Agradecemos a Veronica Schreiter por sua assistência técnica excelente e útil modificações do modelo de cultura de técnica e célula de criopreservação estabelecida. Além disso, nós gostamos de Maren Anders e Swanhild Rodewald agradecer sua excelente assistência técnica na análise subsequente.

Nota: Ovários bovinos foram obtidos de um matadouro comercial. A coleção de subprodutos de matadouro não requer uma aprovação ética de acordo com a lei alemã.
1. condições de trabalho e preparações
<ol><li>Para garantir a esterilidade, executar todas as mídias e preparação do tecido, bem como toda a cultura de trabalho em um laboratório de cultura de célula especializada usando um banco do fluxo laminar.</li>
	<li>Prepare 1 x solução salina tamponada fosfato (PBS, pH 7,4) suplementada com 100 UI de penicilina, estreptomicina 0,1 mg/mL e 0,5 µ g / µ l anfotericina para o transporte dos ovários. Nota: A duração máxima entre receber os ovários e isolando o GC é 2h neste set-up.</li>
</ol>2. isolamento de células da Granulosa bovinas
<ol><li>
Lave os ovários várias vezes em PBS 1x (com 100 UI de penicilina e estreptomicina 0,1 mg/mL, 0,5 µ g / µ l anfotericina) para remover qualquer sangue da superfície antes de iniciar o procedimento de isolamento. Use um copo, coloque os ovários dentro, preenchê-lo com PBS 1x e descartar a PBS novamente.
	<ol>
<li>Repita essa etapa de lavagem 3 – 4 x, até que os ovários estão limpos de qualquer sangue restante.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Limpe um ovário utilizando um laboratório embebido com álcool a 70%, para minimizar possíveis contaminações.</li>
	<li>Com uma seringa de 3 mL e uma agulha de 18 G, Aspire o GC por punção de folículos de pequeno a médio porte (< 6mm, medido com uma régua) e o fluido folicular em um tubo de centrífuga de 50 mL do pool. Nota: Para umedecer a seringa, tome uma quantidade pequena de 1X PBS (com 100 UI penicilina, estreptomicina 0,1 mg/mL e 0,5 µ g / µ l anfotericina). Isto ajuda a coletar pequenas quantidades de fluido folicular e impede que as células da colagem dentro da seringa.</li>
	<li>Após perfurar vários folículos, enxágue a seringa e agulha com 1X PBS para limpeza intermediária.</li>
</ol>3. criopreservação de células
<ol><li>
Use a coloração azul trypan e contar as células sob um hemocytometer.
	<ol>
<li>Para contar o número de células viáveis, prepare um tubo com 1,5 µ l de uma solução de azul de trypan 0,25%. Nota: As células vivas permanecerá inocente porque trypan azul só pode acessar a barreira celular de células mortas, que em seguida aparecem a azul.</li>
		<li>Adicionar a solução de azul de trypan 15 µ l de suspensão de células da granulosa e misture-os delicadamente.</li>
		<li>Coloque a mistura em ambas as câmaras de um hemocytometer. Contar o número de visitas (por exemplo, inocente) de células em um quadrado grande por câmara. Nota: Apesar de algumas células de sangue pode ser vistas, eles podem ser distinguidos pelo seu tamanho muito pequeno.</li>
		<li>Calcular o número de células vivas com a média dos dois quadrados de câmara de acordo com as orientações gerais; a proporção de células vivas pode variar entre os ovários, mas deve exceder 60%13.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Tire uma amostra do pool de célula granulosa recém isoladas como uma referência para uma análise mais aprofundada.
	<ol>
<li>Dependendo da contagem de células do CG isolado, Reserve um número adequado de células como amostras de referência para a preparação de proteínas, DNA ou RNA. Nota: Para isolamento de RNA e a subsequente avaliação de expressão do gene, 1 x 105 células são suficientes, enquanto outras análises subsequentes podem exigir números de telemóvel diferentes, geralmente maior.</li>
		<li>Coloque uma ou várias alíquotas das células de referência em um tubo de fresco e -centrifugar por 1 min a temperatura e a velocidade máxima (12.000 x g) para obter um centrifugado. Desprezar o sobrenadante.</li>
		<li>Imediatamente choque-congelar as amostras em nitrogênio líquido. Armazenar a amostra a-80 ° C.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Execute a criopreservação como segue.
	<ol>
<li>Prepare o meio de congelação utilizando 80% de soro de vitela fetal (FCS) e 20% dimetilsulfóxido (DMSO).</li>
		<li>Fim de pelota suavemente o GC, centrifugar o GC durante 3 min à temperatura ambiente e 500 x g.</li>
		<li>Remover cuidadosamente o sobrenadante e ressuspender delicadamente as células em FCS de 100% (por exemplo, 1 mL) até nenhuma célula mais aglomerados são visíveis.</li>
		<li>Adicionar 1 volume (por exemplo,1ml) do meio de congelamento preparado à suspensão de células e transfira a mistura para um frasco criogênico. Nota: A concentração final de mídia cryo-protegendo será 90% FCS e 10% de DMSO.</li>
		<li>Coloque o frasco criogênico em um contêiner de congelação (comercialmente disponível) especializado que evita a congelação rápida. A taxa de resfriamento das amostras não deve exceder-1 ° C/min. o congelamento recipiente de transferência em um freezer-80 ° C durante pelo menos 4 h.</li>
		<li>Para uma conservação mais longa, coloque os frascos criogênicos em recipientes de ultra baixa temperatura (por exemplo, recipientes de nitrogênio de fase líquida). Nota: O protocolo pode ser parado aqui, como a criopreservação permite conservação mais longa.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. preparação de mídia e placas de cultura para a cultura de células
<ol><li>
Revestimento de placas de cultura celular com colágeno 0.02% R. Nota: Colágeno R é conhecido por ser essencial para um anexo melhorado de GC na cultura.<ol>
<li>Prepare uma solução de R 0,02% colágeno com água purificada apropriada para cultura de células.</li>
		<li>Adicionar 150 µ l por alvéolo em uma placa de 24 (= 2cm2/bem) e certifique-se de que toda a superfície da cultura é bem coberta com a solução de colágeno R.</li>
		<li>Deixe a solução secar com a tampa aberta por algumas horas ou durante a noite do bairro de fluxo laminar.</li>
		<li>Quando as placas de cultura estão completamente secas, irradiá-los com a luz UV para 10-15 min minimizar a contaminação.</li>
		<li>Se necessário, armazene as placas a 4 ° C por até 2 meses.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Prepare a mídia e suplementos para o trabalho de cultura sob uma capa de fluxo laminar. Para uma recuperação bem sucedida do CG, eles têm de ser processadas imediatamente após o descongelamento.</li>
	<li>
Prepare os seguintes meios de comunicação.
	<ol>
<li>Suplemento meio α-mínimo essencial (α-MEM) com 2 mM L-glutamina, 0.084% de bicarbonato de sódio, 0,1% albumina de soro bovino (BSA), 20 mM HEPES, Selenito de sódio 4 ng/mL, 5 transferrina µ g/mL, 10 ng/mL insulina e 1 mM não aminoácidos essenciais.</li>
		<li>Além disso, adicione 100 UI de penicilina e 0,1 mg/mL Estreptomicina para a mídia. Nota: Os antibióticos, uma vez aquecidos, são estáveis por aproximadamente 48 h. Portanto, alíquota a quantidade desejada de mídia para a configuração de cultura e mídia planejada trocar. Pré-aqueça apenas as alíquotas de mídia a 37 ° C em banho-maria. A mídia preparada pode ser armazenada a 4 ° C, para não mais que 3 meses.</li>
		<li>Para induzir a atividade de esteroides em GC bovina cultivada, complementar o α-MEM adicionalmente com 20 ng/mL hormônio folículo - estimulante (FSH), 50 ng/mL R3 IGF-1 e 2 µM de androstenediona. Nota: Sempre complementar esses componentes pouco antes do início de uma troca de cultura ou mídia. Evite ciclos repetidos de congelamento e descongelamento de soluções estoque FSH e IGF-1, pois isto pode comprometer a atividade de esteroides.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. trabalho de cultura de células
<ol><li>Descongelar as células rapidamente em banho-maria a 37 ° C por 3 – 4 min e transferir a suspensão de eritrócitos em 37 ° C pré-aquecido α-MEM (sem suplemento de hormônio). Por centrifugação, recomenda-se um volume final de 10 mL.</li>
	<li>Centrifugue o GC para 3 min à temperatura ambiente e a x 500 g. Desprezar o sobrenadante. Adicione o α-MEM pré-aquecido e completado e ressuspender as células com cuidado.</li>
	<li>Semente do GC em uma densidade de 1 x 105 ou 1 x 106 células por poço em um volume final de 500 µ l. incluem técnicas repetições pelo menos três poços de cultura por condição.</li>
	<li>Incube a cultura de células em uma incubadora a 37 ° C com 5% de CO2 para 8D.</li>
	<li>Realize um intercâmbio de mídia todos os dias. Substitua somente dois terços da cultura mídia para reduzir o stress e para facilitar a adaptação das células para a nova mídia. Nota: O GC formam um fenótipo típico de fibroblasto, como depois de alguns dias na cultura e tendem a aglomerar-se juntos. Na cultura de pilha alta-densidade, clusters maiores são encontradas mais frequentemente em comparação com a cultura de densidade normal GC (Figura 1, esquerda vs direita painel).</li>
</ol>6. posterior análise das células da Granulosa cultivadas
<ol><li>Para realizar a análise de hormônio esteroide, recolher os meios de comunicação e congelá-lo a-20 ° C. Use métodos adequados para analisar a concentração de estradiol e progesterona na mídia passou [por exemplo, radioimunoensaio (RIA)]14.</li>
	<li>Para posterior análise das moléculas-alvo diferentes (RNA, DNA, proteínas, etc.), lyse as pilhas diretamente no prato cultura com um agente lysing apropriado, como recomendado pelo fornecedor. Nota: Para a maioria dos procedimentos de isolamento, é possível parar o protocolo aqui, como as células lisadas podem ser armazenadas a-20 ° C por até 1 semana. Para uma conservação mais longa, as células devem ser mantidas a-80 ° C.</li>
	<li>Para determinar a abundância de transcrição, sintetizar o cDNA e medir específicos transcritos pela polimerase em tempo real quantitativa de técnicas de reação em cadeia (qPCR)15. Uma avaliação estatística deve incluir pelo menos três repetições de culturas de células diferentes, originadas-se preparações diferentes células (Replica biológica).</li>
</ol>

<ol>
	<li>Gutierrez, C. G., Ralph, J. H., Telfer, E. 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Os autores não têm nada para divulgar.

O modelo de cultura celular apresentado fornece uma ferramenta para analisar granulosa de diferenciação de células in vitro. Vários estudos mostraram que um cultivo livre de soro é um pré-requisito para manter a actividade esteroide em GC bovina cultivada ou GC de outras espécies de8,9. Além disso, revestindo o prato de cultura com componentes da matriz extracelular (por exemplo, colágeno R)13, melhorou significativamente a fixação das células. Outra característica importante é o período da cultura prolongada. Recentemente, foi demonstrado que uma cultura de longo prazo é necessária para obter suficiente atividade esteroidogênica e uma expressão equilibrada de17marcadores identidade do célula da granulosa. Parece que o GC requer o tempo para se recuperar do stress físico durante o procedimento de isolamento.
Os suplementos de mídia FSH, IGF-1 e androstenediona são conhecidos por induzir a atividade de aromatase no culto GC. Especialmente, a suplementação com androstenediona é absolutamente necessária, como o GC de um precursor para a síntese de estradiol. Isto tem sido anteriormente publicado11,18 e, portanto, não foi ainda mais investigado durante o presente estudo. No entanto, uma adaptação do FSH, IGF-1 e concentrações de androstenediona pode ser necessária para outras instalações experimentais.
A técnica de criopreservação descrita aqui pode ajudar a melhorar a organização de experiências de cultura de tecidos, tornando-os mais independentes da fonte de variação com ovários. De acordo com o teste anterior, criopreservação não afecta o fenótipo de GC ou a produção de esteroides na cultura. Além disso, a abundância de transcrições de marcador em pilhas cultivadas não revelaram diferenças significativas comparando amostras preparadas a partir de células recém isoladas com aqueles anteriormente submetido a criopreservação16.
Um parâmetro fundamental para o presente modelo de cultura de GC é a célula do chapeamento densidade. Como indicado pelos Resultados do representante, aumentando a densidade de chapeamento induzido mudanças notáveis características fisiológicas e moleculares. Vários genes são regulados de maneira específica, assemelhando-se as alterações que são induzidas por estimulação de LH na vivo4,19. O fato de que uma densidade crescente de célula pode conduzir processos de diferenciação, como em GC bovina cultivada deve ser considerado meticulosamente neste modelo in vitro de GC para evitar resultados conflitantes entre repetições. Portanto, resultados contraditórios com outros estudos podem ser atribuídos a densidades de célula diferente e devem ser examinados mais de perto.
O modelo de cultura descrito aqui se revelou para ser não-responsivos ao LH, como as transcrições do receptor LHCGR aproximam-se o limite de detecção. Daí, uma simulação do aumento de LH igual a situação na vivo falhou induzir a diferenciação de13. No entanto, este modelo fornece uma ferramenta útil para estudar o GC de estradiol-ativo em cultura primária, actualmente existem linhas de GC bovina em particular como não funcionais.
Protocolos de tratamento diferentes podem ser testados no presente modelo de cultura GC que ajudam a desvendar os mecanismos reguladores da produção de esteroides ou diferenciação de GC. Além disso, a única de fatores que estão envolvidos em processos de desenvolvimento podem ser analisados separadamente. Portanto, este modelo de cultura fornece uma base para muitas aplicações diferentes.

Luteinization e ovulação bem sucedida dependem de alterações moleculares finamente sintonizadas e bem orquestradas em tipos de diferentes células foliculares somática. Desde que os detalhes destes processos do desenvolvimento ainda não são totalmente compreendidos, ainda mais esclarecimentos é necessário. Na vivo abordagens são elaborados e dispendiosos e, em particular, deixam de mecanismos moleculares específicos de endereço que ocorrem durante a Foliculogénese. Portanto, modelos reducionistas em vitro são necessários além disso, de fornecer informações sobre detalhes de celulares e moleculares. Vários estudos descrevem a cultura dos folículos inteiro no contexto na vitro fertilização técnicas1,2,.3. Porque os pesquisadores estão interessados nos mecanismos de diferenciação, muitos estudos enfocam GC folicular. Estas células, diretamente associadas com o oócito, são as principais fontes de produção de estrogênio e, assim, desempenham um papel essencial ao longo da Foliculogénese e luteinization4.
Imortalizado célula linhas de GC foram desenvolvidas de diferentes espécies. A maioria deles, no entanto, não mostram uma suficiente de produção de hormônio esteroide5. Até agora, apenas uma célula linha de bovinos que GC tem sido estabelecida6, mas esta linha perdeu sua atividade esteroidogênica após várias passagens7. Portanto, desde esteroidogênese e, em particular, a produção de estradiol é uma característica essencial da funcionalidade do GC, é aconselhável estudar estes aspectos em modelos de cultura celular primária. Em estudos anteriores, foi demonstrado que uma produção de estradiol consideráveis só pode ser observada sob condições de cultura livre de soro8,9. Ainda mais, a suplementação de um precursor da síntese de estradiol é outro pré-requisito, como GC deixar de expressar a enzima necessária que pode converter progesterona para androstenediona10. Além disso, o efeito sinérgico do FSH e IGF-1 suplementação em vitro revelou uma atividade otimizada de aromatase, a enzima chave da síntese de estradiol11. O presente protocolo, outros fatores importantes que têm um impacto substancial sobre o modelo de cultura de GC também são descritos. Em particular, a célula chapeamento densidade tem enormes efeitos sobre os resultados do experimento12. Além disso, uma técnica de criopreservação de GC bovina que não interfere significativamente com a fisiologia de GC na cultura pôde ser estabelecida. Esta técnica ajuda a melhorar a organização do trabalho de cultura celular e para otimizar a densidade de chapeamento preferencial.

<table><tbody><tr><td>PBS Instamed w/o Ca&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt;, Mg&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt;</td><td>Merck-Millipore</td><td>L 182-05</td><td>originally purchased at Biochrom AG that is now part of the Merck-Millipore Company; the Cat.-No of Biochrom still exists</td></tr><tr><td>penicillin / streptomycin (10,000 IU / 10,000 &amp;micro;g/mL)</td><td>Merck-Millipore</td><td>A 2213</td><td>originally purchased at Biochrom AG that is now part of the Merck-Millipore Company; the Cat.-No of Biochrom still exists</td></tr><tr><td>amphotericin (250 &amp;micro;g/mL)</td><td>Merck-Millipore</td><td>A 2612</td><td>originally purchased at Biochrom AG that is now part of the Merck-Millipore Company; the Cat.-No of Biochrom still exists</td></tr><tr><td>3 mL syringe (Omnifix Luer)</td><td>Braun</td><td>4616025V</td><td></td></tr><tr><td>18 G needle</td><td>Roth</td><td>C724.1</td><td></td></tr><tr><td>fetal calf serum</td><td>Merck-Millipore</td><td>S 0115</td><td>originally purchased at Biochrom AG that is now part of the Merck-Millipore Company; the Cat.-No of Biochrom still exists</td></tr><tr><td>cryo-preservation vials (2 mL)</td><td>TPP Faust</td><td>TPP 89020</td><td></td></tr><tr><td>CoolCell LX cell freezing container</td><td>Corning</td><td>432004</td><td></td></tr><tr><td>culture dish, 24-well, flat bottom</td><td>TPP Faust</td><td>TPP 92424</td><td></td></tr><tr><td>collagen R (0.2 %)</td><td>Serva</td><td>47254</td><td></td></tr><tr><td>&amp;alpha;-MEM</td><td>Merck-Millipore</td><td>F 0915</td><td>originally purchased at Biochrom AG that is now part of the Merck-Millipore Company; the Cat.-No of Biochrom still exists</td></tr><tr><td>L-Glutamin (200 mM)</td><td>Merck-Millipore</td><td>K 0282</td><td>originally purchased at Biochrom AG that is now part of the Merck-Millipore Company; the Cat.-No of Biochrom still exists</td></tr><tr><td>sodium bicarbonate</td><td>Merck-Millipore</td><td>L 1713</td><td>originally purchased at Biochrom AG that is now part of the Merck-Millipore Company; the Cat.-No of Biochrom still exists</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>A3311</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Merck-Millipore</td><td>L 1603</td><td>originally purchased at Biochrom AG that is now part of the Merck-Millipore Company; the Cat.-No of Biochrom still exists</td></tr><tr><td>sodium selenite</td><td>Sigma</td><td>S9133</td><td>dissolved in sterile water</td></tr><tr><td>transferrin</td><td>Sigma</td><td>T1283</td><td>dissolved in sterile water</td></tr><tr><td>insulin (10 mg/mL)</td><td>Sigma</td><td>I0516</td><td>dissolved in 1x PBS</td></tr><tr><td>NEA</td><td>Merck-Millipore</td><td>K 0293</td><td>originally purchased at Biochrom AG that is now part of the Merck-Millipore Company; the Cat.-No of Biochrom still exists</td></tr><tr><td>FSH</td><td>Sigma</td><td>F4021</td><td>we prefer to use a stock solution of 2 &amp;micro;g/mL, diluted in 0.9 % NaCl</td></tr><tr><td>LR3-IGF-1</td><td>Sigma</td><td>I1146</td><td>we use a stock solution of 2 &amp;micro;g/mL, dissolved in 10 mM HCl and 1x PBS with 1 mg/mL BSA</td></tr><tr><td>androstenedione</td><td>Sigma</td><td>46033</td><td>we use a stock solution of 10 mM, diluted in 100 % ethanol</td></tr></tbody></table>

a tissue culture model of estrogen-producing primary bovine granulosa cells

Células da granulosa ovariana (GC) são a principal fonte de síntese de estradiol. Induzida pelo aumento preovulatory hormônio luteinizante (LH), células da theca e, em particular, da camada de células da granulosa profundamente mudam suas características morfológicas, fisiológicas e moleculares e formam o corpus produtoras de progesterona lúteo que é responsável por manter a gravidez. Modelos de cultura de célula são ferramentas essenciais para estudar os mecanismos de regulação subjacentes envolvidos na transformação folliculo-lútea. O protocolo apresentado enfoca o processo de isolamento e criopreservação de bovino GC de folículos de pequeno a médio porte (< 6mm). Com esta técnica, pode ser obtida uma população quase pura de GC. O processo de criopreservação facilita muito o tempo de gerenciamento da cultura de pilha funcionar independente de um fornecimento de tecido (ovários) primária direta. Este protocolo descreve um modelo de cultura celular isento de soro que imita o status de estradiol-ativo de GC bovina. Condições importantes que são essenciais para uma cultura de células de esteroide-ativo bem-sucedido são discutidas em todo o protocolo. Está demonstrado que o aumento da densidade de chapeamento das células induz uma resposta específica conforme indicado por uma produção de perfil e hormônio de expressão do gene alterado. Além disso, este modelo fornece uma base para estudos adicionais na diferenciação de GC e outras aplicações.

GC chapeado em 1 x 105 células/poço exibir uma aparência típica do fibroblasto como eles formam uma extensão de célula comparável aos fibroblastos e tendem a construir clusters (Figura 1a e 1C). Aumento da densidade de chapeamento de 10-fold a 1 x 106 células/poço não alterou a morfologia mas mais agrupamentos de células podem ser observados (Figura 1b e 1D, setas). Como já mostrado em uma publicação anterior, o revestimento de colágeno dos pratos cultura largamente melhorada a fixação das células13.
Criopreservação inicial não alterou consideravelmente as características fisiológicas das células em cultura em comparação com aqueles cultivados diretamente de amostras recém isoladas. Isso é mostrado na Figura 2 como a abundância de transcrição (medida por qPCR) do marcador de vários genes não diferiram quando comparar culturas de células derivadas de piscinas ou congeladas ou fresco isoladas.
A Figura 3 mostra resultados representativos da análise hormônio esteroide (medido pela RIA) em bovino GC cultivada em normal vs high-density. A concentração de estradiol é significativamente diminuída na cultura de alta densidade, em comparação com a cultura de densidade normal, Considerando que a produção de progesterona tendia a ser mais elevado.
Uma análise comparativa de vários genes (medido por qPCR) em alta - vs normal-densidade culturas revelou um efeito significativo (Figura 4). CYP19A1, a enzima chave da aromatase de biossíntese de estradiol, bem como o receptor de gonadotrofinas FSHR, de codificação foram significativamente para baixo-regulado. Em contraste, os genes RGS2 e VNN2 mostraram uma significativa regulação. Estes resultados sugerem claramente que processos específicos de diferenciação celular são induzidos, aumentando a célula chapeamento densidade.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58208/58208fig1.jpg"> Figura 1: culta células granulosa bovinas em normal (painéis à esquerda) e célula de alta densidade (painéis de certo). Células (a e c), cultivadas em uma densidade de 1 x 105 células/poço exibido um fenótipo típico de fibroblasto tipo. (b e d) GC, cultivada em uma chapeamento de alta densidade (1 x 106 células/poço) tendida a formar grupos de grandes células (setas) com mais frequência em comparação com células sob uma densidade normal (painel esquerdo). Barras de escala = 100 µm. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/58208/58208fig1large.jpg" target="_blank">clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58208/58208fig2.jpg"> Figura 2: comparação das células cultivadas diretamente após isolamento e criopreservação. As células foram cultivadas em uma densidade de 1 x 105 células por poço. A expressão do gene de diversas transcrições do marcador foi avaliada e não revelou nenhuma diferença entre células cultivadas com ou sem uma criopreservação inicial. O boxplot mostra a mediana do n = 3. De Student bicaudal t-testar, o p-valores são incluídos. Esta figura é reproduzida de Baufeld e Vicente16. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/58208/58208fig2large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58208/58208fig3.jpg"> Figura 3: concentração de hormônio esteroide nas células da granulosa cultivadas no chapeamento de diferentes densidades. A concentração de estradiol (E2) diminuiu significativamente quando o GC foram cultivadas em uma densidade de pilha alta, Considerando que a concentração de progesterona (P4) só tende a ser mais elevado. A concentração de hormônio foi corrigida para o conteúdo de DNA normalizar para números de telemóvel diferentes. A média e SEM de n = 3 são mostrados. p > 0,05, do Student bicaudal t-teste. Esta figura é reproduzida de Baufeld et al 15. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/58208/58208fig3large.jpg" target="_blank">clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58208/58208fig4.jpg"> Figura 4: Abundância de transcrições chaves funcionais nas células da granulosa cultivadas em um normal vs uma chapeamento de alta densidade. GC bovina cultivada em condições de livre de soro para 8D revelou um regulamento específico de vários genes de marcador selecionado. O boxplot exibe a mediana do n = 3 repetições individuais. p < 0.05, do Student bicaudal t-teste. <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/58208/58208fig4large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

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A Tissue Culture Model of Estrogen-producing Primary Bovine Granulosa Cells

Um modelo de cultura a longo prazo das células da granulosa bovinas sob condições isento de soro é descrito. Este modelo permite aos pesquisadores estudar os efeitos de diversos fatores e condições como o chapeamento de diferentes densidades, sobre as características dos produtores de estrogênio as células da granulosa bovinas.

Um modelo de cultura de tecidos de produção de estrogênio primário Granulosa bovina células

Ovarian granulosa cells (GC) are the major source of estradiol synthesis. Induced by the preovulatory luteinizing hormone (LH) surge, cells of the theca ...

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Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Biology

9.1K visualizações.  Leibniz Institute for Farm Animal Biology (FBN). Um modelo de cultura a longo prazo das células da granulosa bovinas sob condições isento de soro é descrito. Este modelo permite aos pesquisadores estudar os efeitos de diversos fatores e condições como o chapeamento de diferentes densidades, sobre as características dos produtores de estrogênio as células da granulosa bovinas.

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Heterotypic Three-dimensional In Vitro Modeling of Stromal-Epithelial Interactions During Ovarian Cancer Initiation and Progression

Epithelial ovarian cancers (EOCs) are the leading cause of death from gynecological malignancy in Western societies. Despite advances in surgical treatments and improved platinum-based chemotherapies, there has been little improvement in EOC survival rates for more than four decades 1,2. Whilst stage I tumors have 5-year survival rates &gt;85%, survival rates for stage III/IV disease are &lt;40%. Thus, the high rates of mortality for EOC could be significantly decreased if tumors were detected at earlier, more treatable, stages 3-5. At present, the molecular genetic and biological basis of early stage disease development is poorly understood. More specifically, little is known about the role of the microenvironment during tumor initiation; but known risk factors for EOCs (e.g. age and parity) suggest that the microenvironment plays a key role in the early genesis of EOCs. We therefore developed three-dimensional heterotypic models of both the normal ovary and of early stage ovarian cancers. For the normal ovary, we co-cultured normal ovarian surface epithelial (IOSE) and normal stromal fibroblast (INOF)&nbsp;cells, immortalized by retrovrial transduction of the catalytic subunit of human telomerase holoenzyme (hTERT) to extend the lifespan of these cells in culture. To model the earliest stages of ovarian epithelial cell transformation, overexpression of the CMYC oncogene in IOSE cells, again co-cultured with INOF cells. These heterotypic models were used to investigate the effects of aging and senescence on the transformation and invasion of epithelial cells. Here we describe the methodological steps in development of these three-dimensional model; these methodologies aren't specific to the development of normal ovary and ovarian cancer tissues, and could be used to study other tissue types where stromal and epithelial cell interactions are a fundamental aspect of the tissue maintenance and disease development.

Heterotypic Three-dimensional In Vitro Modeling of Stromal-Epithelial Interactions During Ovarian Cancer Initiation and Progression

We describe methodologies for establishing in vitro heterotypic three-dimensional models comprising ovarian fibroblasts and normal ovarian surface or ovarian cancer epithelial cells. We discuss the use of these models to study stromal-epithelial interactions that occur during ovarian cancer development.

Heterotípica tridimensional<em&gt; In Vitro</em&gt; Modelagem de Estroma-epitelial de ovário Interações durante o início e progressão do câncer

Epithelial ovarian cancers (EOCs) are the leading cause of death from gynecological malignancy in Western societies. Despite advances in surgical ...

Medicina

Ovarian Tissue Culture to Visualize Phenomena in Mouse Ovary

Mammalian females periodically ovulate an almost constant number of oocytes during each estrus cycle. To sustain such regularity and periodicity, regulation occurs at the hypothalamic-pituitary-gonadal axis level and on developing follicles in the ovary. Despite active studies, follicle development mechanisms are not clear because of the several steps involved from the dormant primordial follicle activation to ovulation, and because of the regulation complexity that differs at each follicular stage. To investigate the mechanisms of follicle development, and the dynamics of follicles throughout the estrus cycle, we developed a mouse ovarian tissue culture model that can be used to observe follicle development using a microscope. Systematic follicle development, periodical ovulation, and follicle atresia can all be reproduced in the cultured ovary model, and the culture conditions can be experimentally modulated. Here, we demonstrate the usefulness of this method in the study of the regulatory mechanisms of follicle development and other ovarian phenomena.

Ovarian tissue cultures can be used as models of follicle development, ovulation, and follicle atresia and indicate regulatory mechanisms of dynamic ovarian processes.

Cultura do tecido ovariano Visualizar fenômenos no ovário de Mouse

Mammalian females periodically ovulate an almost constant number of oocytes during each estrus cycle. To sustain such regularity and periodicity, ...

Biologia do Desenvolvimento

A Three-dimensional Tissue Culture Model to Study Primary Human Bone Marrow and its Malignancies

Tissue culture has been an invaluable tool to study many aspects of cell function, from normal development to disease. Conventional cell culture methods rely on the ability of cells either to attach to a solid substratum of a tissue culture dish or to grow in suspension in liquid medium. Multiple immortal cell lines have been created and grown using such approaches, however, these methods frequently fail when primary cells need to be grown ex vivo. Such failure has been attributed to the absence of the appropriate extracellular matrix components of the tissue microenvironment from the standard systems where tissue culture plastic is used as a surface for cell growth. Extracellular matrix is an integral component of the tissue microenvironment and its presence is crucial for the maintenance of physiological functions such as cell polarization, survival, and proliferation. Here we present a 3-dimensional tissue culture method where primary bone marrow cells are grown in extracellular matrix formulated to recapitulate the microenvironment of the human bone (rBM system). Embedded in the extracellular matrix, cells are supplied with nutrients through the medium supplemented with human plasma, thus providing a comprehensive system where cell survival and proliferation can be sustained for up to 30 days while maintaining the cellular composition of the primary tissue. Using the rBM system we have successfully grown primary bone marrow cells from normal donors and patients with amyloidosis, and various hematological malignancies. The rBM system allows for direct, in-matrix real time visualization of the cell behavior and evaluation of preclinical efficacy of novel therapeutics. Moreover, cells can be isolated from the rBM and subsequently used for in vivo transplantation, cell sorting, flow cytometry, and nucleic acid and protein analysis. Taken together, the rBM method provides a reliable system for the growth of primary bone marrow cells under physiological conditions.

In standard culture methods cells are taken out of their physiological environment and grown on the plastic surface of a dish. To study the behavior of primary human bone marrow cells we created a 3-D culture system where cells are grown under conditions recapitulating the native microenvironment of the tissue.

A Cultura de Tecidos modelo tridimensional para estudar primária da medula óssea humana e suas Malignancies

Tissue culture has been an invaluable tool to study many aspects of cell function, from normal development to disease. Conventional cell culture methods ...

A Hormone-responsive 3D Culture Model of the Human Mammary Gland Epithelium

The process of mammary epithelial morphogenesis is influenced by hormones. The study of hormone action on the breast epithelium using 2D cultures is limited to cell proliferation and gene expression endpoints. However, in the organism, mammary morphogenesis occurs in a 3D environment. 3D culture systems help bridge the gap between monolayer cell culture (2D) and the complexity of the organism. Herein, we describe a 3D culture model of the human breast epithelium that is suitable to study hormone action. It uses the commercially available hormone-responsive human breast epithelial cell line, T47D, and rat tail collagen type 1 as a matrix. This 3D culture model responds to the main mammotropic hormones: estradiol, progestins and prolactin. The influence of these hormones on epithelial morphogenesis can be observed after 1- or 2-week treatment according to the endpoint. The 3D cultures can be harvested for analysis of epithelial morphogenesis, cell proliferation and gene expression.

We describe a 3D culture model of the human breast epithelium that is suitable to study hormone action.

Um modelo de cultura 3D Hormone-responsive da Human glândula mamária Epitélio

The process of mammary epithelial morphogenesis is influenced by hormones. The study of hormone action on the breast epithelium using 2D cultures is ...

Bioengenharia

Engineering Three-dimensional Epithelial Tissues Embedded within Extracellular Matrix

The architecture of branched organs such as the lungs, kidneys, and mammary glands arises through the developmental process of branching morphogenesis, which is regulated by a variety of soluble and physical signals in the microenvironment. Described here is a method created to study the process of branching morphogenesis by forming engineered three-dimensional (3D) epithelial tissues of defined shape and size that are completely embedded within an extracellular matrix (ECM). This method enables the formation of arrays of identical tissues and enables the control of a variety of environmental factors, including tissue geometry, spacing, and ECM composition. This method can also be combined with widely used techniques such as traction force microscopy (TFM) to gain more information about the interactions between cells and their surrounding ECM. The protocol can be used to investigate a variety of cell and tissue processes beyond branching morphogenesis, including cancer invasion.

This manuscript describes a soft lithography-based technique to engineer uniform arrays of three-dimensional (3D) epithelial tissues of defined geometry surrounded by extracellular matrix. This method is amenable to a wide variety of cell types and experimental contexts and allows for high-throughput screening of identical replicates.

Engenharia tridimensionais tecidos epiteliais incorporado dentro Matriz Extracelular

The architecture of branched organs such as the lungs, kidneys, and mammary glands arises through the developmental process of branching morphogenesis, ...

Generation of Multicellular Human Primary Endometrial Organoids

The human endometrium is one of the most hormonally responsive tissues in the body and is essential for the establishment of pregnancy. This tissue can also become diseased and cause morbidity and even death. Model systems to study human endometrial biology have been limited to in vitro culture systems of single cell types. In addition, the epithelial cells, one of the major cell types of the endometrium, do not propagate well or retain their physiological traits in culture, and thus our understanding of endometrial biology remains limited. We have generated, for the first time, endometrial organoids that consist of both epithelial and stromal cells of the human endometrium. These organoids do not require any exogenous scaffold materials and specifically organize so that epithelial cells encompass the spheroid-like structure and become polarized with stromal cells in the center that produce and secrete collagen. Estrogen, progesterone and androgen receptors are expressed in the epithelial and stromal cells and treatment with physiological levels of estrogen and testosterone promote the organization of the organoids. This new model system can be used to study normal endometrial biology and disease in ways that were not possible before.

A protocol to generate human primary endometrial organoids that consist of epithelial and stromal cells and retain characteristics of the native endometrial tissue is presented. This protocol describes methods from uterine tissue acquisition to the histologic processing of endometrial organoids.

Geração de organóides endometriais primários humanos multicelulares

The human endometrium is one of the most hormonally responsive tissues in the body and is essential for the establishment of pregnancy. This tissue can ...

In Vitro Culture Strategy for Oocytes from Early Antral Follicle in Cattle

The limited reserve of mature, fertilizable oocytes represents a major barrier for the success of assisted reproduction in mammals. Considering that during the reproductive life span only about 1% of the oocytes in an ovary mature and ovulate, several techniques have been developed to increase the exploitation of the ovarian reserve to the growing population of non-ovulatory follicles. Such technologies have allowed interventions of fertility preservation, selection programs in livestock, and conservation of endangered species. However, the vast potential of the ovarian reserve is still largely unexploited. In cows, for instance, some attempts have been made to support in vitro culture of oocytes at specific developmental stages, but efficient and reliable protocols have not yet been developed. Here we describe a culture system that reproduce the physiological conditions of the corresponding follicular stage, defined to develop in vitro growing oocytes collected from bovine early antral follicles to the fully-grown stage, corresponding to the medium antral follicle in vivo. A combination of hormones and a phosphodiesterase 3 inhibitor was used to prevent untimely meiotic resumption and to guide oocyte&#39;s differentiation.

We describe the procedures for isolation of growing oocytes from ovarian follicles at early stages of development, as well as the setup of an in vitro culture system which can support the growth and differentiation up to the fully-grown stage. &#160;

Estratégia de Cultura In Vitro para Oócitos do Folículo Antral Primitivo em Bovinos

The limited reserve of mature, fertilizable oocytes represents a major barrier for the success of assisted reproduction in mammals. Considering that ...

Estabelecimento de uma Monocamada 2D a partir de Cultura Enteróide Ileal Bovina 3D

Generation of a Bovine Primary Enteroid-Derived Two-Dimensional Monolayer Culture System for Applications in Translational Biomedical Research

Organoid cell culture systems can recapitulate the complexity observed in tissues, making them useful in studying host-pathogen interactions, evaluating drug efficacy and toxicity, and tissue bioengineering. However, applying these models for the described reasons may be limited because of the three-dimensional (3D) nature of these models. For example, using 3D enteroid culture systems to study digestive diseases is challenging due to the inaccessibility of the intestinal lumen and its secreted substances. Indeed, stimulation of 3D organoids with pathogens requires either luminal microinjection, mechanical disruption of the 3D structure, or generation of apical-out enteroids. Moreover, these organoids cannot be co-cultured with immune and stromal cells, limiting in-depth mechanistic analysis into pathophysiological dynamics. To circumvent this, we optimized a bovine primary cell two-dimensional (2D) enteroid-derived monolayer culture system, allowing co-culture with other relevant cell types. Ileal crypts isolated from healthy adult cattle were cultured to generate 3D organoids that were cryopreserved for future use. A 2D monolayer was created using revived 3D enteroids that were passaged and disrupted to yield single cells, which were seeded on basement membrane extract-coated transwell cell culture inserts, thereby exposing their apical surface. The intestinal monolayer polarity, cellular differentiation, and barrier function were characterized using immunofluorescence microscopy and measuring transepithelial electrical resistance. Stimulation of the apical surface of the monolayer revealed the expected functionality of the monolayer, as demonstrated by cytokine secretion from both apical and basal compartments. The described 2D enteroid-derived monolayer model holds great promise in investigating host-pathogen interactions and intestinal physiology, drug development, and regenerative medicine.

Autor em destaque: Modelo enteróide avançado para estudar interações hospedeiro-patógeno 

Enteroids are emerging as a novel model for studying tissue physiology and pathophysiology, drug development, and regenerative medicine. Here, we describe a bovine primary cell 2D enteroid-derived culture system that permits co-culture with relevant tissue cell types. This model offers a translational advantage for gastrointestinal research modeling.

Geração de um Sistema de Cultura Bidimensional Monocamada Derivada de Enteróides Bovinos Primários para Aplicações em Pesquisa Biomédica Translacional

Organoid cell culture systems can recapitulate the complexity observed in tissues, making them useful in studying host-pathogen interactions, evaluating ...

Um modelo de cultura de tecidos de produção de estrogênio primário Granulosa bovina células

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Geração de um Sistema de Cultura Bidimensional Monocamada Derivada de Enteróides Bovinos Primários para Aplicações em Pesquisa Biomédica Translacional

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Geração de um Sistema de Cultura Bidimensional Monocamada Derivada de Enteróides Bovinos Primários para Aplicações em Pesquisa Biomédica Translacional