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Astinenza di sangue II

Panoramica

Fonte: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Università di Notre Dame, IN

La raccolta di sangue da topi e ratti per l'analisi può essere effettuata attraverso una varietà di metodi. Ogni metodo di raccolta ha variazioni nel tipo di ritenuta richiesta, nell'invasività della procedura e nella necessità di un anestetico generale. 1 Storicamente, l'uso della cavità del seno retro-orbitale è stato usato, ma non senza dibattito. La controversia relativa al potenziale danno tissutale, o addirittura alla cecità, causato da sanguinamenti retro-orbitali ha portato allo sviluppo di metodi di sanguinamento delle vene facciali e sottomandibolari nei topi. La raccolta di sangue dalla vena safena sia nei topi che nei ratti è un'altra tecnica che è stata sviluppata. Queste procedure non richiedono anestesia e quindi sono adatte quando l'uso di anestetici può confondere i risultati del sangue o altri dati.

Procedura

1. Sanguinamento della vena facciale nei topi

  1. Attrezzatura
    1. La raccolta del sangue proviene da una cattura libera in un tubo di sangue o in un tubo di Eppendorf. In alcuni casi, è auspicabile raccogliere il sangue direttamente nei tubi dell'ematocrito.
    2. Le lancette della verga d'oro saranno selezionate in base alla dimensione appropriata per l'animale in base all'età e al sesso.
      1. Le lancette sono selezionate in base all'età / dimensione dei topi come segue:
        Lancetta da 4 mm: topi di 3

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Riferimenti

  1. Fernandez, I., Arantza, P., Del Teso, N., Perez, V. and Rodriguez-Cuesta, J. 2010. Clinical biochemistry parameters in C57BL/6J mice after blood collection from the submandibular vein and retroorbital plexus. Journal of American Association of Laboratory Animal Science. 49:2. 202-210.
  2. Joslin, O.T. 2009. Blood collection techniques in exotic small animals. Journal of Exotic Pet Medicine. 18:2. 117-139.
  3. Hem, A., Smith, A.J. and Solberg, P. 1998. Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guinea pig, ferret and mink. Laboratory Animals. 32. 364-368.
  4. Diehl, K-H., Hull, R., Morton, D., Pfister, R. Rabemampianina, Y., Smith, D., Vidal, J-M., and van de Vorstenbosch, C. 2001. A good practical guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes. Journal of Applied Toxicology. 21. 15-23.

Tags

Blood WithdrawalMiceRatsScientific StudiesMethodsExperimental GoalsRetro orbital Eye BleedTail SnipsNicksIntra cardiac Blood CollectionFacial VeinSubmandibular VeinSaphenous VeinFemoral VeinLess Invasive MethodsAnesthesia free MethodsBlood SampleMurine Facial VeinEquipmentCentrifuge TubeLancet SelectionAnimal RestraintVenipuncture

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0:00

Overview

0:58

Facial Vein Bleed

3:28

Submandibular Vein Bleed

5:25

Saphenous Vein Bleed

7:58

Femoral Vein Bleed

10:23

Applications

11:56

Summary

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