression for neural stem cell markers, such as nestin and SOX2. These neural stem cells could be further differentiated to neurons, astroglia and oligodendrocytes in specified differentiation media. Using easily accessible human peripheral blood samples, this method could be used to derive neural stem cells for further differentiation to neural cells for in vitro modeling of neurological disorders and may advance studies related to the pathogenesis and treatment of those diseases.

A method was developed to directly derive human neural stem cells from hematopoietic progenitor cells enriched from peripheral blood cells.

אינדוקציה ישירה של תאי גזע עצביים אדם מתאי הדם היקפי Hematopoietic אב

Human disease specific neuronal cultures are essential for generating in vitro models for human neurological diseases. However, the lack of access to ...

Isolation of Human Umbilical Vein Endothelial Cells (HUVEC)

Angiogenesis is a complex multi-step process, where in response to angiogenic stimuli, new vessels are created from the existing vasculature. These steps include: degradation of the basement membrane, proliferation and migration (sprouting) of endothelial cells (EC) into the extracellular matrix, alignment of EC into cords, lumen formation, anastomosis, and formation of a new basement membrane. Many in vitro assays have been developed to study this process, but most only mimic certain stages of angiogenesis, and morphologically the vessels often do not resemble vessels in vivo. Here we demonstrate an optimized in vitro angiogenesis assay that utilizes human umbilical vein EC and fibroblasts. This model recapitulates all of the key early stages of angiogenesis, and importantly the vessels display patent intercellular lumens surrounded by polarized EC. Vessels can be easily observed by phase-contrast and time-lapse microscopy, and recovered in pure form for downstream applications.

Isolation of Human Umbilical Vein Endothelial Cells HUVEC

This video protocol illustrates the isolation and culture of human umbilical vein endothelial cells (HUVEC) from human umbilical cord. Once isolated these cells can be used for in vitro angiogenesis assays like the Optimized Fibrin Gel Bead Assay also demonstrated by the Hughes lab.

בידוד של האדם תאים עורק טבורי האנדותל (HUVEC)

Angiogenesis is a complex multi-step process, where in response to angiogenic stimuli, new vessels are created from the existing vasculature. These steps ...

Biology

Isolation of Murine Embryonic Hemogenic Endothelial Cells

The specification of hemogenic endothelial cells from embryonic vascular endothelium occurs during brief developmental periods within distinct tissues, and is necessary for the emergence of definitive HSPC from the murine extra embryonic yolk sac, placenta, umbilical vessels, and the embryonic aorta-gonad-mesonephros (AGM) region. The transient nature and small size of this cell population renders its reproducible isolation for careful quantification and experimental applications technically difficult. We have established a fluorescence-activated cell sorting (FACS)-based protocol for simultaneous isolation of hemogenic endothelial cells and HSPC during their peak generation times in the yolk sac and AGM. We demonstrate methods for dissection of yolk sac and AGM tissues from mouse embryos, and we present optimized tissue digestion and antibody conjugation conditions for maximal cell survival prior to identification and retrieval via FACS. Representative FACS analysis plots are shown that identify the hemogenic endothelial cell and HSPC phenotypes, and describe a methylcellulose-based assay for evaluating their blood forming potential on a clonal level.

Hematopoietic stem and progenitor cells (HSPC) derive from specialized (hemogenic) endothelial cells during development, yet little is known about the process by which some endothelial cells specify to become blood forming. We demonstrate a flow-cytometry based method allowing simultaneous isolation of hemogenic endothelial cells and HSPC from murine embryonic tissues.

בידוד של Murine העוברי Hemogenic לתאי אנדותל

The specification of hemogenic endothelial cells from embryonic vascular endothelium occurs during brief developmental periods within distinct tissues, ...

Isolation of Human Umbilical Vein Endothelial Cells and Their Use in the Study of Neutrophil Transmigration Under Flow Conditions

Neutrophils are the most abundant type of white blood cell. They form an essential part of the innate immune system1. During acute inflammation, neutrophils are the first inflammatory cells to migrate to the site of injury. Recruitment of neutrophils to an injury site is a stepwise process that includes first, dilation of blood vessels to increase blood flow; second, microvascular structural changes and escape of plasma proteins from the bloodstream; third, rolling, adhesion and transmigration of the neutrophil across the endothelium; and fourth accumulation of neutrophils at the site of injury2,3. A wide array of in vivo and in vitro methods has evolved to enable the study of these processes4. This method focuses on neutrophil transmigration across human endothelial cells.
One popular method for examining the molecular processes involved in neutrophil transmigration utilizes human neutrophils interacting with primary human umbilical vein endothelial cells (HUVEC)5. Neutrophil isolation has been described visually elsewhere6; thus this article will show the method for isolation of HUVEC. Once isolated and grown to confluence, endothelial cells are activated resulting in the upregulation of adhesion and activation molecules. For example, activation of endothelial cells with cytokines like TNF-&alpha; results in increased E-selectin and IL-8 expression7. E-selectin mediates capture and rolling of neutrophils and IL-8 mediates activation and firm adhesion of neutrophils. After adhesion neutrophils transmigrate. Transmigration can occur paracellularly (through endothelial cell junctions) or transcellularly (through the endothelial cell itself). In most cases, these interactions occur under flow conditions found in the vasculature7,8.
The parallel plate flow chamber is a widely used system that mimics the hydrodynamic shear stresses found in vivo and enables the study of neutrophil recruitment under flow condition in vitro9,10. Several companies produce parallel plate flow chambers and each have advantages and disadvantages. If fluorescent imaging is needed, glass or an optically similar polymer needs to be used. Endothelial cells do not grow well on glass.
Here we present an easy and rapid method for phase-contrast, DIC and fluorescent imaging of neutrophil transmigration using a low volume ibidi channel slide made of a polymer that supports the rapid adhesion and growth of human endothelial cells and has optical qualities that are comparable to glass. In this method, endothelial cells were grown and stimulated in an ibidi &mu;slide. Neutrophils were introduced under flow conditions and transmigration was assessed. Fluorescent imaging of the junctions enabled real-time determination of the extent of paracellular versus transcellular transmigration.

This article first describes a procedure for isolating human endothelial cells from umbilical veins and then shows how to use these cells to examine neutrophil transmigration under flow conditions. By using a low-volume flow chamber made from a polymer with the optical characteristics of glass, live-cell fluorescent imaging of rare cell populations is also possible.

בידודו של האדם וריד טבורי תאים אנדותל והשימוש בהם לחקר גלגול נשמות נויטרופילים בתנאי זרימה

Neutrophils are the most abundant type of white blood cell. They form an essential part of the innate immune system1. During acute inflammation, ...

Immunology and Infection

Isolation of Precursor B-cell Subsets from Umbilical Cord Blood

Umbilical cord blood is highly enriched for hematopoietic progenitor cells at different lineage commitment stages. We have developed a protocol for isolating precursor B-cells at four different stages of differentiation. Because genes are expressed and epigenetic modifications occur in a tissue specific manner, it is vital to discriminate between tissues and cell types in order to be able to identify alterations in the genome and the epigenome that may lead to the development of disease. This method can be adapted to any type of cell present in umbilical cord blood at any stage of differentiation.	
This method comprises 4 main steps. First, mononuclear cells are separated by density centrifugation. Second, B-cells are enriched using biotin conjugated antibodies that recognize and remove non B-cells from the mononuclear cells. Third the B-cells are fluorescently labeled with cell surface protein antibodies specific to individual stages of B-cell development. Finally, the fluorescently labeled cells are sorted and individual populations are recovered. The recovered cells are of sufficient quantity and quality to be utilized in downstream nucleic acid assays.

Here we describe a protocol for isolating subsets of precursor B-cells from umbilical cord blood. A sufficient quantity and quality of nucleic acids may be extracted from the cells and used in subsequent assays utilizing DNA or RNA.

בידוד של קבוצות משנה מבשר B-cell מדם טבורים

Umbilical cord blood is highly enriched for hematopoietic progenitor cells at different lineage commitment stages. We have developed a protocol for ...

Isolation and Animal Serum Free Expansion of Human Umbilical Cord Derived Mesenchymal Stromal Cells (MSCs) and Endothelial Colony Forming Progenitor Cells (ECFCs)

The umbilical cord is a rich source for progenitor cells with high proliferative potential including mesenchymal stromal cells (also termed mesenchymal stem cells, MSCs) and endothelial colony forming progenitor cells (ECFCs). Both cell types are key players in maintaining the integrity of tissue and are probably also involved in regenerative processes and tumor formation.
To study their biology and function in a comparative manner it is important to have both cells types available from the same donor. It may also be beneficial for regenerative purposes to derive MSCs and ECFCs from the same tissue.
Because cellular therapeutics should eventually find their way from bench to bedside we established a new method to isolate and further expand progenitor cells without the use of animal protein. Pooled human platelet lysate (pHPL) replaced fetal bovine serum in all steps of our protocol to completely avoid contact of the cells to xenogeneic proteins.
This video demonstrates a methodology for the isolation and expansion of progenitor cells from one umbilical cord.
All materials and procedures will be described.

Isolation and Animal Serum Free Expansion of Human Umbilical Cord Derived Mesenchymal Stromal Cells MSCs and Endothelial Colony Forming Progenitor Cells ECFCs

This protocol describes the isolation and subsequent expansion of mesenchymal stromal cells and endothelial colony forming cells without the use of animal serum to generate autologous pairs for experimental transplantation purposes.

בידוד בעלי חיים הרחבת חינם סרום של טבורי האדם נגזר תאים סטרומה mesenchymal (MSCs) ו האנדותל יצירת המושבה ובתאים (ECFCs)

The umbilical cord is a rich source for progenitor cells with high proliferative potential including mesenchymal stromal cells (also termed mesenchymal ...

Pan-myeloid Differentiation of Human Cord Blood Derived CD34+ Hematopoietic Stem and Progenitor Cells

Ex vivo differentiation of human hematopoietic stem cells is a widely used model for studying hematopoiesis. The protocol described here is for cytokine induced differentiation of CD34+ hematopoietic stem and progenitor cells to the four myeloid lineage cells. CD34+ cells are isolated from human umbilical cord blood and co-cultured with MS-5 stromal cells in the presence of cytokines. Immunophenotypic characterization of the stem and progenitor cells, and the differentiated myeloid lineage cells are described. Using this protocol, CD34+ cells may be incubated with small molecules or transduced with lentiviruses to express myeloid disease mutations to investigate their impact on myeloid differentiation.

Pan-myeloid Differentiation of Human Cord Blood Derived CD34+ Hematopoietic Stem and Progenitor Cells

Here, we present a protocol for immunophenotypic characterization and cytokine induced differentiation of cord blood derived CD34+ hematopoietic stem and progenitor cells to the four myeloid lineages. The applications of this protocol include investigations on the effect of myeloid disease mutations or small molecules on myeloid differentiation of the CD34+ cells.

פאן-מיאלואיד הבידול של האדם כבל דם נגזר CD34+ המטפאות גזע ותאים מחולל

Ex vivo differentiation of human hematopoietic stem cells is a widely used model for studying hematopoiesis. The protocol described here is for cytokine ...

Isolation of Endothelial Progenitor Cells from Healthy Volunteers and Their Migratory Potential Influenced by Serum Samples After Cardiac Surgery

Endothelial progenitor cells (EPCs) are recruited from the bone marrow under pathological conditions like hypoxia and are crucially involved in the neovascularization of ischemic tissues. The origin, classification and characterization of EPCs are complex; notwithstanding, two prominent sub-types of EPCs have been established: so-called &#34;early&#34; EPCs (subsequently referred to as early-EPCs) and late-outgrowth EPCs (late-EPCs). They can be classified by biological properties as well as by their appearance during in vitro culture. While &#34;early&#34; EPCs appear in less than a week after culture of peripheral blood-derived mononuclear cells in EC-specific media, late-outgrowth EPCs can be found after 2-3 weeks. Late-outgrowth EPCs have been recognized to be directly involved in neovascularization, mainly through their ability to differentiate into mature endothelial cells, whereas &#34;early&#34; EPCs express various angiogenic factors as endogenous cargo to promote angiogenesis in a paracrine manner. During myocardial ischemia/reperfusion (I/R), various factors control the homing of EPCs to regions of blood vessel formation.
Macrophage migration inhibitory factor (MIF) is a chemokine-like pro-inflammatory and ubiquitously expressed cytokine and was recently described to function as key regulator of EPCs migration at physiological concentrations1. Interestingly, MIF is stored in intracellular pools and can rapidly be released into the blood stream after several stimuli (e.g. myocardial infarction). 
This protocol describes a method for the reliable isolation and culture of early-EPCs from adult human peripheral blood based on CD34-positive selection with subsequent culture in medium containing endothelial growth factors on fibronectin-coated plates for use in in vitro migration assays against serum samples of cardiac surgical patients. Furthermore, the migratory influence of MIF on chemotaxis of EPCs compared to other well-known angiogenesis-stimulating cytokines is demonstrated.

Endothelial progenitor cells (EPCs) are crucially involved in the neovascularization of ischemic tissues. This method describes the isolation of human EPCs from peripheral blood, as well as the identification of their migratory potential against serum samples of cardiac surgical patients.

בידוד של ובתאים אנדותל מן הבריאה מתנדבת ופוטנציאל הנדידה שלהם בהשפעת דגימות סרום לאחר ניתוח הלב

Endothelial progenitor cells (EPCs) are recruited from the bone marrow under pathological conditions like hypoxia and are crucially involved in the ...

Medicine

Phenotypic and Functional Characterization of Endothelial Colony Forming Cells Derived from Human Umbilical Cord Blood

Longstanding views of new blood vessel formation via angiogenesis, vasculogenesis, and arteriogenesis have been recently reviewed1. The presence of circulating endothelial progenitor cells (EPCs) were first identified in adult human peripheral blood by Asahara et al. in 1997 2 bringing an infusion of new hypotheses and strategies for vascular regeneration and repair. EPCs are rare but normal components of circulating blood that home to sites of blood vessel formation or vascular remodeling, and facilitate either postnatal vasculogenesis, angiogenesis, or arteriogenesis largely via paracrine stimulation of existing vessel wall derived cells3. No specific marker to identify an EPC has been identified, and at present the state of the field is to understand that numerous cell types including proangiogenic hematopoietic stem and progenitor cells, circulating angiogenic cells, Tie2+ monocytes, myeloid progenitor cells, tumor associated macrophages, and M2 activated macrophages participate in stimulating the angiogenic process in a variety of preclinical animal model systems and in human subjects in numerous disease states4, 5. Endothelial colony forming cells (ECFCs) are rare circulating viable endothelial cells characterized by robust clonal proliferative potential, secondary and tertiary colony forming ability upon replating, and ability to form intrinsic in vivo vessels upon transplantation into immunodeficient mice6-8. While ECFCs have been successfully isolated from the peripheral blood of healthy adult subjects, umbilical cord blood (CB) of healthy newborn infants, and vessel wall of numerous human arterial and venous vessels 6-9, CB possesses the highest frequency of ECFCs7 that display the most robust clonal proliferative potential and form durable and functional blood vessels in vivo8, 10-13. While the derivation of ECFC from adult peripheral blood has been presented14, 15, here we describe the methodologies for the derivation, cloning, expansion, and in vitro as well as in vivo characterization of ECFCs from the human umbilical CB.

Endothelial colony forming cells (ECFCs) are circulating endothelial cells with robust clonal proliferative potential that display intrinsic in vivo vessel forming ability. Phenotypic and functional characterization of outgrowth endothelial cells derived from CB are important to identify and isolate bona fide ECFCs for potential clinical application in repairing damaged tissues.

אפיון פנוטיפי ופונקציונלי של תאים מושבה אנדותל יוצרי נגזר דם טבורי האדם קורד

Longstanding views of new blood vessel formation via angiogenesis, vasculogenesis, and arteriogenesis have been recently reviewed1. The presence of ...

Ex Vivo Expansion of Hematopoietic Stem Cells from Human Umbilical Cord Blood-derived CD34+ Cells Using Valproic Acid

Umbilical cord blood (UCB) units provide an alternative source of human hematopoietic stem cells (HSCs) for patients who require allogeneic bone marrow transplantation. While UCB has several unique advantages, the limited numbers of HSCs within each UCB unit limits their use in regenerative medicine and HSC transplantation in adults. Efficient expansion of functional human HSCs can be achieved by ex vivo culturing of CD34+ cells isolated from UCBs and treated with a deacetylase inhibitor, valproic acid (VPA). The protocol detailed here describes the culture conditions and methodology to rapidly isolate CD34+ cells and expand to a high degree a pool of primitive HSCs. The expanded HSCs are capable of establishing both short-term and long-term engraftment and are able to give rise to all types of differentiated hematopoietic cells. This method also holds potential for clinical application in autologous HSC gene therapy and provides an attractive approach to overcome the loss of functional HSCs associated with gene editing.

Ex Vivo Expansion of Hematopoietic Stem Cells from Human Umbilical Cord Blood-derived CD34+ Cells Using Valproic Acid

Here, we describe the ex vivo expansion of hematopoietic stem cells from CD34+ cells derived from umbilical cord blood treated with a combination of a cytokine cocktail and VPA. This method leads to a significant degree of ex vivo expansion of primitive HSCs for either clinical or laboratory applications.

Ex-Vivo הרחבה של תאי גזע Hematopoietic מן הטבור האדם הנגזרות דם CD34+ תאים באמצעות חומצה ולפרואית

Umbilical cord blood (UCB) units provide an alternative source of human hematopoietic stem cells (HSCs) for patients who require allogeneic bone marrow ...

בידוד של אנדותל ובתאים של דם טבורי אנושי

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video