这项工作是由局科技与Reasearch核心资金（JEC到）的支持。

这项研究得到批准的机构审查委员会（NUS-IRB 10-250）。 1.分离外周血单个核细胞（PBMC中） <ol><li> 试剂的制备 <ol><li>制备的PBS / EDTA:磷酸盐缓冲盐水溶液（PBS）中，并补充有2mM乙二胺四乙酸（EDTA）。消毒通过0.2微米的过滤该溶液通过过滤。注意存储的PBS / EDTA，在4℃，使用前温热至室温。 </li><li>制备染色缓冲液:磷酸盐缓冲盐水溶液（PBS）中，用2％胎牛血清（FBS）补充，10毫4-（2-羟乙基）-1-哌嗪乙磺酸（HEPES）和2mM乙二胺四乙酸（EDTA）。消毒通过0.2微米的过滤该溶液通过过滤。 </li></ol></li><li> 从血液锥采集血液 注意:血液锥体包含板后收集白色血细胞成分letpheresis出院。如果血液在肝素或EDTA试管收集，在1稀释血液用PBS:1的比例，并进行到步骤1.3;如果接收到白膜层，稀释用PBS捉鬼外套在1:2的比例并继续执行步骤1.3。 <ol><li>切割锥体的两端，以允许血液流出到50毫升管中。注意，锥形，通常含有10毫升血液。 </li><li>使用含有30毫升的PBS / EDTA至洗锥体，并收集在50ml管中的钝端的注射器。 </li><li>用PBS / EDTA进一步稀释血液至80ml的终体积。 </li></ol></li><li> 通过密度离心 16 外周血单个核细胞的分离 <ol><li>分装15毫升菲各4新鲜的50毫升管。 </li><li>用25毫升血清吸管给在菲层加20毫升稀释血液。请留意以45°角持有50毫升管，并小心不打扰相间。 </li><li>离心在805 xg离心管而不制动器30分钟，20℃。 </li><li>去除等离子层，并收集外周血单个核细胞躺在只是一个巴斯德吸管等离子层以下的环。外周血单个核细胞结合四管成两个50毫升管。注意避免收集的PBMC下方的透明层。 </li><li>添加的PBS / EDTA，以每PBMC中的管和离心机为50ml终体积在548 xg离心与制动器10分钟，20℃。 </li><li>吸上清，重悬沉淀在每个管用25ml染色缓冲液中，合并成一个50ml管中。 </li><li>离心367 XG带刹车5分钟，4℃。 </li><li>吸去上清液，并用10毫升染色缓冲液重悬沉淀。 </li></ol></li></ol> 2.单核细胞富集磁选17 <ol><li> 确定细胞数 <ol><li>采取20微升的PBMC细胞悬浮液，并用20微升台盼蓝的混合计数用流式细胞仪的活细胞的数目。 </li><li>在367 XG带刹车离心细胞悬液为10分钟，4℃。 </li><li>吸去上清液完全重悬细胞沉淀到每80微升染色缓冲液10 7个细胞的浓度。 </li></ol></li><li> 磁标记 <ol><li>加入20μlCD14微珠每10 7个细胞，拌匀孵育在2 15分钟- 8°C。 </li><li>通过加入1ml每10 7个细胞染色缓冲液并离心以367 xg离心与制动器10分钟，4℃洗涤细胞。 </li><li>在每50μl染色缓冲液10 7个细胞的浓度吸上清完全重悬细胞沉淀。 </li></ol></li><li> 磁选 <ol><li>最多2×10 8个细胞的使用中等大小列。 注意:选择一个适当的列和分离器根据总细胞数和在数据表中，建议CD14 +细胞的数目。 </li><li>将列在磁场Ø发适当隔板和通过用500μl染色缓冲液漂洗制备柱。 </li><li>吸管细胞悬液到柱上，收集穿过用15毫升管列未标记细胞。 </li><li>柱下更换新的15ml试管并用500μl染色缓冲液洗柱3次。确保列水库增加洗涤之间新的染色缓冲区之前空。 </li><li>从分离器中取出柱，并将其放置在一个新的15ml试管。 </li><li>吸管1毫升染色缓冲液上柱。立即用力推动柱塞（在试剂盒中提供）到柱冲洗掉磁标记的细胞。 </li><li>使用一个新的列中的洗脱级分，以增加CD14 +细胞的纯度，重复步骤2.3.2至2.3.6。需要注意的是珠将被从细胞中自动培养步骤3.2中释放出来。 </li></ol></li></ol>树突状细胞分化为不同的激活小号tates <ol><li> 试剂的制备（内毒素水平必须在所有试剂小于0.1 EU / ml）的 <ol><li>制备细胞培养基:RPMI 1640补充有10％胎牛血清（FBS），1％非必需氨基酸（NEAA）和0.05毫摩尔2-巯基乙醇（2ME）。消毒通过0.2微米的过滤该溶液通过过滤。 </li><li>制备细胞因子:重组的IL-4和GM-CSF中的细胞培养级水中的0.25毫克/ mL的浓度分别在无菌条件下。分装成细胞因子200μl的离心管中，并储存于-80℃。 </li><li>准备维生素D3的股票:在重组细胞培养级水维生素D3，以在无菌条件下100毫米的浓度。分装维生素D3成的1.5 ml离心管中并储存在-20°C。 </li><li>准备地塞米松的股票:在重组细胞培养级水地塞米松在无菌条件下10毫米的浓度。分装dexamethasone成的1.5 ml离心管中并储存在-20°C。 </li><li>制备脂多糖:重组在细胞培养级水脂多糖（LPS），以在无菌条件下的1毫克/毫升的浓度。分装成LPS的1.5 ml离心管中并储存在-20°C。 </li></ol></li><li> 产生不同的moDCs <ol><li>种子4套CD14 +单核细胞的在0.3浓度- 0.5×10 6 / ml的补充有200纳克/毫升GM-CSF的和在6孔板200纳克/毫升的IL-4的细胞培养基。注意，这是第0天和介质在每个6孔体积为2毫升</li><li>孵育在组织培养箱细胞在37℃，5％的CO 2。 </li><li>从培养在第4天，离心，在300 xg离心除去850微升培养基的5分钟，4℃。吸去上清液，并在1ml含有（200 ng / ml的GM-CSF的200纳克/毫升的IL-4）2×细胞培养基重悬沉淀。收藏此细胞混合物回向培养。注意添加了对GM-CSF和IL-4的2倍浓度时，1ml培养基中加入回文化将成为1倍。 </li><li>加入1微升维生素D3的股票和每毫升中的地塞米松股票1μl的两集的第5天，以产生耐受性moDCs。注意，维生素D3的最终浓度为100nM的地塞米松为10nm;另外的GM-CSF和IL-4的不需要在第5天。 </li><li> GM-CSF的200纳克/毫升和200纳克/毫升的IL-4添加到所有集合上6天。 </li><li> 1微克/毫升的LPS添加到具有唯一的GM-CSF和IL-4在第6天处理以产生成熟moDCs的集之一。 </li><li> 1微克/毫升的LPS添加到一组致耐受性moDCs中的第6天以产生脂多糖致耐受性moDCs。 </li><li>用PBS，EDTA冲洗培养皿流式细胞仪或其他研究收获了不同类型的7天moDCs的。请注意，只有非粘附细胞收获。注意到因CD14 + monoc这一比例产量对于未成熟moDCs，成熟moDCs，致耐受性moDCs和LPS-致耐受性树突ytes分别约90％，50％，60％和60％和献血者和FBS很多之间变化。 </li></ol></li></ol> 4.流式细胞仪<ol><li> 在moDCs细胞表面标志特征 <ol><li>吹打分离从培养皿中的细胞。洗细胞一次，用PBS / EDTA和悬浮细胞在每50μl染色缓冲液5×10 5个细胞的浓度在1.5 ml离心管。 </li><li>孵育0.5×10 6个细胞的等分试样用PerCP缀合HLADR（1:100），PE缀合的CD80（1:50），PE缀合的CD83（1点25分），PE缀合的CD86（1:50），APC-共轭的CD11c（1:50），PE缀合的CD14（1:50）和PE缀合的BDCA3（1:50）和APC缀合的ILT3（1点25分）在黑暗中在4℃下30分钟。同种型匹配PerCP缀合的单克隆抗体（1:20），PE缀合的单克隆抗体（1点11），APC标记的单克隆抗体（1点11）将作为阴性对照。 </li><li>检测用流式细胞仪18的流动表面标志物的表达水平。 </li></ol></li><li> moDCs的细胞线粒体膜电位分析 <ol><li>由每冻干红CMXRos 50微克加入94.1微升二甲基亚砜（DMSO）的制备1mM的红色氯-X-rosamine（CMXRos）的储备溶液。 </li><li>在15毫升试管孵育2×10 5 moDCs用100nM红色CMXRos在1ml Hank氏平衡盐溶液（HBSS）中30分钟的37℃。 </li><li> 2毫升的PBS / EDTA添加到细胞和离心机在300×g离心5分钟，室温。重复2次。吸去上清液，并在300μl的PBS中，EDTA 2％FCS的流式细胞仪分析悬浮细胞沉淀。请留意用PE通道分析红CMXRos信号。 </li></ol></li><li> T-细胞的标志物表征 <ol><li>孵育50微升的1.2×10 6 CFSE标记的异基因CD4 + T细胞（从生成步骤5.6）与PerCP缀合的CD3（1:200），PE / Cy7的共轭的CD4（1:400）和APC / Cy7的缀合的CD25（1:在黑暗中在4℃，30分钟100）。使用在黑暗中与Foxp3的-的Alexa Fluor 647（1:50）商业试剂盒在室温下1小时染色T细胞。 </li></ol></li></ol> 5.同种异体反应研究<ol><li>通过加入18微升的DMSO至冻干的CFSE制备羧基琥珀酰亚胺酯（CFSE）的5mM储备溶液，按照制造商的协议。 </li><li> 净化从PBMC中的CD4 + T-细胞 <ol><li>通过采取20微升PBMC细胞悬浮液的测定细胞数，并用20微升台盼蓝的混合计数使用血细胞计数活细胞的数量。 </li><li>在367 XG与制动器10分钟，4℃离心细胞悬浮液。 </li><li>在5×10 7个细胞每1ml染色缓冲液的浓度吸上清完全重悬细胞沉淀在5ml的POLYSTY刘若英管。 </li><li>补充人体CD4 + T细胞富集的鸡尾酒在50微升/毫升细胞。拌匀并在室温下孵育（15 - 25℃）10分钟。 </li><li>涡旋磁性颗粒30秒，并在100微升/毫升的细胞添加的磁性粒子。拌匀并在室温下孵育5分钟。 </li><li>染色缓冲液至细胞悬浮液添加到2.5毫升总体积。 3次 - 轻轻吹打上下2混合在管内的细胞。放置管进入磁体和孵育5分钟。 </li><li>倒置磁铁用管，倒出悬浮液（含有T细胞）到一个新的5毫升聚苯乙烯管中。 </li></ol></li><li>确定细胞数，孵育1.2×10 6个 CD4 + T细胞用5μM的CFSE在1ml PBS中20分钟，在37℃，避光。 </li><li>添加五倍的细胞培养基（根据步骤3.1.1的方法制备）与细胞的原始染色体积并孵育5分钟。 </li><li> CentrifUGE在300×g离心5分钟，4℃，重悬沉淀在细胞培养基中以2×10 5个每75微升的浓度。 </li><li>添加75微升2×10 5个 CFSE标记的CD4 + T细胞对含75微升细胞培养基与0每MODC培养，2.5×10 3，5×10 3，10×10 3，20×10 3和40×10 3 moDCs在96孔U型底平板。培养在组织培养培养箱6天在37℃，5％的CO 2。 </li><li>吹打CD4 + T细胞分化成15ml试管并离心，在300×g离心5分钟，4℃的收获。收集细胞因子分析，重悬细胞沉淀上清在2ml的PBS / EDTA和离心机在300×g离心在4℃下5分钟。 </li></ol> 6.细胞因子分析19 <ol><li>如步骤5.5中所述收集来自同种异体反应研究上清液。 </li><li> 试剂的制备人细胞因子/趋化因子Ë磁板分析<ol><li>为了制备混合的对珠粒单独小瓶抗体固定化珠瓶（包括在试剂盒），1分钟涡流。从各抗体珠子小瓶到混合瓶（包括在kit中）添加60微升并提请3毫升与珠稀释液的最终体积（提供）。 </li><li>对于制剂的质量控制，重建质量控制1和质量控制2（包括在kit中）与250微升去离子水。 </li><li>为制备洗涤缓冲液中，取30 ml高10倍的洗涤缓冲液（含在试剂盒中）具有270毫升去离子水。 </li><li>用于制备人细胞因子标准的，重构用250微升去离子水，得到10,000微克/毫升浓度的人细胞因子标准（包括在kit中）。 <ol><li>在1.5ml微量离心管中加入50微升10,000微克/毫升的人细胞因子标准200微升测定缓冲液（在试剂盒中提供的），以使2000微克/毫升的工作标准。转移50微升在1.5ml微量离心管2000微克/毫升的人细胞因子标准200微升测定缓冲液（在试剂盒中提供的），以使400微克/毫升的工作标准。 </li><li>转印在1.5ml微量离心管中的400微克/毫升的人细胞因子标准200微升测定缓冲液（在试剂盒中提供）的50微升，使80微克/毫升的工作标准。转印在1.5ml微量离心管中的80微克/毫升的人细胞因子标准200微升测定缓冲液（在试剂盒中提供）的50微升，使16微克/毫升的工作标准。 </li><li>转印在1.5ml微量离心管中，以使3.2微克/毫升的工作标准的16微克/毫升的人细胞因子标准200微升测定缓冲液（在试剂盒中提供）的50微升。 0微克/毫升的工作标准仅具有200在1.5ml微量离心管微升测定缓冲液中。 </li></ol></li></ol></li><li>预湿过滤板（包括在kit中）吹打200微升测定缓冲液（提供）到过滤器的各孔盘子。密封，并放置在过滤板在板振荡器上在室温下10分钟。 </li><li>吸分析缓冲液，加入25微升每个标准或质量控制到合适的井。 </li><li>添加25微升的细胞培养基的背景，标准和对照孔（根据步骤3.1.1制备）。 </li><li>添加25微升测定缓冲液中的样品孔中，并添加25微升样品放入合适的样品孔中。 </li><li>涡旋含有抗体固定化珠的混合瓶，并添加25微升的混合珠每个孔中。密封板并在4℃下在板振荡器上搅拌孵育过夜。 </li><li>吸液和洗涤板2次，加入200μl/孔洗涤缓冲液和抽吸流体。 </li><li>加入25微升检测抗体（提供）到每口井。密封并在板振荡器上搅拌孵育在室温下1小时。 </li><li>加入链霉藻红蛋白的25微升（省被提供的），以每孔含有25μl的抗体的检测。密封并在板振荡器上搅拌孵育在室温下30分钟。 </li><li>如步骤6.8中所述吸液和洗涤板。 </li><li>在板振荡器上添加150微升/孔护套的流体到所有孔中，重悬珠子5分钟。 </li><li>检测的使用3D系统20珠的荧光强度。使用五参数日志逻辑曲线拟合方法用于样品21计算细胞因子/趋化因子的浓度分析的中位荧光强度数据。 </li></ol> 7.实时耗氧率（OCR）和细胞外酸化速率（ECAR）的测量<ol><li> 试剂的制备/材料 <ol><li>制备的OCR培养基:补充有25毫米的葡萄糖和1mM丙酮酸钠（pH为7.35）测定培养基。消毒通过0.2微米的过滤该溶液通过过滤。注意到，这个媒体是公关epared没有FBS因为FBS成分非常复杂，从一个很多很多花药变化。 </li><li>制备ECAR介质:基础培养基补充了2mM L-谷氨酰胺（pH值7.35）。消毒通过0.2微米的过滤该溶液通过过滤。需注意，该介质被无碳酸氢盐，葡萄糖，丙酮酸和FBS制备。注意，FBS具有缓冲能力，并且将与ECAR读干扰。 </li><li>准备为化合物OCR测量:重悬寡630微升OCR中，使100微米的原液，用OCR中稀释至16微米的工作浓度。悬浮羰基氰化物4-（三氟甲氧基）苯腙（FCCP）与720微升OCR中，使100微米的原液，用OCR中稀释至4.5微米的工作浓度。鱼藤酮悬浮/ 540微升OCR介质的抗霉素A，以50微米的原液，用OCR中稀释至10μm工作浓度。 </li><li>准备对于ECAR测量化合物:悬浮葡萄糖用3ml ECAR介质，使100毫米原液稀释至80毫米的工作浓度。重悬寡用720微升ECAR介质，使100微米的原液稀释至18毫米的工作浓度。悬浮2-脱氧-D-葡萄糖用1.5ml ECAR介质，以使1000毫米原液。 </li><li>吸管200微升校准的到盒并储存在37℃的各孔用测量之前没有CO 2的一天。 </li></ol></li><li> 实时测量OCR <ol><li>收获moDCs和在60×10 3每150微升的OCR介质的浓度重悬每种类型中的OCR介质moDCs的。 </li><li>种子60×10 3个细胞/孔在聚D-赖氨酸包被的96孔平底板中，在37℃下在非CO 2培养箱1小时孵育。需注意使用50微升的50ng / ml的聚-D-赖氨酸涂覆的板1小时并用洗涤无菌水。保持板干燥，在室温下在使用前2小时。 </li><li>吸取25微升OCR介质进入所有井注入口;包含所有井注入B口寡16μm的25微升OCR介质;含注入端口C（FCCP）为4.5μm的所有水井和25个含10毫米鱼藤酮/在所有孔注射D口抗霉素A微升OCR媒体25微升OCR网上平台。请注意，寡最后阱浓度为2微米，FCCP为0.5μm和鱼藤酮/抗霉素A为1微米。 </li><li>将板进入细胞外流量分析仪和连续四个阶段同时运行所有moDCs一个完整的OCR研究:基础呼吸，线粒体复合物V抑制（从B口药物注射后），最大呼吸感应（从A口剂注射后）（后从C口药物注射）和电子传递链的抑制（从D口药）22后。注意到，有3Çycles在注射和测量之间6分钟间隔之间。 </li></ol></li><li> 实时测量ECAR <ol><li>收获moDCs和在60×10 3每150微升ECAR介质的浓度重悬每种类型ECAR介质moDCs的。 </li><li>种子6×10 4个细胞/孔在聚D-赖氨酸包被的96孔平底板中，在37℃下在非CO 2培养箱1小时孵育。 </li><li>吸取25微升ECAR介质进入所有井注入口;含有葡萄糖在所有孔中喷射口B的10mM的25微升ECAR介质;包含所有孔18微米的注射端口C的寡和25含有1000毫在注射端口D的2-脱氧-D-葡萄糖对所有孔微升的OCR介质25微升ECAR介质。请注意，对于葡萄糖的最后阱浓度为10μM，寡为2μm和2-脱氧-D-葡萄糖为100mM。 </li><li>将板进入细胞外流量分析仪和运行完整ECAR研究，在连续的四个阶段，同时所有moDCs:基础呼吸（从A口剂注射后），糖酵解感应（从B口药物注射后），最大糖酵解感应和糖酵解抑制（从C口药物注射后）（后从药D口）22。 </li><li>分析使用单向ANOVA与杜克多重比较测试后的统计差异。 </li></ol></li></ol>

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本文介绍了单核细胞不成熟moDCs，耐受性moDCs和成熟moDCs产生的方法。在这个协议中的重要步骤中详细在下面的段落中讨论。要注意的是人外周血用作这个协议和用于处理人血应实行普遍预防起始材料是重要的。虽然在技术上是可行的推导在人中24从骨髓的DC，从外周血中发现的细胞， 在体外 DC分化优选由于相比骨髓外周血的可用性。间在外周血中发现的细胞，造血CD34 +干细胞和单核细胞通常用于在体外生成DC的。造血CD34 +干细胞是与GM-CSF和TNF-α培养，以得到其然后进一步分化成朗格汉斯的CD1a +和CD14 +亚群样细胞和树突状细胞。相反地​​，单核细胞是在GM-CSF和IL-4中培养，以产生未成熟moDCs。几个协议用于从外周血单核细胞的富集;例如，通过加入塑料盘中，淘析和分离试剂盒25,26的粘附协议的优点是对细胞损害最小和相对成本效益但细胞纯度可能受到影响。和一个额外的步骤是必需的，以分离细胞用于进一步的实验。淘析是分隔根据它们的大小和密度的细胞的技术。淘洗的优点是细胞活力和单核细胞可容易地用于进一步的实验;然而这种技术是通过淘析器的可用性和无法分离具有相似沉淀参数细胞不同群体（T细胞和单核细胞）的限制。市售提取试剂盒采用磁珠来无论是正面还是选择单核细胞人口负选择。一些协议使用的是负向选择单核细胞隔离偏置为孤立的单核细胞保持"不变"（不标记或微珠的约束）。在这个协议中，CD14珠用于从PBMC中阳性选择人单核细胞。 CD14缺乏胞质域和CD14抗体的结合不会触发的信号转导。此外，该微珠将从培养后的单核细胞中分离，因此不会妨碍分化过程。此外，CD14的强烈大部分的单核细胞和弱对中性粒细胞和某些骨髓树突状细胞，因此这在更高的细胞纯度比其他方法17隔离结果的方法来表示。 血单核细胞可以分化成树突状或巨​​噬细胞和单核细胞的命运在很大程度上取决于细胞因子环境。在本文中，通过加入粒细胞巨噬细胞集落刺激因子（GM生成moDCs-CSF）和白细胞介素-4（IL-4）的人外周血单核细胞。 GM-CSF是必需的单核细胞的生存和IL-4上施加巨噬细胞分化的抑制活性;和组合加成的GM-SCSF和IL-4的单核细胞产生相比，个别的细胞因子27未成熟moDCs的比例更高。有迹象表明，通过添加肿瘤坏死因子α（TNF-α），干扰素α（IFN-α）和白细胞介素13（IL-13）到外周血单核细胞28，29，30生成moDCs其他协议。 GM-CSF和IL-4的组合在20世纪90年代进行了优化，现在公认的协议产生分化成免疫原性或耐受性moDCs和极化为Th1，Th2细胞或Th17细胞促进moDCs塑料未成熟DC。 未成熟moDCs通过加入的维生素D3和地塞米松分化为致耐受性moDCs。有几个协议产生耐受性例如树突状，通过核因子-κB（NF-KB）抑制，β连环蛋白活化，维生素D3，地塞米松和雷帕霉素31，32，33，34，35，9，36，37。虽然两者单独维生素D3和地塞米松已经报道以诱导对DC，维生素D3和地塞米松结果在alloproliferation更大抑制当使用各药物比组合的耐受性的效果。因此，用于产生致耐受性DC的现有协议被修改，以维生素D3和地塞米松的组合。这种方法目前正在接受为有治疗效用的人树突状耐受性的典范。同样重要的是要注意，重构维生素D3和地塞米松具有短的保质期。 在这个协议中，脂多糖（LPS）的溶液中加入作为DC成熟诱导剂。未成熟moDCs也可以使用诱导促炎症鸡尾酒成熟:（TNF-α），白细胞介素1β（IL-1β），白细胞介素-6（IL-6）和前列腺素E2）或促炎细胞因子（TNF-α和干扰素γ（IFN-Γ））。促炎性鸡尾酒产生具有高共刺激和迁移功能成熟moDCs但它们产生IL-12的38的相对较低的水平。 TNF-α或IFN-Γ单独是不能诱导稳定树突表型39。 LPS刺激Toll样受体4（TLR4），介导的NF-κB和丝裂原活化蛋白激酶（的MAPKs）的活化来诱导DC成熟。 LPS诱导的DC成熟示出的DC成熟标志物（CD83，CD86，HLA-DR）的上调和还导致生产的IL-12p70的。此外，该步骤可以被进一步修饰以配对TLR3激动剂LPS以产生用于临床癌症疫苗的成熟DCs。在本文中，耐受性的DC被证明是对LPS处理成熟性。这些半成熟树突状都没有免疫原性和不releaSE促炎细胞因子40。 此协议的局限性在于分化过程。这个过程需要从第0天8天的时间这对被改编成高通量分析困难7天。在协议的修改需要缩短分化过程然而，在不同的状态产生高数可行的DC。其次，通过增加细胞因子在这个协议产生的DC和这些细胞因子不支持DC人口的时间长。此外，细胞因子的浓度使用比体内要高得多，并可能会导致不属于生理相同体内的DC通路偏置发展。例如在直流前体的体外培养物已被证明对GM-CSF的，这是不用于体内 41正常DC分化的重要的细胞因子反应。然而，细胞因子刺激可以是基因的有效方法在体外进行实验率高的数字直流。以经受从这个协议来的其他分析，如免疫荧光染色产生的这些细胞，流式细胞仪的能力，异体反应的研究和代谢研究增加了这种方法的有效性。 这些体外的DC作为一个很好的模式，以提高直流发育，成熟和抗原呈递的知识，这是以前难以在体内 DC的罕见数字做。 DC的调节免疫的免疫耐受性与能力，使得他们在对抗癌症和自身免疫性疾病的42，43，44，45疗法有吸引力的候选人。在这个协议中产生免疫原性的DCs可以用来改进对感染性疾病和肿瘤疫苗功效;同时致耐受性树突可用于控制不需要的T细胞应答和防止移植后排斥反应。错综复杂免疫力和耐受性之间的平衡非常依赖于DC的分化状态。 DC分化是受多种信号途径和代谢命运管辖协调蜂窝方案。 DC的不同分化状态的生物能量和生物合成需求不同;例如，相比于在静止状态的DC活化DC需要更有活力的代谢适应生存和迁移是非常重要。要注意的是维生素D3，地塞米松和雷帕霉素为它们诱导耐受性树突能力已知它是重要的，已经描述了以影响直流代谢。在本文中，从不同的分化状态moDCs的能量代谢使用外流量分析仪进行了表征和耐受性moDCs表现出最高的代谢可塑性和LPS诱导的成熟降低这种可塑性。同化代谢支持DCs成熟，而分解代谢的影响耐受性DC功能46。区议会从这个协议产生可用于评估是否改变DC的代谢状态按住键修改在治疗免疫力和宽容。总之，我们提出了一个协议，为研究DC的免疫功能至关重要的代不成熟，耐受性和成熟moDCs的。

DC最初是由保罗·朗格汉斯（朗格汉斯细胞）在十九世纪后期描述的Jolles 1作为引用，并在1973年谁承认他们是专职抗原提呈细胞2特点是拉尔夫斯坦曼和Zanvil科恩。的DC在外周血和在体内，在暴露于外部环境的组织尤其丰富的大多数组织如皮肤（本如朗格汉斯细胞）和在鼻，肺，胃的衬里和肠这使发现他们遇到的外来抗原。未成熟DC具有内吞能力，但相对较低的能力，以刺激T细胞3。未成熟DC表达各种模式识别受体（的PRRs），该捕获病原体相关分子模式（PAMP），或损害相关分子模式（D-AMPS）4。激活危险信号驱动向成熟树突状免疫原性，而自身分子导致T细胞unresponsiveneSS和凋亡5。免疫原性的DC是由MHC分子和共刺激表面分子和他们的总理幼稚T细胞的能力6,7 ​​的上调为特征。 未成熟DC也可以朝向Treg细胞诱导或致耐受性状态中响应于维生素D3代谢物1α，25（O）2 D 3和某些免疫抑制剂象白细胞介素-10（IL-10），地塞米松和雷帕霉素8-9成熟。致耐受性树突由它们含有表面受体和配体免疫受体基于酪氨酸的抑制基序（ITIMs）的表达为特征。含ILT家族成员，ILT3和ILT4的耐受性树突状ITIMs的信号转导抑制alloproliferation和驱动器的Foxp3 + Treg细胞膨胀10,11。耐受性DC的这些独特的性质导致它们在体内的深刻效力，即诱导持久的耐受移植异体移植物和suppr的能力ESS自身免疫疾病的发展。致耐受性树突可以因此被看作其中在免疫激活的抑制功能成熟偏振光的DC的子类型。 目前，有树突状细胞在人外周血的两种通用子集:浆树突和骨髓DC 12。循环DC是罕见构成对人体血液中的白细胞的小于2％，这造成了困难的DC适当数量的分离研究其免疫调节功能。为了克服这个问题，单核细胞分化的DC用作树突细胞功能的研究的体外模型。相比在体内的DC 这些体外 DC具有相似的受体和功能。 体内的DC和体外产生的单核细胞衍生的DC（moDCs）详细的比较是由其他实验室13，14，15的影响。它也有报道说moDCs和CD1C +的DC分别相当于在抗原提呈和诱导T细胞的功能15。 在本文中，我们描述了产生自外周血单核细胞的未成熟moDCs，然后将它们分化成免疫原性和耐受性DC的方法。这些单核细胞来源的树突细胞（moDCs）由它们的表面标记，细胞因子分布，免疫调节功能和代谢状态，其特征。免疫原性和耐受性的树突细胞产生其导致要么同种异体T细胞或调节性T细胞的膨胀不同的细胞因子。在本文中，细胞因子分析与采用多重技术系统进行。细胞的生长培养基中培养用抗体固定化颜色编码珠和在一个紧凑的分析器读取。 DC的代谢状态使用测量氧气消耗速率，细胞呼吸的一个指标，和细胞外酸化率反映糖酵解外通量分析仪分析通量树突状细胞。这些生物能学率的测量提供跟踪细胞代谢这是在树突状细胞的发育和功能的重要变化的手段。

<table><tbody><tr><td>Ficoll</td><td>GE Healthcare</td><td>17-1440-03</td><td>PBMC isolation</td></tr><tr><td>Syringe</td><td>Becton, Dickinson</td><td>302832</td><td>PBMC isolation</td></tr><tr><td>1.5 ml centrifuge tube</td><td>Axygen</td><td>MCT-150-C</td><td>PBMC isolation</td></tr><tr><td>15 ml falcon tube</td><td>Falcon</td><td>352096</td><td>PBMC isolation</td></tr><tr><td>50 ml falcon tube</td><td>Falcon</td><td>352070</td><td>PBMC isolation</td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>Eppendorf</td><td>5810R</td><td>PBMC isolation</td></tr><tr><td>0.2 &amp;micro;m filter</td><td>Sartorius stedim biotech</td><td>17597</td><td>PBMC isolation</td></tr><tr><td>MACs kit</td><td>Miltenyi biotec</td><td>130-042-201</td><td>Monocyte enrichment</td></tr><tr><td>MiniMACS Separator</td><td>Miltenyi biotec</td><td>130-042-102</td><td>Monocyte enrichment</td></tr><tr><td>Cell culture grade water</td><td>Invitrogen, Life Technologies</td><td></td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>RPMI</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>11875-093</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>FBS</td><td>Hyclone</td><td>SH30070103</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>Penicillin-streptomycin</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>15140</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>Phosphate&lt;br/&gt; Buffered Saline</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>10010-031</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>NEAA</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>11140-040</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>15575</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>15630-080</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>Sodium Pyruvate</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>11360-070</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>GM-CSF</td><td>Miltenyi biotec</td><td>130-093-868</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>IL-4</td><td>Miltenyi biotec</td><td>130-093-924</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>Vitamin D3</td><td>Sigma</td><td>D1530</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>Dexamethasone</td><td>Sigma</td><td>D2915</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>LPS</td><td>Sigma</td><td>l2755</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>trypan blue</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>15250-061</td><td>Cell culture</td></tr><tr><td>PerCP-conjugated HLADR&amp;nbsp;</td><td>BioLegend</td><td>307628</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>PE-conjugated CD80</td><td>BD Biosciences</td><td>557227</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>PE-conjugated CD83&amp;nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>556855</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>PE-conjugated CD86&amp;nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>555665</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>APC-conjugated CD11c</td><td>BD Biosciences</td><td>340544</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>PE-conjugated CD14&amp;nbsp;</td><td>Miltenyi biotec</td><td>130-091-242</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>PE-conjugated BDCA3&amp;nbsp;</td><td>Miltenyi biotec</td><td>130-090-514</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>APC-conjugated ILT3&amp;nbsp;</td><td>eBioscience</td><td>12-5139-73</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>Isotype matched&lt;br/&gt; PerCP- conjugated Mab</td><td>BioLegend</td><td>400250</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>Isotype matched&lt;br/&gt; PE- conjugated Mab</td><td>Miltenyi biotec</td><td>130-091-835</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>Isotype matched&lt;br/&gt; APC- conjugated Mab</td><td>Miltenyi biotec</td><td>130-091-836</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>BD LSR II Flow Cytometer</td><td>BD Pharmingen</td><td>BD LSR II&amp;nbsp;</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>cytofix/cytoperm</td><td>BD Biosciences</td><td>554714</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>APC/CY7-conjugated CD25</td><td>BD pharmingen</td><td>557753</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>PE/CY7-conjugated CD4</td><td>Biolegend</td><td>300512</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>PerCP-conjugated CD3</td><td>Biolegend</td><td>300428</td><td>Cytometry</td></tr><tr><td>EasySep Human CD4+ T cell enrichment kit</td><td>STEMCELL Technologies</td><td>19052</td><td>Alloreaction study</td></tr><tr><td>EasySep magnet&amp;nbsp;</td><td>STEMCELL Technologies</td><td>18000</td><td>Alloreaction study</td></tr><tr><td>Cell Trace CFSE cell proliferation kit</td><td>Molecular probes</td><td>C34554</td><td>Alloreaction study</td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>14025092</td><td>Alloreaction study</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647-conjugated FoxP3</td><td>BD Biosciences</td><td>560889</td><td></td></tr><tr><td>Milliplex MAP Human&lt;br/&gt; Cytokine/Chemokine&lt;br/&gt; magnetic bead panel</td><td>Millipore</td><td>HCYTOMAG-60K</td><td>Cytokine analysis</td></tr><tr><td>5 ml Polystyrene tube</td><td>Falcon</td><td>352058</td><td>Cytokine analysis</td></tr><tr><td>Luminex Sheath Fluid&amp;nbsp;</td><td>Millipore</td><td>SHEATHFLUID</td><td>Cytokine analysis</td></tr><tr><td>FLEXMAP 3D system with xPONENT software</td><td>Luminex Corporation</td><td>FLEXMAP 3D</td><td>Cytokine analysis</td></tr><tr><td>MitoTracker Red CMXRos</td><td>Cell Signalling</td><td>9082</td><td>Mitochondrial activity</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D2650</td><td>Mitochondrial activity</td></tr><tr><td>XF Assay Medium (OCR)</td><td>Seahorse Bioscience</td><td>102352-000</td><td>Metabolic adaptation</td></tr><tr><td>Glucose&amp;nbsp;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G8769</td><td>Metabolic adaptation</td></tr><tr><td>XF Base Medium (ECAR)</td><td>Seahorse Bioscience</td><td>102353-100</td><td>Metabolic adaptation</td></tr><tr><td>L-glutamine</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>25030-081</td><td>Metabolic adaptation</td></tr><tr><td>Calibrant</td><td>Seahorse Bioscience</td><td>100840-000&amp;nbsp;</td><td>Metabolic adaptation</td></tr><tr><td>XF Cell Mito Stress kit</td><td>Seahorse Bioscience</td><td>103015-100</td><td>Metabolic adaptation</td></tr><tr><td>XF Glycolysis Stress kit</td><td>Seahorse Bioscience</td><td>103020-100</td><td>Metabolic adaptation</td></tr><tr><td>Seahorse&amp;nbsp;</td><td>Seahorse Bioscience</td><td>XFe96</td><td>Metabolic adaptation</td></tr></tbody></table>

generation of immature, mature and tolerogenic dendritic cells with differing metabolic phenotypes

免疫反应的结果，从所述抗原的非特异性先天免疫系统和抗原特异性适应性免疫系统之间的复杂的相互作用。免疫系统是在维持耐受自身分子和迅速反应的病原体的恒定的平衡。树突细胞（DC）是先天免疫系统连结至适应性免疫系统和平衡自我和非自我之间的适应性反应有力专业的抗原呈递细胞。根据不同的成熟信号，未成熟树突状细胞可被选择性地刺激分化成免疫原性或耐受性的DC。免疫原性树突状细胞的抗原特异性T细胞克隆扩增提供扩散信号;同时致耐受性树突细胞调节由抗原特异性T细胞缺失或调节性T细胞的克隆扩增公差。由于这种独特的属性，树突细胞是高度为癌症和自身免疫DISE作为治疗剂追捧ASES。树突细胞可装载在体外特异性抗原和注入人体装入一个特定的免疫应答二者的免疫原性和耐受性。这项工作提出从在表面标志物表达，功能和代谢表型差异的单核细胞，单核细胞成熟树突状细胞（moDCs），耐受性和成熟moDCs 体外 ，产生一种手段。

单核细胞纯化和树突状细胞分化 单核细胞由外周血（ 图1A）密度离心从外周血纯化，随后CD14 +在GM-CSF和IL-4的存在下，得到未成熟树突状细胞的阳性选择磁分离（ 图1B）和培养在完全培养基（ 图2A）。维生素D3和地塞米松后GM-CSF和IL-4的添加导致未成熟moDCs成致耐受性moDCs（ 图2B）的分化。加入脂多糖诱导未成熟moDCs成熟成熟moDCs（ 图2C）和致耐受性moDCs用LPS刺激来验证到成熟（ 图2D）的阻力。在这项工作中使用的血液样品从与先前的健康供体知情得到同意。 MODC表征 表面标志特征流式细胞仪 的直流表面标记分析表明，成熟moDCs表达相比LPS处理耐受性moDCs，致耐受性moDCs和未成熟moDCs（ 图3）成熟标记的HLA-DR，CD83和CD86的水平最高。这些结果表明，相比于以下LPS刺激未成熟moDCs致耐受性moDCs分别到成熟抗性。此外，LPS治疗耐受性moDCs和耐受性moDCs显示相比，未成熟和成熟moDCs CD14，BDCA3（CD141）和免疫球蛋白样成绩单（ILT）3的表达增加。我们在这里产生的耐受性moDCs与以前的报告相一致23。 moDCs的功能特性 诱导成熟moDCs成为免疫原性，并释放促进CD4 + T细胞的增殖的细胞因子。我们通过测定共培养的T细胞的增殖评估了不同的MoDC亚型的免疫原性。成熟moDCs相比致耐受性moDCs是弱免疫原性，如由CD4 + T细胞的低alloproliferation（ 图4A）。致耐受性moDCs由其低的IFN-Γ，低IL-12p40的，和高的IL-10细胞因子的产生在同种异体反应共培养的CD4 + T细胞（ 图4B），其特征。此外，成熟moDCs的增加致耐受性moDCs数量共培养诱导allospecific CD4 + T细胞增加的CD25 高 Foxp3 +调节性T细胞（ 图4C）的频率。 <p类="jove_content"FO:保together.within页="1"&gt; 线粒体活性分析 红色CMXRos用于反映线粒体活性来分析在moDCs线粒体膜电位水平。观察致耐受性moDCs与其他的MoDC分化亚型（ 图5A）相比，具有更高的线粒体活性。接着，线粒体氧消耗（OCR）的速率被评估为使用生物分析仪的不同的MoDC亚型。 OCR测量允许高分辨率见解代谢分布，提供信息，包括但不限于基础呼吸，备用呼吸容量，质子泄漏和非线粒体呼吸。 OCR的测量提供，以评估细胞对应激反应的能力的装置。将细胞通过加入相继三个不同的化合物代谢扰动。在第一次注射是01igomycin（ATP耦合器），其抑制电子传递链（ETC）的络合物V时，抑制ATP的合成。此步骤区分消耗ATP合成的氧的百分比和氧的消耗跨线粒体膜克服质子泄漏的百分比。在第二次注射是FCCP（ETC加速器），通过在线粒体膜，而不是通过复杂的五线粒体膜电位的崩溃导致能量和氧的快速消耗的质子通道输送氢离子破坏ATP合成，无新一代的ATP。 FCCP治疗可用于计算细胞的备用呼吸容量。胁迫条件下的备用产能的呼吸是维持细胞生存的关键。这种能力是由几个因素，包括基片的可用性和功能的能力涉及的等酶的测定在第三次注射是鱼藤酮，一个器Comp1的组合恩I抑制剂，和抗霉素A，一个复合物III抑制剂。这种组合关闭线粒体呼吸和OCR被观察到降低线粒体功能受损（ 图5C）的结果。致耐受性moDCs显示较高的基础的OCR水平比成熟moDCs（ 图5D）。此外，致耐受性，脂多糖致耐受性，和未成熟moDCs表现出与成熟moDCs（ 图5E）相比增加备用呼吸的能力。 moDCs代谢表征 因为乳酸和质 ​​子从细胞糖酵解过程中释放，我们通过进行细胞外酸化（ECAR）（ 图6B）的速率的实时分析来分析moDCs的糖酵解活性。在葡萄糖的存在下，所有moDCs的糖酵解速率增加与基础阶段相比，具有成熟moDCs呈现更高的糖酵解速度比未成熟moDCs（ 图6D）。用LPS处理的moDCs（ 图6B）相比，耐受性和未成熟moDCs表现出更高的最大糖酵解（通过在葡萄糖存在下寡诱导）。耐受性和不成熟的moDCs的糖酵解能力比成熟moDCs（ 图6E）高。相反，他们的高糖酵解率，糖酵解储备是成熟moDCs（ 图 6F）的最低值。 <img alt="图1" src="/files/ftp_upload/54128/54128fig1.jpg" /> 图1:从外周血单核细胞纯化 （A）将25ml血液小心离心前铺在15毫升每50毫升管菲的。的PBMC都集中在密度离心后下等离子体的层。（B）中的PBMC一起培养与那些连词微珠<html> ugated单克隆人CD14抗体（同型:小鼠IgG2a），再装上这是摆在一个分离器的磁场分离CD14 +单核细胞一列<a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/54128/54128fig1large.jpg" target="_blank">，请点击此处查看该图的放大版本。</a> <img alt="图2" src="/files/ftp_upload/54128/54128fig2.jpg" /> 图2:moDCs形态表征。 （A）的 200 ng / ml的GM-CSF和IL-4加入到在第0天，第4和第6纯化的CD14 +单核细胞，以产生未成熟moDCs;和（B）刺激的用100nM维生素D3和第5天为10nM地塞米松的额外步骤产生致耐受性moDCs。未成熟moDCs和耐受性moDCs与6日1微克/毫升LPS刺激生成（C）成熟moDCs和（D）LPS-耐受性moDCs。TTPS://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/54128/54128fig2large.jpg"目标="_空白"&gt;点击此处查看该图的放大版本。 <img alt="图3" src="/files/ftp_upload/54128/54128fig3.jpg" /> 图3:通过流式细胞术表面标记的HLA-DR，CD80，CD83，CD86，CD11，CD14，BDCA3和LT3在致 ​​耐受性的表达水平（绿），脂多糖致耐受性（黑色），未成熟的（红色） 表面标记表征成熟（蓝色）moDCs。同种型对照以灰色显示。对于每种细胞类型个人直方图绘制与抗荧光团的强度和重叠的X轴日志Y轴细胞计数。所有直方图代表四个独立的实验。 10.4049 / jimmunol.1303316（2015年6月1日）:该图已经从免疫学杂志 194（11），5174-5186，DOI修改。转载和版权许可转载版权所有2015年的美国协会免疫学家，公司<a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/54128/54128fig3large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a> <img alt="图4" src="/files/ftp_upload/54128/54128fig4.jpg" /> 图4:moDCs的功能特性。 （A）和致耐受性的越来越多的诱导共培养的CD4 + T-细胞的alloproliferation频率的定量（TOL;绿色），脂多糖致耐受性（L-TOL;黑色），未成熟的（IMM;红色）和成熟（MAT ;蓝色）moDCs。该数据是从四个独立实验汇集;意味着所有moDCs与成熟moDCs通过双向ANOVA进行分析以及Dunnett多重比较测试后在+ SEM的统计学差异。（B）中的IFN-Γ（左面板），IL-12p40的（中图）和IL-的细胞因子分析10（右窗格升）在从CD4 + T细胞用任一致耐受性（绿色），未成熟的（红色）或成熟的（蓝色）moDCs的越来越多的共培养之间alloreactions上清。数据来自六个独立实验汇集;平均值±SEM（C）的 CD4 + T细胞alloproliferation以及提高致耐受性moDCs的号码的存在诱导共培养成熟moDCs调节性T细胞的扩增。左侧Y轴，CD4 + T细胞增殖的频率。右Y轴，CD25 高 Foxp3的+栅上增殖的CD4 + T细胞的细胞频率。该数据来自三次独立实验汇集;平均值±SEM存在与不存在耐受性moDCs通过单向ANOVA进行分析以及Dunnett多重比较测试后的之间的统计学差异（D）的CD4 + T细胞alloproliferation（左）和CD25highFoxP3 +细胞的频率（右）诱导通过共文化与耐受性moDCs在增加成熟moDCs数量的存在。该数据是从两到三个独立实验汇集;平均值±SEM的存在之间的统计学差异与缺乏成熟moDCs的通过双向ANOVA以及Dunnett多重比较测试后进行分析。 10.4049 / jimmunol.1303316（2015年6月1日）:该图已经从免疫学杂志 194（11），5174-5186，DOI修改。转载和版权许可。 版权所有2015年免疫学家协会再版，公司 <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/54128/54128fig4large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a> <img alt="图5" src="/files/ftp_upload/54128/54128fig5.jpg" /> 图5:moDCs的线粒体活性分析。 （A）是用f得到moDCs线粒体膜电位的水平（红色CMXRos）低流式细胞分析。的四个独立实验的数据合并。平均值±SEM（B）的一个实时线粒体呼吸的示意图。 OCR分析，从基础呼吸和增加寡（复合物V抑制），FCCP（最大呼吸感应），鱼藤酮和/抗霉素A混合物（电子传递链[ETC]抑制）后启动。线粒体SRC（从最大呼吸减去最大基底）被从OCR曲线的。（C）的线粒体的OCR（皮摩尔/分钟）在致耐受性（TOL，绿色）的代表性动力学研究，脂多糖致耐受性（L-TOL，黑色）未成熟（IMM，红色）和成熟（MAT，蓝）通过使用顺序加成寡霉素（OLIG），FCCP，和鱼藤酮/抗霉素A（腐-AA）（D）的OCR moDCs和的基础呼吸的量化moDCs（ E）备用moDCs的呼吸能力。这些数据是从五个独立的实验汇总。平均值±SE10.4049 / jimmunol.1303316（2015年6月1日）:M。该图是从免疫学杂志 194（11），5174-5186，DOI修改。转载和版权许可。 版权所有2015年免疫学家协会再版，公司 <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/54128/54128fig5large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a> <img alt="图6" src="/files/ftp_upload/54128/54128fig6.jpg" /> 图6:moDCs代谢表征。 （一）实时糖酵解的示意图。 ECAR分析从基底ECAR，其中，所述细胞在无葡萄糖的培养基，然后加入葡萄糖（糖酵解诱导）的培养开始时，寡霉素（其诱导最大细胞糖酵解和复合物V抑制），并最后2-脱氧-D-葡萄糖（糖酵解抑制）。糖酵解率（糖酵解感应减去基础ECAR），糖酵解能力（减去基础ECAR最大糖酵解）和糖酵解储备（最大糖酵解减去糖酵解感应）从ECAR曲线的。（B）代表动力学研究糖酵解依赖在致耐受性ECAR（MPH /分钟）（TOL，绿色），脂多糖致耐受性（L-TOL，黑色），未成熟的（IMM，红），和成熟的（MAT，蓝）通过使用顺序添加葡萄糖（GLUC）的moDCs，寡霉素（OLIG），和2-DG。（℃）酒吧显示基底ECAR水平（D）的糖酵解速率（E）糖酵解容量，和（F）moDCs的糖酵解储备。该数据来自三次独立实验汇集;平均6 SEM。统计差异通过单向ANOVA与杜克多重比较测试后进行分析。 10.4049 / jimmunol:这一数字已经从免疫学杂志 194（11），5174-5186，DOI修改0.1303316（2015年6月1日）。转载和版权许可。 版权所有2015年免疫学家协会再版，公司 <a href="https://jove.unicartagenaproxy.elogim.com/files/ftp_upload/54128/54128fig6large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>

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Generation of Immature, Mature and Tolerogenic Dendritic Cells with Differing Metabolic Phenotypes

Immature dendritic cells can be selectively differentiated into tolerogenic or mature dendritic cells to regulate the balance between immunity and tolerance. This work presents a means to generate from immature monocyte derived dendritic cells (moDCs), in vitro tolerogenic and mature moDCs that differ in metabolic phenotypes.

不成熟，成熟和耐受性树突状细胞的生成与代谢不同表型

Immune response results from a complex interplay between the antigen non-specific innate immune system and the antigen specific adaptive immune system. ...

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Universidad de Cartagena UDEC

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

22.9K 次观看.  Agency for Science, Technology and Research. Immature dendritic cells can be selectively differentiated into tolerogenic or mature dendritic cells to regulate the balance between immunity and tolerance. This work presents a means to generate from immature monocyte derived dendritic cells (moDCs), in vitro tolerogenic and mature moDCs that differ in metabolic phenotypes.

视频: Generation of Immature, Mature and Tolerogenic Dendritic Cells with Differing Metabolic Phenotypes

Culture of myeloid dendritic cells from bone marrow precursors

Myeloid dendritic cells (DCs) are frequently used to study the interactions between innate and adaptive immune mechanisms and the early response to infection. Because these are the most potent antigen presenting cells, DCs are being increasingly used as a vaccine vector to study the induction of antigen-specific immune responses. In this video, we demonstrate the procedure for harvesting tibias and femurs from a donor mouse, processing the bone marrow and differentiating DCs in vitro. The properties of DCs change following stimulation: immature dendritic cells are potent phagocytes, whereas mature DCs are capable of antigen presentation and interaction with CD4+ and CD8+ T cells. This change in functional activity corresponds with the upregulation of cell surface markers and cytokine production. Many agents can be used to mature DCs, including cytokines and toll-like receptor ligands. In this video, we demonstrate flow cytometric comparisons of expression of two co-stimulatory molecules, CD86 and CD40, and the cytokine, IL-12, following overnight stimulation with CpG or mock treatment. After differentiation, DCs can be further manipulated for use as a vaccine vector or to generate antigen-specific immune responses by in vitro pulsing using peptides or proteins, or transduced using recombinant viral vectors. 

This video demonstrates the procedure for differentiating myeloid dendritic cells from mouse bone marrow. Isolation of mouse tibia and femur, and processing of bone marrow are demonstrated. Pictures demonstrating cell morphology before and after differentiation, and figures depicting cell phenotype and IL-12 production following maturation using CpG are shown.

文化髓系树突状细胞从骨髓前体

Myeloid dendritic cells (DCs) are frequently used to study the interactions between innate and adaptive immune mechanisms and the early response to ...

科研

生物学

Generation of Bone Marrow Derived Murine Dendritic Cells for Use in 2-photon Imaging

Several methods for the preparation of murine dendritic cells can be found in the literature. Here, we present a method that produces greater than 85% CD11c high dendritic cells in culture that home to the draining lymph node after subcutaneous injection and present antigen to antigen specific T cells (see video). Additionally, we use Essen Instruments Incucyte to track dendritic cell maturation, where, at day 10, the morphology of the cultured cells is typical of a mature dendritic cell and &lt;85% of cells are CD11chigh. The study of antigen presentation in peripheral lymph nodes by 2-photon imaging revealed that there are three distinct phases of dendritic cell and T cell interaction1, 2. Phase I consists of brief serial contacts between highly motile antigen specific T cells and antigen carrying dendritic cells1, 2. Phase two is marked by prolonged contacts between antigen-specific T cell and antigen bearing dendritic cells1, 2. Finally, phase III is characterized by T cells detaching from dendritic cells, regaining motility and beginning to divide1, 2. This is one example of the type of antigen-specific interactions that can be analyzed by two-photon imaging of antigen-loaded cell tracker dye-labeled dendritic cells.

Antigen presentation in secondary lymphoid organs by dendritic cells is crucial for the initiation of the T cell mediated adaptive immune response. Here we demonstrate the culture of bone marrow derived murine dendritic cells, activation, and labeling for 2-photon imaging.

代骨髓衍生的双光子成像使用的小鼠树突状细胞

Several methods for the preparation of murine dendritic cells can be found in the literature. Here, we present a method that produces greater than 85% ...

Generation and Identification of GM-CSF Derived Alveolar-like Macrophages and Dendritic Cells From Mouse Bone Marrow

Macrophages and dendritic cells (DCs) are innate immune cells found in tissues and lymphoid organs that play a key role in the defense against pathogens. However, they are difficult to isolate in sufficient numbers to study them in detail, therefore, in vitro models have been developed. In vitro cultures of bone marrow-derived macrophages and dendritic cells are well-established and valuable methods for immunological studies. Here, a method for culturing and identifying both DCs and macrophages from a single culture of primary mouse bone marrow cells using the cytokine granulocyte macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) is described. This protocol is based on the established procedure first developed by Lutz et al. in 1999 for bone marrow-derived DCs. The culture is heterogeneous, and MHCII and fluoresceinated hyaluronan (FL-HA) are used to distinguish macrophages from immature and mature DCs. These GM-CSF derived macrophages provide a convenient source of in vitro derived macrophages that closely resemble alveolar macrophages in both phenotype and function.

Bone marrow cells cultured with granulocyte macrophage colony stimulating factor (GM-CSF) generate a heterogeneous culture containing macrophages and dendritic cells (DCs). This method highlights using MHCII and hyaluronan (HA) binding to differentiate macrophages from the DCs in the GM-CSF culture. Macrophages in this culture have many similarities to alveolar macrophages.

代和GM-CSF的鉴定源性肺泡状巨噬细胞和树突状细胞从小鼠骨髓

Macrophages and dendritic cells (DCs) are innate immune cells found in tissues and lymphoid organs that play a key role in the defense against pathogens. ...

免疫与感染

Generation of Human Monocyte-derived Dendritic Cells from Whole Blood

Dendritic cells (DCs) recognize foreign structures of different pathogens, such as viruses, bacteria, and fungi, via a variety of pattern recognition receptors (PRRs) expressed on their cell surface and thereby activate and regulate immunity. 
The major function of DCs is the induction of adaptive immunity in the lymph nodes by presenting antigens via MHC I and MHC II molecules to na&#239;ve T lymphocytes. Therefore, DCs have to migrate from the periphery to the lymph nodes after the recognition of pathogens at the sites of infection. For in vitro experiments or DC vaccination strategies, monocyte-derived DCs are routinely used. These cells show similarities in physiology, morphology, and function to conventional myeloid dendritic cells. They are generated by interleukin 4 (IL-4) and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) stimulation of monocytes isolated from healthy donors. Here, we demonstrate how monocytes are isolated and stimulated from anti-coagulated human blood after peripheral blood mononuclear cell (PBMC) enrichment by density gradient centrifugation. Human monocytes are differentiated into immature DCs and are ready for experimental procedures in a non-clinical setting after 5 days of incubation.

Here, we demonstrate how monocytes are isolated by magnetic bead separation from peripheral blood mononuclear cells after density gradient centrifugation of human anti-coagulated blood. Following incubation for 5 days, human monocytes are differentiated into immature dendritic cells and are ready for experimental procedures in a non-clinical setting.

从全血人单核细胞来源的树突状细胞的生成

Dendritic cells (DCs) recognize foreign structures of different pathogens, such as viruses, bacteria, and fungi, via a variety of pattern recognition ...

Generation of Large Numbers of Myeloid Progenitors and Dendritic Cell Precursors from Murine Bone Marrow Using a Novel Cell Sorting Strategy

Cultures of monocyte-derived dendritic cells (moDC) generated from mouse bone marrow using Granulocyte-Macrophage Colony Stimulating Factor (GM-CSF) have recently been recognized to be more heterogeneous than previously appreciated. These cultures routinely contain moDC as well monocyte-derived macrophages (moMac), and even some less developed cells such as monocytes. The goal of this protocol is to provide a consistent method for identification and separation of the many cell types present in these cultures as they develop, so that their specific functions may be further investigated. The sorting strategy presented here separates cells first into four populations based on expression of Ly6C and CD115, both of which are expressed transiently by cells as they develop in GM-CSF-driven culture. These four populations include Common myeloid progenitors or CMP (Ly6C-, CD115-), granulocyte/macrophage progenitors or GMP (Ly6C+, CD115-), monocytes (Ly6C+, CD115+), and monocyte-derived macrophages or moMac (Ly6C-, CD115+). CD11c is also added to the sorting strategy to distinguish two populations within the Ly6C-, CD115- population: CMP (CD11c-) and moDC (CD11c+). Finally, two populations may be further distinguished within the Ly6C-, CD115+ population based on the level of MHC class II expression. MoMacs express lower levels of MHC class II, while a monocyte-derived DC precursor (moDP) expresses higher MHC class II. This method allows for the reliable isolation of several developmentally distinct populations in numbers sufficient for a variety of functional and developmental analyses. We highlight one such functional readout, the differential responses of these cell types to stimulation with Pathogen-Associated Molecular Patterns (PAMPs).

Here we provide a method for identifying and isolating large numbers of GM-CSF driven myeloid cells using high speed cell sorting. Five distinct populations (Common myeloid progenitors, granulocyte/macrophage progenitors, monocytes, monocyte-derived macrophages, and monocyte-derived DCs) can be identified based on Ly6C and CD115 expression.

利用新的细胞分选策略, 从小鼠骨髓中生成大量的髓样祖细胞和树突状体细胞前体

Cultures of monocyte-derived dendritic cells (moDC) generated from mouse bone marrow using Granulocyte-Macrophage Colony Stimulating Factor (GM-CSF) have ...

Development and Functional Characterization of Murine Tolerogenic Dendritic Cells

The immune system operates by maintaining a tight balance between coordinating responses against foreign antigens and maintaining an unresponsive state against self-antigens as well as antigens derived from commensal organisms. The disruption of this immune homeostasis can lead to chronic inflammation and to the development of autoimmunity. Dendritic cells (DCs) are the professional antigen-presenting cells of the innate immune system involved in activating na&#239;ve T cells to initiate immune responses against foreign antigens. However, DCs can also be differentiated into TolDCs that act to maintain and promote T cell tolerance and to suppress effector cells contributing to the development of either autoimmune or chronic inflammation conditions. The recent advancement in our understanding of TolDCs suggests that DC tolerance can be achieved by modulating their differentiation conditions. This phenomenon has led to tremendous growth in developing TolDC therapies for numerous immune disorders caused due to break in immune tolerance. Successful studies in preclinical autoimmunity murine models have further validated the immunotherapeutic utility of TolDCs in the treatment of autoimmune disorders. Today, TolDCs have become a promising immunotherapeutic tool in the clinic for reinstating immune tolerance in various immune disorders by targeting pathogenic autoimmune responses while leaving protective immunity intact. Although an array of strategies has been proposed by multiple labs to induce TolDCs, there is no consistency in characterizing the cellular and functional phenotype of these cells. This protocol provides a step-by-step guide for the development of bone marrow-derived DCs in large numbers, a unique method used to differentiate them into TolDCs with a synthetic triterpenoid 2-cyano-3,12-dioxooleana-1,9-dien-28-oic acid-difluoro-propyl-amide (CDDO-DFPA), and the techniques used to confirm their phenotype, including analyses of essential molecular signatures of TolDCs. Finally, we show a method to assess TolDC function by testing their immunosuppressive response in vitro and in vivo in a preclinical model of multiple sclerosis.

Here, we present a protocol to develop and characterize tolerogenic dendritic cells (TolDCs) and evaluate their immunotherapeutic utility.

小鼠致耐受性树突状细胞的发育及功能表征

The immune system operates by maintaining a tight balance between coordinating responses against foreign antigens and maintaining an unresponsive state ...

医学

Study of Dendritic Cell Development by Short Hairpin RNA-Mediated Gene Knockdown in a Hematopoietic Stem and Progenitor Cell Line In vitro

Dendritic cells (DCs) are important antigen-presenting cells that connect innate and adaptive immune responses. DCs are heterogeneous and can be divided into conventional DCs (cDCs) and plasmacytoid DCs (pDCs). cDCs specializes in presenting antigens to and activate na&#239;ve T cells. On the other hand, pDCs can produce large quantities of type I interferons (IFN-I) during viral infection. The specification of DCs occurs at an early stage of DC progenitors in the bone marrow (BM) and is defined by a network of transcription factors (TFs). For example, cDCs highly express ID2, while pDCs highly express E2-2. Since more and more subsets of DCs are being identified, there is a growing interest in understanding specific TFs controlling DC development. Here, we establish a method to screen TFs critical for DCs differentiation in vitro by delivering lentivirus carrying short hairpin RNA (shRNA) into an immortalized hematopoietic stem and progenitor cell (iHSPCs) line. After the selection and in vitro differentiation, cDC and pDC potential of the stable knockdown cell lines are analyzed by flow cytometry. This approach provides a platform to identify genes potentially governing DC fates from progenitors in vitro.

Study of Dendritic Cell Development by Short Hairpin RNA-Mediated Gene Knockdown in a Hematopoietic Stem and Progenitor Cell Line In vitro

Here we provide a protocol for screening potential transcription factors involved in the development of dendritic cell (DC) using lentiviral transduction of shRNA to obtain stable knockdown cell lines for in vitro DC differentiation.

短发夹RNA介导的基因敲低在造血干和祖细胞系体外发育的树突状细胞发育研究

Dendritic cells (DCs) are important antigen-presenting cells that connect innate and adaptive immune responses. DCs are heterogeneous and can be divided ...

Economical and Efficient Protocol for Isolating and Culturing Bone Marrow-derived Dendritic Cells from Mice

The demand for dendritic cells (DCs) is gradually increasing as immunology research advances. However, DCs are rare in all tissues. The traditional method for isolating DCs primarily involves inducing bone marrow (BM) differentiation into DCs by injecting large doses (&#62;10 ng/mL) of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor/interleukin-4 (GM-CSF/IL-4), making the procedure complex and expensive. In this protocol, using all BM cells cultured in 10 ng/mL GM-CSF/IL-4 medium, after 3-4 half-culture exchanges, up to 2.7 x 107 CD11c+ cells&#160;(DCs) per mouse (two femurs) were harvested with a purity of 80%-95%. After 10 days in culture, the expression of CD11c, CD80, and MHC II increased, whereas the number of cells decreased. The number of cells peaked after 7 days of culture. Moreover, this method only took 10 min to harvest all bone marrow cells, and a high number of DCs were obtained after 1 week of culture.

Here, we present an economical and efficient method to isolate and generate high-purity bone marrow-derived dendritic cells from mice after 7 days of culture with 10 ng/mL GM-CSF/IL-4.

从小鼠中分离和培养骨髓衍生树突状细胞的经济有效的方案

The demand for dendritic cells (DCs) is gradually increasing as immunology research advances. However, DCs are rare in all tissues. The traditional method ...

使用唾液酸酶处理从分离的 PBMC 中去除唾液酸化单核细胞衍生的 DC

Generation of Monocyte-Derived Dendritic Cells with Differing Sialylated Phenotypes

Sialic acids are negatively charged monosaccharides typically found at the termini of cell surface glycans. Due to their hydrophilicity and biophysical characteristics, they are involved in numerous biological processes, such as modulation of the immune response, recognition of self and non-self antigens, carbohydrate-protein interactions, etc. The cellular content of sialic acid is regulated by sialidase, which catalyzes the removal of sialic acid residues. Several studies have shown that sialo-glycans are critical in monitoring immune surveillance by engaging with cis and trans inhibitory Siglec receptors on immune cells. Likewise, glyco-immune checkpoints in cancer are becoming crucial targets for developing immunotherapies. Additionally, dendritic cells (DCs) are envisioned as an important component in immunotherapies, especially in cancer research, due to their unique role as professional antigen-presenting cells (APC) and their capacity to trigger adaptive immune responses and generate immunologic memory. Nevertheless, the function of DCs is dependent on their full maturation. Immature DCs have an opposing function to mature DCs and a high sialic acid content, which further dampens their maturation level. This downregulates the ability of immature DCs to activate T-cells, leading to a compromised immune response. Consequently, removing sialic acid from the cell surface of human DCs induces their maturation, thus increasing the expression of MHC molecules and antigen presentation. In addition, it can restore the expression of co-stimulatory molecules and IL-12, resulting in DCs having a higher ability to polarize T-cells toward a Th1 phenotype and specifically activate cytotoxic T-cells to kill tumor cells. Therefore, sialic acid has emerged as a key modulator of DCs and is being used as a novel target to advance their therapeutic use. This study provides a unique approach to treat in vitro monocyte-derived DCs with sialidase, aimed at generating DC populations with different cell surface sialic acid phenotypes and tailored maturation and co-stimulatory profiles.

作者聚焦:使用基于唾液酶的细胞表面酶处理树突状细胞成熟 

A unique, comprehensive protocol to generate de-sialylated human monocyte-derived dendritic cells (mo-DCs) from isolated peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) using a sialidase treatment is presented. Further, methods to assess the phenotypic and functional characterization of mo-DCs and evaluate how sialidase treatment improves the maturation level of mo-DCs are described.

具有不同唾液酸化表型的单核细胞来源的树突状细胞的生成

Sialic acids are negatively charged monosaccharides typically found at the termini of cell surface glycans. Due to their hydrophilicity and biophysical ...

不成熟，成熟和耐受性树突状细胞的生成与代谢不同表型

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文化髓系树突状细胞从骨髓前体

代骨髓衍生的双光子成像使用的小鼠树突状细胞

代和GM-CSF的鉴定源性肺泡状巨噬细胞和树突状细胞从小鼠骨髓

从全血人单核细胞来源的树突状细胞的生成

利用新的细胞分选策略, 从小鼠骨髓中生成大量的髓样祖细胞和树突状体细胞前体

小鼠致耐受性树突状细胞的发育及功能表征

短发夹RNA介导的基因敲低在造血干和祖细胞系体外发育的树突状细胞发育研究

从小鼠中分离和培养骨髓衍生树突状细胞的经济有效的方案

具有不同唾液酸化表型的单核细胞来源的树突状细胞的生成

具有不同唾液酸化表型的单核细胞来源的树突状细胞的生成