يسمح التصوير بالتصوير بالرنين المغناطيسي PET / MR بإجراء قياسات نوعية وكمية على هذه الخلايا الشحمية البنية والبيج النشطة استقلابيا في الحيوانات الحية بحيث يمكن قياس نشاط هذه الخلايا الشحمية الحرارية المنشأ على أساس وظيفي. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنها تسمح بالحصول على والجمع بين التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني والتصوير بالرنين المغناطيسي على نفس الموضوع ، وبالتالي تمكين الحصول الدقيق والمتزامن على الخلايا الشحمية الحرارية في مستودعات مختلفة من الحيوان الصغير. يمكن نقل هذه الطريقة بسهولة إلى أي نظام ما قبل السريري أو تعديلها إلى تنسيق إنتاجية عالية عن طريق التصوير في وقت واحد لفئران متعددة ، وبالتالي زيادة القوة الإحصائية لبيانات التصوير بتكلفة ووقت أقل.
لحصاد الأنسجة الدهنية البنية بين الكتفين ، ضع ماوس C57 Black 6 المخدر البالغ من العمر 8 أسابيع على وسادة تسخين وقم بعمل شق 2 سم على طول خط الوسط الظهري. قم بإزالة وسادات iBAT من المنطقة بين الكتف. بعد توقف النزيف ، استخدم مشابك جرح من الفولاذ المقاوم للصدأ 7 ملم لإغلاق الشق.
عندما يتم جمع كل iBAT ، قم بإيواء الفئران في وحدة العناية المركزة لمدة 14 يوما. إدارة 5 ملليغرام لكل كيلوغرام ميلوكسيكام للفئران لمدة ستة أيام وإزالة المقاطع بمجرد التئام الجرح. لتمكين عمليات المسح الضوئي بالأشعة المقطعية بالإصدار البوزيتروني المتسلسلة الآلية قبل جلسة التصوير، اضبط مستوى التمييز على 400 إلى 600 كيلوالإلكترون فولت، ووضع الثقة على 1-3، ووقت المسح الضوئي على 20 دقيقة، ونظير الدراسة على F-18 لضبط سير العمل للحصول على PET.
للحصول على رنين مغناطيسي مرجح T1 لتصحيح التوهين ، قم بتعيين معلمات Gradient Echo-3D. للحصول على الرنين المغناطيسي المرجح T2 كمرجع تشريحي ، قم بتعيين معلمات Fast-spin Echo 2D. للسماح بإعادة بناء صور PET ، استخدم خوارزمية Tera-Tomo 3D مع ضبط وضع الصدفة على 1-3 ومع ضبط تصحيحات الاضمحلال والوقت الميت والعشوائي والتوهين والتشتت لإنشاء صور بحجم فوكسل إجمالي يبلغ 0.3 ملليمتر مكعب.
قبل يوم واحد من بدء دراسة التصوير للتحقق من دقة كمية PET ، ضع معدات الوقاية الشخصية المناسبة واملأ حقنة 5 ملليلتر ب F18-FDG على النحو الموصى به من قبل الشركة المصنعة. استخدم معايرة الجرعة لتسجيل نشاط المحقنة ولاحظ وقت القياس. في البرنامج ، استخدم عائد الاستثمار الإهليلجي المستوفى لرسم حجم الاهتمام على الصورة المعاد بناؤها للمحقنة ومقارنة النشاط المسترد بالقيمة المقاسة باستخدام معايرة الجرعة.
في يوم تجربة التصوير ، استخدم الملقط لوضع قارورة مخزون 18F-FDG بعناية خلف درع سطح الطاولة L-block وتخفيف أليكوت من النظائر المشعة في 100 إلى 150 ميكرولتر من المالحة المعقمة إلى تركيز نشاط إجمالي يتراوح من 200 إلى 250 ميكروكوري. ارسم محلول 18F-FDG في حقنة 1 ملليلتر مجهزة بإبرة وقم بقياس النشاط الإشعاعي باستخدام معايرة الجرعة كما هو موضح. سجل وزن الماوس المراد تصويره قبل حقن محلول 18F-FDG في وريد الذيل.
لاحظ وقت الحقن والنشاط الإشعاعي المتبقي للمحقنة لتمكين تصحيح الاضمحلال. ثم ضع الماوس مرة أخرى في قفصه لمدة 60 دقيقة. لحساب نشاط 18F-FDG المحقون ، اطرح النشاط في المحقنة قبل الحقن من النشاط الذي تم قياسه بعد الحقن.
في نهاية فترة امتصاص النظائر المشعة، قم بتشغيل سخان الهواء لسرير الماوس الخاص بالماسح الضوئي micro-PET/MR. ضع الماوس المخدر الذي حقنه FDG على وسادة تنفسية في سرير الماسح الضوئي وقم بإجراء عرض كشفي لتحديد موضع الماوس. اضبط موضع سرير الماوس بحيث يمكن ملاحظة الجسم بأكمله ، مما يضمن تزامن مركز مجال رؤية التصوير بالرنين المغناطيسي مع مركز الجسم.
ضمن اكتساب PET، حدد نطاق المسح الضوئي في الاستحواذ السابق لاستخدام موضع العرض الكشفي وانقر فوق إعداد لنقل سرير الحيوان من MR إلى PET. حدد موافق لبدء فحص PET. سجل جرعة الحقن والوقت الذي تم قياسه قبل وبعد إعطاء 18F-FDG في محرر المستحضرات الصيدلانية الإشعاعية وأدخل وزن الماوس ضمن قائمة معلومات الموضوع.
بمجرد اكتمال فحص التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني (PET)، حدد الاستعداد للانتقال إلى التصوير بالرنين المغناطيسي وإكمال جميع عمليات الاستحواذ على التصوير بالرنين المغناطيسي في نافذة قائمة الدراسة. حدد موافق لبدء فحص التصوير بالرنين المغناطيسي. بعد اكتمال سير العمل بأكمله، قم بتقييم جودة صور التصوير بالرنين المغناطيسي التي تم الحصول عليها في برنامج ما بعد المعالجة بإيجاز وانقر فوق الصفحة الرئيسية لنقل سرير الماوس من التصوير بالرنين المغناطيسي إلى الموضع الأصلي.
عندما يتم تصوير جميع الفئران، لإعادة بناء البيانات في قائمة الفحص الخام، حدد اكتساب PET لتحميل فحص PET المكتمل وحدد اكتساب MR المرجح T1 للسماح بإنشاء خريطة مادية. ثم استخدم خوارزمية Tera-Tomo 3D لإعادة بناء البيانات كما هو موضح. إن إزالة iBAT قبل المعالجة الباردة يغير نشاط iWAT ، كما هو موضح في الزيادة الملحوظة في امتصاص 18F-FDG التي لوحظت في iWAT بواسطة التصوير المصغر PET / MR.
بالإضافة إلى ذلك ، فإن الخلايا الشحمية متعددة المواقع ، والتي يتم ملاحظتها بشكل مميز في الأنسجة الدهنية البيج ، تكون أكثر وضوحا في iWAT من الفئران بعد إزالة iBAT مقارنة بمورفولوجيا الخلايا الشحمية التي لوحظت في iWAT من الحيوانات التي تعمل بشكل صوري. تظهر الفئران المعالجة على البارد والتي تعمل بشكل صوري امتلاء مرتفعا بشكل ملحوظ 18F-FDG في iBAT. تظهر الفئران التي تمت إزالة iBAT قبل العلاج البارد أعلى امتصاص 18F-FDG في iWAT.
في الواقع ، يؤدي التعرض للبرد إلى زيادة قدرها سبعة أضعاف في امتصاص 18F-FDG في iBAT للفئران التي تعمل بشكل صوري ، في حين أن إزالة iBAT في الفئران التي يسببها البرد تؤدي إلى زيادة ثمانية أضعاف في امتصاص 18F-FDG مقارنة بالفئران المحايدة حراريا التي لوحظ فيها زيادة متواضعة بمقدار ضعفين. عند محاولة هذا الإجراء ، يعد وضع كل ماوس في نفس الموضع لكل عملية اكتساب PET / MRI أمرا مهما لتحسين تصور وقياس الخلايا الشحمية البنية والبيج في مناطق مختلفة. باستخدام هذه الطريقة وجنبا إلى جنب مع طرق التصوير بالرنين المغناطيسي الأخرى ، مثل الانتشار بالتصوير أو قياس الحرارة ، يمكن أن تبدأ المزيد من الأفكار حول التوزيع المكاني وانتشار الخلايا الشحمية البنية والبيج في الفئران ، والتي يمكن ترجمتها إلى البشر.
تسمح هذه الطريقة للباحثين بدراسة وظيفة هذه الخلايا الشحمية البنية والبيج المولدة للحرارة. لذلك ، فهي قوية بشكل خاص عند دراسة المسارات الحرارية غير السريرية حيث لا يتم تغيير تلك العلامات الكلاسيكية أو تنظيمها.
