Bienvenue dans l’établissement d’un modèle renouvelable de déficience en cellules numériques, et nous avons réussi à établir un modèle de déficience en cellules numériques en étoiles causée par des informations sévères par grattage de l’épithélium cornéen combiné à une suture cornéenne. En raison du fait que l’épaisseur d’une cornée rouge ne représente qu’un tiers de la mort d’un œil humain, la suture à la surface de la cornée peut facilement provoquer une perforation, ce qui pose une forte demande à notre compétence chirurgicale. Le modèle induit une inflammation cornéenne sans endommager directement les cellules souches épithéliales des limbes, favorisant ainsi la recherche sur les effets et les mécanismes de l’inflammation cornéenne sur les cellules souches épithéliales des limbes.
Cela permet d’observer l’impact d’une inflammation sévère sur les mécanismes biologiques des cellules souches des limbes. Pour commencer, disposez les instruments chirurgicaux, y compris le dissolvant d’anneau de rouille cornéenne stérilisé, le marqueur d’échantillonnage cutané, les porte-aiguilles, les couteaux à plaques, les ciseaux chirurgicaux ophtalmiques et les pinces sur une plate-forme de travail, sélectionnez les rats femelles Sprague âgés de sept à huit semaines et vérifiez l’absence de lésions de la surface oculaire sous une lampe à fente. Après l’anesthésie, le rat désinfecte la peau et les poils autour des yeux à l’aide de iota.
Pour établir le modèle d’inflammation, positionnez le rat en position de décubitus latéral. Exposez le globe oculaire sous un microscope opératoire. Ensuite, centrez un marqueur d’échantillonnage cutané de deux millimètres autour de la pupille centrale.
À l’aide d’un grattoir fin d’arbre cornéen et d’un grattoir épithélial cornéen, grattez l’épithélium cornéen interne. À l’aide d’un fil de nylon 10.0, d’un porte-aiguille, de ciseaux chirurgicaux ophtalmiques et d’une pince, placez trois sutures cornéennes à 120 degrés à environ trois millimètres du limbe. Après la suture, appliquez la pommade oculaire à base d’ofloxacine pour prévenir l’infection.
Observez et photographiez la cornée les premier, troisième et septième jours suivant l’opération sous une lampe à fente agrandie 10x. Évaluez le niveau de congestion corporelle ciliaire. Attribuez zéro point pour l’absence de congestion, un point pour la congestion inférieure à un millimètre, deux points pour l’hyperémie comprise entre un et deux millimètres et trois points pour l’hyperémie supérieure à deux millimètres.
Ensuite, marquez l’œdème cornéen central. Attribuez zéro point pour l’absence d’œdème. Un point pour l’œdème avec une visibilité claire de l’iris, deux points pour l’œdème avec une visibilité de l’iris peu claire et trois points pour l’œdème obscurcissant l’iris.
De même, notez l’œdème cornéen paracentral. Calculez l’indice d’inflammation en additionnant tous les scores et en divisant par neuf. À l’aide d’une lampe à fente, observez la néovascularisation cornéenne.
Analysez et traitez des images à l’aide du logiciel de traitement d’images à lampe à fente. Enregistrer la croissance de la néovascularisation cornéenne à chaque point d’observation, en mesurant la plus longue néovascularisation cornéenne vers la cornée centrale avec une courbure minimale. Évaluer l’étendue de la néovascularisation cornéenne.
La cicatrisation de l’épithélium cornéen a été altérée dans le modèle d’excision de l’épithélium central cornéen avec des sutures comme l’indique la cicatrisation incomplète au septième jour, ainsi qu’un œdème limbique cornéen et une néovascularisation visibles au troisième jour. Au fur et à mesure que l’inflammation progressait, la néovascularisation cornéenne et l’indice d’inflammation ont montré des augmentations continues.