Name: development of an economical dna delivery system by "acufection" and its application to skin research
Uploaded: 2017-04-19T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 42 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Development of an Economical DNA Delivery System by "Acufection" and its Application to Skin Research at JoVE.com

이 작품은 과학 기술부에서 부여에 의해 지원되었다 (MOST 103-2633-B-002-002; 104-2320-B-002-048). 우리는 박사 감사합니다. 원고를 읽기위한 베티 우 셰 행정 원장과 하와이 대학에서 스탠포드 대학 박사 피터 호프만에서 NTU에 치엔 쿠오 리, 리 저보니, 농업 생명 공학의 기술 지원 NTU에서 윤 치엔 박사 웬 - 치 웨이 기술 자문에 대한 중앙 연구원에서 연구 센터.

8에서 여성 마우스 - 연령 12 주 본 연구에 사용되었다. C57 / BL6 야생 - 타입 (WT)와 결핍 IL-15 (IL15 - / -) 마우스는 각각 국립 실험 동물 센터 (NLAC), 대만, 타 코닉 농장에서 구입 하였다. IL15 +/- 이형의 단면으로부터 제 3 세대의 비율 결핍 IL-15 (IL15 - - /) 및 IL-15을 보이면서 (+/- IL15 및 IL15은 + / +) 1을 나타내었다. IL15의 유전자형 - / - 생쥐는 PCR 분석에 의해 확인 하였다. 마우스는 실험 동물 센터 (LAC), 국립 대만 대학교 의학 (NTU) 대학에서 특정 병원체 무료 (SPF) 시설에서 유지되었다. 마취 대상 및 방법을 포함한 모든 동물의 절차는 공중 보건 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC) (동물 프로토콜 20130225 승인의 진술서)의 국립 대만 대학 의과 대학 및 대학의 승인 동물 프로토콜에 따라 수행되었다. &lt;P 클래스 = &quot;jove_title&quot;&gt; 1. 침의 제조 참고 : 침술 바늘은 핸들과 바늘 끝 (그림 1A)로 구성된 의료 장치입니다. 침술 바늘의 직경은 0.35 mm (28 G)는 0.2 mm (36 G)에서이었다. 우리는 피부를 따끔 따끔하는 동안 잠재적 인 과도한 세포 손상을 방지하기 위해 바늘의 최고 지점을 선택합니다. 13mm (0.5)에 25 mm (1.0)에 40 mm (1.5) 및 길이 50 ​​mm (2.0)를 포함하는 0.2-mm 바늘 길이의 4 가지가있다. 13mm 길이 10 개 바늘의 번들 C57BL / 6 마우스의 피부에 바늘을 진동하는 동안 가장 편안한 그립을 제공했다. 이 방법은 큰 동물의 피부에 이상 손으로 연구자에 의해 수행되는 경우 매개 변수를 수정할 수 있습니다. <ol><li> 멸균, 비발 열성 패키지에서 침을 제거합니다. 멸균 드레이프에 바늘을 놓습니다. </li><li> 난 10 바늘을 함께 결합하는 접착 라벨 테이프를 사용NA 번들 (도 1b). 참고 : 10 개 바늘 기하학적 원통 모양을 형성하도록 배치된다. 편의를 위해, 접착 테이프를 적용하기 전에 구성을 안정화 파라핀 필름의 조각을 사용한다. 모든 바늘 포인트가 동일 평면 상에 있는지 확인합니다. 대신 하나의 바늘의 번들을 사용하면 바늘과 피부의 접촉 면적을 증가시켜 최대 DNA 주입을 용이하게합니다. </li></ol> 2. 많은 양의 준비 및 독소가없는 플라스미드 DNA <ol><li> 플라스미드 DNA 화학적 유능한 박테리아 세포를 형질. </li><li> 선택한 LB 배지 함유 항생제 3ml를 단일 박테리아 콜로니를 접종하고, 밤새 진탕하에 37 ℃에서 배양한다. </li><li> C. 항생제를 LB 배지 100 250 mL로 37 ℃에서 밤새 진탕 : 1의 세균 배양을 희석하여 배양을 확장 </li><li> 고해서 양질를 사용하여 DNA를 대량으로 준비Y, 제조업체의 지침에 따라 내 독소 무료 플라스미드 준비 키트. 참고 : Acufection 프로토콜은 높은 순도와 플라스미드 DNA를 대량으로 필요합니다. 고품질의 사용은, 내 독소 무료 및 열 정제 플라스미드 DNA를 권장합니다. </li><li> 멸균 수에 DNA를 용출시켰다. acufection에 대한 준비가 될 때까지 -20 ° C에서 작은 씩에 ​​보관 DNA. 참고 : 일관성있는 플라스미드 DNA의 발현을 확인하기 위해 DNA의 반복 동결과 해동을 피하십시오. </li><li> acufection 무균 PBS에 1 ㎎ / ㎖로 플라스미드 DNA를 희석. </li></ol> Acufection 3. 절차 주 : DNA의 최적 량 및 대상 피부면의 면적이 다른 유전자 변화 및 더 최적화 될 필요가있다. 찌름 힘 횟수 피부 두께에 따라서 달라질 수있다 또한 피부의 각질층 느슨하게. 이러한 조건은주의 깊게 acufected 진 트랜스크리의 발현 수준을 평가 한 후 결정해야한다QRT-PCR에 의한 점. <ol><li> 마우스 체중을 복막 주사 tribromoethanol (GM 체중 당 400 μg의)을 관리. 참고 : 2,2,2- tribromoethanol 일반적으로 마우스에 사용 된 주사 마취 에이전트입니다. 용액은 2- 메틸 -2- 부탄올 중 2.5 %를 함유하는 증류 물 (200 mL) 중이 아닌 약제 학적 등급 2,2,2- tribromoethanol (2.5 g)를 용해시킴으로써 제조된다. </li><li> 마취하에 건조를 방지하기 위해 눈에 수의사 안과 연고를 사용합니다. 참고 : - 2 분 마취 효과는 1에서 유도됩니다. 수술 전에 마취의 충분한 깊이를 보장하기 위해 발가락 핀치 반사를 확인합니다. </li><li> 지느러미 측면 피부를 면도하고 모발에 케라틴 단백질을 용해 제모 크림을 적용합니다. 참고 : 머리를 제거하는 제모 크림의 사용은 피부에 DNA의 주입을 용이하게합니다. </li><li> 제모 크림을 닦아 물을 적신 면봉을 사용합니다. 주 : 제모 크림은 물에 용해입니다. 크림 줘야의 완전 제거L은 기름기 표면을 방지하고 더 나은 찌름 결과를 확인합니다. </li><li> 피부 표면을 소독하기 위해 70 % 에탄올에 적신 멸균 면봉을 사용합니다. </li><li> 마크 미리 측정 스텐실 면도 한 피부의 목표 영역 (1cm X 1cm). 참고 : 대상 사이트를 표시하는 것은 위아래 정의 된 영역 내에서 바늘 번들을 적용하는 데 도움이 될 것입니다. 이 실험 실험 간 변동을 최소화하는 표면적 DNA에 동일한 양의 전달을 보장하는 것이 중요하다. </li><li> 피부에 표시된 플라스미드 DNA (μg의 10)의 10 μL 강하를 놓는다. 참고 acufection위한 DNA의 양은 다른 유전자 발현 벡터의 종류에 따라 달라진다. 사용되는 DNA의 양을주의 깊게 관심의 실험을 수행하기 전에 적정해야한다. 10 μL 작은 액적이며 ​​샤프트 동안 굴러없는 면도를 면도하고 피부에 잘 앉는다. 마우스 A를 비교하는 10 μL 빈 벡터 DNA로 처리 된 마우스의 대조군을 포함연구 유전자 cufected. </li><li> 침술 바늘 번들 (그림 1B)를 누른 상태에서 100 배 또는 피부가 사라집니다 PBS의 DNA에서 수분까지 상하 운동으로 표시된 표면을 찌르. 참고 : 피부 표면의 일부 홍반이 발생할 수 있습니다. 피가 깊은 상처를 피합니다. PBS에서 DNA로부터 수분 (10 μL)을 피부에 사라지면 피부 표면에서의 움직임을 샤프트 위아래의 수는 동작 가능하게 결정된다. 이 acufection-전달 유전자 가장 일관된 결과를 제공했기 때문에 우리는 30 초에 100 번을 결정했다. 해당하는 경우, 바늘은 최대 6 개의 표적 피부 찌르는 (1cm X 1cm 각)에 대해 재사용 될 수있다. acufection 사이에 70 %의 에탄올과 PBS에서 바늘을 씻어. 그들이 무딘 또는 교차 오염을 방지하기 위해 다른 플라스미드 DNA에 대한 때 새 바늘로 변경합니다. </li><li> 웨이크까지 체온을 유지하기 위해 가열 패드 acufected 마우스 놓는다. </li><li> 그들이있을 때 자신의 케이지에 마우스를 반환회복 충분한 의식. 참고 : 않은 acufected 쥐의 케이지에서 별도의 새장에 acufected 마우스를 유지 (케이지 미만 5 동물). </li><li> 장소에 물병을 넣고 IVC (개별 환기 케이지) 랙에 새장을 반환합니다. </li></ol> 4. 수술 후 케어 <ol><li> 시술 후 첫 48 시간 동안, 밀접하게 행동 변화 (불안, 교반 또는 섭식 장애) 또는 비정상적인 모양 (거친 털 코트 또는 구부리고 자세)를 포함한 모든 불편에 대한 마우스를 모니터합니다. </li></ol> IL-15ΔE7-acufected 스킨의 제 퀴 모드 (IMQ) 치료 참고 : acufected 유전자의 전사 발현과 단백질 생산은 관심의 플라스미드가 삼일 형질 전환 후 각성제의 다른 유형으로 처리 할 수와 acufected 일 3. 마우스에 감지 할 수 있습니다. 우리는 IMQ 크림과 IL-15ΔE7-acufected 마우스 피부를 처리하여 여기에 설명한다. IMQ는 imidazoquinolin 아민 승인 F이고또는 외부 생식기 및 주 산기 사마귀 (13)을 치료. 국소 IMQ 처리는 판상 피부 표피 증식 및 피부 호중구 침윤 12, 14, 15의 발현과 마우스에서 인간 건선과 같은 피부 질환을 유발하는 것으로되어있다. 주 : 플라스미드 벡터는 C 말단 (PEF-IL-에서 IL-2 신호 펩티드 및 FLAG 태그 측면 연장 인자 -1 α의 조절 (PEF)하에 전장 마우스 IL-15의 cDNA를 포함 뱀 포드 등에 의해 기술 된 바와 같이 제조 하였다 (15), 5859 염기쌍). (16). 플라스미드 잔기에서 처음 16 개 개의 아미노산을 삭제하기 위해 IL-15 주형 33 사용 - SOE 의해 IL-15ΔE7 (PEF-IL-15ΔE7, 5,811 염기쌍)에 IL-15 유전자의 엑손 7 48 (합성 오버랩 연장) PCR 방법 (17). 성공적이었다 세균성 식민지IL-15ΔE7 형질는 제한 효소 절단에 의해 확인되고 DNA 서열 12, 18 따랐다. 프로토콜 2 단계에서 설명 된 바와 같이 내 독소가없는 플라스미드 DNA를 대량으로 제조 하였다. <ol><li> tribromoethanol (GM 체중 당 400 μg의)의 복강 내 주사하여 마우스를 마취 acufected 마취 하에서 건조를 방지하기 위해 눈 안과 의사 연고를 적용한다. 수술 절차를 시작하기 전에 마취의 충분한 깊이를 보장하기 위해 발가락 핀치 반사를 확인합니다. 주 : 2cm X 2cm 피부가 IMQ 치료되기 때문에, 필 - 15ΔE7 플라스미드 DNA (용량 당 10 μL PBS에서 10 μg의) 2 투여 2 개 표적 부위에 acufected된다 (1cm X 1cm 각). </li><li> 표 피부 (2cm X 2cm)을 acufected 면적의 측면. </li><li> 국소 표시된 면적에 IMQ 크림을 적용하는 Q-팁 어플리케이터를 사용합니다. 주의 : 단계 5.1 첫 번째 투여 하였다 (60 mg / 투여 량)에 대해 수행된다.다음 연속 투여가 아닌 마취 된 쥐에 적용됩니다. </li><li> 고화질 캠코더와 함께 매일 IMQ 처리 지느러미 피부의 변화를 문서화합니다. 참고 : 한 사람이 또 다른 기록하는 동안 마우스를 보유하고 있습니다. 스틸 사진을 촬영하고 나중에 편집됩니다. </li><li> IMQ 처리 후 4 일째 또는 7 일째 경추 탈구 하였다 tribromoethanol의 과량 (GM 체중 당 800 μg의)을 주입하여 마우스를 안락사. 피부는 절개되고 처리된다 (- 4.5 4.1 단계). </li></ol> 마우스 피부 6. 균질 현탁액 <ol><li> 꼬리의 기지에서 수평 컷을 만들기 위해 수술 가위를 사용합니다. 사지의베이스에 양자 진행하고 앞다리의베이스에 측면을 따라 수직으로 절단하는 것을 계속한다. </li><li> 조심스럽게 앞쪽에 후부에서 하부 조직으로부터 피부를 벗겨. 등쪽 피부를 잘라 가위를 사용합니다. 멸균 페트리 접시에 피부를 놓습니다. </li><li> 대상을 절제하기 위해 메스를 사용하여피부 즉시 액체 질소에 동결. 참고 실험 실험 간 변동을 최소화하기 위해 각각의 마우스에 대해 고정 된 동일한 acufected없이 피부의 크기 (1cm X 1cm) 또는 IMQ 처리를하여 (2cm X 2cm). </li><li> 핸들과와 유 봉, 사전 냉장 2 칸 박격포의 중심에 냉동 피부 조직을 놓습니다. 조직을 분쇄하기 위해 박격포에 리드 망치를 사용합니다. </li><li> 신속 RNA 추출 또는 단백질 용 해물을 얻기 위해 50 μL의 PBS 및 1X 프로테아제 억제제 칵테일을 함유하는 튜브에 세포 용해 시약 500 μL를 포함하는 새로운 튜브로 분쇄 된 조직을 놓는다. </li></ol> 스킨 부분의 제 H &amp; E 염색과 면역 <ol><li> 카세트에서 피부 조직을 놓고 하룻밤 4 % 파라 포름 알데히드에 젖어. </li><li> 우리의 경우에는 LAC, NTU에서 병리학 실험실에서 수행 하였다 퍼가 부 조직. 주 : 단면 5 ㎛의 두께로 절단한다. 장소 조직 섹션에 ì양전하를 슬라이드 위에 기능. </li><li> 15 분 동안 65 ° C에서 슬라이드를 가열한다. </li><li> 염색 랙에 슬라이드를 놓습니다. 회 100 %, 95 %, 80 %, 75 %, 60 % 및 재수 50 % 에탄올 (각 5 분)에 순차 침지 한 다음 5 분간 크실렌 대체물을 포함하는 탱크에 대응하는 랙을 담근다. 염색 전에 3 분 동안 수돗물 슬라이드를 담근다. </li><li> 헤 마톡 실린 및 에오신 염색을 수행합니다. 주 : H &amp; E 염색은 LAC, NTU에서 병리학 실험실에서의 요청에 따라 수행 하였다. </li><li> 면역 조직 화학 염색을 위해, 비특이적 백그라운드 염색을 감소시키기 위해 5 분 동안 실온에서 차단 용액으로 차단 부. 참고 : 블록 솔루션은 상업적으로 면역 염색 기술로 개발되고있다. 어떤 동물 혈청이 제품에 포함되지 않습니다. </li><li> 블록 솔루션을 씻어 PBS에서 슬라이드를 찍어. </li><li> 1:10 PBS에서 차단 용액을 희석하고, 2 % 소 태아 혈청 (FBS) (희석액)을 추가한다. </li><lI&gt; 피펫 적절히 희석 차 항체 부분 상에 실온에서 60 분 동안 배양한다. 참고 : 항체를 희석 용액에 희석된다. 염색이 항체 농도는 1에서 최적화되었다 : 800 내지 1 : 200 Ki67 (클론 SolA15) 및 Ly6G (클론 1A8)에 대해 각각. 이 농도는 배경 얼룩없이 별개의 얼룩을 보여 발견된다. <ol><li> 동일한 용액은 이차 항체의 비특이적 결합에 대해 제어하는 ​​차 항체를 생략과 동일한 실행 한 직렬 섹션 얼룩. </li></ol></li><li> 세척을 5 분마다 TBS 세 번 더하기 0.1 % 트윈 -20 (TBST 용액)을 슬라이드. 세척 사이의 변경 솔루션입니다. </li><li> 각 구역에 표지 된 중합체의 한 방울을 피펫 및 40 분 동안 실온에서 배양한다. 주 : 표지 중합체 상업적 된 Fab &#39;단편 감소 옥시다아제 및 이차 항체 아미노산 중합체를 조합하여 제조된다. 시약은 사용 준비가마우스 조직 절편의 면역 조직 화학 염색. </li><li> 워시는 5 분마다 TBST에 세 번 슬라이드. 세척 사이의 변경 솔루션입니다. </li><li> 피펫 3,3&#39;- diaminobenzindine 조직 섹션 위에 tetrahydrochloride (DAB) 솔루션과 갈색 침전물이 밝은 필드 현미경 아래에 보일 때까지 실온에 서 보자. 주 : DAB는 퍼 옥시 다제의 존재 하에서 석출하는 시간은 약 30 분이다. </li><li> 과산화 효소 활동을 중지하기 위해 물에 슬라이드를 담가. 핵 염색 메틸 녹색 솔루션의 딥 슬라이드. 워시는 5 분마다 PBS에 세 번 슬라이드. </li><li> 영구 장착 매체 (부 당 8 μL)으로 덮여 염색 섹션 위에 커버 슬립을 놓는다. </li></ol> 제 사진 및 분석 스테인드 조직 절편의 <ol><li> 명 시야 현미경으로 H &amp; E 염색 IHC 조직 절편을 시각화. 현미경에 연결된 전하 결합 소자 (CCD) 카메라를 사용하여 이미지를 캡처. Q 들어uantitative 분석, 이미징 소프트웨어를 사용할 수 있습니다 <ol><li> 20 배 목표와 scanscope를 사용하여 전체 스테인드 섹션을 검색합니다. </li><li> 표피의 1 mm 세그먼트 내의 표피 두께를 측정하고, 세그먼트 내의 Ki67 면역 세포의 수를 계산. 참고 : 정량 분석은 현미경 자동화 및 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 수행됩니다. 표피 두께 기저층과 표피의 최 외곽 층 사이의 거리에 의해 정의된다. </li><li> 바로 국소 IMQ 처리 피부 아래의 피부 영역 (230 X 270 μm의 구형 2)에 Ly6G 면역 세포의 수를 계산. </li></ol></li></ol>

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A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunization+via+hair+follicles+by+topical+application+of+naked+DNA+to+normal+skin.">Immunization via hair follicles by topical application of naked DNA to normal skin.</a> Nat Biotechnol. 17, 870-872 (1999).</li><li>Kennedy-Crispin, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+keratinocytes'+response+to+injury+upregulates+CCL20+and+other+genes+linking+innate+and+adaptive+immunity.">Human keratinocytes' response to injury upregulates CCL20 and other genes linking innate and adaptive immunity.</a> J Invest Dermatol. 132, 105-113 (2012).</li></ol>

저자는 공개 재정적 이해에는이 없습니다.

acufected 플라스미드 DNA의 발현을 확인하기 위해 가장 중요한 단계는 균일 진동과 피부의 각질층을 느슨하게한다. 피부를 절단하지 않고 부드럽게 바늘을 누르는 동안, 힘이 표면을 누르기 힘든 충분해야한다. 1cm X 1cm의 면적에 10 μL의 용액에서 DNA의 흡수를 용이하게하기 위해, 바늘은 30 초에 100 회 상하 진동을한다. 하나는 피부를 찌를 필요가 힘을 결정하고 acufected 유전자의 최고 발현 수준을 산?...

피부 숙주 방어의 첫 번째 라인이다. 각질 세포 (KCS)는 인간과 쥐의 피부의 주요 세포 유형입니다. 환경 적 자극 (예를 들면 태양 광, 산소, 화학 물질 및 병원균 침입)에 응답하여, 관세청 활성화 및 IL-8, IL-6, IL-1α, IL-1β, TNF-α과 같은 염증성 사이토 카인 및 케모카인의 다양한 생산되고 α 및 GM-CSF 1. 이들은 피부에 면역 세포의 채용을 트리거합니다. 악화되는 피부 염증은 종종 급성 자궁외 접촉 피부염 및 만성 T 세포 매개 성 염증 (예를 들어 알레르기 성 접촉 피부염 및 건선) 2 등 다양한 인간 질병과 연관되어 있습니다. KC 활성화를 억제함으로써 피부의 염증 반응을 조절하는 것은 피부 염증을 치료하는 그럴듯한 방법입니다. 이 프로토콜은 일시적으로 면역 고해상도를 연구하기 위해 표피에서 사이토 카인 유전자를 표현하는 새로운 접근 방식을 설명합니다피부에 이러한 치료에 결과적 ponse. 표피는 피부의 가장 표층을 구성한다. 그러한 피부의 심층 들어가는 병원체 핵산과 같은 외부 물질을 유지하는 물리 장벽으로서 기능한다. 여러 바늘없는 기술은 표피 DNA 전달 3, 4 설립되었다. 용액 중의 DNA 또는 양이온 성 리포솜 또는 아데노 바이러스 벡터와 연관된 직접 이러한 각질층의 제거 또는 시약과 함께 탈모 치료 기법으로 변성 표피에 적용되었다. 각질화 된 상피를 제거하여 DNA는 면역 반응을 유도하는 5 각화 세포 및 랑게르한스 세포, 표피의 장벽 작용을 넘어 용이하게한다. 큰 표면적이 DNA 전송을 위해 사용할 수 있으며이 방법은 바늘을 포함하지 않지만, 요구 사항을 포함하여 단점이있다스트리핑에 의해 - (100 μg의 10), 피부 가혹하고 DNA 전달 부스터 6 않고 면역화 된 동물에서 면역 반응을 유도하는 일관성있는 결과 DNA의 대량 대한. 피부 벗은 DNA의 미립자 - 매개 세포 내 전달은 면역 반응을 7, 8을 유도하는 고효율 및 재현성 것으로 밝혀졌다. 휴대용 유전자 총 가압 헬륨 기류 (9)의 수단에 의해 크기가 2 ㎛의 직경의 플라스미드 DNA 코팅 된 금 입자는 피부의 표적 부위 도배 사용되고있다. 플라스미드 DNA는 아마도 피부 KCsand 수지상 세포에 의해 흡수되고, 단백질은 로컬 표현 또는 수지상 10 림프절로 이송된다. 유전자 총 시스템은 간단하고 제한된 기술 경험은 &quot;DNA의 BUL을 준비하고 제공하기위한 비용이 필요하지만하자 &quot;(즉, 금 분말, 헬륨 가스)와 유전자 총을위한 자체는 일반 응용 프로그램을 제한하고있다. 실험은 서로 다른 위치에서 수행 할 때 또한, 헬륨 가스 공급 시스템에 대한 요구 사항이 유전자 총 수송의 용이성을 제한합니다. Microseeding 단일 분사 입자 충격 (11)에 비해 유전자 전달의 높은 효율을 달성하는 것으로 입증되었다. Microseeding 입자 비드를 사용하지 않고 피부에 DNA를 전달하기 위해 문신 총을 사용한다 (11). 진동이 방법을 이용하여 피부에 미세 바늘이 가능성 직접 동시에 여러 세포에 DNA를 전송하므로 세포막을 긁어. 그러나, 0.254 mm 직경의 바늘 주사 다수과 관련된 통증이 단점이다. 여기에서 우리는 생체 내에서 DNA 전달에 대한 대안 접근 방식을 제공합니다. 은 &quot;acufection&quot; </str옹&gt; 우리는 여기에 설명 된 프로토콜은 마우스의 피부에 플라스미드 DNA를 전달하는 경제적이고 효율적인 방법을 제공합니다. 간략 10 개 침 (× 길이 13mm, 직경 0.2 mm)를 접착 테이프에 의해 다발로 결합 하였다. 관심있는 유전자를 포함하는 플라스미드 DNA의 10 μg의와 PBS의 10 μL의 볼륨은 면도, 제모 크림 처리 된 측면 피부에 배치되었다. 피부 표면 (1cm X 1cm)을 진동 침술 바늘 뭉치를 사용하여 각질층의 케라틴 느슨하게하고, 표면에 적용되는 플라스미드 DNA는 표피에 흡수시켰다. 피부 손상 모니터링하고 최소한의 것으로 밝혀졌다. acufected 피부 형질 감염된 유전자의 발현은 정량적 실시간 PCR (QRT-PCR) 및 ELISA에 의해 확인 하였다. 피부 염증에 acufection-전달 IL-15ΔE7의 면역 조절 성 효과는 IMQ 처리 된 마우스 모델 (12)을 이용하여 증명되었다. acufection가 증명하는 동안 쉽고 덜 DEMA 수생체 내에서 DNA 전달을위한 방법을 웍 다른 유전자와 피부를 찌를 수있는 시간에 대한 DNA의 최적의 양은 신중하게 재현 가능한 결과를 얻기 위해 최적화되어야한다.

<table><tbody><tr><td>Accu Handy Needle</td><td>Accu</td><td>36Gx0.5</td><td>Medical device</td></tr><tr><td>Nair&lt;sup&gt;TM&lt;/sup&gt; Lotion</td><td>Church &amp;amp; Dwight</td><td>N/A</td><td>Use to remove hair</td></tr><tr><td>Shandon Xyline substitute</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>6764506</td><td>Deparaffinization</td></tr><tr><td>Avertin (2,2,2-Tribromethanol)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T4,840-2</td><td>Anesthesia</td></tr><tr><td>2-methyl-2-butanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>152463</td><td>Solvent for the dissolution of avertin</td></tr><tr><td>Difco&lt;sup&gt;TM&lt;/sup&gt; LB broth, Miller</td><td>BD</td><td>244620</td><td>Propagation and maintenance of &lt;em&gt;E. coli&lt;/em&gt; for molecular biology</td></tr><tr><td>Mouse IL-15/IL-15R Complex ELISA Ready-SET-Go kit</td><td>eBioscience</td><td>88-7215</td><td>Measure IL-15 protein</td></tr><tr><td>Anti-mouse Ly6G</td><td>BioLegend</td><td>127601</td><td>Antibody used for immunohistochemical stain</td></tr><tr><td>anti-mouse Ki-67</td><td>eBioscience</td><td>14-5698-80</td><td>Antibody used for immunohistochemical stain</td></tr><tr><td>Simple Stain Mouse MAXPO (Rat)</td><td>Nichirei Biosciences</td><td>414341F</td><td>Reagent to block background signal in mouse-on-mouse stain</td></tr><tr><td>DAB Peroxidase (HRP) Substrate Kit</td><td>Vector Laboratories</td><td>SK-4100</td><td>Peroxidse substrate for immunohistochemical stain</td></tr><tr><td>Ultra V block</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>TA-060-UB</td><td>Reduce nonspecific background staining</td></tr><tr><td>Methyl green</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M8884</td><td>Nuclear staining</td></tr><tr><td>Vecta Mount&lt;sup&gt;TM&lt;/sup&gt;</td><td>Vector Laboratories</td><td>M-5000</td><td>Permanently preserving histochemical stains</td></tr><tr><td>Protease inhibitor cocktail tablets</td><td>Roche</td><td>04-693-116-001</td><td>Inhibit protease activity in cell lysate</td></tr><tr><td>Aldara cream</td><td>3M Parmaceuticals</td><td>N/A</td><td>5% imiquimod cream</td></tr><tr><td>Bessman Tissue Pulverizer</td><td>Spectrum Labs</td><td>189475</td><td>Use to pulverize skin tissue</td></tr><tr><td>ABI7900HT cycler</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>N/A</td><td>quantitative real-time PCR assay</td></tr><tr><td>Camcorder</td><td>Panasonic</td><td>HDC-SD60</td><td>Image documentation</td></tr><tr><td>Axio Scope.A1</td><td>ZEISS</td><td>N/A</td><td>Bright-field microscopy</td></tr></tbody></table>

development of an economical dna delivery system by "acufection" and its application to skin research

피부 면역 반응의 조절 장애는 수많은 인간의 피부 질환과 연관되어 있습니다. 피부 조직에 면역 관련 유전자의 직접 전송은 인간의 질병의 마우스 모델에서 피부 염증의 면역 변조를 조사 할 수있는 매력적인 방법입니다. 여기에서 우리는 마우스의 피부에 벌거 벗은 DNA를 전달 유전자 발현에 이르게 비용 효율적인 프로토콜을 제시한다. 상기 방법은 천공 ACU 매개 DNA 트랜스 fection를 나타내는 &quot;acufection&quot;를 만들어 낸된다. acufection을 수행하려면 마우스 피부 제 인산 완충 용액 (PBS)에 DNA 주입 후 세포 내로의 DNA 및 형질 흡수를 용이하게 침 다발로 가볍게 찔러 하였다. 플라스미드 DNA는 아마도 각화 세포 및 피부의 수지상 세포에 의해 용해 단백질로 발현된다. 바늘 자체와 기계 녀석은 피부 손상을 일으키거나 각질 세포의 활성화를 유도하지 않았다. 표현형질 전환 된 유전자의 2 일간 acufection 다음 전사 및 번역 모두 수준에서 피부에서 발견 된 7 일까지 유지했다. 이 acufection 방법의 개발에 주 목적은 IL-15의 미리 정의 이성체를 조사 하였다. 염증을 유도하기 위해, 피부에 표현하고이어서 수신자 같은 수용체 7 (TLR7) 작용제, 이미 퀴 모드 (IMQ) 처리이있어서, 부분적으로 삭제 엑손 7 (IL-15ΔE7)와 다르게 스 플라이 싱 된 IL-15 이성체이었다 사용. Acufection-전달 피부는 IL-15ΔE7 IMQ 유도 된 피부 염증의 각질 세포 증식, 상피 두께 및 호중구 모집을 억제 하였다. 피부 염증의 조절기구를 식별하는 관심이 증가함에 따라, 프로토콜은 여기에 기재된 생체 내에서 DNA 전달을위한 유전자 총 시스템 또는 microseeding에 비용 효과적인 다목적의 대안을 제공한다. 잠재적으로 새로운 기능의 검색을 허용 할 수있다피부 또는 피부 질환에 대한 새로운 치료법을 조사하는 유전자.

일부 붉은 침술 바늘로 찌르는 후 첫 시간 이내에 분명 동안, 피부는 하루 2 지워지고 7 일까지 불리한 피부 반응 (그림 2A)를 따끔 따끔 후 관찰되지 않았다. 바늘 찌름 미처리 피부 (도 2b)과 비교하여 H &amp; E 분석 표피 orthokeratosis 최소한의 피부 침투를 매우 낮은 수준의 유도. 표피 두께 (도 2C) 및 Ki67 +<...

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Development of an Economical DNA Delivery System by "Acufection" and its Application to Skin Research

이 프로토콜은 마우스의 피부에 벌거 벗은 플라스미드 DNA를 표현하기위한 비용 효율적인 대안이다. 프로토콜의 전반적인 목표는 피부 염증의 특정 유전자의 기능적 역할을 묘사하기 위해 피부 조직에 면역 관련 유전자를 제공하는 것입니다.

&quot;Acufection&quot;와 피부 연구에의 응용에 의한 경제적 인 DNA 전달 시스템의 개발

Dysregulation of immune response in skin is associated with numerous human skin disorders. Direct transfer of immune-related genes into skin tissue is a ...

development-an-economical-dna-delivery-system-acufection-its

Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

7.4K 조회수.  National Taiwan University College of Medicine.  이 프로토콜은 마우스의 피부에 벌거 벗은 플라스미드 DNA를 표현하기위한 비용 효율적인 대안이다. 프로토콜의 전반적인 목표는 피부 염증의 특정 유전자의 기능적 역할을 묘사하기 위해 피부 조직에 면역 관련 유전자를 제공하는 것입니다. 

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Delivery of Nucleic Acids through Embryo Microinjection in the Worldwide Agricultural Pest Insect, Ceratitis capitata

The Mediterranean fruit fly (medfly) Ceratitis capitata (Wiedemann) (Diptera: Tephritidae) is a pest species with extremely high agricultural relevance. This is due to its reproductive behavior: females damage the external surface of fruits and vegetables when they lay eggs and the hatched larvae feed on their pulp. Wild C. capitata populations are traditionally controlled through insecticide spraying and/or eco-friendly approaches, the most successful being the Sterile Insect Technique (SIT). The SIT relies on mass-rearing, radiation-based sterilization and field release of males that retain their capacity to mate but are not able to generate fertile progeny. The advent and the subsequent rapid development of biotechnological tools, together with the availability of the medfly genome sequence, has greatly boosted our understanding of the biology of this species. This favored the proliferation of new strategies for genome manipulation, which can be applied to population control.
In this context, embryo microinjection plays a dual role in expanding the toolbox for medfly control. The ability to interfere with the function of genes that regulate key biological processes, indeed, expands our understanding of the molecular machinery underlying medfly invasiveness. Furthermore, the ability to achieve germ-line transformation facilitates the production of multiple transgenic strains that can be tested for future field applications in novel SIT settings. Indeed, genetic manipulation can be used to confer desirable traits that can, for example, be used to monitor sterile male performance in the field, or that can result in early life-stage lethality. Here we describe a method to microinject nucleic acids into medfly embryos to achieve these two main goals.

Delivery of Nucleic Acids through Embryo Microinjection in the Worldwide Agricultural Pest Insect, Ceratitis capitata

The Mediterranean fruit fly (medfly) Ceratitis capitata (Diptera: Tephritidae) is a worldwide pest of agriculture. A deeper understanding of its biology is key to control medfly populations and thus reduce economic impact. Embryo microinjection is a fundamental tool allowing both germ-line transformation and reverse genetics studies in this species.

세계적인 농업 해충 곤충의 배아 미세 주입을 통해 핵산 배달,<em&gt; Ceratitis의 capitata</em

The Mediterranean fruit fly (medfly) Ceratitis capitata (Wiedemann) (Diptera: Tephritidae) is a pest species with extremely high agricultural relevance. ...

연구

유전학

Generation of Genetically Modified Organotypic Skin Cultures Using Devitalized Human Dermis

Organotypic cultures allow the reconstitution of a 3D environment critical for cell-cell contact and cell-matrix interactions which mimics the function and physiology of their in vivo tissue counterparts. This is exemplified by organotypic skin cultures which faithfully recapitulates the epidermal differentiation and stratification program. Primary human epidermal keratinocytes are genetically manipulable through retroviruses where genes can be easily overexpressed or knocked down. These genetically modified keratinocytes can then be used to regenerate human epidermis in organotypic skin cultures providing a powerful model to study genetic pathways impacting epidermal growth, differentiation, and disease progression. The protocols presented here describe methods to prepare devitalized human dermis as well as to genetically manipulate primary human keratinocytes in order to generate organotypic skin cultures. Regenerated human skin can be used in downstream applications such as gene expression profiling, immunostaining, and chromatin immunoprecipitations followed by high throughput sequencing. Thus, generation of these genetically modified organotypic skin cultures will allow the determination of genes that are critical for maintaining skin homeostasis.

The goal of this paper is to provide a comprehensive and detailed protocol on how to generate genetically modified human organotypic skin from epidermal keratinocytes and devitalized human dermis.

약화 된 인간의 진피를 사용하여 유전자 변형의 Organotypic 피부 문화의 생성

Organotypic cultures allow the reconstitution of a 3D environment critical for cell-cell contact and cell-matrix interactions which mimics the function ...

발생학

Skin Tattooing As A Novel Approach For DNA Vaccine Delivery

Nucleic acid-based vaccination is a topic of growing interest, especially plasmid DNA (pDNA) encoding immunologically important antigens. After the engineered pDNA is administered to the vaccines, it is transcribed and translated into immunogen proteins that can elicit responses from the immune system. Many ways of delivering DNA vaccines have been investigated; however each delivery route has its own advantages and pitfalls. Skin tattooing is a novel technique that is safe, cost-effective, and convenient. In addition, the punctures inflicted by the needle could also serve as a potent adjuvant. Here, we a) demonstrate the intradermal delivery of plasmid DNA encoding enhanced green fluorescent protein (pCX-EGFP) in a mouse model using a tattooing device and b) confirm the effective expression of EGFP in the skin cells using confocal microscopy.

Skin tattooing is a potent and safe way to delivery DNA vaccine intradermally. Here, a DNA plasmid encoding EGFP is delivered by tattooing to the skin of a laboratory mouse, and the expression of EGFP in the skin cells is then inspected by confocal microscopy.

피부는 DNA 백신 배달을위한 새로운 접근 방식으로 문신

Nucleic acid-based vaccination is a topic of growing interest, especially plasmid DNA (pDNA) encoding immunologically important antigens. After the ...

생체공학

High-Throughput DNA Plasmid Multiplexing and Transfection Using Acoustic Nanodispensing Technology

Cell transfection, indispensable for many biological studies, requires controlling many parameters for an accurate and successful achievement. Most often performed at low throughput, it is moreover time-consuming and error-prone, even more so when multiplexing several plasmids. We developed an easy, fast, and accurate method to perform cell transfection in a 384-well plate layout using acoustic droplet ejection (ADE) technology. The nanodispenser device used in this study&#160;is based on this technology and allows precise nanovolume delivery at high speed from a source well plate to a destination one. It can dispense and multiplex DNA and transfection reagent according to a predesigned spreadsheet. Here we present an optimal protocol to perform ADE-based high-throughput plasmid transfection which makes it possible to reach an efficiency of up to 90% and a nearly 100% cotransfection in cotransfection experiments. We extend initial work by proposing a user-friendly spreadsheet-based macro, able to manage up to four plasmids/wells from a library containing up to 1,536 different plasmids, and a tablet-based pipetting guide application. The macro designs the necessary template(s) of the source plate(s) and generates the ready-to-use files for the nanodispenser and tablet-based application. The four-steps transfection protocol involves i) a diluent dispense with a classical liquid handler, ii) plasmid distribution and multiplexing, iii) a transfection reagent dispense by the nanodispenser, and iv) cell plating on the prefilled wells. The described software-based control of ADE plasmid multiplexing and transfection allows even nonspecialists in the field to perform a reliable cell transfection in a fast and safe way. This method enables rapid identification of optimal settings for a given cell type and can be transposed to higher-scale and manual approaches. The protocol eases applications, such as human ORFeome protein (set of open reading frames [ORFs] in a genome) expression or CRISPR-Cas9-based gene function validation, in nonpooled screening strategies.

This protocol describes high-throughput plasmid transfection of mammalian cells in a 384-well plate using acoustic droplet ejection technology. The time-consuming, error-prone DNA dispensing and multiplexing, but also the transfection reagent dispensing, are software-driven and performed by a nanodispenser device. The cells are then seeded in these prefilled wells.

음향 나노 디스펜싱 기술을 사용한 고처리량 DNA 플라스미드 멀티플렉싱 및 트랜스펙션

Cell transfection, indispensable for many biological studies, requires controlling many parameters for an accurate and successful achievement. Most often ...

Design and Construction of Artificial Extracellular Matrix (aECM) Proteins from Escherichia coli for Skin Tissue Engineering

Recombinant technology is a versatile platform to create novel artificial proteins with tunable properties. For the last decade, many artificial proteins that have incorporated functional domains derived from nature (or created de novo) have been reported. In particular, artificial extracellular matrix (aECM) proteins have been developed; these aECM proteins consist of biological domains taken from fibronectin, laminins and collagens and are combined with structural domains including elastin-like repeats, silk and collagen repeats. To date, aECM proteins have been widely investigated for applications in tissue engineering and wound repair. Recently, Tjin and coworkers developed integrin-specific aECM proteins designed for promoting human skin keratinocyte attachment and propagation. In their work, the aECM proteins incorporate cell binding domains taken from fibronectin, laminin-5 and collagen IV, as well as flanking elastin-like repeats. They demonstrated that the aECM proteins developed in their work were promising candidates for use as substrates in artificial skin. Here, we outline the design and construction of such aECM proteins as well as their purification process using the thermo-responsive characteristics of elastin.

Design and Construction of Artificial Extracellular Matrix aECM Proteins from Escherichia coli for Skin Tissue Engineering

Recombinant technologies have enabled material designers to create novel artificial proteins with customized functionalities for tissue engineering applications. For example, artificial extracellular matrix proteins can be designed to incorporate structural and biological domains derived from native ECMs. Here, we describe the construction and purification of aECM proteins containing elastin-like repeats.

설계 및 인공 세포 외 기질의 건설 (aECM) 단백질에서<em&gt; 대장균</em&gt; 피부 조직 공학

Recombinant technology is a versatile platform to create novel artificial proteins with tunable properties. For the last decade, many artificial proteins ...

Establishing a High Throughput Epidermal Spheroid Culture System to Model Keratinocyte Stem Cell Plasticity

Epithelial dysregulation is a node for a variety of human conditions and ailments, including chronic wounding, inflammation, and over 80% of all human cancers. As a lining tissue, the skin epithelium is often subject to injury and has evolutionarily adapted by acquiring the cellular plasticity necessary to repair damaged tissue. Over the years, several efforts have been made to study epithelial plasticity using in&#160;vitro and ex vivo cell-based models. However, these efforts have been limited in their capacity to recapitulate the various phases of epithelial cell plasticity. We describe here a protocol for generating 3D epidermal spheroids and epidermal spheroid-derived cells from primary neonatal human keratinocytes. This protocol outlines the capacity of epidermal spheroid cultures to functionally model distinct stages of keratinocyte generative plasticity and demonstrates that epidermal spheroid re-plating can enrich heterogenous normal human keratinocytes (NHKc) cultures for integrin&#945;6hi/EGFRlo keratinocyte subpopulations with enhanced stem-like characteristics. Our report describes the development and maintenance of a high throughput system for the study of skin keratinocyte plasticity and epidermal regeneration.

Here we describe a protocol for the systematic cultivation of epidermal spheroids in 3D suspension culture. This protocol has wide-ranging applications for use in a variety of epithelial tissue types and for the modeling of several human diseases and conditions.

각질 줄기 세포 가소성을 모델링하기 위해 높은 처리량 표피 스페로이드 배양 시스템 구축

Epithelial dysregulation is a node for a variety of human conditions and ailments, including chronic wounding, inflammation, and over 80% of all human ...

Assembly and Operation of an Acoustofluidic Device for Enhanced Delivery of Molecular Compounds to Cells

Efficient intracellular delivery of biomolecules is required for a broad range of biomedical research and cell-based therapeutic applications. Ultrasound-mediated sonoporation is an emerging technique for rapid intracellular delivery of biomolecules. Sonoporation occurs when cavitation of gas-filled microbubbles forms transient pores in nearby cell membranes, which enables rapid uptake of biomolecules from the surrounding fluid. Current techniques for in vitro sonoporation of cells in suspension are limited by slow throughput, variability in the ultrasound exposure conditions for each cell, and high cost. To address these limitations, a low-cost acoustofluidic device has been developed which integrates an ultrasound transducer in a PDMS-based fluidic device to induce consistent sonoporation of cells as they flow through the channels in combination with ultrasound contrast agents. The device is fabricated using standard photolithography techniques to produce the PDMS-based fluidic chip. An ultrasound piezo disk transducer is attached to the device and driven by a microcontroller. The assembly can be integrated inside a 3D-printed case for added protection. Cells and microbubbles are pushed through the device using a syringe pump or a peristaltic pump connected to PVC tubing. Enhanced delivery of biomolecules to human T cells and lung cancer cells is demonstrated with this acoustofluidic system. Compared to bulk treatment approaches, this acoustofluidic system increases throughput and reduces variability, which can improve cell processing methods for biomedical research applications and manufacturing of cell-based therapeutics.

This protocol describes the assembly and operation of a low-cost acoustofluidic device for rapid molecular delivery to cells via sonoporation induced by ultrasound contrast agents.

세포에 분자 화합물의 향상된 전달을 위한 부동 유체 장치의 조립 및 작동

Efficient intracellular delivery of biomolecules is required for a broad range of biomedical research and cell-based therapeutic applications. ...

Absorbent Microbiopsy Sampling and RNA Extraction for Minimally Invasive, Simultaneous Blood and Skin Analysis

Conventional skin biopsy limits the clinical research that involves cosmetically sensitive areas or pediatric applications due to its invasiveness. Here, we describe the protocol for using&#160;an absorbent microneedle-based device, absorbent microbiopsy, for minimally invasive sampling of skin and blood mixture. Our goal is to help facilitate rapid progress in clinical research, the establishment of biomarkers for skin disease and reducing the risk for clinical research participants. In contrast to conventional skin biopsy techniques, the absorbent microbiopsy can be performed within seconds and does not require intensive training due to its simple design. In this report, we describe the use of absorbent microbiopsy, including loading and application, on a&#160;volunteer. Then, we show how to isolate RNA from the absorbed sample. Finally, we demonstrate the use of quantitative reverse transcription PCR (RT-qPCR) to quantify mRNA expression levels of both blood (CD3E and CD19) and skin (KRT14 and TYR). The methods that we describe utilize off the shelf kits and reagents. This protocol offers a minimally invasive approach for simultaneous sampling of skin and blood within the same absorbent microbiopsy matrix. We have found human ethics committees, clinicians and volunteers to be supportive of this approach to dermatological research.

In this article, we demonstrate how the absorbent microbiopsy technique is performed and how the sample can be used for RNA extraction for simple and simultaneous sampling of skin and blood in a minimally invasive manner.

흡수 성 Microbiopsy 샘플링 및 최소 침 습, 동시 혈액 및 피부 분석을 위한 RNA 추출

Conventional skin biopsy limits the clinical research that involves cosmetically sensitive areas or pediatric applications due to its invasiveness. Here, ...

의학

세포 배양에서 Crude Vector Production 및 효율적인 DNA Delivery

Transgene Expression in Cultured Cells Using Unpurified Recombinant Adeno-Associated Viral Vectors

Recombinant adeno-associated viral vectors (rAAV) can achieve potent and durable transgene expression without integration in a broad range of tissue types, making them a popular choice for gene delivery in animal models and in clinical settings. In addition to therapeutic applications, rAAVs are a useful laboratory tool for delivering transgenes tailored to the researcher&#39;s experimental needs and scientific goals in cultured cells. Some examples include exogenous reporter genes, overexpression cassettes, RNA interference, and CRISPR-based tools, including those for genome-wide screens. rAAV transductions are less harmful to cells than electroporation or chemical transfection and do not require any special equipment or expensive reagents to produce. Crude lysates or conditioned media containing rAAVs can be added directly to cultured cells without further purification to transduce many cell types&#8212;an underappreciated feature of rAAVs. Here, we provide protocols for basic transgene cassette cloning and demonstrate how to produce and apply crude rAAV preparations to cultured cells. As proof of principle, we demonstrate the transduction of three cell types that have not yet been reported in rAAV applications: placental cells, myoblasts, and small intestinal organoids. We discuss appropriate uses for crude rAAV preparations, the limitations of rAAVs for gene delivery, and considerations for capsid choice. This protocol outlines a simple, low-cost, and effective method for researchers to achieve productive DNA delivery in cell culture using rAAV without the need for laborious titration and purification steps.

저자 스포트라이트: 세포 배양 연구에서 정제되지 않은 재조합 AAV의 잠재력 공개 

Recombinant adeno-associated virus (rAAV) is widely used for clinical and preclinical gene delivery. An underappreciated use for rAAVs is the robust transduction of cultured cells without the need for purification. For researchers new to rAAV, we provide a protocol for transgene cassette cloning, crude vector production, and cell culture transduction.

Unpurified Recombinant Adeno-associated Viral Vectors를 사용한 배양 세포에서의 전이유전자 발현

Recombinant adeno-associated viral vectors (rAAV) can achieve potent and durable transgene expression without integration in a broad range of tissue ...

"Acufection"와 피부 연구에의 응용에 의한 경제적 인 DNA 전달 시스템의 개발

요약

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이 비디오의 챕터

세계적인 농업 해충 곤충의 배아 미세 주입을 통해 핵산 배달,

약화 된 인간의 진피를 사용하여 유전자 변형의 Organotypic 피부 문화의 생성

피부는 DNA 백신 배달을위한 새로운 접근 방식으로 문신

음향 나노 디스펜싱 기술을 사용한 고처리량 DNA 플라스미드 멀티플렉싱 및 트랜스펙션

설계 및 인공 세포 외 기질의 건설 (aECM) 단백질에서

각질 줄기 세포 가소성을 모델링하기 위해 높은 처리량 표피 스페로이드 배양 시스템 구축

세포에 분자 화합물의 향상된 전달을 위한 부동 유체 장치의 조립 및 작동

흡수 성 Microbiopsy 샘플링 및 최소 침 습, 동시 혈액 및 피부 분석을 위한 RNA 추출

Unpurified Recombinant Adeno-associated Viral Vectors를 사용한 배양 세포에서의 전이유전자 발현

Unpurified Recombinant Adeno-associated Viral Vectors를 사용한 배양 세포에서의 전이유전자 발현