1 L’alose savoureuse est une espèce de poisson endogène2 originaire de l’est des États-Unis et du Canada, 3 où les effectifs sont en déclin en raison de plusieurs facteurs. 4 Ces poissons sont connus pour être 5 une espèce sensible à la manipulation, 6 et très peu d’études de marquage ont réussi 7 à étudier leur comportement et leur survie 8 sans observer de taux élevés de mortalité. 9 Pour aider à l’étude des déplacements à court terme 10 de petits et Des chercheurs du Pacific Northwest National Laboratory 12 ont mis au point un nouvel émetteur acoustique miniature 13 et évalué de nombreuses étapes du processus de marquage, 14 y compris la collecte des poissons, le transport, 15 la détention, le marquage et la récupération après le marquage.
16 L’objectif général de cette étude était d’élaborer un protocole 17 pour le marquage des alose savoureuses juvéniles 18 à l’aide d’un émetteur acoustique 19 qui réduirait au minimum les effets néfastes de la manipulation 20 et maximiserait la survie après le marquage. 21 Bien qu’elle ne soit pas indigène dans le nord-ouest du Pacifique, l’alose savoureuse est devenue très abondante dans la région. 23 Les aloses juvéniles utilisées dans cette étude ont été prélevées 24 dans une installation de dérivation des poissons, 25 à un barrage hydroélectrique sur le cours inférieur du fleuve Columbia, 26 et transportées à notre laboratoire de recherche aquatique.
27 La technique recommandée 28 pour marquer l’alose savoureuse juvénile est une incision pectorale 29 avec implantation d’un émetteur acoustique interne, 30 sans l’utilisation de sutures pour fermer la plaie. 31 Cette technique d’implantation peut être réalisée 32 en moins de 30 secondes, a un taux de rétention de tag élevé, 33 et permet une cicatrisation rapide de la plaie. 34 D’autres techniques qui ont aidé à minimiser le stress 35 et la gestion des mortalités comprenaient l’utilisation de transferts d’eau à eau 37 et le maintien des poissons dans de l’eau salée saumâtre, 38 avant et après le marquage.
39 Lorsque l’eau salée saumâtre40 n’est pas facilement disponible, 41 utiliser un système statique pour retenir l’alose 42 avec une aération et une circulation appropriées, 43 pendant un à deux jours avant de la relâcher. 44 Dans un réservoir circulaire statique, 45 installer un système de levage par air pour assurer l’aération. 46 Connecter un tuyau en PVC de manière à ce qu’un T soit situé en haut, 47 un autre T se trouve au milieu, 48 et un raccord grillagé est vissé 49 au bas du tuyau.
50 Ensuite, connectez une pierre à air à une conduite d’air comprimée, 51 et placez la pierre à air au fond du tuyau 52 près de l’écran. 53 L’écran empêche les poissons de nager 54 dans le système de transport aérien. 55 Remplissez le réservoir d’eau douce 56 jusqu’à ce que l’orifice de sortie du pont aérien 57 soit à peu près à moitié immergé.
58 Ensuite, fermez l’eau. 59 Ensuite, ouvrez l’alimentation en air 60 jusqu’à ce que l’eau aérée sortant du port crée un flux directionnel 61 pour que les poissons puissent s’orienter. 62 Ajouter du sel de mer commercial pour faire 63 une solution d’eau salée saumâtre de 7,5 parties par millier, 64 et remuer jusqu’à dissolution.
65 Avant de recueillir le poisson dans un réservoir de rétention, 66 préparer un seau d’eau salée. 67 Mesurez 7,5 grammes de sel de mer 68 pour 0,5 litre d’eau. 69 Utilisez une main gantée pour dissoudre le sel dans le seau.
70 Notez qu’à l’étape trois, 71 un volume égal de bidon d’eau douce contenant l’alose 72 est ajouté pour créer une concentration finale de 7,5 PPT. 73 Dans un autre seau, 74 mesurez et dissolvez 7,5 grammes de sel de mer 75 pour chaque litre d’eau, 76 puis ajoutez 120 grammes de tricaïne-méthanesulfonate 77 tamponné avec 120 milligrammes de bicarbonate de sodium 78 par litre d’eau salée. 79 Ajoutez de l’air supplémentaire dans les seaux d’anesthésie.
80 Ensuite, remplissez partiellement un autre seau d’eau douce 81 et placez-le latéralement dans le réservoir source de pré-étiquetage, 82 et utilisez un filet ou une main pour guider doucement l’alose 83 pour qu’elle nage dans le seau. 84 Une fois qu’il y a un nombre approprié de poissons dans le seau, 85 Retournez le seau à la verticale et fixez-le avec un couvercle perforé. 86 Versez l’excès d’eau par le couvercle, 87 en gardant le poisson contenu 88 dans la quantité cible d’eau douce.
89 Versez doucement l’alose et l’eau douce 90 dans le seau de source d’eau salée préparé à la deuxième étape. 91 Veuillez noter que la salinité finale sera de 7,5 PPT. 92 Fournir de l’air supplémentaire 93 au seau de source de poisson pré-étiqueté 94 à l’aide d’une pompe à air d’aquarium et d’une pierre à air 95 pour maintenir l’oxygène dissous à un niveau acceptable.
96 Désinfecter les émetteurs à 70% d’éthanol pendant 20 minutes, 97 et rincer à l’eau stérile avant utilisation. 98 Ensuite, à l’aide d’une épuisette à mailles extra fines lisses, 99 filetez un poisson du seau source 100 et le plongez dans le seau anesthésique. 101 L’alose devrait perdre l’équilibre et les réflexes spinaux 102 en deux à trois minutes environ.
103 Une fois complètement anesthésié, à l’aide d’une main gantée 104, placez délicatement le poisson sur une planche à mesurer 105 humide pour obtenir sa longueur. 106 Déplacez le poisson dans un bateau de poids rempli d’eau 107 sur une balance déchirée pour obtenir son poids. 108 Noter la longueur et le poids, le code de l’étiquette acoustique, 109 et tout commentaire sur l’état du poisson avant le marquage, 110 comme la perte d’écailles ou l’hémorragie.
111 Ensuite, placez le poisson dans un récipient de transfert 112 rempli d’eau salée anesthésique, 113 et livrez-le avec l’émetteur acoustique 114 au chirurgien du poisson. 115 Placez le poisson côté gauche face vers le bas 116 sur un coussin en mousse humide résistant à l’eau 117 préparé avec une rainure en V. 118 Fournir de l’eau douce à la bouche du poisson 119 au moyen d’un tube fixé à un réservoir d’eau alimenté par gravité.
120 À l’aide d’une lame chirurgicale en acier inoxydable 121 désinfectée ou du tout nouveau numéro 11, 122 faites une incision de trois millimètres de long, 123 verticalement, entre les myomères 124 près de l’extrémité distale de la nageoire pectorale. 125 Insérez soigneusement l’émetteur dans l’incision, 126 et poussez-le vers l’arrière 127 jusqu’à ce que l’étiquette entière repose à l’intérieur de la cavité corporelle. 128 Si nécessaire, utilisez l’extrémité émoussée du scalpel, 129 ou une pince à pointe fine, pour insérer soigneusement l’étiquette complètement.
130 Ensuite, placez le poisson étiqueté dans un petit récipient 131 de 7,5 PPT d’eau salée avec aération, 132 pour permettre au poisson de se remettre de l’anesthésie. 133 Une fois que le poisson a retrouvé son équilibre, 134 effectuer un transfert d’eau à eau du récipient de récupération 135 au réservoir de rétention contenant de l’eau salée. 136 Laisser les poissons marqués se rétablir dans l’eau salée 137 pendant un à deux jours avant de les remettre à l’eau.
138 Les évaluations en laboratoire ont démontré 139 que la survie des alose juvéniles et la rétention des étiquettes étaient les plus élevées 140 lorsque les poissons ont été implantés 141 avec l’emplacement de l’incision pectorale, 142 comparativement à d’autres techniques de marquage 143 qui comprenaient l’insertion gastrique, 144 l’incision pelvienne et l’attache dorsale. 145 La survie des poissons marqués dans cette évaluation a été définie 146 comme la survie et la conservation des étiquettes, 147 parce que l’expulsion des étiquettes ne peut pas être différenciée 148 d’un événement de mortalité dans une étude de télémétrie. 149 Cette figure montre l’émetteur factice P 5 utilisé 150 dans les évaluations en laboratoire 151 et le prototype d’émetteur acoustique 152 avec des composants fonctionnels.
153 Le prototype final de l’émetteur mesure 154, mesure environ 7,6 millimètres de long, 155 2,0 millimètres de diamètre, 156 et a un poids et un poids et un air d’environ 50 milligrammes. 157 Cette figure illustre le taux de survie à 60 jours 158 d’un réservoir d’alose juvénile 159 marqué avec l’émetteur P5, 160 par rapport au groupe témoin non marqué. 161 Le taux de survie à 60 jours était de 81,5 % pour le groupe marqué, de 162 % et de 70 % pour les témoins non marqués.
163 Il n’y avait pas de différence statistique de survie 164 entre les deux groupes, 165 cependant, la capacité de détection d’une différence était de 38,4 %166 Nous avons élaboré un protocole détaillé de manipulation et de marquage167 qui sera utile pour étudier les petites espèces de poissons 168 sensibles et menacées comme l’alose savoureuse. 169 Nous avons constaté que la réduction de la manipulation hors de l’eau 170 et l’utilisation d’eau salée saumâtre avant et après le marquage 171 amélioraient la survie de ces poissons. 172 Le Les résultats de ces évaluations démontrent 173 que la survie de l’alose marquée était comparable 174 à celle de l’alose non marquée, au-delà de la durée 175 de la durée de vie de la batterie de l’émetteur acoustique 176, qui devrait être d’environ 30 jours 177 avec un intervalle de fréquence de ping de cinq secondes.
178 Cette technologie permettraaux chercheurs 179 d’obtenir des informations précieuses sur le comportement des aloses juvéniles 180 à proximité des installations hydroélectriques, 181 et de déterminer les taux de survie spécifiques à chaque route. 182 Les résultats obtenus grâce aux études d’inRiver peuvent mieux éclairer 183 les décisions de gestion de ces installations, 184 pour améliorer les taux de passage et de survie des poissons juvéniles. 185 De plus, ces techniques sont facilement transférables 186 à l’implantation d’aloses avec des étiquettes de transpondeur intégrées passives, 187 qui peuvent assurer un suivi à long terme 188 tout au long de leur cycle biologique.
