Le présent protocole peut être utilisé avec succès chez des rats ayant un cœur sain ou remodelé en présence d’une grande variété de facteurs de risque pour des études de suivi aiguës ou à long terme. Ce protocole permet d’étudier la fibrillation auriculaire dans différentes conditions physiopathologiques afin d’évaluer de nouvelles stratégies prophylactiques et thérapeutiques. Après avoir anesthésié un rat wistar adulte, placez le rat en position couchée sur un coussin chauffant pour maintenir sa température corporelle à 37 degrés Celsius.
Ensuite, fixez trois électrodes ECG de surface aux membres du rat dans une configuration de plomb II en plaçant l’électrode négative sur le membre antérieur droit, l’électrode positive sur le membre postérieur gauche et l’électrode de mise à la terre sur le membre antérieur gauche. Fixez les électrodes en position à l’aide de fines cordes élastiques de bracelet. Ensuite, activez l’enregistrement ECG de surface et effectuez un enregistrement ECG continu tout au long de la procédure à l’aide d’un programme d’acquisition commercial ou développé localement.
Pour la stimulation électrique, utilisez un cathéter quadripolaire de cinq ou six Français relié à un stimulateur cardiaque à microcontrôleur. Une fois la voie complètement anesthésiée, insérez le cathéter à travers la cavité buccale dans l’œsophage. Pour confirmer la position correcte du cathéter de stimulation au niveau des oreillettes, appliquez une stimulation électrique à une fréquence de 400 stimuli par minute.
Ensuite, vérifiez si le traçage ECG montre une capture constante des oreillettes. Sur cette base, déterminez le seuil diastolique défini comme la tension la plus basse requise pour obtenir la capture auriculaire. Pour les rats du groupe de stimulation, une fois que la position correcte du cathéter est déterminée, réglez le stimulateur à une fréquence de 4 000 stimuli par minute à une tension de trois volts au-dessus du seuil diastolique.
Ensuite, pour chaque rat, appliquez 15 cycles successifs de stimulation, de 20 secondes chacun, avec un intervalle libre de cinq minutes entre les cycles. Ensuite, vérifiez l’efficacité de la stimulation en identifiant le temps de récupération du nœud sinusal, qui apparaît à la fin du rythme rapide comme un intervalle de temps plus long que la durée du cycle enregistrée pendant le rythme sinusal et représente l’intervalle de temps nécessaire à la reprise du rythme sinusal après la fin de la suppression de l’overdrive. Ensuite, identifiez l’apparition de l’épisode de fibrillation auriculaire défini comme la présence de trois battements supraventriculaires consécutifs, irréguliers, avec des ondes P absentes ou remplacées par de petites ondes F déformées.
Pour les rats du groupe simulé, après avoir inséré le cathéter dans la cavité buccale, maintenez le cathéter en position pendant 18 minutes sans appliquer de stimulation électrique, tout en enregistrant en continu l’ECG de surface. Le premier jour de la stimulation, 80% des rats qui ont reçu une stimulation électrique ont présenté des épisodes de fibrillation auriculaire Sur les 164 cycles de stimulation appliqués, 42 ont été suivis d’épisodes de fibrillation auriculaire. Au cours des 10 jours de stimulation, en moyenne, 15,6 épisodes de fibrillation auriculaire ont été efficacement induits chez tous les animaux.
Sur l’ensemble des cycles de stimulation appliqués, 20% ont été suivis d’une fibrillation auriculaire et 41 épisodes ont duré plus de 600 secondes. Pour les épisodes d’une durée inférieure à 600 secondes, la durée moyenne était de 40,12 secondes. La technique actuelle est relativement facile à reproduire et aucune formation particulière n’est requise pour le personnel de laboratoire qui travaille régulièrement avec des modèles animaux.
Après cette procédure, un enregistrement ECG continu à l’aide d’un dispositif de télémétrie peut être effectué pour évaluer les épisodes spontanés de fibrillation auriculaire et la variabilité de la fréquence cardiaque.
