Diese Forschung wurde zum Teil durch USDA landwirtschaftlichen Auslandsdienste TASC Zuschüsse unterstützt.

Hinweis: Stickoxid-Begasung von frischen Produkten beginnt mit der Gründung von niedrigem Sauerstoff in Begasung Kammern, gefolgt von Injektion von NO und halten die Begasung Kammern bei bestimmten Temperaturen für die Dauer einer spezifischen Behandlung, und dann beendet durch Spülen mit N2 illustriert um NO vor dem Öffnen der Begasung Chambers als verdünnen (Abbildung 3). Messungen von Nr.2 in den Kopfraum der Begasung Kammern und Nitrat und Nitrit in flüssigen Proben mit der Modell 405 nm keine2/NO/NOx Monitor und NOA Stickoxid-Analysator entnehmen Sie bitte den Bedienungsanleitungen von den Herstellern für ausführliche Anleitung Verfahren.
Achtung: Stickoxid ist ein starkes Oxidationsmittel und reagiert mit Sauerstoff spontan zu Stickstoffdioxid zu produzieren. Stickstoffmonoxid und Stickstoffdioxid sind giftig. Bitte lesen Sie ihre MSDS für den sicheren Umgang und verwenden. Für die persönliche Sicherheit sollten alle Schritte des kleinen Begasung Experimente mit Handling und potenziellen Exposition keine oder keine2 in einem Abzug durchgeführt werden. Eine persönliche, die keine2 Alarm verwendet werden soll, große durchzuführen Skalieren keine Begasung Experimente.
1. Vorbereitung von Materialien und Geräten
<ol><li>
Instrumente, Teile und Materialien, für die keine Begasung notwendig
	<ol>
<li>Machen Sie einen Folienbeutel mit einem Schlauch-Ventil für Nr.<ol>
<li>Verschließen der Öffnung von einem Folienbeutel um ein Polytetrafluorethylen (PTFE) Rohr mit einer Wärme-Versiegelung.</li>
			<li>Verwenden Sie dann Epoxid-Klebstoff zur Abdichtung von Nähten und Gelenk um das Rohr Polytetrafluorethylen (PTFE), Folienbeutel zu produzieren.</li>
			<li>Fügen Sie ein Absperrhahn am Ende des Rohres. Hinweis: Folienbeutel mit Schlauch sind nicht im Handel erhältlich. Aber sie können leicht im Labor mit Folienbeutel aus kommerziellen Quellen mit einer Wärme-Versiegelung erfolgen. Hinweis: Stickstoff: regelmäßige Industrie Stickstoff in komprimierte Zylinder hat eine Reinheit von ≥99.99 % und eignet sich für keine Begasung. Zwei oder mehr Zylinder mit den Aufsichtsbehörden können unterschiedliche Ausgangsdrücke haben und miteinander verbunden. Der Zylinder mit der höheren Ausgangsdruck wird zuerst verwendet werden, bevor der Zylinder mit der unteren Ausgangsdruck verwendet wird. Dies wird in großen Begasung Tests nützlich sein.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Luftdichte Begasung Kammern. Hinweis: Luftdichtheit ist wichtig, keine Begasung da NO reagiert mit O2 sickerte in die Kammer. Dies reduziert verfügbar Nein zur Schädlingsbekämpfung und produzieren auch keine2 frische Produkte beschädigen könnte.<ol>
<li>Glas-Glas-Kammern: dem Deckelrand leicht mit Vaseline einfetten. Dann verschließen Sie das Glas mit dem Deckel, der zwei Ausgänge hat, nach dem Laden von Objekten wie z. B. Insekten befallene Produkte in das Glas. Hinweis: Jeder Deckel des Glases hat zwei Filialen und eine der Filialen verfügt über ein Kunststoffrohr erweitert, um den Boden des Glases, die Effizienz der Luft-Ersatz.</li>
			<li>Kammern der Schnellkochtöpfe gemacht: den Rand der Kammer mit Vaseline einfetten. Produkte und Insekten in der Kammer zu laden und mit dem Deckel verschließen.</li>
			<li>Großen Begasung Kammern: die Dichtung leicht mit Vaseline einfetten. Dann laden Sie Produkte in der Kammer. Schließen Sie die Tür. Ziehen Sie die Schellen gegebenenfalls eine luftdichte Versiegelung pflegen. Hinweis: Kein Gas ist sehr volatil, so gibt es keine Notwendigkeit, ein Fan in einer Begasung Luft in der Kammer gemischt zu halten haben.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Schaffung von ULO-Bedingungen in Begasung Kammern
<ol><li>Verbinden Sie eine Kammer mit N2 Linien und eine O-2 -Analyzer. Hinweis: Ein T-Stück mit einem Ende geht in den Analysator und das andere Ende mit einem One-Way-Rückschlagventil ausgestattet kann verwendet werden, um Luft zur Vermeidung von hohen Durchfluss an den O-2 -Analysator freizugeben.</li>
	<li>Lassen Sie N2 durch einen Durchflussmesser, spülen Sie die Kammer um Sauerstoff zu entfernen.</li>
	<li>Reduzieren Sie N2 Durchfluss auf 0,5 - 1 L/min bei O-2 -Ebene in der Nähe von 30 ppm.</li>
</ol>3. Injektion von kein Gas
<ol><li>
Füllen Sie den Folienbeutel ohne Gas.
	<ol>
<li>Füllen Sie den Beutel mit N2 zuerst und dann saugen Sie die Luft heraus O2 aus dem Beutel zu waschen.</li>
		<li>Lassen Sie dann kein Gas in den Beutel in einem Abzug.</li>
		<li>Hängen Sie die Tasche in einer Dampfhaube für keine Begasung verwendet werden. Hinweis: Nach längerer Nutzung die Tasche kann dekadent und der Schlauch kann verspröden durch die korrosive Wirkung der Nr.2. So müssen die Taschen in regelmäßigen Abständen ersetzt werden.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Nein in Begasung Kammern zu injizieren.
	<ol>
<li>Waschen Sie die Spritze und Schläuche mit N2 O2spülen befestigt.</li>
		<li>Nehmen Sie eine NO-Probe aus der NO-Folienbeutel und injizieren sie in Begasung Kammern.</li>
		<li>Nach der Injektion, spülen Sie die Spritze und Schläuche mit N2befestigt.</li>
		<li>Platzieren Sie Begasung Kammern bei 2 ° C für die Dauer der Behandlung Begasung.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Messen Sie keine Konzentration in einer Begasung Kammer
Hinweis: Keine Konzentrationen in Begasung für Schädlingsbekämpfung reichen von 2.000 ppm (0,2 %) bis 50.000 ppm (5 %). Dieser Bereich ist "out of Range" von aktuellen NO überwacht. Aber keine Ebenen noch gemessen werden können, in verdünnten Proben oder mithilfe eines Geräts Verdünnung.
<ol><li>
Kleine Kammer Räucherungen
	<ol>
<li>Verdünnen Sie Luftproben aus Behandlung Gläser am Ende der Begasung:<ol>
<li>ULO-Bedingungen bei ≤30 ppm O2 in Gläsern zu etablieren.</li>
			<li>Nehmen Sie Gasproben von Behandlung Gläser in die ULO-Gläser zu injizieren.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Messen Sie NO und NO2 Ebenen in den verdünnten Proben durch die Umluft durch einen Rauchfang Gasmonitor.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Große Kammer Räucherungen: die Verfahren sind in Abbildung 4dargestellt.
	<ol>
<li>Richten Sie ein Verdünnungssystem.</li>
		<li>NO und NO2 Ebenen zu messen.<ol>
<li>Schalten Sie den Schornstein Gasmonitor und spülen Sie es mit N2.</li>
			<li>Biegen Sie auf der Probe Gasstrom, NO und NO2 Ebenen zu messen.</li>
			<li>Beenden Sie die Messung durch das Ausschalten des Probe Gasstroms.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. beenden Sie keine Begasung
<ol><li>
Begasung von Insekten nur
	<ol>
<li>Legen Sie Begasung Kammern in einer Dampfhaube.</li>
		<li>Öffnen Sie die Kammern.</li>
		<li>Insekten für Mortalität Auswertung abrufen. Hinweis: Insekten sind in der Regel in einer Klimakammer über Nacht nach Begasung erlauben alle lebenden Insekten zu erholen, bevor für die Mortalität erzielt werden statt.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Begasung von frischen Produkten
	<ol>
<li>Verschieben Sie Begasung Kammern in einem Abzug (für kleine Räume).</li>
		<li>Spülen Sie die Begasung Kammern mit N2 um eine bestimmte Anzahl Luftaustausch zu ermöglichen.</li>
		<li>KEINE Ebene auf die Abluftöffnung zu überwachen. Hinweis: Der Schornstein Gasmonitor lässt sich keine Ebenen während der N2 Flush zu überwachen. In der Regel spülen wir Begasung Kammern um die Nr. unter 200 ppm vor dem Öffnen der Kammern an Umgebungsluft zu reduzieren.</li>
		<li>Rufen Sie Insekten für Mortalität Bewertung ab, (wenn Insekten enthalten sind).</li>
		<li>Lagern Sie desinfizierte Produkte für die Analyse und Nachbehandlung Qualitätsbewertung Rückstände. Hinweis: Planen Sie genügend Zeit begasten Produkte in der Dunstabzugshaube für NO und NO2 , wechselte sie für die Lagerung zu zerstreuen. Desinfizierte Produkte werden in der Regel für einen bestimmten Zeitraum vor der auszuwertenden postharvest Qualität und mögliche Verletzungen bei einer niedrigen Temperatur zusammen mit Steuerelementen in einem Kühler gelagert.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. die Rückstandsanalytik
<ol><li>
Stickstoffdioxid (NO2) Messung mit einem 405 nm überwachen keine2/Nein/NeinX
	<ol>
<li>Schalten und lassen die 405 nm keine2/NO/NOX überwachen um 20-30 min. warmlaufen.</li>
		<li>Schließen Sie die Begasung-Kammer mit dem Produkt. Hinweis: Nach der Begasung waren Begasung Kammern offen und platzierte bei einer bestimmten Temperatur erlauben keine2 zu zerstreuen. Zum Zeitpunkt, wenn keine2 -Freisetzung gemessen wird, Verschließen der Kammers mit zwei Anschlüssen ausgestattet mit Hähne mit einem Deckel luftdicht. Eine Temperatur von 20 ° C wurde in der Prozedur Demo verwendet.</li>
		<li>Anschließen Sie Nr.2 Monitor an die Kammer für die Luftzirkulation durch die Nr.2 Monitor.</li>
		<li>Sofort anmelden, Daten über die Nr.2 überwachen und erfassen Daten für 1 min.</li>
		<li>Trennen Sie die Kammer aus dem Monitor und halten Sie die Kammer verschlossen zu. Hinweis: Protokollierung gestartet werden kann entweder über Menü -> Dat -> Protokoll Nr.2 Monitor oder über die Grafik-Software auf einem Computer.</li>
		<li>Halten Sie die verschlossenen Kammern bei 20 ° C für 1 h, dann wiederholen Sie den Daten-Sammlung-Schritt. Hinweis: Das Zeitintervall kann abhängig von der Freisetzungsrate von Nr.2 von begasten Produkte angepasst werden.</li>
		<li>Berechnen Sie die Differenz zwischen den beiden keine2 Konzentrationen und konvertieren die Daten in mg/kg/h.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Nitrat und Nitrit Messungen mit einem GE Sievers 280i NO-Analysator Hinweis: Finden Sie im Handbuch des Herstellers und die Papier-21 von Yang und Liu (2017) für detaillierte Informationen.<ol>
<li>Vorbereitung der Probe<ol>
<li>Produkt-Proben in einem Mixer zu homogenisieren.</li>
			<li>Übertragen Sie 15 g der homogenisierten Probe in ein Fläschchen von den Mixer.</li>
			<li>Fügen Sie 100 mL destilliertem H2O für 10 Minuten in der Durchstechflasche zu begleichen.</li>
			<li>Filtern Sie die Probe und speichern Sie die filtrierte Lösung bei 2 ° C bis zu seiner Verwendung zu.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Reduktionsmittel Vorbereitung für Nitrat Messung mit Stickoxid-Analysator Hinweis: Finden Sie im Handbuch des Herstellers für detaillierte Informationen.<ol>
<li>0,8 g von Vanadium-Chlorid (VCl3) in einem Kolben zugeben.</li>
			<li>Langsam hinzufügen 100 mL 1 M Hydrochlorid Säure (HCl) in den Kolben mit dem VCl-3, den Kolben Mütze und mehrmals schwenken.</li>
			<li>Filtern Sie die Lösung mit Filterpapier und einen Trichter und verschließen Sie die filtrierte Lösung Flasche mit Alufolie und im Kühlschrank aufbewahren.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Messung von Nitrat und Nitrit mit Stickoxid-Analysator Hinweis: Finden Sie im Handbuch des Herstellers für detaillierte Informationen.<ol>
<li>Heizen Sie das Wasserbad bis 95 ° C. Fügen Sie 4-6 mL des Reduktionsmittels Nitrat in ein Gefäß Säuberung und passen Sie die inerten Gas-Durchfluss zu einem angemessenen Grad. Hinweis: Das Inertgas war er. N2 Gas kann auch verwendet werden.</li>
			<li>Injizieren Sie 5 µL Probelösung mit einer Spritze in das Gefäß entfernen.</li>
			<li>Fahren Sie mit der nächsten Probeninjektion nach Abschluss der Probe-Gipfel.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Nitrit Messung mit Stickoxid-Analysator Hinweis: Finden Sie im Handbuch des Herstellers für detaillierte Informationen.<ol>
<li>Stellen Sie das Ventil auf dem Schiff Säuberung, 1-2 Psi Druck für das Schutzgas zu haben.</li>
			<li>Fügen Sie 4-6 mL konzentrierter Essigsäure, die erste Glühbirne des Schiffes Säuberung zu füllen.</li>
			<li>Wiegen von 50 mg Natriumiodid (NaI) und lösen Sie es in 1-2 mL H2O.</li>
			<li>Die NaI-Lösung zum Bereinigen Behälter und mischen für 1-2 Minuten.</li>
			<li>Inertes Gas-Durchfluss zu einem angemessenen Grad zu erhöhen.</li>
			<li>Injizieren Sie 5 µL Probelösung mit einer Spritze in das Gefäß entfernen.</li>
			<li>Fahren Sie mit der nächsten Probeninjektion wenn Probe Höhepunkt abgeschlossen ist.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>(7) Postharvest Qualitätsbewertung von Obst und Gemüse
Hinweis: Produkt Verletzungen keine Begasung können unmittelbar nach der Begasung (Abbildung 5) auftauchen. Produktqualität ist jedoch in der Regel nach 1-2 Wochen nach der Behandlung Kühllagerung ausgewertet. Symptome der Verletzungen werden im Laufe der Zeit Fortschritte und Qualitätsbewertung besser identifiziert werden können. Verfahren für die Bewertung der verschiedenen frischer Produkten können erheblich abweichen. Nur Verfahren zur Evaluation Salat Qualität demonstriert hier beispielhaft mit etablierten Verfahren5.
<ol><li>Entfernen Sie zwei Wochen nach der Begasung Salat aus Kühlhaus. Packungen zu entfernen und Oberflächen für Flecken und Verfärbungen für alle Behandlungen einschließlich Kontrollen zu überprüfen.</li>
	<li>Gäste und externe visuelle Aufnahmequalität für alle Behandlungen basierend auf etablierten Verfahren8.</li>
	<li>Schneiden Sie Salat in Hälften und prüfen Sie alle Flecken und Verfärbungen für alle Behandlungen.</li>
	<li>Gäste und interne visuelle Qualität Noten für alle Behandlungen aufzeichnen.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Ashmore, P. G., Burnett, M. G., Tyler, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reaction+of+nitric+oxide+and+oxygen.">Reaction of nitric oxide and oxygen.</a> Trans. Faraday Soc. 58, 685-691 (1962).</li><li>Culotta, E., Koshland, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=NO+news+is+good+news.">NO news is good news.</a> Sci. 258, 1862-1865 (1992).</li><li>Haldane, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+red+colour+of+salted+meat.">The red colour of salted meat.</a> J. Hyg. 1, 115-122 (1901).</li><li>Hole, B. D., Bell, C. H., Mills, K. 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O2 aus der Begasung Kammer zu halten ist entscheidend für erfolgreiche ohne Begasung für Schädlingsbekämpfung. Begasung Kammern müssen Dichtungen und Anschlussleitungen mit N2 oder andere inerte Gase, O2 zu entfernen, bevor Sie verwendet wird, kein Gas in Begasung Kammern freizugeben gespült werden müssen. Ein weiterer kritischer Aspekt der keine Begasung ist Verdünnung nicht mit einem N-2 bündig am Ende der Begasung. Dies verhindert, dass Produktion von überschüssigem Nr.2 und seine möglichen Verletzungen zu frischen Produkten. Wie verschiedene frische Produkte verschiedene Ebenen der Toleranz gegenüber keine2 -Exposition haben, erfordern eine keine Begasung Behandlung unterschiedlicher N2 bündig zur Vermeidung von Verletzungen. Da Nr.2 einen hohen Siedepunkt von etwa 21 ° C hat und auch mit Wasser zur Form Säuren reagiert, wird keine2 Produktion wahrscheinlich Folge erhöhte Nr.2 auf begasten Produkte als Rückstände und Erhöhungen von Nitrat und Nitrit, die konvertiert werden von Nr.2.
Die Art der Produkte, begast werden kann auch die Begasung Prozess, z. B. eine erste Spülung mit N2 , ULO-Bedingungen und eine letzte Spülung mit N2 zu etablieren, um die Begasung Behandlung beenden erschweren. Großen Blattgemüse in perforiertem Kunststoff Verpackungen wie verpackte Kopfsalat stellen ein großes Hindernis für Luftzirkulation und somit eine Herausforderung für ausspülen O2 mit N2 zu Beginn der Begasung und ausspülen mit N2 am Ende der Begasung. Für diese Produkte ist es besser, Kombinationen des unteren verwenden keine Konzentrationen und längere Behandlungszeiten, um Schädlinge zu kontrollieren, weil es sicherer für Produktqualität.
KEINE Überwachungsstufen in Begasung Kammern ist eine weitere Herausforderung bei der Durchführung keine Begasung. Die meisten Instrumente messen nicht dem hohen keine Konzentrationen in keine Räucherungen zur Schädlingsbekämpfung verwendet. Es gibt ein paar Verdünnung-Geräte, die im Handel erhältlich sind, aber es ist nicht bekannt, ob sie für keine Begasung geeignet. Jedoch eine Verdünnung Gerät gemacht wie oben beschrieben und verwendet werden kann für keine Überwachung mit einem Gasmonitor einen NO-Sensor ausgestattet.
Weitere Änderungen können die Verfahren zur Überwachung keine Konzentrationen in Begasung Kammern erfolgen. Beispielsweise kann eine Probe der Luft in einer Begasung Kammer in einem Folienbeutel mit einem bestimmten Volumen von Stickstoff verdünnt werden. Die verdünnte Luftprobe kann dann über einen Schornstein Gasmonitor ausgestattet mit einer hohen Konzentration kein Sensor zur Messung der keine Konzentration weiterverbreitet werden. Jedoch wird es schwierig, Oxidation von NO in den Prozess und die Verdünnung Prozess wahrscheinlich führt einige Verluste von Nr. zu vermeiden Daher nicht berechnet basierend auf der Messung der verdünnten Luft Proben aus der Begasung Kammern wahrscheinlich werden niedriger als die tatsächliche keine Ebenen in der Begasung Kammern.
Der Prozess der Etablierung ULO-Bedingungen in Begasung Kammern auch modifiziert werden können basierend auf welche Art der Begasung Kammern zur Verfügung stehen. Für die Begasung Kammern, die unter Vakuumbedingungen verwendet werden können, können ULO-Bedingungen durch den Prozess der wiederholten Staubsaugen gefolgt von Stickstoffgas Kammer einfüllen hergestellt werden. Dieser Prozess wird in ULO-Bedingungen als die normalen Spülvorgang oben beschriebenen Aufbau effizienter sein. Für die gelagerten Produkte kann CO2 auch anstelle von N2 verwendet werden, für den Aufbau von ULO-Bedingungen für die keine Begasung.
Für Rückstandsanalytik, 405 nm keine2/NO/keineX -Monitor ausgewählt wurde, um keine2 -Gas-Version von begasten Proben in den Kopf Räumen und der Stickoxid-Analysator messen eingestellt wurde, Nitrat und Nitrit flüssigen Proben erkennt. Jedoch gibt es andere Arten von Instrumenten mit geeigneten Befindlichkeiten und Besonderheiten zur Nr.2 in vereint Messung und Messung von Nitrat und Nitrit in flüssigen Proben. Daher können die Verfahren für die Rückstände Messungen geändert werden, basierend auf der Verfügbarkeit von Instrumenten.
Nein ist sehr volatil mit einem Siedepunkt von-152 ° C und reagiert sofort mit O2, es wird nicht erwartet, NO bliebe als Rückstand auf begasten Produkte nach Begasung. Daher wurde nur Nr.2 in den Kopfraum von begasten Produkten gemessen. Nr.2 hat einen hohen Siedepunkt von 21 ° C und verflüchtigt sich sehr viel langsamer aus Produkten und deshalb wahrscheinlich für einige Zeit nach der Begasung auf begasten Produkte bleiben.
Für Blattgemüse, wenn keine Begasung mit N2 am Ende, nicht gespült wird mit O2 , Nr.2 zu produzieren reagieren würde und kann dazu führen das Fortbestehen von Nr.2 seit einiger Zeit als frische Produkte in der Regel bei niedrigen Temperaturen gelagert werden. Daher sollte unter dem ständigen Gesichtspunkt Verkürzung des erneuten Zeitraums nach der Begasung, auch keine Begasung mit N2 am Ende der Begasung gespült werden. Überwachung keine2 -Version ist daher wichtig zu bestimmen, wie lange und wie viel Nr.2 über Produkte nach der Begasung bleiben wird. KEINE2 Ebenen auf begasten Produkte werden betreffen, wie die begasten Produkte verarbeitet oder gelagert werden.
Nitrat ist natürlich im Boden und Pflanzen einschließlich Obst und Gemüse vorhanden.  Einige Wurzelgemüse können hohe Konzentrationen von Nitrat sammeln. Gemüse sind die größte diätetische Quelle von Nitraten. Zum Beispiel haben frischen Kopfsalat und Spinat durchschnittliche Nitratgehalte von 786-1.080 und 1.420-3.400 mg/kg. Die Verordnung der Europäischen Kommission setzt die Höchstgehalte für Nitrat für Salat und Spinat auf 2.500-4.500 und 2.000-3.000 mg/kg13. Nitrat und Nitrit sind auch häufig hinzugefügt, verarbeitetes Fleisch wie Speck, Schinken, Würstchen und Hot Dogs und verbraucht werden, wie sie als Konservierungsmittel in diese Fleischprodukte verwendet werden. Messungen von Nitrat und Nitrit als Rückstände der keine Begasung sollen Informationen über das Ausmaß, dass keine Begasung ihr Gehalt in begasten Produkte verändern kann und keine Relevanz für die Lebensmittelsicherheit haben. Daher sollten Messungen von Nitrat und Nitrit als Rückstände als optional, wenn sie, von den Regulierungsbehörden in der Registrierung nicht als ein Räuchermittel oder andere Regulationsprozesse erforderlich sind angesehen werden. Modalitäten für Nitrat und Nitrit Messungen sind auch verfügbar21.
Stickoxid-Begasung hat Vorteile der hohe Wirksamkeit gegen alle Stadien im Leben von Insekten und Milben und keine schädlichen Rückstände im Vergleich zu den meisten anderen Räuchermittel, wie besprochen, bevor6,7,9. Da gibt es einen kritischen Mangel an wirksame Alternativen zur Begasung von Methylbromid zur postharvest Schädlingsbekämpfung und die meisten Alternativen Räuchermittel giftige Rückstände in begasten Produkte hinterlassen, garantiert keine Begasung wesentlich erweiterte Forschungs-, Entwicklungs-, und Registrierung-Bemühungen um diese sichere und wirksame postharvest Pest Control-Lösung auf den Markt zu bringen. Jedoch kann aufgrund der Komplexität und strenge Erfordernis ULO-Bedingungen der Begasung Verfahren, Ausbildung für viele Forscher um keine Begasung Forschung erforderlich. Es ist unsere Absicht, informativ und leicht zu befolgen für Labor, keine Begasung Behandlungen für postharvest Pest Steuern auf frische und landwirtschaftliche Produkte gespeichert. Die Grundsätze der Verfahren eingesetzt werden Protokolle für groß angelegte keine Räucherungen für praktische Anwendungen zu entwickeln.

Stickstoffmonoxid ist ein allgegenwärtiges Zelle Messenger Molekül in allen biologischen Systemen2. Es ist in großen Mengen als gemeinsame Schadstoff der Verbrennung fossiler Brennstoffe durch Kraftwerke und Kraftfahrzeugen veröffentlicht und als Zwischenprodukt in der Düngemittelproduktion in großen Mengen hergestellt. Intensive Forschung auf Nein in den letzten 20 Jahren hat eine große Menge an Wissen über seine Bedeutung, Funktionen und Mechanismen bei der Regulierung der biochemischen und physiologischen Prozesse in verschiedenen biologischen Systemen erbracht. Dieses Wissen führte zu verschiedenen medizinischen Anwendungen von NO für die Behandlung von Atem- und Herzstillstand Krankheiten14,15,16. In der Landwirtschaft, NO wurde vor über 100 Jahren auf verarbeitete Fleischprodukte für rotes Pigment Erhaltung3verwendet. Erstreckt sich nicht auch Haltbarkeit und steigert postharvest Qualität einer Vielzahl von frischen Produkten11,12,17,18,19,20. In jüngerer Zeit, NO erwies sich ein potenter Räuchermittel für postharvest Pest Control6.
Nein hat nachgewiesen, dass wirksam gegen alle Stadien im Leben der Insekten getestet (Abbildung 1). Die Schädlingsarten getestet diverse Typen und Lebensstadien der Schädlinge darstellen und zeigen großes Potenzial der keine Begasung, diverse Schädlinge zu kontrollieren. Die Wirksamkeit von keine Begasung gegen Schadinsekten liegt in der Nähe von Methylbromid Begasung. Jedoch kann keine Begasung bei Kühllagerung Temperaturen durchgeführt werden. Methylbromid Begasung erfordert die Erwärmung der kalten gelagerten Produkte und daher kann die Produktqualität auswirken. Zum Beispiel westliche Blume Thripse, Frankliniella Occidentalisund Salat Blattlaus, Nasonovia Ribisnigri, kann in 2 und 3 h mit 2,0 % und 1,0 % keine Begasung jeweils gesteuert, bei 2 ° C-6. KEINE Begasung ist auch viel schneller als Phosphin-Begasung, die die wichtigsten Methylbromid alternative Behandlung und nehmen mehr als zehn Tage, um einige Schädlinge4,6,9,10zu kontrollieren.
Stickoxid-Begasung ist wirksam gegen externe und interne Futterinsekten. Spotted Flügel Drosophila, Drosophila Suzukii, Larven befallenen Kirschen werden in 8 h mit 2,5 % kontrolliert keine Begasung-9. Larven der Apfelwickler, Cydia Pomonellain befallenen Äpfel sind komplett in einem 24 h-Begasung mit 5 % nicht um 2 ° C9,10gesteuert. Die Wirksamkeit von keine Begasung steigt mit zunehmender Konzentration, Behandlungszeit und Temperatur6. Diese Faktoren können verwendet werden, um keine Begasung Behandlungen für verschiedene Insektenarten auf verschiedene Rohstoffe zu optimieren.
Jedoch keine reagiert mit O2 spontan, Nr.21zu produzieren. Dies verbraucht Nein nicht nur, sondern kann auch dazu führen, dass Schäden an Frischwaren wie Kopfsalat (Abbildung 2). Daher keine Begasung geführt werden muss, unter niedrigem (ULO) Sauerstoffbedingungen zu Nr. Für frische Produkte müssen keine Räucherungen auch durch Spülung mit N2 NO vor der Belichtung begasten Produkte an Umgebungsluft zur Reduzierung ihrer Exposition gegenüber Nr.2verdünnen beendet werden. Diese strengen Anforderungen erhöhen die Komplexität und Kosten keine Begasung. Allerdings dürfte keine Begasung technisch machbar und kostengünstige7sein. Alle Komponenten der großen Skala keine Begasung sind entweder im Handel erhältlich oder kommerziell einschließlich Stickstoff Stromerzeugungsanlagen, keine Versorgung, Überwachungsgeräte (O2 Analysator, kein Meter) und luftdichte Begasung Kammern gemacht werden kann. Kontrollierter Atmosphäre (CA) Lagerung und Versand unter niedrigen O2 Atmosphäre wurden kommerziell verwendet. Die Energiekosten der Generierung von N2 für keine Begasung ist auch bescheiden und variieren je nach Standort7.
Stickoxid-Begasung ist auch sicher, frisches Obst und Gemüse richtig Beendigung durch Spülen mit N2 NO verdünnen zuerst vor der Belichtung die Produkte an die Umgebung Luft8. KEINE Begasung nachgewiesen sicher zu allen frisches Obst und Gemüse, die bisher unter anderem Salat, Brokkoli, Gurken, Paprika, Tomaten, Erdbeeren, Äpfel, Birnen, Orangen und Zitronen8getestet sein. Ein 4 h-Begasung mit 1 % nicht bei 2 ° C zur Steuerung von westlichen Blume Thripse fördert auch Erdbeere Qualität. Eine Woche nach der Begasung, behandelte Erdbeeren sind fester und heller und reicher Farbe haben und daher besser postharvest Qualität im Vergleich zu die8.
Stickoxid-Begasung hinterlässt auch keine schädliche Rückstände begasten frische Produkte. Als keine reagiert mit O2 , Nr.2zu produzieren kann keine Begasung Ablagerung von Nr.2 auf die Produkte aufgrund der 21 ° C Siedepunkt von Nr.2führen. In Anwesenheit von Wasser hydrolysiert Nr.2 zu Form Salpetersäure (Druckaufschluss3). Daher kann keine Begasung (Nr.3–) Nitrate und Nitrite (Nr.2–) als Rückstände auf den behandelten Rohstoffe führen. Beendigung Begasung mit N2 spülen Sie, keine Begasung Ergebnisse keine oder nur geringe Zunahme Nitrat oder Nitrit als Rückstände bei 24 h nach der Begasung in frischen Rohstoffe9,21.
Die reaktive Natur von NO mit O2 erfordert auch strenge Verfahren zum Schutz vor O2 während des Prozesses der Durchführung keine Begasung Behandlungen. Die Komplexität und strenge Verfahren sollte sind am besten visuell dargestellt und gefolgt und gemeistert werden. In dieser Präsentation video Zeitschrift war keine Begasung von frischen Produkten erklärt, illustriert und gezeigt, um andere Forscher keine Begasung forschen und entwickeln keine Begasung Behandlungen für postharvest Schädlingsbekämpfung zu ermöglichen. Diese Bemühungen werden dazu beitragen, um kommerzielle Nutzung keine Begasung, postharvest Schädlingsbekämpfung auf frische und gespeicherten Produkte zu beschleunigen.

<table><tbody><tr><td>Nitric oxide gas</td><td>Praxair</td><td>UN1660</td><td>99.5% purity</td></tr><tr><td>Nitrogen gas</td><td>Praxair</td><td>UN1066</td><td>Industry grade</td></tr><tr><td>Fumigation chamber</td><td>(custom made)</td><td></td><td>Size: 30&quot;x30&quot;x30&quot;; made of stainless steel with rubber gaskit along the rim.&amp;nbsp; The chamber is sealed by clampdown its lid to the vaseline greased gaskit. The chamber has multiple ports for flushing the chamber and for taking air samples.</td></tr><tr><td>Nitric Oxide Analyzer</td><td>GE Scientific</td><td>NOA 280i analyzer</td><td>Measure NO plus NO2, Nitrate and nitrite</td></tr><tr><td>Model 405nm NO2/NO/Nox monitor</td><td>2B Technologies Inc</td><td></td><td>Ranges: NO (0-2ppm), NO2+NO (0-10ppm)</td></tr><tr><td>Kane 900+ gas monitor</td><td>Kane International</td><td></td><td>With NO, NO2, CO, O2 sensors</td></tr><tr><td>Flowmeter and controllers</td><td>Omega Engineering</td><td></td><td>Flow ranges: 0-1, 0-5, 0-20 LPM</td></tr><tr><td>Tubing, connectors, stopcocks</td><td>Cole-Parmer</td><td></td><td>Tubing: nylon and teflon, sizes: 1/8&quot; and 5/32&quot; (4mm); They fit to connectors and stockcocks&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Oxygen analyzer</td><td>Illinois Instruments</td><td>Model 810</td><td>Ziconia sensor, sensitivity: 0.1ppm, range: 0-100%</td></tr><tr><td>NO2 personal alarm</td><td>SENSIT Technologies</td><td>Sensit P100</td><td>Should be used in conducting large scale NO fumigations outside a fume hood</td></tr><tr><td>Flowmeter and controllers</td><td>Omega Engineering</td><td></td><td>Flow ranges: 0-1, 0-5, 0-20 LPM</td></tr><tr><td>Gastight syringes</td><td>SGE Analytical Science</td><td></td><td>10 ml, 100 ml</td></tr><tr><td>Gastight syringes</td><td>Hamilton Company</td><td></td><td>10uL</td></tr><tr><td>Tubing, connectors, stopcocks</td><td>Cole-Parmer</td><td></td><td>Tubing: nylon and teflon, sizes: 1/8&quot; and 5/32&quot; (4mm); They fit to connectors and stockcocks&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Sodium Iodide</td><td>Fisher Chemical</td><td>S324-100</td><td></td></tr><tr><td>Acetic acid, Glacial</td><td>Fisher Chemical</td><td>UN2789</td><td>&amp;ge;99.7% purity</td></tr><tr><td>Hydrochloric acid</td><td>Cole-Parmer</td><td>SA48-500</td><td>1.0 Normal</td></tr><tr><td>Vanadium(III) Chloride</td><td>Acros Organics</td><td>197000250</td><td>97% purity</td></tr><tr><td>Sodium Hydroxide</td><td>Fisher Chemical</td><td>BPSS266-1</td><td>1 M</td></tr><tr><td>SAHARA S3 Stainless-steel heated bath circulator</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SC 100 Digiital Imersion Circulator</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Oxygen</td><td>Praxair</td><td>*001043</td><td>99.5-100% purity</td></tr><tr><td>Hot Jaw</td><td>Sorbent Systems</td><td></td><td>Mylar bag heat sealer</td></tr><tr><td>Mylar bags</td><td>Sorbent Systems</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Flipmate filtration assemblies</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-35202-29</td><td></td></tr><tr><td>15 ml polypropylane tube</td><td>Falcon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Filter Paper P5</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Blender</td><td>Waring</td><td>Blender 7010G</td><td>Model WF2211212</td></tr><tr><td>Dilution device</td><td>Made in our lab</td><td></td><td>Combine the ends of four equal length Teflon microtubing into one connector and have a connector for each end of the four microtubing.</td></tr></tbody></table>

procedures of laboratory fumigation for pest control with nitric oxide gas

Stickstoffmonoxid (NO) ist eine neu entdeckte Räuchermittel postharvest Schädlingsbekämpfung. Dieses Dokument enthält detaillierte Protokolle für die Durchführung keine Begasung auf frische Produkte und Verfahren für die Rückstände Marktanalyse und Qualitätsbewertung. Eine luftdichte Begasung Kammer mit frischem Obst und Gemüse wird mit Stickstoff (N2) herstellen eine niedrigem Sauerstoff (ULO) Umgebung, gefolgt von Injektion von Nr. zuerst gespült. Die Begasung Kammer wird dann bei einer niedrigen Temperatur von 2 bis 5 ° C für einen bestimmten Zeitraum notwendig, ein Ziel-Schädling zum Abschluss einer Begasung Behandlung zu töten gehalten. Am Ende der Behandlung eine Begasung die Begasung Kammer wird geleert, mit N2 , Nein vor dem Öffnen der Kammer der Umgebungsluft, um zu verhindern, dass die Reaktion zwischen Nein zu verdünnen und O2, die keine2 produziert und beschädigen empfindliche Frischeprodukte. Nr.2 im Kopfraum und Nitrat und Nitrit in flüssigen Proben wurden zu verschiedenen Zeitpunkten nach keine Begasung als Rückstände gemessen. Qualität der Produkte wurde nach 2 Wochen Nachbehandlung Kühlhaus zu bestimmen, welche Auswirkungen keine Begasung auf Qualität der Produkte bewertet. O2 vor der Reaktion mit Nein zu halten ist wichtig, keine Begasung und ist ein wichtiger Teil der Protokolle. Messung keine Ebenen ist eine Herausforderung und eine praktische Lösung zur Verfügung. Mögliches Protokoll Modifikationen sind auch für die Messung keine Ebenen in der Begasung Kammern sowie Rückstände vorgeschlagen. KEINE Begasung hat das Potenzial, eine praktische Alternative zu Methylbromid Begasung postharvest Schädlingsbekämpfung auf frische und gespeicherten Produkte zu sein. Diese Publikation soll andere Forscher forschen keine Begasung postharvest Schädlingsbekämpfung und zur Beschleunigung der Entwicklung keine Begasung für praktische Anwendungen.

Stickoxid-Begasung für frische Produkte muss mit einem N-2 beendet werden bündig, um Nein, vor dem Öffnen Begasung Kammern um Produkte der Umgebungsluft ausgesetzt zu verdünnen. Wann wird eine Begasung Behandlung durch direkt öffnen der Kammer an Umgebungsluft ohne eine N-2 beendet spülen, die Reaktion zwischen NO und O2 führt keine2 -Produktion und Exposition von frischen Produkten gegenüber Nr.2 führt oft zu Verletzungen wie braune Flecken, Verfärbungen und abgestorbenes Gewebe Flecken8. Zarte Obst und Gemüse wie Salat, Zucchini und Birnen sind anfällig für Schäden durch Nr.2. Wenn keine Begasung mit N2 bündig ordnungsgemäß beendet wird, wurde die Begasung Behandlung nachgewiesen sicher ohne Verletzungen auf die Produktqualität (Abbildung 6 und Abbildung 7). In der Tat wurde keine Begasung für Schädlingsbekämpfung, um postharvest Qualität von frischen Produkten im Vergleich zu unfumigated Kontrollen zu verbessern, wie gezeigt auf Erdbeeren gefunden. Erdbeeren mit Nein für die Kontrolle der westlichen Blume Thripse begast eine hellere und reichere Farbe behalten und sind auch weniger weichen eine Woche nach der Begasung im Vergleich die8. Salat-Köpfe in Kunststoffhülsen gewickelt kann erleiden Verletzungen zur Oberfläche Blätter direkt unter Lüftungsöffnungen der Packungen durch Reaktion von NO mit O2 , Nr.2 zu produzieren, wenn Begasung nicht ordnungsgemäß beendet wird.
Spülen mit N2 am Ende keine Begasung betroffen keine2 -Version von begasten Produkte. Wenn keine Begasung mit N2 bündig beendet wurde, gab es keine signifikanten Unterschiede in keine2 Freisetzungsrate zwischen der Behandlung und der Kontrolle. KEINE Begasung Behandlung mit Luft am Ende der Begasung, gespült hatte jedoch eine höhere keine2 Freisetzungsrate im Vergleich zu der Kontrolle und die Freisetzung von NO2 im Laufe der Zeit zurückgegangen.
Für die frischsten Produkte wie Salat, Brokkoli, Erdbeere, Apfel, Orange, etc.gab es keine signifikanten Unterschiede in Nr.3– oder keine2– -Ebenen zwischen der Behandlung, die mit einem N-2 beendet wurde Flush und der Steuerung. Nur wenn keine Begasung Behandlung durch Spülen mit normaler Luft beendet war, gab es deutlich höhere begast Nr.3– und keine2– -Konzentrationen in allen begasten Produkten als beide Steuern und N2 gespült Produkte. KEINE2– -Konzentration war in der Regel nicht nachweisbar in beiden begast und kontrollieren Produkte (Tabelle 1 und Tabelle 2). Daher gab es keine bedeutende Gehalte an Rückständen von keine begasten frische Produkte bei 24 h nach der Begasung bei Begasung mit Stickstoff zu spülen ordnungsgemäß beendet wurde.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56309/56309fig1.jpg"> Abb. 1: Auswirkungen von keine Begasung auf Insekten und Milben. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56309/56309fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56309/56309fig2.jpg"> Abbildung 2: Demonstration von Verletzungen an Salat von Nr.2 aus der Reaktion zwischen NO und O2 <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56309/56309fig2large.jpg" target="_blank">. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56309/56309fig3.jpg"> Abbildung 3: Flow-Chart keine Begasung Verfahren. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56309/56309fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56309/56309fig4.jpg"> Abbildung 4: Methode der Verwendung von einer Verdünnung-Gerät und eine Grippe Gas zu überwachen ohne Sensor, ohne in eine groß angelegte messen keine Begasung-Test <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56309/56309fig4large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56309/56309fig5.jpg"> Abbildung 5: Vergleichen Auswirkungen der Begasung Behandlungen von N2 beendet spülen und bündig am postharvest Qualität von frischem Obst und Gemüse Luft. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56309/56309fig5large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56309/56309fig6.jpg"> Abbildung 6: Postharvest Qualität von Salat, Brokkoli und Äpfel aus drei Behandlungen (C, T1, T2) 14 Tage nach der Begasung mit C, T1 und T2 die Kontrolle, Begasung mit N2 bündig beendet und Begasung mit Luft bündig, bzw. gekündigt. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56309/56309fig6large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>

<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56309/56309fig7.jpg"> Abbildung 7: Postharvest Qualität von Orangen, Birnen und Pfirsiche von drei Behandlungen (C, T1, T2) 14 Tage nach der Begasung mit C, T1 und T2 die Kontrolle, Begasung mit N2 bündig beendet und Begasung mit Luft bündig, bzw. gekündigt. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56309/56309fig7large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>


<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Produkt</td>
			<td>KEINE (%)</td>
			<td>Behandlung</td>
			<td>Nr.3– (mg/100 g)</td>
			<td>Nr.2– (mg/100 g)</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Apple</td>
			<td>5.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>1.60±0.12 ein</td>
			<td>0.50±0.16 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>1.36±0.13 Ab</td>
			<td>0.03±0.01 b</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>0.76±0.28 b</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Aprikose</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>1.84±0.14 ein</td>
			<td>0.21±0.02 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>0.92±0.17 b</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>0.54±0.01 b</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Spargel</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>2.19±0.13 ein</td>
			<td>0.08±0.04 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>0.70±0.03 b</td>
			<td>0 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>0.84±0.07 b</td>
			<td>0 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Heidelbeere</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>2.74±0.46 ein</td>
			<td>0.14±0.02 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>1.24±0.19 b</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>1.22±0.15 b</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Brokkoli</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>18.69±3.75 ein</td>
			<td>0.17±0.06 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>18.51±3.42 ein</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>12.26±2.31 ein</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Kirsche</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>1.75±0.11 ein</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>0.56±0.09 b</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>0.65±0.08 b</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Knoblauch</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>5.05±0.45 ein</td>
			<td>0.14±0.02 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>4.45±0.79 ein</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>5.01±0.69 ein</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Traube</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>6.32±0.68 ein</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>2.38±0.43 b</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>2.74±0.25 b</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Pfeffer</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>9.26±0.35 ein</td>
			<td>0.71±0.12 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>6.75±0.68 b</td>
			<td>0.02±0.01 b</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>6.23±0.72 b</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Kiwi</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>1.66±0.55 ein</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>1.25±0.09 ein</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>1.41±0.31 ein</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Salat</td>
			<td>2.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>112.85±20.17a</td>
			<td>7.99±2.02 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>38.97±5.87 b</td>
			<td>0.1±0.1 b</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>40.64±10.81b</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Orange</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>1.22±0.13 ein</td>
			<td>0.27±0.05 ein</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>1.05±0.05 ein</td>
			<td>0.02±0.01 b</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>1.24±0.22 ein</td>
			<td>0 b</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Pflaume</td>
			<td>3.0</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>1.04±0.08 ein</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>0.63±0.04 b</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>0.84±0.11 Ab</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Erdbeere</td>
			<td>2.5</td>
			<td>NO-Air</td>
			<td>6.01±0.62 ein</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>NO-N-2
</td>
			<td>5.30±0.77 ein</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Kontrolle</td>
			<td>6.16±1.06 ein</td>
			<td>0</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabelle 1: Nitrat und Nitrit Ebenen als Rückstände bei 24 h nach 16 h Stickoxid-Begasung auf frisches Obst und Gemüse. Für jedes Produkt, Werte, gefolgt von verschiedenen Buchstaben unterscheiden sich wesentlich basierend auf Tukey HSD mehrere Reichweitentest (P ≤0.05). Nachdruck aus Yang und Liu (2017).

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Procedures of Laboratory Fumigation for Pest Control with Nitric Oxide Gas

Dieses Whitepaper beschreibt Stickstoffmonoxid (NO) Begasung Protokolle für postharvest Schädlingsbekämpfung. Begasung Kammern werden mit Stickstoff (N2) herstellen Frequenzverschiebungen Sauerstoffbedingungen vor Nr. gespült wird injiziert. Am Ende werden die Kammern mit N2 NO vor der Belichtung Produkte an Umgebungsluft zur Vermeidung der Exposition gegenüber Nr.2verdünnen gespült.

Verfahren der Labor-Begasung für die Schädlingsbekämpfung mit Gas Stickstoffmonoxid

Nitric oxide (NO) is a newly discovered fumigant for postharvest pest control. This paper provides detailed protocols for conducting NO fumigation on ...

procedures-laboratory-fumigation-for-pest-control-with-nitric-oxide

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Environment

16.9K Aufrufe.  USDA-ARS. Dieses Whitepaper beschreibt Stickstoffmonoxid (NO) Begasung Protokolle für postharvest Schädlingsbekämpfung. Begasung Kammern werden mit Stickstoff (N2) herstellen Frequenzverschiebungen Sauerstoffbedingungen vor Nr. gespült wird injiziert. Am Ende werden die Kammern mit N2 NO vor der Belichtung Produkte an Umgebungsluft zur Vermeidung der Exposition gegenüber Nr.2verdünnen gespült.

Serie: Procedures of Laboratory Fumigation for Pest Control with Nitric Oxide Gas

A General Method for Detecting Nitrosamide Formation in the In Vitro Metabolism of Nitrosamines by Cytochrome P450s

N-nitrosamines are a well-established group of environmental carcinogens, which require cytochrome P450 oxidation to exhibit activity. The accepted mechanism of metabolic activation involves formation of &#945;-hydroxynitrosamines that spontaneously decompose to DNA alkylating agents. Accumulation of DNA damage and the resulting mutations can ultimately lead to cancer. New evidence indicates that &#945;-hydroxynitrosamines can be further oxidized to nitrosamides processively by cytochrome P450s. Because nitrosamides are generally more stable than &#945;-hydroxynitrosamines and can also alkylate DNA, nitrosamides may play a role in carcinogenesis. In this report, we describe a general protocol for evaluating nitrosamide production from in vitro cytochrome P450-catalyzed metabolism of nitrosamines. This protocol utilizes a general approach to the synthesis of the relevant nitrosamides and an in vitro cytochrome P450 metabolism assay using liquid chromatography-nanospray ionization-high resolution tandem mass spectrometry for detection. This method detected N&#8242;-nitrosonorcotinine as a minor metabolite of N&#8242;-nitrosonornicotine in the example study. The method has high sensitivity and selectively due to accurate mass detection. Application of this method to a wide variety of nitrosamine-cytochrome P450 systems will help determine the generality of this transformation. Because cytochrome P450s are polymorphic and vary in activity, a better understanding of nitrosamide formation could aid in individual cancer risk assessment.

A General Method for Detecting Nitrosamide Formation in the In Vitro Metabolism of Nitrosamines by Cytochrome P450s

&#945;-hydroxylation of carcinogenic nitrosamines by cytochrome P450s is the accepted metabolic pathway that produces DNA-damaging intermediates, which cause mutations. However, new data indicates further oxidation to nitrosamides can occur. We describe a general method for detecting nitrosamides produced from in vitro cytochrome P450-catalyzed metabolism of nitrosamines.

Eine allgemeine Methode zur Erkennung von Nitrosamide Formation in der In-vitro- Metabolismus von Nitrosaminen durch Cytochrom P450s

N-nitrosamines are a well-established group of environmental carcinogens, which require cytochrome P450 oxidation to exhibit activity. The accepted ...

Forschung

Krebsforschung

Assessment of Labile Organic Carbon in Soil Using Sequential Fumigation Incubation Procedures

Management practices and environmental changes can alter soil nutrient and carbon cycling. Soil labile organic carbon, a readily decomposable C pool, is highly sensitive to disturbance. It is also the primary substrate for soil microorganisms, which is fundamental to nutrient cycling. Due to these attributes, labile organic carbon (LOC) has been identified as an indicator parameter for soil health. Quantifying the turnover rate of LOC also aids in understanding changes in soil nutrient cycling processes. A sequential fumigation incubation method has been developed to estimate soil LOC and potential C turnover rate. The method requires fumigating soil samples and quantifying CO2-C respired during a 10 day incubation period over a series of fumigation-incubation cycles. Labile organic C and potential C turnover rate are then extrapolated from accumulated CO2 with a negative exponential model. Procedures for conducting this method are described.

Labile organic carbon (LOC) and the potential carbon turnover rate are sensitive indicators of changes in soil nutrient cycling processes. Details are provided for a method based on fumigating and incubating soil in a series of cycles and using the CO2 accumulated during the incubation periods to estimate these parameters.

Bewertung von Labile organischer Kohlenstoff im Boden Mit Sequential Begasung Incubation Procedures

Management practices and environmental changes can alter soil nutrient and carbon cycling. Soil labile organic carbon, a readily decomposable C pool, is ...

Umwelt

Automated, High-resolution Mobile Collection System for the Nitrogen Isotopic Analysis of NOx

Nitrogen oxides (NOx = NO + NO2) are a family of atmospheric trace gases that have great impact on the environment. NOx concentrations directly influence the oxidizing capacity of the atmosphere through interactions with ozone and hydroxyl radicals. The main sink of NOx is the formation and deposition of nitric acid, a component of acid rain and a bioavailable nutrient. NOx is emitted from a mixture of natural and anthropogenic sources, which vary in space and time. The collocation of multiple sources and the short lifetime of NOx make it challenging to quantitatively constrain the influence of different emission sources and their impacts on the environment. Nitrogen isotopes of NOx have been suggested to vary amongst different sources, representing a potentially powerful tool to understand the sources and transport of NOx. However, previous methods of collecting atmospheric NOx integrate over long (week to month) time spans and are not validated for the efficient collection of NOx in relevant, diverse field conditions. We report on a new, highly efficient field-based system that collects atmospheric NOx for isotope analysis at a time resolution between 30 min and 2 hr. This method collects gaseous NOx in solution as nitrate with 100% efficiency under a variety of conditions. Protocols are presented for collecting air in urban settings under both stationary and mobile conditions. We detail the advantages and limitations of the method and demonstrate its application in the field. Data from several deployments are shown to 1) evaluate field-based collection efficiency by comparisons with in situ NOx concentration measurements, 2) test the stability of stored solutions before processing, 3) quantify in situ reproducibility in a variety of urban settings, and 4) demonstrate the range of N isotopes of NOx detected in ambient urban air and on heavily traveled roadways.

Automated, High-resolution Mobile Collection System for the Nitrogen Isotopic Analysis of NOx

Previous work suggests that the nitrogen isotopic composition of atmospheric nitrogen oxides might distinguish the influence of different sources in the environment. We report on an automated, mobile, field-based method for the high collection efficiency of atmospheric NOx for N isotopic analysis at an hourly time resolution.

Automatisierte, hochauflösende Mobilsammelsystem für die Stickstoffisotopenanalyse von NO<sub&gt; x</sub

Nitrogen oxides (NOx = NO + NO2) are a family of atmospheric trace gases that have great impact on the environment. NOx concentrations directly influence ...

Analytical Techniques for Assaying Nitric Oxide Bioactivity

Nitric oxide (NO) is a diatomic free radical that is extremely short lived in biological systems (less than 1 second in circulating blood)1. NO may be considered one of the most important signaling molecules produced in our body, regulating essential functions including but not limited to regulation of blood pressure, immune response and neural communication. Therefore its accurate detection and quantification in biological matrices is critical to understanding the role of NO in health and disease. With such a short physiological half life of NO, alternative strategies for the detection of reaction products of NO biochemistry have been developed. The quantification of relevant NO metabolites in multiple biological compartments provides valuable information with regards to in vivo NO production, bioavailability and metabolism. Simply sampling a single compartment such as blood or plasma may not always provide an accurate assessment of whole body NO status, particularly in tissues. The ability to compare blood with select tissues in experimental animals will help bridge the gap between basic science and clinical medicine as far as diagnostic and prognostic utility of NO biomarkers in health and disease. Therefore, extrapolation of plasma or blood NO status to specific tissues of interest is no longer a valid approach. As a result, methods continue to be developed and validated which allow the detection and quantification of NO and NO-related products/metabolites in multiple compartments of experimental animals in vivo. The established paradigm of NO biochemistry from production by NO synthases to activation of soluble guanylyl cyclase (sGC) to eventual oxidation to nitrite (NO2-) and nitrate (NO3-) may only represent part of NO's effects in vivo. The interaction of NO and NO-derived metabolites with protein thiols, secondary amines, and metals to form S-nitrosothiols (RSNOs), N-nitrosamines (RNNOs), and nitrosyl-heme respectively represent cGMP-independent effects of NO and are likely just as important physiologically as activation of sGC by NO. A true understanding of NO in physiology is derived from in vivo experiments sampling multiple compartments simultaneously. Nitric oxide (NO) methodology is a complex and often confusing science and the focus of many debates and discussion concerning NO biochemistry. The elucidation of new mechanisms and signaling pathways involving NO hinges on our ability to specifically, selectively and sensitively detect and quantify NO and all relevant NO products and metabolites in complex biological matrices. Here, we present a method for the rapid and sensitive analysis of nitrite and nitrate by HPLC as well as detection of free NO in biological samples using in vitro ozone based chemiluminescence with chemical derivitazation to determine molecular source of NO as well as ex vivo with organ bath myography.

The endogenous production of nitric oxide (NO) regulates a wide variety of biological functions. It is becoming increasingly clear that disruption or dysregulation of NO based signaling is involved in many human diseases. Methods to quantify relevant NO metabolites may provide novel diagnostic or prognostic biomarkers for human disease.

Analytische Verfahren zur Bestimmung von Stickoxid Bioaktivität

Nitric oxide (NO) is a diatomic free radical that is extremely short lived in biological systems (less than 1 second in circulating blood)1. NO may be ...

Medizin

Measurement of the Potential Rates of Dissimilatory Nitrate Reduction to Ammonium Based on 14NH4+/15NH4+ Analyses via Sequential Conversion to N2O

The importance of understanding the fate of nitrate (NO3&#8722;), which is the dominant N species transferred from terrestrial to aquatic ecosystems, has been increasing because global nitrogen loads have dramatically increased following industrialization. Dissimilatory nitrate reduction to ammonium (DNRA) and denitrification are both microbial processes that use NO3&#8722; for respiration. Compared to denitrification, quantitative determinations of the DNRA activity have been carried out only to a limited extent. This has led to an insufficient understanding of the importance of DNRA in NO3&#8722; transformations and the regulating factors of this process. The objective of this paper is to provide a detailed procedure for the measurement of the potential DNRA rate in environmental samples. In brief, the potential DNRA rate can be calculated from the 15N-labeled ammonium (15NH4+) accumulation rate in 15NO3&#8722; added incubation. The determination of the 14NH4+ and 15NH4+ concentrations described in this paper is comprised of the following steps. First, the NH4+ in the sample is extracted and trapped on an acidified glass filter as ammonium salt. Second, the trapped ammonium is eluted and oxidized to NO3&#8722; via persulfate oxidation. Third, the NO3&#8722; is converted to N2O via an N2O reductase deficient denitrifier. Finally, the converted N2O is analyzed using a previously developed quadrupole gas chromatography&#8211;mass spectrometry system. We applied this method to salt marsh sediments and calculated their potential DNRA rates, demonstrating that the proposed procedures allow a simple and more rapid determination compared to previously described methods.

Measurement of the Potential Rates of Dissimilatory Nitrate Reduction to Ammonium Based on 14NH4+/15NH4+ Analyses via Sequential Conversion to N2O

A series of methods to determine the potential DNRA rate based on 14NH4+/15NH4+ analyses is provided in detail. NH4+ is converted into N2O via several steps and analyzed using quadrupole gas chromatography&#8211;mass spectrometry.

Messung der potenzialimilatorischen Nitratreduktion zu Ammonium basierend auf 14NH4+/15NH4+ Analysen mittels Sequenzielle Umwandlung in N 2O

The importance of understanding the fate of nitrate (NO3&#8722;), which is the dominant N species transferred from terrestrial to aquatic ecosystems, has ...

Novel Whole-tissue Quantitative Assay of Nitric Oxide Levels in Drosophila Neuroinflammatory Response

Neuroinflammation is a complex innate immune response vital to the healthy function of the central nervous system (CNS). Under normal conditions, an intricate network of inducers, detectors, and activators rapidly responds to neuron damage, infection or other immune infractions. This inflammation of immune cells is intimately associated with the pathology of neurodegenerative disorders, such as Parkinson&#39;s disease (PD), Alzheimer&#39;s disease and ALS. Under compromised disease states, chronic inflammation, intended to minimize neuron damage, may lead to an over-excitation of the immune cells, ultimately resulting in the exacerbation of disease progression. For example, loss of dopaminergic neurons in the midbrain, a hallmark of PD, is accelerated by the excessive activation of the inflammatory response. Though the cause of PD is largely unknown, exposure to environmental toxins has been implicated in the onset of sporadic cases. The herbicide paraquat, for example, has been shown to induce Parkinsonian-like pathology in several animal models, including Drosophila melanogaster. Here, we have used the conserved innate immune response in Drosophila to develop an assay capable of detecting varying levels of nitric oxide, a cell-signaling molecule critical to the activation of the inflammatory response cascade and targeted neuron death. Using paraquat-induced neuronal damage, we assess the impact of these immune insults on neuroinflammatory stimulation through the use of a novel, quantitative assay. Whole brains are fully extracted from flies either exposed to neurotoxins or of genotypes that elevate susceptibility to neurodegeneration then incubated in cell-culture media. Then, using the principles of the Griess reagent reaction, we are able to detect minor changes in the secretion of nitric oxide into cell-culture media, essentially creating a primary live-tissue model in a simple procedure. The utility of this model is amplified by the robust genetic and molecular complexity of Drosophila melanogaster, and this assay can be modified to be applicable to other Drosophila tissues or even other small, whole-organism inflammation models.

Novel Whole-tissue Quantitative Assay of Nitric Oxide Levels in Drosophila Neuroinflammatory Response

Levels of the inflammatory cell-signaling molecule nitric oxide (NO) are commonly assayed using Griess reagent. In this protocol, we have created a modified Griess assay utilizing live Drosophila brain tissue in order to detect the secretion of NO in a simple, quantifiable and highly repeatable method.

Neuroinflammation is a complex innate immune response vital to the healthy function of the central nervous system (CNS). Under normal conditions, an ...

Immunologie und Infektion

Encapsulating Cytochrome c in Silica Aerogel Nanoarchitectures without Metal Nanoparticles while Retaining Gas-phase Bioactivity

Applications such as sensors, batteries, and fuel cells have been improved through the use of highly porous aerogels when functional compounds are encapsulated within the aerogels. However, few reports on encapsulating proteins within sol&#8211;gels that are processed to form aerogels exist. A procedure for encapsulating cytochrome c (cyt. c) in silica (SiO2) sol-gels that are supercritically processed to form bioaerogels with gas-phase activity for nitric oxide (NO) is presented. Cyt. c is added to a mixed silica sol under controlled protein concentration and buffer strength conditions. The sol mixture is then gelled and the liquid filling the gel pores is replaced through a series of solvent exchanges with liquid carbon dioxide. The carbon dioxide is brought to its critical point and vented off to form dry aerogels with cyt. c encapsulated inside. These bioaerogels are characterized with UV-visible spectroscopy and circular dichroism spectroscopy and can be used to detect the presence of gas-phase nitric oxide. The success of this procedure depends on regulating the cyt. c concentration and the buffer concentration and does not require other components such as metal nanoparticles. It may be possible to encapsulate other proteins using a similar approach making this procedure important for potential future bioanalytical device development.

Encapsulating Cytochrome c in Silica Aerogel Nanoarchitectures without Metal Nanoparticles while Retaining Gas-phase Bioactivity

This procedure describes how to encapsulate cytochrome c (cyt. c) in silica (SiO2) sol-gels, process these gels to form bioaerogels, and use these bioaerogels to rapidly recognize nitric oxide (NO) through a gas-phase reaction. This type of protocol may aid in the future development of biosensors or other bioanalytical devices.

Einkapseln Cytochrome<em&gt; c</em&gt; In Silica Aerogel-Nanoarchitekturen ohne Metallnanopartikel unter Beibehaltung der Gasphase Bioaktivität

Applications such as sensors, batteries, and fuel cells have been improved through the use of highly porous aerogels when functional compounds are ...

Biotechnik

A Novel Inhalation Mask System to Deliver High Concentrations of Nitric Oxide Gas in Spontaneously Breathing Subjects

Nitric Oxide (NO) is administered as gas for inhalation to induce selective pulmonary vasodilation. It is a safe therapy, with few potential risks even if administered at high concentration. Inhaled NO gas is routinely used to increase systemic oxygenation in different disease conditions. The administration of high concentrations of NO also exerts a virucidal effect in vitro. Owing to its favorable pharmacodynamic and safety profiles, the familiarity in its use by critical care providers, and the potential for a direct virucidal effect, NO is clinically used in patients with coronavirus disease-2019 (COVID-19). Nevertheless, no device is currently available to easily administer inhaled NO at concentrations higher than 80 parts per million (ppm) at various inspired oxygen fractions, without the need for dedicated, heavy, and costly equipment. The development of a reliable, safe, inexpensive, lightweight, and ventilator-free solution is crucial, particularly for the early treatment of non-intubated patients outside of the intensive care unit (ICU) and in a limited-resource scenario. To overcome such a barrier, a simple system for the non-invasive NO gas administration up to 250 ppm was developed using standard consumables and a scavenging chamber. The method has been proven safe and reliable in delivering a specified NO concentration while limiting nitrogen dioxide levels. This paper aims to provide clinicians and researchers with the necessary information on how to assemble or adapt such a system for research purposes or clinical use in COVID-19 or other diseases in which NO administration might be beneficial.

This simple and highly adaptable system device for the inhalation of high-concentration nitric oxide (NO) gas does not require mechanical ventilators, positive pressure, or high gas flows. Standard medical consumables and a snug-fitting mask are used to safely deliver NO gas to spontaneously breathing subjects.

Ein neuartiges Inhalationsmaskensystem zur Abgabe hoher Konzentrationen von Stickoxidgas bei spontan atmenden Probanden

Nitric Oxide (NO) is administered as gas for inhalation to induce selective pulmonary vasodilation. It is a safe therapy, with few potential risks even if ...

Chemiluminescence-based Assays for Detection of Nitric Oxide and its Derivatives from Autoxidation and Nitrosated Compounds

Nitric oxide (NO) activity in vivo is the combined results of its direct effects, the action of its derivatives generated from NO autoxidation, and the effects of nitrosated compounds. Measuring NO metabolites is essential to studying NO activity both at vascular levels and in other tissues, especially in the experimental settings where exogenous NO is administered. Ozone-based chemiluminescence assays allow precise measurements of NO and NO metabolites in both fluids (including plasma, tissue homogenates, cell cultures) and gas mixtures (e.g., exhaled breath). NO reacts with ozone to generate nitrogen dioxide in an excited state. The consequent light emission allows photodetection and the generation of an electric signal reflecting the NO content of the sample. Aliquots from the same sample can be used to measure specific NO metabolites, such as nitrate, nitrite, S-nitrosothiols, and iron-nitrosyl complexes. In addition, NO consumed by cell-free hemoglobin is also quantified with chemiluminescence analysis. An illustration of all these techniques is provided.

Here, we present protocols for detecting nitric oxide and its biologically relevant derivatives using chemiluminescence-based assays with high sensitivity.

Chemilumineszenz-basierte Assays zum Nachweis von Stickstoffmonoxid und seinen Derivaten aus Autoxidation und nitrosierten Verbindungen

Nitric oxide (NO) activity in vivo is the combined results of its direct effects, the action of its derivatives generated from NO autoxidation, and the ...

Measuring Nitrite and Nitrate, Metabolites in the Nitric Oxide Pathway, in Biological Materials using the Chemiluminescence Method

Nitric oxide (NO) is one of the main regulator molecules in vascular homeostasis and also a neurotransmitter. Enzymatically produced NO is oxidized into nitrite and nitrate by interactions with various oxy-heme proteins and other still not well known pathways. The reverse process, reduction of nitrite and nitrate into NO had been discovered in mammals in the last decade and it is gaining attention as one of the possible pathways to either prevent or ease a whole range of cardiovascular, metabolic and muscular disorders that are thought to be associated with decreased levels of NO. It is therefore important to estimate the amount of NO and its metabolites in different body compartments &#8212; blood, body fluids and the various tissues. Blood, due to its easy accessibility, is the preferred compartment used for estimation of NO metabolites. Due to its short lifetime (few milliseconds) and low sub-nanomolar concentration, direct reliable measurements of blood NO in vivo present great technical difficulties. Thus NO availability is usually estimated based on the amount of its oxidation products, nitrite and nitrate. These two metabolites are always measured separately. There are several well established methods to determine their concentrations in biological fluids and tissues. Here we present a protocol for chemiluminescence method (CL), based on spectrophotometrical detection of NO after nitrite or nitrate reduction by tri-iodide or vanadium(III) chloride solutions, respectively. The sensitivity for nitrite and nitrate detection is in low nanomolar range, which sets CL as the most sensitive method currently available to determine changes in NO metabolic pathways. We explain in detail how to prepare samples from biological fluids and tissues in order to preserve original amounts of nitrite and nitrate present at the time of collection and how to determine their respective amounts in samples. Limitations of the CL technique are also explained.

Nitric oxide (NO) is an important signaling molecule in vascular homeostasis. NO production in vivo is too low for direct measurement. Chemiluminescence provides useful insight into NO cycle via measuring its precursors and oxidation products, nitrite and nitrate. Nitrite / nitrate determination in body tissues and fluids is explained.

Mess Nitrit und Nitrat, Metabolite in der Stickoxid-Bahn, in biologischen Materialien der Chemilumineszenz-Methode unter Verwendung von

Nitric oxide (NO) is one of the main regulator molecules in vascular homeostasis and also a neurotransmitter. Enzymatically produced NO is oxidized into ...

Verfahren der Labor-Begasung für die Schädlingsbekämpfung mit Gas Stickstoffmonoxid

Zusammenfassung

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Eine allgemeine Methode zur Erkennung von Nitrosamide Formation in der In-vitro- Metabolismus von Nitrosaminen durch Cytochrom P450s

Bewertung von Labile organischer Kohlenstoff im Boden Mit Sequential Begasung Incubation Procedures

Automatisierte, hochauflösende Mobilsammelsystem für die Stickstoffisotopenanalyse von NO

Analytische Verfahren zur Bestimmung von Stickoxid Bioaktivität

Messung der potenzialimilatorischen Nitratreduktion zu Ammonium basierend auf ¹⁴NH₄⁺/¹⁵NH₄⁺ Analysen mittels Sequenzielle Umwandlung in N 2_O

Novel Whole-tissue Quantitative Assay of Nitric Oxide Levels in Drosophila Neuroinflammatory Response

Einkapseln Cytochrome

Ein neuartiges Inhalationsmaskensystem zur Abgabe hoher Konzentrationen von Stickoxidgas bei spontan atmenden Probanden

Chemilumineszenz-basierte Assays zum Nachweis von Stickstoffmonoxid und seinen Derivaten aus Autoxidation und nitrosierten Verbindungen

Mess Nitrit und Nitrat, Metabolite in der Stickoxid-Bahn, in biologischen Materialien der Chemilumineszenz-Methode unter Verwendung von